微生物检验实验
临床微生物检验_实验二

课后作业
复习今天接种细菌的各种生化反应原理与结果 预习第二天的各种生化反应原理及结果观察
第二天实验内容
试剂:苯丙、尿素、(赖氨酸、鸟氨酸、氨对)、 DNA酶、硝还、O/F 以上各种生化微量管 2支/人 O/F管 4支/人
菌种:大肠、变形、沙门、志贺、金葡、铜绿 其他:砂轮、接种针、酒精灯 观察昨天的生化反应结果并记录
③产生硫化氢 + 铁盐
FeS 黑色沉淀
应用:检测肠杆菌科细菌对乳糖、葡萄糖的分解和 产H2S能力。
克氏双糖铁试验结果示意图
未接种菌 的KIA
乳(-) 葡(+) H2S(-)
乳(-) 葡(+)
H2S(+)
乳(+) 葡(产酸产气) H2S(-)
各种生化培养基接种的细菌
葡萄糖: 大肠埃希菌 、 沙门菌或志贺菌
砂轮接种针酒精灯?观察昨天的生化反应结果并记录mr和vp加试剂后观察无色红色vp试验甲基红试验紫红色橘黄色加试剂后观察乳葡产酸产气h2s大肠埃希菌在kia中结果乳葡h2s伤寒沙门菌在kia中结果乳葡h2s志贺菌在kia中生长结果kakakaaa?原理
广州医科大学
临床微生物学检验
实验 第二周
实验内容
指示剂
颜色改变
酸→碱
溴甲酚紫
黄→紫
溴麝香草酚蓝 黄→蓝
甲基红
红→黄
中性红
红→黄
酚红
黄红
感应0 6.8~8.0 6.8~8.4
碳水化合物代谢试验
1、糖(醇、苷)类发酵试验
原理:细菌含发酵糖(苷、醇)类的酶不同, 分解糖(苷、醇)能力不同,代谢产 物不同,指示剂呈酸性或碱性反应。
(再35℃0.5~1小时后观察)
微生物常用实验3篇

微生物常用实验第一篇:细菌涂片染色实验细菌涂片染色实验是微生物学中最基本的实验之一。
通过染色方法,使细菌变得可见,便于观察形态、结构、数量等特征,有利于研究其生长、代谢、致病性等方面。
下面,我们来介绍细菌涂片染色实验的具体步骤:一、制备细菌涂片1.取出培养基上生长良好的细菌菌落,用不锈钢嵌片环沿中心点轻压一下。
2.将嵌片环中的菌落涂匀于无菌载玻片上,制备成直径约1厘米的薄片。
3.待载玻片上的细菌涂片晾干,并用火焰消毒。
二、涂片染色1.用火焰将铺有细菌涂片的玻片烤干。
2.将烤干的玻片浸入甲醇中,固定一分钟,再用水漱洗。
3.将玻片浸入碘酒中,固定一分钟,再用水漱洗。
4.将玻片浸入乙醇中,使背景颜色褪去,再用水漱洗。
5.将玻片浸入洋红染色液中,染色时间不超过1分钟。
6.用水冲洗干净,晾干后可以在显微镜下观察。
通过细菌涂片染色实验,我们可以直观地观察到细菌的形态、大小、聚集情况、颜色等,有助于鉴定细菌种类,并进一步深入研究其生物学特性。
第二篇:厌氧培养实验厌氧菌是一类生长需要在完全无氧条件下进行的微生物。
在许多疾病的发病机制中,厌氧菌都发挥着重要作用,因此,研究厌氧菌对于认识疾病的发病机制具有极其重要的意义。
下面,我们来介绍厌氧培养实验的具体步骤:一、制备厌氧培养基制备厌氧培养基是进行厌氧菌培养的关键。
具体操作步骤如下:1.准备培养基,并在其中加入培养菌株所需的配方和其他适宜的添加剂。
2.将培养基分装到无菌针筒或暗口瓶中。
3.在体积的一半至三分之二处加入去氧剂(一般为Thioglycolate或Dithiothreitol)。
二、厌氧细菌接种与培养1.准备厌氧细菌培养物的接种种子。
一般情况下,把生长适应在厌氧条件下的细菌进行分生处理来获得设计数量的细胞,并将其重新悬浮在与培养基相同的缓冲液中。
2.在无氧条件下接种厌氧菌,避免暴露于空气中。
可以通过使用瓶盖和橡胶塞的局部替代或全封闭气密容器的方法来实现无氧条件。
微生物学实验报告

微生物学实验报告(格式标准)(生命科学专业)*****目录索引实验一油镜的使用和细菌的简单染色法 3实验二细菌的革氏染色与芽孢染色 5实验三常用培养基的配制7实验四酵母菌霉菌的形态结构观察及酵母死活细胞的鉴别8实验五、微生物大小的测定与显微计数10实验六环境中微生物的检测和分离纯化11实验七细菌鉴定中常用的生理生化反应12实验八(综合实验)化能异养微生物的分离与纯化13课程名称:微生物学实验班级:化生系生命科学本科实验日期:指导教师:黎勇实验一油镜的使用和细菌的简单染色法〔目的要求〕学习并熟练掌握油镜的使用技术;观察细菌的基本形态;学习观察细菌的运动性的基本方法。
〔基本原理〕1. N·A=n·sinα2. D=λ/2N.A3. 目镜可提高放大倍数,但有效放大率取决于镜口率。
已经分辨的物体不放大看不清,未分辨物放得再大也看不清。
4. 用悬滴法或凹玻片法观察细菌的运动性时,可以通过真运动能定向地由一处快速运动来区别于颗粒的布朗运动。
〔器材用具〕显微镜、载玻片、凹玻片、盖玻片、接种环、香柏油、二甲苯、凡士林、吸水纸、擦镜纸;细菌、放线菌等固定装片;培养18小时左右的B.subtilis. S.arueus 菌斜面培养物;无菌水、生理盐水。
〔方法步骤〕:(一)油镜的使用镜检装片在中倍(或高倍镜)下找到目的物,并使位于视野正中聚光镜上升到最高位置,虹彩光圈开到最大,镜头转开成八字形在玻片的镜检部位(光斑处)滴一滴香柏油油镜转入正下方侧视小心上升载物台(缩短镜头与装片距离,镜头浸入油中,至油圈不扩大为止镜头几与装片接触)粗调器徐徐下降载物台(密切注视视野,当捕捉到物像时,立即用细调器校正)仔细观察并绘图取出装片,清洗油镜:擦镜纸拭去镜头上的香柏油擦镜纸沾少许二甲苯擦去残留(用手指辅助,迅速拭擦一、二次)用清洁擦镜纸仔细擦干二甲苯(2-3次)。
(二)细菌的简单染色法:涂片干燥火焰固定染色水洗干燥油镜观察(三)细菌运动性的观察取洁净盖玻片,四周涂上凡士林滴加一小滴菌悬液凹玻片的凹窝向下盖于盖玻片上翻转观察〔结果分析〕1、画一圆圈表示视野,选取所观察的微生物绘图,注意特殊结构、形状和排列。
微生物检验流程及操作标准

微生物检验流程及操作标准全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:微生物检验是一种重要的实验室技术,用于检测食品、水质、环境等样品中的微生物存在情况。
微生物检验需要严格遵守一系列操作标准和流程,以确保检验结果的准确性和可靠性。
下面我们将介绍一下微生物检验的流程及操作标准。
一、样品采集1. 样品的采集需要采用无菌工具,并保持样品在采集过程中不受到外界环境的污染。
2. 样品的采集过程应尽量避免接触到任何可能引入外源微生物的物质,比如皮肤、空气等。
3. 采集的样品应标明正确的标识信息,包括样品名称、采集地点、采集日期等。
二、样品处理1. 样品收到实验室后,需要尽快进行处理,避免样品内的微生物增殖或死亡。
2. 样品处理过程需要保持在无菌条件下进行,使用无菌工具进行操作。
3. 样品处理过程中需要按照检验要求进行适当的稀释,以确保实验得出准确的结果。
三、培养基准备1. 培养基的制备需要按照标准的配方和步骤进行,以确保培养基的质量符合要求。
2. 制备培养基时需要严格遵守无菌操作规范,避免细菌、真菌等外源微生物的污染。
3. 制备好的培养基需要在适当的条件下保存,确保培养基的稳定性和有效性。
四、接种操作1. 在进行微生物检验之前,需要准备好无菌的接种环、移液器等工具。
2. 采取适当的方法将处理好的样品接种到培养基上,避免接种时引入外源微生物。
3. 接种操作需要在无菌条件下进行,避免培养物受到任何污染。
五、培养与观察1. 接种后的培养基需要置于适当的温度和湿度条件下进行培养,促使样品中的微生物生长。
2. 定期观察培养基上的生长情况,记录生长的数量和形态,用于后续的分析和鉴定。
3. 在观察过程中需要注意反复进行无菌操作,避免细菌、真菌等外源微生物的污染。
六、鉴定与结果解读1. 当样品中的微生物生长到一定程度时,需要进行鉴定和分析,确定其种属和数量。
2. 鉴定过程需要参考相关的鉴定手册和标准,进行适当的试验和测试。
3. 根据鉴定结果进行结果解读,判断样品中微生物的种类和数量是否符合标准要求。
微生物大小的测定-实验四

实验四 微生物大小的测定一、实验目的1.熟悉目测微尺和物测微尺的使用方法,掌握测定微生物大小的技能。
3.巩固光学显微镜的使用方法二、实验要求1.预习有关微生物大小测定等方面的知识; 2.遵守实验室安全制度,听从指导教师安排; 3.认真听讲,不懂就问; 4.完成实验报告三、实验仪器和材料目测微尺、物测微尺、光学显微镜、微生物标本片四、实验原理及方法1. 目测微尺:目镜测微尺是一块圆形玻片,在玻片中央把5mm 长度刻成50等分,或把10 mm 长度刻成100等分。
测量时,将其放在接目镜中的隔板上(此处正好与物镜放大的中间像重叠)来测量经显微镜放大后的细胞物象。
由于不同目镜、物镜组合的放大倍数不相同,目镜测微尺每格实际表示的长度也不一样,因此目镜测微尺测量微生物大小时须先用置于镜台上的镜台测微尺校正,以求出在一定放大倍数下,目镜测微尺每小格所代表的相对长度。
2. 物测微尺中央部分刻有精确等分线的载玻片,一般将1mm 等分成100格,每格长0.01mm (即10µm )。
它并不直接测细胞的大小,而是用于校正目镜测微尺每格的相对长度。
五、实验步骤及内容1.目测微尺的标定两对重合线间镜台测微尺格数10目镜测微尺每小格长度=两对重合线间目镜测微尺格数把物测微尺放在载物台上使刻度朝上。
用低倍镜找到物测微尺的刻度,移动物测微尺和目测微尺使两者的第一条线重合,顺着刻度找出另一条重合线。
再分别求出高倍镜和油镜下目测微尺每格的长度。
2.菌体大小的测量将物测微尺取下,换上标本片,选择适当的物镜测量目的物的大小,分别找出菌体的长和宽占目测微尺的格数,再按目测微尺1格的长度算出菌体的长度和宽度。
六、实验结果1.将目镜测微尺校正结果填入表1表1 目镜测微尺校正结果2. 在高倍镜下测量枯草芽孢杆菌大小,将结果填入表2表2 枯草芽孢杆菌大小测量结果七、思考题1、不改变目镜和目镜测微尺,而改用不同倍数的物镜来测定同一细菌的大小,目镜测微尺上所量的物镜上物体的实际长度是否相同?为什么?相似。
微生物鉴定之生化实验大全

(一)碳水化合物代谢实验糖(醇、苷)类发酵实验(1)原理:细菌分解糖得能力与该菌就是否含有分解某种糖得酶密切相关,故分解糖得能力各不相同,细菌分解糖类后得终产物亦不一致,在含糖培养基中加入指示剂,若细菌分解糖则产酸或产酸产气,使培养基颜色改变,从而判断细菌就是否分解某种糖或其她碳水化合物。
(2)基本培养基:在培养基中加入0、5%-1%得糖类(单糖、双糖、或者多糖)、醇类(甘露醇、肌醇)苷类(水杨苷、菊糖等)、培养基可为液体、半固体、固体或微量生化管几种类型.(3)实验方法:取某一种细菌得24h纯培养物分别接种到葡萄糖、乳糖、麦芽糖、甘露醇、蔗糖等培养基内,37℃培养24h,观察结果并记录.(4)结果判定:如果接种进去得细菌可以发酵某种糖或醇,则可产酸,使培养基由紫色变成黄色,如果不发酵,则仍保持紫色。
如发酵得同时又产生气体,则在微量发酵管顶部积有气泡。
(5)应用:就是鉴定细菌最主要最基本得实验,特别就是对肠杆菌科细菌得鉴定尤为重要。
氧化型与发酵型(O/F)得测定(1)原理:细菌在分解葡萄糖得过程中,必需有氧得参加,称为氧化型(O),细菌在分解葡萄糖过程中可以进行无氧降解得,称为发酵型(F)。
发酵型细菌无论在有氧无氧得环境中都能分解葡萄糖。
不分解葡萄糖得细菌称为产碱型(-)。
这在区别微球菌与葡萄球菌、肠杆菌科成员中尤其有意义.(2)培养基:培养基蛋白胨2g,氯化钠5g,磷酸氢二钾0、3g,葡萄糖10g,琼脂3g,1%溴麝香草酚蓝3mL,蒸馏水1000mL。
将蛋白胨、盐、琼脂与水混合,加热溶解,校正PH至7、2,然后加葡萄糖与指示剂,加热溶解,分装试管,3-4mL/管;115℃,高压蒸汽灭菌20m in,取出冷却成琼脂柱。
(3)试验方法:挑取18—24h得幼龄斜面培养物,穿刺接种,每种细菌接种两管,于其中一管覆盖1mL液体石蜡,37℃培养24h或更长时间。
(4)结果判定:(5)应用:O/F试验主要适用于G—肠道杆菌得鉴别。
微生物大小与数量的测定实验报告

微生物大小与数量的测定实验报告一、实验目的本次实验旨在掌握使用显微镜测量微生物大小的方法,以及学会运用血球计数板对微生物数量进行测定。
通过实验操作和数据处理,深入了解微生物的形态特征和种群密度,为后续的微生物学研究打下基础。
二、实验原理(一)微生物大小的测定微生物细胞的大小是微生物的基本特征之一。
使用显微镜测微尺可以较为准确地测量微生物细胞的长度、宽度和直径等参数。
显微镜测微尺包括目镜测微尺和镜台测微尺。
目镜测微尺是一块可放在目镜内的圆形小玻片,上面刻有刻度;镜台测微尺是一块特制的载玻片,中央有精确的刻度,用于校正目镜测微尺。
(二)微生物数量的测定血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞微生物数量的工具。
它由一块特制的厚玻璃片制成,玻片上有四个槽构成三个平台。
中间的平台又被一短横槽隔成两半,每半边上面各刻有一个方格网。
方格网上刻有 9 个大方格,其中只有中间的一个大方格为计数室。
计数室的刻度一般有两种规格,一种是一个大方格分成 16 个中方格,而每个中方格又分成 25 个小方格;另一种是一个大方格分成 25 个中方格,而每个中方格又分成 16 个小方格。
但无论哪种规格,每个大方格的边长均为 1 毫米,盖上盖玻片后,计数室的容积是一定的。
因此,在一定体积的菌液中,通过计算微生物在计数室中的数量,就可以换算出菌液中微生物的数量。
三、实验材料与仪器(一)材料枯草芽孢杆菌、酿酒酵母的菌悬液。
(二)仪器显微镜、目镜测微尺、镜台测微尺、血球计数板、盖玻片、滴管、擦镜纸、吸水纸等。
四、实验步骤(一)微生物大小的测定1、安装目镜测微尺将目镜测微尺装入目镜的隔板上,注意有刻度的一面朝下。
2、校正目镜测微尺(1)将镜台测微尺置于载物台上,先用低倍镜观察,找到镜台测微尺的刻度线。
(2)移动镜台测微尺,使镜台测微尺与目镜测微尺的刻度线平行,并使两者的“0”刻度线重合。
(3)换用高倍镜观察,找出两尺再次重合的刻度线。
分别记录目镜测微尺和镜台测微尺在重合线段内各自的格数。
微生物鉴定中常用的生理生化试验

微生物鉴定中常用的生理生化试验一、实验目的1.证明不同微生物对各种有极大分子物质的水解能力不同,从而说明不同微生物有着不同的酶系统。
2.掌握微生物大分子物质水解实验的原理和方法。
3.了解糖发酵的原理和在肠细菌鉴定中重要作用。
4.掌握通过糖发酵鉴别不同微生物的方法。
5.了解IMViC的原理。
二、实验原理由于各种微生物具有不同的酶系统,所以它们能利用的底物不同,或虽利用相同的底物但产生的代谢产物却不同,因此可以利用各种生理生化反应来鉴别不同的细菌,尤其是在肠杆菌科细菌的鉴定中,生理生化试验占有重要的地位。
具体的原理如下:1.淀粉水解试验:在淀粉固体培养基上接种四种细菌(枯草芽孢杆菌、大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌),培养两天以后,再往培养基中加碘液染色,若该细菌能分泌胞外淀粉酶,则能利用其周围的淀粉,淡然在染色后,其菌落周围不呈蓝色,而是无色透明圈。
2.糖发酵试验:不同的细菌分解糖的能力不同,有些细菌能利用糖发酵产酸和产气,有些则不能。
酸在加入溴甲酚指示剂后会使溶液呈黄色,且德汉氏小管中会收集到一部分气体。
若细菌不能使糖产酸产气,则最后溶液为指示剂的紫色,且德汉氏小管中无气体。
3.IMVC实验主要用于快速鉴别大肠杆菌和产气肠杆菌。
(1)吲哚试验:在蛋白胨培养基中,若细菌能产生色氨酸酶,则可将蛋白胨中的色氨酸分解为丙酮酸和吲哚,吲哚与对二甲基苯甲醛反应生成玫瑰色的玫瑰吲哚。
本次不做该试验。
(2)甲基红试验(MR):某些细菌在糖代谢过程中分解葡萄糖生成丙酮酸,后者进而被分解产生甲酸,乙酸和乳酸等多种有机酸,是培养液PH值降至4.2以下,加入甲基红后溶液呈红色。
三、实验材料1.菌种大肠杆菌(Escherichia coli),金黄色葡萄球(Staphyloccocus aureus Rosenbach),铜绿假单胞菌(P.Aeruginosa),枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis Cohn),产气肠杆菌(Enterobacter aerogenes),普通变形杆菌(Proteus.vulgaris)。
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四、实验步骤
(一)金黄色葡萄球菌定性检验程序
(二)操作步骤
1、样品的处理
称取25 g样品至放入盛有225 mL 7.5 %氯化钠肉汤或10 %氯化钠胰酪胨大 豆肉汤的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min~2 min。
2、增菌和分离培养
(1) 将上述样品匀液于36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h。金黄色葡萄球菌在 7.5%氯化钠肉汤中呈混浊生长,污染严重时在10%氯化钠胰酪胨大豆肉 汤内呈混浊生长。 (2) 将上述培养物,分别划线接种到Baird-Parker平板和血平板,血平板 36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h。Baird-Parker平板36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h或45 h~48 h。 (3)金黄色葡萄球菌在Baird-Parker平板上,菌落直径为2 mm~3 mm,颜 色呈灰色到黑色,边缘为淡色,周围为一混浊带,在其外层有一透明圈。 用接种针接触菌落有似奶油至树胶样的硬度,偶然会遇到非脂肪溶解的 类似菌落;但无混浊带及透明圈。在血平板上,形成菌落较大,圆形、 光滑凸起、湿润、金黄色(有时为白色),菌落周围可见完全透明溶血 圈。挑取上述菌落进行革兰氏染色镜检及血浆凝固酶试验。
3、学会对不同样品稀释度确定的原则
二、实验设备和材料
恒温培养箱、冰箱、恒温水浴箱、天平、 均质器、 振荡器、无菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)或微量移液器及吸头、无菌锥 形瓶:容量250 mL、500 mL、无菌培养皿、pH计或 pH比色管或精密pH试纸、放大镜或/和菌落计数器、 培养基和试剂:平板计数琼脂培养基、 磷酸盐缓冲 液、 无菌生理盐水
3、鉴定
(1) 染色镜检:金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌,排列
呈葡萄球状,无芽胞,无荚膜,直径约为0.5 μm~1 μm。
(2)血浆凝固酶试验:挑取、Baird-Parker平板或血平板上可 疑菌落1个或以上,分别接种到5 mL BHI和营养琼脂小斜面, 36 ±1 ℃培养18 h~24 h。 取新鲜配置兔血浆0.5 mL,放入小试管中,再加入BHI 培养物0.2 mL~0.3 mL,振荡摇匀,置36 ±1 ℃温箱或水 浴箱内,每半小时观察一次,观察6 h,如呈现凝固(即将 试管倾斜或倒置时,呈现凝块)或凝固体积大于原体积的 一半,被判定为阳性结果。同时以血浆凝固酶试验阳性和 阴性葡萄球菌菌株的肉汤培养物作为对照。结果如可疑, 挑取营养琼脂小斜面的菌落到5 mL BHI,36 ±1 ℃培养18 h~48 h,重复试验。
2、培养
待琼脂凝固后,将平板翻转,36±1℃培养 48 h±2 h。水产品30±1℃培养72 h±3 h。
3、菌落计数
可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数 器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落 计数以菌落形成单位(colony-forming units, CFU)表示。
五、 结果与报告
注意事项:
五、实验步骤
(一) 检验程序
(二)操作步骤
1、样品的稀释
称取25 g样品置盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无
菌均质杯内,8000 r/min~10000 r/min均质1 min~2 min制
成1:10的样品匀液。并用梯度离心法稀释成10-2—10-5。吸取1 mL样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。同时,分 别吸取1 mL空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。15 mL~20 mL冷却至46 ℃的平板计数琼脂培养基(可放置于46 ±1 ℃恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合 均匀。
三、实验原理
按食品安全国家标准的规定,食品中菌落总数 (aerobic plate count)是指食品检样经过处理,在一 定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后, 所得每g(mL)检样中形成的微生物菌落总数。
国家标准菌落总数的测定采用标准平板培养计数法, 根据检样的污染程度,做不同倍数稀释,选择其中的2—3 个适宜的稀释度,与培养基混合,在一定培养条件下,每 个能够生长繁殖的细菌细胞都可以在平板上形成一个可见 的菌落。由此根据平板上生长的菌落数计算出计数稀释度 (稀释倍数)和样品中的细菌含量。
食品中大肠菌群检验步骤的符合率,初发酵和证实试验相差较大。因此,在实际
检测工作中,证实试验时必需的。而复发酵时培养基中的煌绿和胆盐能抑制产芽 孢细菌。从规定的反应呈阳性管数的出现率,用概率论来推算样品中菌数最近似 的数值。MPN检索表只给了三个稀释度,如改用不同的稀释度,则表内数字应相 应降低或增加10倍。该法适用于目前食品卫生标准中大肠菌群限量用 MPN/100g(mL)表示的情况。
五、结果与报告
1、结果判定:可疑微生物可判定为或不为 金黄色葡萄球菌。 2、结果报告:在25 g(mL)样品中检出或 未检出金黄色葡萄球菌。
实验三、食品中大肠菌群计数
Food microbiological examination: Enumeration of coliforms
一、试验目的 1、了解大肠菌群在食品安全检验中的意义 2、学习并掌握食品中大肠菌群的测定方法
(1)若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内,计 算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数, 作为每g(mL)样品中菌落总数结果。 (2)若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时, 按下列公式计算:
式中: N——样品中菌落数; ∑C——平板(含适宜范围菌落数的平板)菌落数之和; n1——第一稀释度(低稀释倍数)平板个数; n2——第二稀释度(高稀释倍数)平板个数; d——稀释因子(第一稀释度)。
四、操作步骤
(一)检验程序
(二)操作步骤
1、样品的稀释
(1) 固体和半固体样品:称取25 g样品,放入盛有225 mL磷酸 盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内, 8000 r/min~10000
r/min均质1 min~2 min,制成1:10的样品匀液。并用梯度离
心法稀释成10-2—10-5。吸取1 mL样品匀液于无菌平皿内,每 个稀释度做两个平皿。同时,分别吸取1 mL空白稀释液加入 两个无菌平皿内作空白对照。15 mL~20 mL冷却至46 ℃的 平板计数琼脂培养基(可放置于46 ±1 ℃恒温水浴箱中保
温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。
2、初发酵试验
每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液
(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管
月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种
1mL(如接种量超过1 mL,则用双料LST肉汤), 36 ℃±1 ℃培养24 h±2 h,观察倒管内是否有气 泡产生,24 h±2 h产气者进行复发酵试验,如未 产气则继续培养至48 h±2 h,产气者进行复发酵
二、实验材料和设备
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设 备和材料如下: 恒温培养箱、冰箱、 恒温水浴箱、 天平、均质器、 振荡器、无菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)或微量移液器及吸头、无菌 锥形瓶:容量100 mL、500 mL、无菌培养皿、注 射器:0.5 mL、 pH计或pH比色管或精密pH试纸、 培养基和试剂:氯化钠胰酪胨大豆肉汤、氯化钠 肉汤、血琼脂平板、Baird-Parker琼脂平板、脑心 浸出液肉汤(BHI) 、兔血浆、磷酸盐缓冲液、 营 养琼脂小斜面、革兰氏染色液、无菌生理盐水
二、试验材料与设备
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料 如下:
恒温培养箱、 冰箱、 恒温水浴箱、天平、均质器、振 荡器、无菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)或微量移液器及吸头、无菌锥形瓶:容量500 mL、无菌培养皿、 pH计或pH比色管或精密pH试纸、菌落 计数器、培养基和试剂 :月桂基硫酸盐胰蛋白胨、 煌绿 乳糖胆盐(Brilliant Green Lactose Bile,BGLB)肉汤、 结 晶紫中性红胆盐琼脂(Violet Red Bile Agar,VRBA、)磷 酸盐缓冲液、无菌生理盐水、 无菌1 mol/L NaOH、无菌1 mol/L HCl
南通大学生命科学学院
主讲: 常 燕
实验一 食品微生物学检验 菌落总数测定
Food microbiological examination:Aerobic plate count
一、实验目的
1、掌握食品中菌落总数(Aerobic plate count)的测 定的基本程序和要点。 2、掌握菌落的计数原则
计数原则
(1) 选取菌落数在30 CFU~300 CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU的平板记录具体菌落数,大于300 CFU的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采 用两个平板的平均数。 (2) 其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为 该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可 计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。 (3) 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。 (3)若所有稀释度的平板上菌落数均大于300 CFU,则对稀释度最高的平板进行计数,其他平 板可记录为多不可计,结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。 (4) 若所有稀释度的平板菌落数均小于30 CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍 数计算。
(4)若空白对照上有菌落生长,则此次检测结果无效。
(5)称重取样以CFU/g为单位报告,体积取样以CFU/mL 为单位报告。
实验二、食品中金黄色葡萄球菌检验
Food microbiological examination:Staphylococcus aureus
一、实验目的 1、了解食品中金黄色葡萄球菌检验的安全 学意义 2、掌握食品中金黄色葡萄球菌定性和定量 检验的原理和方法。 3、学会测定面包中的金黄色葡萄球菌