家兔实验性肺水肿及呋塞米的疗效
机能学设计性实验 家兔实验性肺水肿及呋塞米的疗效

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实验对象
• 健康成年家兔,体重2.0到 2.5KG,雌雄均可。
主要仪器
婴儿秤,兔固定台,1ml、2ml注射器,常规 手术器械一套,气管茶馆,静脉导管和静脉输 液装置,生物信号采集系统,压力换能器和张 黎换能器,血气分析仪,缝皮针,天平,听诊 器,丝线,纱布,烧杯等。
主要药品
25%氨基甲酸乙酯溶液,0.9%生理盐水, 0.1%肾上腺素,1g/L呋塞米,0.7%肝素 溶液
• 研究方案:
• 取健康家兔,分实验组,对照组和治疗组进行试验,每组四只家 兔。
• 1,家兔称重后,耳缘静脉注射25%氨基甲酸乙酯溶液4ml/KG,将 麻醉后家兔前肢背位交叉固定。
• 2,颈前区域剪毛,然后气管插管 • 3,颈动脉插管
• 4,颈静脉插管,缓慢输入0.9%的生理盐水 10到15%滴每分
• 5,家兔呼吸描记 链接呼吸张力换能器,描记呼吸曲线。 • 6,正常指标观察,观察家兔的皮肤黏膜颜色,并记录家兔血压 心率,呼吸频率等指标。听诊器听肺部呼吸音,三处采血,用血 气分析仪测定各指标,作为实验前对照。
1,实验组 静脉输入37摄氏度生理盐水80ml/kg,速度为160滴每分钟。当生理 盐水即将输完时耳缘静脉缓慢推入0.1%肾上腺素 1ml/kg ,然后继 续以10到15滴每分的速度输入生理盐水维持静脉输液通道。 输液过 程观察并记录各项指标,当动物出现明显呼吸急促,两肺湿罗音等 肺水肿表现时,再次经三处采血0.5ml做血气分析,并与实验前的指 标对照对比,如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素,用法 及剂量同上。 2,对照组家兔与实验组家兔一样处理,称重,麻醉,固定,气管插 管,记录血压心率呼吸曲线等,取血分析,注射生理盐水,不给肾 上腺素,所有液体输完后,再取血分析,然后夹闭气管处死动物, 开胸计算肺系数,并与对照组对比。 3,治疗组也与实验组家兔一样,不一样的是注射完肾上腺素后,在 耳缘静脉按体重5mg/kg的量加输呋塞米注射液。 肺系数计算:肺系数=肺重量(g)/家兔体重(kg) 正常家兔肺系数为4—5g/KG,然后与正常组对比观察肺大体形态变 化(颜色体积,肺叶边缘等),观察是否有粉红色泡沫流出
家兔急性肺水肿

肺
呼吸频率(次/分)湿罗音 粉红色泡沫液
—————————————
颜色
质地
肺系数
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对照组 实验组
60 8或无
无 有
无 有
暗红 柔软 粉红 较韧
5 15
______________________________________________________________________________________________________________
注意事项
1.颈外静脉壁薄,易损伤出血,分离时应仔细 行钝性分离,忌用剪刀剪切。在插管过程切 忌硬插,以免刺破血管。 2.输液速度控制在180-200滴/分(45-50滴/15 秒,30-33滴/10秒)为宜; 3.解剖取出肺时,注意勿损伤肺表面和挤压肺 组织,以防止水肿液流出,影响肺系数值; 4 .动物对注入肾上腺素的耐受性个体差异较大, 有些动物需注入较多量的肾上腺素才出现急 性肺水肿。
家兔实验性肺水肿
实验目的
1.掌握实验性肺水肿的复制方法 ; 2.观察急性肺水肿的表现及其过程 ; 3.结合理论知识分析肺水肿的发生机理 。
实验步骤
1.家兔称重后,经耳缘静脉缓慢注入3%戊巴比妥钠 (1ml/kg)进行全身麻醉,随后将兔仰卧固定于兔台上, 颈部正中切开皮肤切口长5~7cm,按常规逐层分离颈 部组织,游离出气管、右侧颈外静脉;
为什么要快速、大量地输液?
可引起①血容量增加,回心血量增加, 血液稀释而致肺毛细血管内流体静压上 升; ② 单位容积血浆蛋白浓度下降,血 浆胶体渗透压下降,有利于肺水肿发生。 也就是说,在大量快速输液的基础上, 注入肾上腺素更容易引起肺水肿。 快速,大量输液以不引起对照组发生肺 水肿为限度,否则难以观察肾上腺素的 作用。
机能学设计性实验家兔实验性肺水肿及呋塞米的疗效

机能学设计性实验家兔实验性肺水肿及呋塞米的疗效
实验目的:
本实验旨在通过对家兔进行实验性肺水肿模型的建立,评估呋塞米在
肺水肿治疗中的疗效。
实验方法:
1.实验动物选择:选择健康家兔作为实验对象。
2.动物麻醉:行家兔全身麻醉,可选择以异氟醚为主要麻醉药物。
3.气管造口:在麻醉后,进行气管造口术,连接呼吸机。
4.模型建立:通过给予家兔静脉注射大剂量的肾素和血管紧张素II,模拟肺水肿状态。
5.分组设计:将家兔随机分为实验组与对照组,每组6只。
6. 实验组处理:实验组动物给予呋塞米,剂量为每千克体重2mg,
通过静脉注射方式给药。
7.对照组处理:对照组动物给予等体积的生理盐水。
8.实验观察:观察并纪录动物在给予药物前及不同时间点的呼吸频率、呼吸深度、血氧饱和度等生理指标变化。
同时,收集家兔的气体样本以及
血液样本用于检测相关指标。
9.统计分析:应用适当的统计学方法对实验数据进行分析。
实验结果:
观察实验组家兔给药后,生理指标的变化情况。
同时对比实验组与对
照组的指标数据,分析呋塞米在实验性肺水肿治疗中的疗效。
实验讨论:
1.讨论不同时间点的观察结果,探讨呋塞米对实验性肺水肿的影响。
2.探讨呋塞米的作用机制以及对呼吸系统的影响。
3.讨论实验结果与之前研究的一致性,并分析可能的原因。
结论:
通过本实验可以初步验证呋塞米在实验性肺水肿治疗中的疗效。
然而,由于实验设计的限制以及实验动物与人体之间的差异,需要进一步深入的
研究来验证呋塞米在临床治疗中的有效性和安全性。
家兔实验性肺水肿实验报告-资料类

家兔实验性肺水肿实验报告-资料类一、实验目的1、学习复制家兔实验性肺水肿模型的方法。
2、观察肺水肿的表现及其发生机制。
二、实验原理肺水肿是指肺间质有过量液体积聚和/或溢入肺泡腔内。
本实验通过大量快速静脉输注生理盐水并注射肾上腺素,导致肺毛细血管流体静压升高和血管壁通透性增加,从而引起肺水肿。
三、实验材料1、动物:家兔。
2、药品与试剂:生理盐水、肾上腺素、20%乌拉坦。
3、器材:手术器械、注射器、输液装置、听诊器、电子天平、计算机生物信号采集处理系统。
四、实验方法1、家兔称重后,于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦(5ml/kg)进行麻醉。
仰卧固定于手术台上。
11 颈部正中切口,分离气管,插入气管插管并结扎固定。
12 分离右侧颈外静脉,插入静脉插管,通过输液装置缓慢滴注生理盐水,保持静脉通畅。
13 分离左侧颈总动脉,插入动脉插管,连接压力换能器,记录动脉血压。
2、启动计算机生物信号采集处理系统,记录正常呼吸曲线、动脉血压等指标。
3、快速静脉输注生理盐水(180 滴/分),直至呼吸明显加快,口唇发绀。
31 输液量达到一定程度后,停止输液。
32 由耳缘静脉注射肾上腺素(05ml/kg),观察呼吸、血压等变化。
4、出现明显肺水肿症状后,处死家兔,打开胸腔,观察肺脏外观,并取出肺脏称重,计算肺系数(肺系数=肺重量(g)/体重(kg))。
五、实验结果1、呼吸变化:实验初期呼吸平稳,随着输液量增加,呼吸逐渐加快加深,注射肾上腺素后,呼吸变得急促而浅快。
2、动脉血压变化:输液过程中动脉血压略有升高,注射肾上腺素后,血压先升高后降低。
3、肺脏外观:肺体积增大,表面有淤血、水肿,呈暗红色,切面有大量泡沫状液体溢出。
4、肺系数:实验组家兔肺系数明显高于正常对照组。
六、实验讨论1、大量快速输注生理盐水导致血容量增加,引起肺毛细血管流体静压升高,是肺水肿形成的重要原因之一。
2、肾上腺素可使外周血管广泛收缩,导致回心血量增多,同时增加肺毛细血管通透性,促使液体渗出,加重肺水肿。
实验四 家兔实验性肺水肿及治疗

实验四家兔实验性肺水肿及治疗【目的】1.复制实用性肺水肿。
2.了解肺水肿的表现及其发生机理。
对象:家兔【用品】婴儿称、天平、气管插管及CAI 记录呼吸变化,静脉导管及静脉输液装置,颈部手术器材,听诊器、烧杯、沙布、滤纸、兔固定台。
生理盐水,肾上腺素生理盐水(1‰肾上腺素1ml+生理盐水9ml),山莨菪碱,利尿,戊巴比妥钠。
【步骤】1 材料和方法1.1材料:家兔(4只),婴儿称,天平称,气管插管及生理二导仪,,颈部小手术器械,听診器,生理盐水,手术台,注射器若干支。
1.2实验方法:(1)分4个实验组,每组各一只兔子,随机分为[1]实验组,[2-3]治疗组,[4]对照组。
(2)称重,按1%戊巴比妥钠0.5ml/kg耳缘静脉注射麻醉,固定手术台上。
(3)剪去颈部被毛,分离气管,切开插入气管插管并结扎固定,描记曲线。
用头皮针穿插耳缘静脉并固定,打开静脉输液装置,注意排除管道内气体。
(4)各组动物分别描记正常呼吸曲线,并用听诊器听肺部的呼吸音,然后输入37摄氏度生理盐水(按100ml/kg,输液速度为180~200滴/分)(5)实验组待滴注接近完毕时立即向输液瓶中加入肾上腺素生理盐水(按肾上腺素0.45mg/kg)继续输入。
治疗组步骤同实验组,不同的是在滴注肾上腺素后立即按20mg/kg 的量加输山莨菪碱注射液或5mg/kg的利尿注射液。
对照组只静脉滴注生理盐水,不加输肾上腺素和治疗药物。
(6)密切观察呼吸改变和气管插管内是否有分红色泡沫液体流出,并用听诊器听诊肺部有无湿罗音出现。
死亡动物记录死亡时间,存活动物造病后30min则夹住气管,放血处死。
所有动物均打开胸腔,用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出,在结扎处以上切断气管,小心将心脏及其血管分离(勿伤及肺),把肺取出,用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算系数,然后肉眼观察肺大体改变,并切开肺,观察切面的改变。
正常肺系数为4~5。
注意事项:1.实验组与对照组的输液速度应基本一致,输液的速度不要太快,以控制在180~200滴/分为宜。
家兔实验性肺水肿及治疗

讨论本实验四个实验组开始都是大量快速滴生理盐水,每只兔都是200ml以上的注入量,这样血容量肯定是明显升高胶体渗透压减低,从各实验组观察,这时的各只兔子呼吸都是从开始的均匀平稳到加深加快(见呼吸曲线变化),而听诊则闻及其呼吸音增强,心跳明显加快,由此反映了血容量升高,兔的心跳加快,呼吸加深加快。
这主要是由于血容量升高,心脏的负荷加大,回心血量增加,输出量也相应的增多;血容量增多,血氧浓度降低,刺激呼吸中枢调整呼吸频率和幅度。
从实验组和对照组来看,实验组在血容量明显增加的情况下加注AD就能在5min内快速地造成肺水肿;而对照组虽然同样是血容量升高,没有注入AD,却不会出现肺水肿,由此明显地知道在这种肺水肿的产生过程中,AD 起着关键的作用。
从宏观上,我们闻及实验组肺的湿罗音,插管处流出粉红色泡沫状液体几呼吸曲线的明显减弱减慢是最好的宏观证明。
资料显示,大剂量AD是引起a受体的作用,致使体血管和肺血管剧烈收缩致心脏前后负荷明显增加。
肺毛细血管压力持续及迅速增加打破Starling定律平衡,引起动力性水肿,另外,肾上腺素可直接作用并损伤内皮及内皮细胞,肾上腺素促使血小板凝集,缺氧与血管与收缩痉挛形成恶性循环,促使肺水肿的形成。
再从治组与实验组结果分析,再同样出现肺水肿的情况下,快速注入山莨菪碱后,见呼吸从慢弱到加深快了,湿罗音也渐减弱至消失,插管处的泡沫液不再流出,解剖后肺的表面及切面情况都显示其水肿大大消失,肺系数5.3明显优于实验组的10.2所有的这些结果,都明显地说明了山莨菪碱在这种急性肺水肿中的良好治疗作用。
两组治疗组比较后明显地看到利尿在本例的治疗中不起到明显的作用,肺脏照样水肿不减,呼吸照样衰竭,肺系数高达7.3。
研究资料显示莨菪碱类药物是M受体和N受体阻断剂,是抗胆碱能药物,能与Ach竞争胆碱能受体,阻碍Ach作用;同时又能抑制多种平滑肌,制止腺体分泌,兴奋呼吸中枢,这种解除平滑肌痉挛、扩张动静脉及毛细血管、减少肺毛细血管静水压,正是其治疗机理所在。
家兔实验性肺水肿实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔实验性肺水肿实验报告篇一:家兔实验性肺水肿实验报告家兔实验性肺水肿实验实验名称:家兔急性肺水肿实验探讨实验目的:通过复制家兔实验性急性肺水肿,观察肺水肿的临床表现,分析肺水肿发病机制。
实验原理:水肿是指组织间隙内的体液增多。
肺间质有过量液体积聚和/或溢入肺泡腔内,称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。
水肿液积聚于肺泡腔内,使肺肿胀有弹性,质变实,重量比正常增加2~3倍。
1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增加和水肿的形成。
2.当淋巴管阻塞,淋巴液回流障碍时也会导致水肿3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时,血浆白蛋白从毛细血管和微静脉壁滤出,于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降,组织液胶体渗透压上升,导致水肿。
4.肺系数=肺重量(g)/体重(kg)实验对象:家兔实验器材:家兔,体重2~3kg;兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器(1ml、5ml)及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
实验试剂:25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液实验步骤:1.麻醉动物:取家兔一只,称体重,用25%乌拉坦4ml/kg 由兔外侧耳缘静脉缓慢注入,将动物麻醉后仰卧位固定于手术台2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口,注意先横剪一刀,再向上方剪开,将气管插管向心脏方向插入,用棉线结扎固定于“u”型管上3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉:剪毛,切开颈部中正皮肤,钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉,各在其下穿线备用4.动脉插管:结扎颈总动脉远心端,在其近心端夹动脉夹,在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口,由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管,并用棉线结扎固定,打开动脉夹,记录血压5.颈总静脉插管:分离颈总静脉1-2厘米,远心端用线打活结,在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口,将输液管排空气后向心脏方向插入,此时打开输液器,如果有液体滴下,则表明插管成功,用棉线结扎固定实验观察1.观察正常的呼吸、血压、呼吸。
肺水肿实验报告结果

一、实验概述本次实验旨在通过复制家兔实验性肺水肿,观察肺水肿的临床表现,分析肺水肿的发病机制。
实验对象为体重2~3kg的家兔,共分为实验组和对照组。
实验过程中,对家兔进行了麻醉、气管插管、动脉和静脉插管等操作,并通过静脉滴注生理盐水或其他药物,诱导家兔出现肺水肿。
二、实验结果1. 呼吸变化- 实验组家兔在静脉滴注生理盐水后,呼吸频率和深度逐渐增加,出现浅快呼吸,这与肺水肿时肺泡通气不足有关。
- 在注射肾上腺素后,实验组家兔出现呼吸暂停,可能与肾上腺素引起的血管收缩和肺泡压力升高有关。
2. 血压变化- 实验组家兔在静脉滴注生理盐水后,血压出现短暂升高,随后逐渐下降,可能与肺水肿引起的肺血管阻力增加有关。
- 注射肾上腺素后,实验组家兔血压急剧升高,可能与肾上腺素引起的血管收缩有关。
3. 肺部形态学变化- 实验组家兔肺组织出现明显水肿,肺泡腔内有大量粉红色泡沫状液体,肺泡壁增厚,肺间质充血、水肿。
- 对照组家兔肺组织无明显变化。
4. 肺系数变化- 实验组家兔肺系数显著高于对照组,肺重量与体重的比值增加,提示肺水肿导致肺组织肿胀。
5. 血液生化指标变化- 实验组家兔血液pH值降低,PaO2降低,PaCO2升高,提示肺水肿导致通气/血流比例失调,引起低氧血症和高碳酸血症。
- 实验组家兔血液白蛋白水平降低,提示肺水肿导致毛细血管通透性增加,血浆蛋白渗出。
三、实验讨论1. 本实验成功复制了家兔实验性肺水肿,观察到肺水肿的临床表现,包括呼吸变化、血压变化、肺部形态学变化、肺系数变化和血液生化指标变化。
2. 肺水肿的发病机制主要包括以下几个方面:- 毛细血管血压升高:静脉滴注生理盐水导致毛细血管血压升高,促使液体渗出至肺间质和肺泡腔。
- 毛细血管通透性增加:肾上腺素注射导致毛细血管通透性增加,血浆蛋白渗出,加重肺水肿。
- 淋巴回流障碍:肺水肿导致淋巴回流受阻,加重肺间质和肺泡腔液体潴留。
- 肺泡通气/血流比例失调:肺水肿导致肺泡通气不足,引起低氧血症和高碳酸血症。
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实验动物:健康成年家兔2只,雌雄不限
药品与器材:10mg/L利多卡因,0.9%生理
盐水,0.1%肾上腺素,1g/L呋塞米
主要仪器:婴儿秤,兔固定台,1ml、2m1
注射器,常规手术器械一套,气管插管,静 脉导管和静脉输液装置,生物信号采集系统, 压力换能器和张力换能器,血气分析仪,天 平,听诊器,丝线,纱布,烧杯等。
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实验原理
肺水肿是指肺血管内液体渗入肺间质和肺泡,使 肺血管外液量增多的病理状态。临床表现为突然 发病,呼吸困难,紫绀,咳嗽,咳血色或粉红色 泡沫痰,肺部广泛的湿性速增加血容量,降 低血浆胶体渗透压,渗入到组织间隙形成肺水肿。
2,肾上腺素能介质大量释放导致末梢血管收缩, 升高血压,将血液转移到循环中,同时可发生左 心室顺应性降低。两种因素均升高左房压,诱发 肺水肿。此外,刺激肾上腺素能受体可直接增加 毛细血管通透性。
• 1.生物采集系统采集呼吸图像 • 2.人工数脉搏及用听诊器听肺呼吸音,
观察家兔皮肤黏膜颜色。 • 3.用三线表记录分析结果。
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参考文献
• 内科学 人民卫生出版社2013.3 • 药理学/石京山,杨检主编 高等教育
出版社2014.8 • 机能学实验教程 第2版/刘爱东主编 第
四军医大学出版
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研究方案
•取健康家免, 分实验组,对 照组和治疗组 进行试验,每
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• (二)实验组:静脉输入37摄氏度生理盐水 80m1/kg,速度160滴每分钟。当生理盐水即 将输完时耳缘静脉缓慢推入0.1%肾上腺素 0.5m1/kg,后继续以10到15滴每分的速度输 入生理盐水维持静脉输液通道。输液过程观 察并记录各项指标,描记一段正常呼吸,间 隔2分钟听诊器听肺部呼吸音直到出现湿罗 音,当动物出现明显呼吸急促,两肺湿罗 音等肺水肿表现时,从动脉采血0.5m l做血 气分析,并与实 验前的指标对照对比,如 果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素, 用法及剂量同上。注射完肾上腺素后,在耳 缘静脉按体重5 mg/k g的量加输呋塞米注射 液 后继续观察家兔精的品课件皮肤粘膜颜色,并记
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•谢谢
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• (三),对照组家免与实验组家免一样 处理,固定,麻醉,插管,记录呼吸曲 线等,取血分析,注射生理盐水,不给 肾上腺素,所有液体输完后,采取血分 析,然后夹闭气管处死动物,并与对照 组对比。
• 开胸在器官分叉处用线结扎,防止肺水 肿液溢出,计算肺系数。肺系数=肺重 量(g) /家免体量正常家免肺系数为45g/KG,然后对比观察肺大体形态变化 (颜色,体积,肺叶边缘等),观察是否 有粉红色泡沫流出
家兔实验性肺水肿 及呋塞米的疗效
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立项背景
• 研究现状及趋势:急性肺水肿是临床常见的危 重病症,发病迅速,病死率高。 研究意义:1、有利于医学生学习练习实验操 作;2、有利于科学研究的发展;3、有利于研 究利尿药对肺水肿的治疗效果及药效。
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实验目的
1、学会复制家兔实验性肺水肿模型 2、观察肺水肿表现 3、加深肺水肿发生机制的认识及利尿 药对肺水肿效果研究
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预期结果
• 实验前两组家兔心率相近,血压在正常 范围,呼吸平缓,肺部听诊无湿罗音。
• 实验后,实验组皮肤发绀,心率加快, 血压上升,呼吸变加深加快,呼吸困难, 肺部听诊有湿性罗音,随加输呋塞米剂 量增高后症状逐渐缓解,直到恢复正常。 肺系数远高于正常对照组。
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数据的收集及处理方法: