养殖场饮用水微生物检测方法的建立
饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术研究进展
饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术研究进展饮用水是人类生活中不可或缺的重要资源，在日常生活中，我们每天都会接触和使用饮用水。
饮用水中可能存在着各种致病性微生物，如细菌、病毒、寄生虫等，它们可能对人体健康造成严重危害。
对饮用水中的致病性微生物进行快速检测和准确监测，对于保障人们的饮用水安全至关重要。
PCR技术可以通过扩增目标微生物的DNA片段来进行检测和鉴定。
在饮用水中，常见的致病性微生物包括大肠杆菌、志贺氏菌、霍乱弧菌等。
通过PCR技术，可以选择相应的引物和探针，实现对这些致病性微生物的快速检测和定量分析。
PCR技术还可以结合其他技术，如实时荧光定量PCR、数字PCR等，提高检测的准确性和灵敏度，从而更好地保障饮用水的安全。
二、PCR技术在饮用水中致病性微生物检测中的优势和挑战与传统的微生物学检测方法相比，PCR技术具有检测速度快、准确性高、灵敏度强等优势。
PCR技术还可以实现多种微生物的同时检测，提高了检测的效率和便捷性。
PCR技术在饮用水中的应用也面临着一些挑战，如样品预处理的复杂性、环境因素对PCR反应的影响等。
如何解决这些挑战，进一步完善和优化PCR技术在饮用水中的应用，是当前研究中亟待解决的问题。
随着分子生物学技术的不断进步和发展，PCR技术在饮用水中致病性微生物检测领域也得到了广泛的应用和发展。
未来，基于PCR技术的饮用水中致病性微生物检测将朝着以下几个方向发展：1. 多重PCR技术的应用：将多重PCR技术与不同的微生物标记物结合，实现对多种致病性微生物的同时检测，进一步提高检测的效率和准确性。
2. 自动化检测平台的开发：结合微流控技术和自动化仪器，开发高通量的饮用水中致病性微生物检测平台，实现对大规模样品的快速检测和分析。
3. 环境样品中致病性微生物检测的研究：对于环境中的水样、土壤样品等，开发适用于复杂环境样品的PCR技术，实现对致病性微生物的快速检测和鉴定。
PCR技术在饮用水中致病性微生物检测技术的研究中取得了显著的进展，不断出现新的技术和方法，为保障饮用水安全提供了强有力的技术支持。
饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术研究进展
饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术研究进展饮用水是人类生活中必不可少的资源之一，但由于水源污染和传染病的传播，饮用水中可能存在各种致病性微生物，如细菌、病毒和寄生虫等。
这些致病性微生物对人体健康造成威胁，及时准确地检测饮用水中的致病性微生物是非常重要的。
传统的微生物检测方法需要进行培养和分离，耗时且结果可能受环境因素的影响。
开发一种快速准确的饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术具有重要的研究价值。
PCR（聚合酶链反应）技术是一种在体外扩增DNA片段的方法，该技术具有高度灵敏度和特异性。
目前，PCR技术已被广泛用于饮用水中致病性微生物的检测。
下面将介绍PCR技术在饮用水中细菌、病毒和寄生虫等致病性微生物检测中的应用研究进展。
在饮用水中细菌PCR检测研究中，研究人员常利用特异性引物对细菌的特定基因进行扩增和检测。
Gram阴性菌的通用引物16s rRNA引物对多种Gram阴性菌进行扩增和检测。
研究者还利用病原细菌的特异基因进行检测，如沙门氏菌的invA基因和霍乱弧菌的ctxA基因等。
还有一些病原菌的检测方法已经商业化，如大肠杆菌、耐热大肠杆菌和肠炎弯曲杆菌等。
在饮用水中病毒PCR检测研究中，研究人员主要利用病毒的特定基因进行扩增和检测。
常用的方法包括利用病毒的核酸酶基因进行检测，如诺如病毒的RNA酶H基因和腺病毒的DNA聚合酶基因等。
一些常见的病毒，如诺如病毒、腺病毒和肠道病毒等，已经有商业化产品可供选择。
在饮用水中寄生虫PCR检测研究中，研究人员主要利用寄生虫的特定基因进行扩增和检测。
利用弓形虫的B1基因进行扩增和检测，有助于判断饮用水中是否存在弓形虫感染风险。
类似地，利用血吸虫的内转录间隔区ITS2基因进行扩增和检测，有助于判断饮用水中是否存在血吸虫感染风险。
一些寄生虫的检测方法也已经商业化，如黑线虫、鞭毛虫和滴虫等。
PCR技术在饮用水中致病性微生物的快速检测中具有很高的应用潜力。
目前这一技术仍然面临一些挑战，如PCR引物的设计和优化、样品前处理的复杂性和PCR抑制物的影响等。
饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术研究进展
饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术研究进展饮用水中致病性微生物是指能够引起人体疾病的微生物，包括细菌、病毒和寄生虫等。
它们存在于水体中，如果饮用水中存在这些致病性微生物，会对人体健康造成严重威胁。
对饮用水中致病性微生物的快速检测技术的研究具有重要的意义。
PCR（聚合酶链反应）是一种在实验室中扩增DNA片段的方法，可以快速、特异地检测目标微生物。
在饮用水中致病性微生物的PCR快速检测技术研究中，主要包括以下几个方面的进展。
PCR技术的引入使得饮用水中致病性微生物的检测更加快速和高效。
传统的微生物培养方法需要耗费很长时间，而PCR技术可以在几小时内完成检测，提高了检测的速度。
PCR 技术可以同时检测多种细菌、病毒和寄生虫，具有较高的特异性和敏感性。
PCR技术的改进提高了饮用水中致病性微生物的检测的准确性。
随着PCR技术的不断改进，引入了新的基因探针和引物设计策略，可以更准确地区分不同的致病性微生物。
PCR技术还可以与其他检测技术结合使用，如脱落试验、高通量测序和流式细胞术等，进一步提高检测的准确性。
PCR技术在饮用水中致病性微生物的监测和预警中起到了重要的作用。
通过定期对饮用水中的微生物进行PCR检测，可以及时发现并处理潜在的危害物质，保障饮用水的安全。
在突发事件和灾难中，PCR技术可以进行快速检测，预警并采取相应措施，减少对人体的伤害。
PCR技术还在饮用水中致病性微生物的病因学研究中得到了广泛应用。
通过分析饮用水中致病性微生物的DNA序列，可以揭示不同病原微生物的种类、分布和传播方式等信息，为疾病的预防和控制提供科学依据。
饮用水中致病性微生物PCR快速检测技术的研究进展为饮用水安全提供了可靠的检测手段。
随着PCR技术的不断改进和应用，相信在未来会有更多的突破和进展，为饮用水的安全保障提供更多的支持。
农饮水水质检测管理制度
农饮水水质检测管理制度一、前言随着科技的不断发展和人民生活水平的提高，人们对饮水的质量要求也越来越高。
良好的饮水质量是人民健康的保障，也是农业生产中不可或缺的重要条件之一。
因此，建立完善的饮水水质检测管理制度对于农业生产至关重要。
本文将结合实际情况，探讨农业生产中饮水水质检测管理制度的建立和完善。
二、饮水水质检测管理制度的必要性1.保障饮水安全饮水水质检测管理制度的建立可以保障饮水的安全，确保人们饮用的水质量符合国家相关标准。
农业生产中，农村地区的饮水更是需要加强管理，因为许多农民使用的是地下水或其他自然水源，水质可能会受到农业生产或人类活动的影响，如果没有严格的水质检测管理制度，容易导致饮水安全问题。
2.维护农业生产环境农业生产中，饮水质量的好坏直接影响到农作物的生长和发育，同时也影响到农产品的质量和产量。
建立健全的水质检测管理制度可以及时发现和处理影响农业生产的水质问题，维护良好的农业生产环境。
3.提高农业生产效益饮水水质检测管理制度的建立能有效提高农业生产的效益。
通过水质检测，可以及时了解到农田和农作物对水质的需求，有针对性地进行水质调整，提高农业作物的产量和品质。
三、饮水水质检测管理制度的建立和完善1.建立饮水水质检测机构首先需要建立专业的饮水水质检测机构，配备先进的水质检测设备和专业的检测人员。
这样可以确保水质监测的准确性和可靠性。
同时，要听取相关专家的意见，制定出完善的饮水水质检测管理制度。
2.建立饮水水质监测网络建立饮水水质监测网络，将监测站点布设在农村地区和农田周边。
并且要实现实时监测和数据传输，将监测数据及时反馈给相关部门和农民，保障饮用水质量的安全。
3.建立饮水水质检测标准制定统一的饮水水质检测标准，以便对水质进行有效监测和评价。
并且要根据当地的实际情况，进行相应的调整和完善。
4.建立信息公开和风险预警机制要求相关部门将饮水水质检测的结果进行公开，让农民和广大群众了解到水质的情况。
蛋鸡养殖场管理-浅谈蛋鸡场饮用水管理
蛋鸡养殖场管理-浅谈蛋鸡场饮用水管理水是维持生物体生命不可或缺的物质，对于养鸡场来说，饮用水的清洁卫生情况直接决定鸡群生长与生产性能的发挥。
1鸡群饮用水标准1.1水质卫生学标准一般情况下，适合于人类的饮用水同样也适应于鸡群。
鸡饮用水一定要洁净、无色、无味、无杂物，符合国家饮用水的卫生标准。
1.2水的细菌学指标水的微生物学指标是评价水被微生物污染状况的标准，在实际工作中，通常以检验水中细菌总数和大肠杆菌总数来间接判断饮用水受污染的程度，一般要求每1mL家禽饮用水中细菌总个数不超过1000个，大肠杆菌个数不超过10个。
2供水系统的选择目前养殖场常用的饮水系统主要有以下四种：槽式饮水器、真空式饮水器、杯式饮水器和乳头式饮水器。
前三者结构简单、使用方便、供水可靠、价格便宜，但饮用水直接暴露于空气中，水易蒸发，不仅造成水的浪费、鸡舍潮湿，而且水体易被污染，引发传染性疾病，不利于防疫与彻底清洗。
乳头式饮水器水质不易污染，能减少疾病的传播，蒸发量少，而且使用后清洗方便、劳动强度低,是一种封闭式的理想饮水设备，因而生产中建议使用乳头式饮水器。
3供水系统管理3.1水源管理养殖场水源要远离污染源，如工厂、垃圾场、生活区与储粪场等；水井设在地势高燥处，防止雨水、污水倒流引起水源污染；定期检测饮用水卫生状况。
3.2入舍水管理微生物能通过吸附于悬浮物表面进入鸡舍感染鸡群，因而在进入鸡舍的管道上安装过滤器是消除部分病原体、改善入舍水质量的有效方法。
为保证入舍水的过滤效果，过滤器应每周清洗1次，定期更换丧失过滤功能的滤芯；如果过滤器两侧有水表，可通过观察进水口与排水口水表的水压差来判断过滤器清洗、更换时间。
当进水处压力值等于排水处水压值时，可不考虑过滤器清理或更换，当进水处压力值高于排水处水压值时，应及时清理或更换滤芯。
3.3饮水管管理由于饮水管长时间处于密闭状态，管内细菌接触水中固体物时会分泌出粘性的、营养丰富的生物膜，生物膜形成后又会吸引更多的细菌和水中其他物质，从而迅速成为病原菌繁殖的活聚居地，使原本封闭的饮水系统变成了传递病原菌的工具。
实验室生活饮用水微生物检测SOP(一)
实验室生活饮用水微生物检测SOP（一）引言概述：实验室生活饮用水微生物检测SOP是为了确保实验室饮用水的安全与卫生，检测水中的微生物污染情况，并采取相应的措施进行处理。
本文将详细介绍实验室生活饮用水微生物检测的步骤和要点。
正文：一、实验室生活饮用水微生物检测前的准备工作1. 准备所需的检测设备和试剂，包括培养基、平板计数器、显微镜等。
2. 清洗和消毒检测设备，确保设备的洁净和无菌。
3. 确保实验室供水管道的安全和干净，避免水源污染。
二、水样采集和处理1. 选择合适的水样采集器具，如钢质水样容器或无菌采样瓶。
2. 在采集水样前进行必要的洗手和佩戴消毒手套，以避免污染水样。
3. 选取水源合适的位置采集水样，尽量避免水源受到外界污染。
4. 采集水样后立即送至实验室进行处理，避免样品在运输过程中受到污染。
三、水样预处理1. 对水样进行过滤，以去除大颗粒物质和悬浮物。
2. 进行稀释处理，确保微生物数量在检测范围内。
3. 根据需要进行pH调节或添加抑菌剂，以保证后续检测的准确性和可靠性。
四、微生物检测方法1. 采用培养法进行微生物定量分析，包括总菌落计数和特定菌群检测。
2. 根据需求选择合适的培养基和培养条件，如温度、pH值等。
3. 加入样品到培养基中，进行平板计数或液体培养，并进行恰当的菌落计数。
4. 进行特定菌群的检测，如大肠杆菌、沙门氏菌等，采用相应的培养基和检测方法。
5. 采用显微镜观察法进行微生物形态和特征的检测，确保检测结果的准确性。
五、结果分析和处理1. 根据检测结果进行微生物数量统计和分析，比较检测结果与相关标准的符合情况。
2. 如发现微生物污染超过标准限值，及时采取措施进行处理和消毒。
3. 记录检测结果，并保留相关文件和数据，以备日后参考和审查。
总结：实验室生活饮用水微生物检测SOP的实施可以确保实验室饮用水的卫生安全。
通过准备工作、水样采集和处理、微生物检测方法的选择和结果分析处理，可有效地监测和控制实验室饮用水中的微生物污染，保障实验室工作人员的身体健康和实验室环境的卫生安全。
养殖场的饲料与饮水安全管理
养殖场的饲料与饮水安全管理养殖业是农业的一个重要组成部分，如今养殖业已成为满足人们食品需求的重要手段之一。
然而，随着养殖业规模的不断扩大和市场竞争的加剧，饲料和饮水安全管理已成为一个亟待解决的问题。
本文将从饲料和饮水的来源，质量监控和风险防控等方面，详细介绍养殖场的饲料与饮水安全管理。
一、饲料来源的管理1. 确保饲料来源的可靠性。
养殖场应与有资质的饲料生产商合作，签订正式合同，并定期检查合作方的资质证明和饲料质量检测报告。
2. 保证饲料的原材料安全。
养殖场应对饲料的原材料来源进行严格的筛选，优先选择符合国家标准和安全要求的原材料，并定期进行抽样检测，确保无任何污染物质。
3. 规范饲料储存和运输过程。
养殖场应建立科学的饲料储存和运输管理制度，确保饲料在整个过程中不受潮、发霉和受到外界污染。
二、饲料质量监控1. 建立完善的质量检测制度。
养殖场应加强对饲料质量的监控，建立现代化的质量检测实验室，配备先进的检测设备和专业人员，对饲料进行全面检测，确保达到国家标准。
2. 严格执行质量控制标准。
养殖场应对饲料供应商进行评估，要求其严格按照国家标准生产，不得使用含有激素、抗生素和其他非法添加剂的饲料。
3. 定期抽样检测饲料质量。
养殖场应定期抽样检测饲料质量，及时了解饲料中的营养成分和病原微生物等指标，确保饲料的质量符合要求。
三、饮水安全管理1. 确保饮水源的安全性。
养殖场应选择符合卫生标准的饮用水源，并定期委托专业机构对水源进行检测，确保水质无污染和不含有害物质。
2. 建立科学的饮水系统。
养殖场应建立科学的饮水系统，包括水管、水箱、喂水器等设备，定期清洁和消毒，防止水源二次污染。
3. 定期监测水质。
养殖场应定期监测饮水系统中的水质，包括溶解氧、PH值、细菌总数和重金属等指标，确保水质安全。
四、风险防控措施1. 健全风险评估体系。
养殖场应建立健全的风险评估体系，对饲料和饮水的安全问题进行全面评估，及时发现和解决风险隐患。
饮用水微生物检验操作规程
版本号: 1.0生效日期: 2012.12.1饮用水微生物检验操作规程页 码: 第1页 共4页目的本SOP制订饮用水的微生物检测检验操作规程。
职责实验室管理人员负责确保实验室人员接受该规程的正确培训并执行该规程。
相关实验室人员负责正确执行下述规程。
定义微生物限度检查包括一般细菌和大肠埃希菌检查程序/范围A.仪器名称型号与规格生产厂家洁净工作台SW-CJ-1F 苏州安泰空气技术有限公司洁净工作台SW-CJ-2FD 苏州安泰空气技术有限公司干热消毒箱GRX-6 上海精宏实验设备有限公司生化培养箱DPN-9082 太仓精宏仪器设备有限公司电热恒温水浴锅DZKW-4 北京中兴伟业仪器有限公司电子天平HZK-FA210 福州华志科学仪器有限公司微生物限度检验仪HTY-100 杭州泰林生物技术设备有限公司B.培养基和缓冲液PH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液营养琼脂培养基胆盐乳糖培养基MUG培养基麦康凯琼脂培养基版本号: 1.0生效日期: 2012.12.1饮用水微生物检验操作规程页 码: 第2页 共4页C.器具名称规格螺旋盖瓶250ml，500ml刻度吸管10ml,1ml微生物限度过滤培养器S60烧杯500ml,1000ml，2000ml吸耳球——牛皮纸——灭菌培养皿Ф90mmD.培养基和缓冲液的配制1. PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液称取PH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液16.09 g，放入装有1 L纯化水的不锈钢锅内，搅拌加热煮沸至完全溶解，分装至三角瓶或螺旋盖瓶，121 ℃高压灭菌15分钟。
2.营养琼脂培养基称取营养琼脂培养基33 g，放入装有1 L纯化水的不锈钢锅内，搅拌加热煮沸至完全溶解，分装至三角瓶或螺旋盖瓶，121 ℃高压灭菌15分钟。
3. 胆盐乳糖培养基称取胆盐乳糖培养基35.8g ,放入装有1L纯化水的不锈钢锅内，搅拌加热煮沸至完全溶解，分装至三角瓶或螺旋盖瓶，121℃高压灭菌20分钟。
4. MUG培养基称取MUG培养基23.4g ,放入装有1L纯化水的不锈钢锅内，搅拌加热煮沸至完全溶解，分装至三角瓶或螺旋盖瓶，115℃高压灭菌20分钟。
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养殖场饮用水微生物检测方法的建立
养殖场饮用水质量直接关系到畜禽健康及生产水平。
养殖场饮用水受到微生物污染会引起畜禽肠道疾病反复发作。
养殖场饮用水受到微生物污染的途径很多：浅井水和地表水易受畜禽粪便污染；供水塔、贮水池及输水管道长期不清洗会造成微生物滋生；饮水线中残留有药物载体（淀粉、葡萄糖等）会成为细菌长期滋生的基质。
养殖场应该定期检测饮用水的微生物指标，为开展饮水系统的清洁与消毒工作提供依据。
人的饮用水微生物指标由专业机构检测，依据
GB/T5750.12-2006《生活饮用水标准检验方法》，动物饮用水和人的饮用水微生物指标最好一致，但是养殖场饮用水易受污染，尤其是饮水线末端的水，因此养殖场饮用水微生物检测需求多，频繁送水到专业机构检测既不现实又不经济。
笔者多次对养殖场饮用水进行微生物检测，总结出一套简便易行的检测方法，检测结果与GB/T5750.12-2006的标准方法有很好的一致性，适于在养殖场或基层畜牧兽医实验室推广应用。
1实验原理
1.1评价指标
评价水质清洁度有三个重要指标：菌落总数、总大肠菌群、耐热大肠菌群。
总大肠菌群指自然环境中的大肠菌群，用提高培养温度的方法可以将自然环境中的大肠菌群与粪
便中的大肠菌群区分开，因此耐热大肠菌群的检出是水质被粪便污染的标志。
1.2指标限值
养殖场贮水池、水塔、饮水线入口三处水质的微生物学指标是：菌落总数<lOO个/mL，总大肠菌群<10个/100mL，耐热大肠菌群不得检出。
饮水线末端水质的微生物学指标采用经验值：菌落总数<1000个/mL，总大肠菌群<10个/100mL，耐热大肠菌群不得检出。
2实验方法
2.1水样采集
分别采集供水塔或蓄水池，饮水线入口，饮水线末端三处的水样，装入灭菌容器中。
2.2实验器材
2.2.1仪器设备高压蒸汽灭菌器，干热灭菌箱，恒温培养箱（2台），水浴锅，天平，菌落计数器。
2.2.2实验耗材试管，平皿，吸管、三角烧杯、玻璃瓶等，耗材使用前要干热灭菌。
2.3培养基
营养琼脂，双料乳糖蛋白胨培养液（常规乳糖蛋白胨培
养液除蒸馏水外其他成份加倍），伊红美蓝培养基，这些培养基可以使用市售的成品，也可以按下面方法自制：营养琼脂：蛋白胨10g，牛肉膏3g，氯化钠5g，琼脂15g，蒸馏水1000 mL，这些成分混合后，水浴加热溶解，调整PH 值为7.4-7.6，121℃高压灭菌20 min。
双料乳糖蛋白胨培养液：蛋白胨20g，牛肉膏6g，乳糖10g，氯化钠10g，溴甲酚紫乙醇溶液（16g/L）2mL，蒸馏水1000mL，先将蛋白胨、牛肉膏、乳糖和氯化钠溶于蒸馏水中，调整PH值为7.2-7.4，再加入2mL的溴甲酚紫乙醇溶液，充分混匀，分装于装有倒立小试管的大试管中，每管10mL，115℃高压灭菌20min。
伊红美蓝培养基：蛋白胨10g，乳糖10g，磷酸氢二钾2g，琼脂25g，蒸馏水1000mL，伊红水溶液（20g/L）20mL，美蓝水溶液（5g/L）13mL，将蛋白胨，磷酸氢二钾和琼脂溶解于蒸馏水中，调整PH值为7.2-7.4，加入乳糖，115℃高压灭菌20 min，冷却至50℃左右加入伊红和美蓝溶液，混匀，倾注平皿。
2.4接种与培养
2.4.1水样稀释先充分混匀水样，无菌操作吸取1mL水样注入9mL灭菌生理盐水中，混匀成1：10稀释液，同法倍比稀释1：100、1：1000、1：104、1：105、1：106的稀释液。
2.4.2营养琼脂接种用灭菌吸管分别吸取1mL未稀释的
水样和各稀释度的水样，注入不同的灭菌平皿中，然后倒入15mL左右已融化并冷却至45℃左右的营养琼脂，立即轻轻
旋摇平皿将水样与培养基混匀，待培养基冷却凝固后放入湿盒中在37℃培养48h后进行菌落计数。
2.4.3双料乳糖蛋白胨培养液接种取10管双料乳糖蛋白
胨培养液，每管无菌接种10mL未稀释的水样，接种后5管
置于37℃培养24h，作为总大肠菌群检测，5管置于44.5℃培养24h，作为耐热大肠菌群检测。
2.4.4伊红美蓝琼脂接种取双料乳糖蛋白胨培养液产酸
产气管（37℃或44.5℃培养，培养液变黄，倒立小试管浮起，内含气泡），用接种环蘸取少量培养液，在伊红美蓝琼脂上
进行细菌划线分离接种，按接种的双料乳糖蛋白胨培养液的培养温度分别置于37℃或44.5℃培养24h。
3结果判定
3.1菌落总数判定
选择平均菌落数在30～300之间的培养皿进行计数，如果所有稀释度菌落数都>300，则计数最高稀释度平皿菌落数；如果所有稀释度的菌落数都<30，则计数最低稀释度平皿菌
落数；如果所有稀释度平皿菌落数都不在30～300之间，则计数最接近30或300的平皿。
计数后，再乘以稀释倍数，
得出每毫升水样菌落总数（CFU/mL）。
3.2大肠菌群判定
观察37℃培养的双料乳糖蛋白胨培养液，产酸产气者为大肠菌群疑似阳性管，疑似阳性管经37℃伊红美蓝琼脂分离培养后观察有紫黑色或边缘浅紫红色中心紫黑色，略带金属光泽的特征菌落，证实为阳性管，根据阳性管数，按表1判定每100mL水样总大肠菌群最可能数（MPN/100mL）。
3.3耐热大肠菌群判定
观察44.5℃培养的双料乳糖蛋白胨培养液，产酸产气者为耐热大肠菌群疑似阳性管，疑似阳性管经44.5℃伊红美蓝琼脂分离培养后观察有3.2中描述的特征菌落，证实为阳性管，同样按表1判定每100mL水样耐热大肠菌群最可能数（MPN/100 mL）。
3.4结果
菌落总数、总大肠菌群、耐热大肠菌群三项指标低于1.2中的指标限值报告水样微生物检测合格，高于则报告不合格。
4总结
两年来，笔者定期对某种猪场、某种禽场进行饮用水微生物指标检测，指导两场合理进行饮水系统的清洗和消毒，种猪场仔猪黄白痢、种禽场禽腹泻病的发生率明显下降，同时减少了预防性投药。
建议养殖场将饮用水微生物检测做为疫病综合防控措施之一开展起来。