香蕉3种病毒的多重PCR检测体系

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用一步PCR法同时检测香蕉束顶病毒和香蕉花叶心腐病毒

用一步PCR法同时检测香蕉束顶病毒和香蕉花叶心腐病毒

用一步PCR法同时检测香蕉束顶病毒和香蕉花叶心腐病毒管维;杨雷亮;邱德义;王章根;周灼标;陈定虎
【期刊名称】《植物检疫》
【年(卷),期】2008(22)4
【摘要】采用改进的CTAB方法同时提取BBTV和CMV侵染的香蕉叶片的总核酸,然后同时加入BBTV和CMV的特异性引物进行扩增来检测BBTV和CMV。

结果显示,虽然BBTV和CMV属于不同核酸性质的病毒,但可以通过一步RT-PCR的方法同时被检测出来,为实际检测香蕉组培苗中的这2种最主要的病毒提供了一个有效的检测方法。

【总页数】3页(P213-215)
【关键词】香蕉束顶病毒;黄瓜花叶病毒;一步法RT;PCR
【作者】管维;杨雷亮;邱德义;王章根;周灼标;陈定虎
【作者单位】中山出入境检验检疫局技术中心
【正文语种】中文
【中图分类】Q93-331;S432.41
【相关文献】
1.香蕉花叶心腐病检测的两步法及一步法RT-PCR比较研究 [J], 周莉娟;郑伟文
2.PCR法检测香蕉束顶病毒 [J], 周莉娟;郑伟文
3.36%降黄龙可湿性粉剂防治香蕉花叶心腐病和香蕉束顶病示范试验 [J], 陈铣;赖真如;陈树帮
4.用酶联免疫法检测香蕉花叶心腐病病毒 [J], 蔡伟志;邓琼
5.加强检疫控制香蕉束顶病和香蕉花叶心腐病的蔓延 [J], 谢丽萍
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香蕉种植中的病毒病害分子检测与防治方法

香蕉种植中的病毒病害分子检测与防治方法

香蕉种植中的病毒病害分子检测与防治方法香蕉是世界上最主要的水果作物之一,在许多国家都有种植。

然而,香蕉种植中常常会受到病毒病害的威胁,这会导致产量下降和经济损失。

因此,对香蕉种植中的病毒病害进行检测和防治是至关重要的。

一、病毒病害的检测方法1. 实验室检测:通过实验室技术,可以检测出香蕉植株中是否存在病毒病害。

常用的实验室检测方法包括酶联免疫吸附试验(ELISA)、PCR和南方杂交等。

- ELISA:ELISA是一种基于抗体和抗原反应的方法,可以检测出香蕉植株中的病毒。

首先需要提取香蕉组织中的病毒蛋白,并与特定抗体结合,然后通过染色或荧光方法来检测反应结果。

- PCR:PCR是一种基于DNA扩增的方法,可以检测出香蕉植株中的病毒。

首先需要提取香蕉组织中的DNA,然后通过特定引物扩增病毒DNA片段,最后通过凝胶电泳等方法来检测扩增产物。

- 南方杂交:南方杂交是一种基于核酸杂交的方法,可以检测出香蕉植株中的病毒。

首先需要提取香蕉组织中的RNA或DNA,然后通过特定探针与目标病毒核酸结合,并通过染色或荧光方法来检测结果。

2. 田间检测:除了实验室检测,还可以通过田间观察和病原检测来判断香蕉植株是否感染了病毒病害。

常用的田间检测方法包括病毒病害病斑观察、病原酶活性检测和PCR检测。

- 病斑观察:通过观察香蕉植株叶片上的病斑形状、颜色和扩散情况,可以初步判断是否受到病毒病害的感染。

- 病原酶活性检测:通过特定底物和试剂,可以检测出病毒感染的香蕉植株中的病原酶的活性水平,从而判断是否存在病毒病害。

- PCR检测:和实验室检测中的PCR方法类似,通过田间快速提取DNA,然后进行PCR扩增和电泳分析,可以迅速判断香蕉植株中是否存在病毒病害。

二、病毒病害的防治方法1. 清除病毒源:在香蕉种植中,最重要的是清除病毒源,避免病毒的传播和扩散。

可以通过挖除感染植株、销毁病毒带菌者和病毒传播媒介等方法来清除病毒源。

2. 强化植株免疫力:通过合理施肥、浇水和植物生长调节剂的使用,可以增强香蕉植株的免疫力,降低感染病毒的可能性。

大蕉枯萎病菌二重PCR分子快速检测技术的建立

大蕉枯萎病菌二重PCR分子快速检测技术的建立

54卷收稿日期:2023-06-12基金项目:广东省基础与应用基础研究基金项目(2022A1515140114);广东省现代农业产业技术体系创新团队项目(2022KJ109);东莞市2021年度省乡村振兴战略专项(20211800400052);东莞市科技特派员项目(20221800500062)通讯作者:赖永超(1970-),https:///0009-0009-4245-9278,正高级农艺师,主要从事园艺作物育种及栽培技术研究工作,E-mail :135****************第一作者:曾莉莎(1985-),https:///0000-0003-4187-1104,研究员,主要从事果树病害防控技术研究工作,E-mail :****************大蕉枯萎病菌二重PCR 分子快速检测技术的建立曾莉莎1,王芳1,周海琪1,伍泽星2,赖永超1*,傅长根2,吕顺1,梁少丽1,刘丽琴1(1东莞市农业科学研究中心,广东东莞523000;2东莞讯禾园艺科技有限公司,广东东莞523000)摘要:【目的】基于大蕉枯萎病菌2个不同分化谱系特有的基因序列,建立大蕉枯萎病菌的二重PCR 分子快速检测技术,为该病害预测及有效防控提供理论依据。

【方法】基于大蕉枯萎病菌特有的rDNA 基因间隔区(IGS )序列设计得到多对PCR 引物,分别以广东3个粉蕉枯萎病菌株和8个大蕉枯萎病菌株、2个广西和海南的粉蕉枯萎病菌株、5个其他尖孢镰孢菌菌株和5个外围菌株的基因组DNA 为模板进行PCR 扩增,基于扩增结果从中筛选出大蕉枯萎病菌特异性引物,对其特异性和灵敏度进行检测,并确定二重PCR 检测体系的含菌量检测下限。

【结果】基于大蕉枯萎病菌特有的基因序列设计得到多对PCR 引物,经筛选验证获得2对可用于检测大蕉枯萎病菌2个不同谱系(Lineage Ⅰ和Ⅱ)的特异性引物,可直接应用于大蕉种植土壤和植株中的大蕉枯萎病菌检测,扩增片段分别为755和590bp 。

香蕉种苗中枯萎病菌和细菌性软腐病菌实时荧光PCR检测

香蕉种苗中枯萎病菌和细菌性软腐病菌实时荧光PCR检测

香蕉种苗中枯萎病菌和细菌性软腐病菌实时荧光PCR 检测梁基校2,陈 东3,利齐欣2,林鸿生5,张景欣1,杨祁云1,王飞钊4*,蒲小明1*(1广东省农业科学院植物保护研究所/农业农村部华南果蔬绿色防控重点实验室/广东省植物保护新技术重点实验室,广东广州 510640;2阳江市阳东区农业科学研究所,广东阳江 529900;3博罗县供销合作联社,广东博罗 516100;4广东天禾农资股份有限公司,广东广州 510080;5汕尾供销中禾农业科技服务有限公司,广东海丰 516400)摘要:香蕉枯萎病菌和细菌性软腐病菌复合侵染且潜伏期较长,建立香蕉种苗病害早期监测的分子检测方法非常重要。

本文基于尖孢镰刀菌古巴专化型1号生理小种(Fusarium oxy ‐sporum f. sp. cubense race 1,FOC1)基因组Contig 438区间(35631~37693 bp )(GenBank : AMGP01000438.1)设计特异扩增引物qFOC1-F/-R 、4号生理小种(Fusarium oxysporum f. sp. cubense race 4,FOC4)基因组Contig 195区间(4028~6126 bp )(GenBank : AMGQ01000195.1)设计特异扩增引物qFOC4-F/-R ,同时以香蕉细菌性软腐病菌Dickeya zeae 的促旋酶B 亚单位基因(Subunit B of gyrase gene )(GenBank : JQ284039)序列设计特异扩增引物q gyrB -F/-R 。

qPCR 检测结果显示:实时荧光检测引物扩增特异性强。

通过拟合曲线方程分析得到:检测香蕉枯萎病菌的DNA 浓度最低限为3 pg·μL -1,细菌性软腐病菌的菌液浓度最低限灵敏度为70 cfu·mL -1,检测灵敏度较高,结果稳定可靠。

因此,本研究建立的实时荧光PCR 检测方法可有效应用于检测香蕉种苗中的香蕉枯萎病菌和细菌性软腐病菌,确保种苗的安全生产。

多重PCR快速检测3种食源性致病菌

多重PCR快速检测3种食源性致病菌
埃希菌 O 1 5 7、 阪 崎 肠杆 菌 7种 菌 混 合 在 一 起 提 取混 合 基 因组 D N A进 行 P C R扩 增 , 显 示 很 好 的特 异 性 结 果 。结 论 建 立 的 多重 P C R检测方法适用于金黄色葡萄球菌 、 产 单 核 李 斯 特 菌 和 沙 门菌 的 快 速 检 测 , 具有快速 、 简便 、 灵敏 的特点 , 可 广 泛 应 用 于 食 品 卫 生 检测 、 食 物 中 毒 应 急处 理 和临 床 检 验 等 领 域
采用 L B培 养液 对 金 黄 色 葡 萄 球 菌 、 产 单 核 李 斯 特 菌 和 沙 门菌 标 准 菌 株 进 行 增 菌 。根 据 金 黄 色 葡 萄 球 菌 的 n u c基 因 、 产 单 核 李 斯 特 氏菌 的 h l y A基 因 、 沙 门 氏菌 的 i n v A基 因设 计 引 物 , 通过多重聚合酶链反应f P C R 1 对 上 述 3种 食 源 性 致 病 菌 的 目的 基 因进行扩增 , 同时 对 反 应 体 系进 行 优 化 。结 果 对 平 均 浓 度 为 5 c f u / m l 的金黄色葡萄球菌 、 产单 核 李 斯 特 菌 和 沙 门 氏菌 在 L B 培 养 液 中进 行 8 h振 荡 培 养 , 可 以检 出 阳性 结 果 ; 把金黄色葡萄球菌 、 产单核李斯特菌 、 沙 门菌 、 志贺菌 、 蜡 样 芽孢 杆 菌 、 大 肠
吴建英, 宋建新 , 曹金 萍, 涂智杰, 余慧宏, 胡芹, 魏建萍, 潘剑
f 江 西 省 景 德 镇 市 疾 病 预 防控 制 中心 , 江西 景德镇 3 3 3 0 0 0 1
摘 要 : 目的 建 立 一 种 能 同 时检 测 金 黄 色 葡 萄 球 菌 、 产单核李斯特菌和沙门菌 3 种 致 病 菌 的多 重 P C R 检 测 方 法 方 法

3种核果类果树病毒多重PCR检测方法的建立与初步应用

3种核果类果树病毒多重PCR检测方法的建立与初步应用

3种核果类果树病毒多重PCR检测方法的建立与初步应用赵世恒;王吉腾;李雪娇;高润蕾;云晓鹏【期刊名称】《内蒙古农业科技》【年(卷),期】2018(046)003【摘要】根据李痘病毒(PPV)、李坏死环斑病毒(PNRSV)和李矮缩病毒(PDV)3种检疫性病毒的外壳蛋白基因保守序列设计特异性引物,在建立各种病毒单个RT-PCR技术的基础上,通过优化多重RT-PCR反应条件,初步建立了同步检测这3种病毒的多重RT-PCR检测体系.结果表明:3对引物特异性较强,分别可以扩增出172,675,945 bp的目的片段,该方法快速、灵敏、准确,为同时检测多种检疫性病毒提供了参考.【总页数】5页(P37-41)【作者】赵世恒;王吉腾;李雪娇;高润蕾;云晓鹏【作者单位】北京市通州区农产品质量检验检测站,北京 100024;荣成出入境检验检疫局,山东荣成 264300;北京市通州区植物保护站,北京 100024;呼和浩特市和林格尔县盛乐经济园区管委会,内蒙古和林格尔 011500;内蒙古农牧业科学院植物保护研究所,内蒙古呼和浩特 010031【正文语种】中文【中图分类】S662【相关文献】1.H5、H9亚型禽流感病毒及鸭坦布苏病毒多重 PCR 检测方法的建立及初步应用[J], 李海琴;傅光华;黄瑜;韦启鹏;唐维国2.鸡胚致死孤儿病毒和鸡减蛋综合症病毒多重PCR 检测方法的建立及初步应用 [J], 王淑菁;付瑞;李晓波;王吉;卫礼;巩薇;岳秉飞;贺争鸣3.3种核果类果树病毒多重PCR检测方法的建立与初步应用 [J], 赵世恒;王吉腾;李雪娇;高润蕾;云晓鹏;;;;;4.4种猪源病毒多重PCR检测方法的建立及初步应用 [J], 王莹;刘雨田;孙成友;迟田英;宋芳芳;于小静;吴晓东;王志亮5.猪δ冠状病毒、猪流行性腹泻病毒和猪萨佩罗病毒多重RT-PCR检测方法的建立及初步临床应用 [J], 丁庆文;闫晓光;张红垒;李倩倩;张云飞;舒祥力;单法;李林姣;胡慧因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

多重实时PCR检测三种呼吸道病毒

多重实时PCR检测三种呼吸道病毒

多重实时PCR检测三种呼吸道病毒赵海龙;姜涛;邓永强;陈水平;李晓峰;于曼;秦鄂德【期刊名称】《中华微生物学和免疫学杂志》【年(卷),期】2007(027)009【摘要】目的建立多重实时PCR检测体系可同时快速检测引起人呼吸道感染的甲型流感病毒(IAV)、呼吸道合胞病毒(RSV)和SARS冠状病毒(SARS-CoV).方法通过对PCR反应条件的优化,建立了同时检测IAV、RSV和SARS-CoV的多重实时PCR方法.结果经熔解曲线分析,证实了该法可同时或分别检测3种重要呼吸道病毒.检测灵敏度分别为100.7TCID50/ml、1 TCID50/ml和10-0.5TCID50/ml.采用相同的反应体系和条件,分别对其他7种呼吸道病毒(包括乙型流感病毒,副流感病毒2型,柯萨奇病毒B3和B5血清型及腺病毒2、3和7血清型)进行扩增,均未检测出扩增产物.此种方法可在4 h内完成.结论建立的多重实时PCR检测方法适用于3种重要呼吸道病毒的快速检测.【总页数】4页(P856-859)【作者】赵海龙;姜涛;邓永强;陈水平;李晓峰;于曼;秦鄂德【作者单位】100071,北京,军事医学科学院微生物流行病研究所病原微生物与生物安全国家重点实验室;100071,北京,军事医学科学院微生物流行病研究所病原微生物与生物安全国家重点实验室;100071,北京,军事医学科学院微生物流行病研究所病原微生物与生物安全国家重点实验室;100071,北京,军事医学科学院微生物流行病研究所病原微生物与生物安全国家重点实验室;100071,北京,军事医学科学院微生物流行病研究所病原微生物与生物安全国家重点实验室;100071,北京,军事医学科学院微生物流行病研究所病原微生物与生物安全国家重点实验室;100071,北京,军事医学科学院微生物流行病研究所病原微生物与生物安全国家重点实验室【正文语种】中文【中图分类】R4【相关文献】1.多重实时PCR对宫颈癌组织及SiHa细胞株HPV-16病毒存在状态的检测2.多重实时PCR检测腹膜透析相关性腹膜炎致病菌的应用分析3.多重实时PCR检测产毒素性霍乱弧菌和副溶血弧菌4.荧光置换探针多重实时PCR检测结核杆菌3种耐药突变5.多重实时PCR对宫颈癌及癌前病变HPV-16病毒整合状态的检测因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

海南香蕉病毒病害调查及检测

海南香蕉病毒病害调查及检测

海南香蕉病毒病害调查及检测王达新;马蔚红;殷晓敏;郭刚【摘要】[目的]开展海南省香蕉病毒病害调查研究,为海南香蕉病毒病检测和防控提供依据.[方法]采用5点随机取样法在海南省海口、澄迈、儋州、白沙、昌江、东方、乐东、三亚等市(县)的香蕉园对呈典型病毒病症状的香蕉植株进行病毒病调查和病样采集,并运用ELISA、PCR和RT-PCR方法对病样进行病毒学检测.[结果]在所有被调查的蕉园中均有香蕉病毒病害发生,其田间自然发病率一般为5%~8%,症状可分为束顶型、花叶心腐型、褪绿条纹型、叶脉坏死型和花苞畸形型5种,其中束顶型和花叶心腐型最为常见;ELISA、PCR或RT-PCR检测发现,束顶型、花叶心腐型病样病原分别为BBTV和CMV,花苞畸形型和叶脉坏死型病样均由BBTV、CMV复合侵染所致,褪绿条纹型病样在CMV/BSV的ELISA检测中均为阴性,但BSV的PCR检测结果为阳性.[结论]海南香蕉病毒病主要由香蕉束顶病毒(BBTV)和黄瓜花叶病毒(香蕉株系,CMV)单独或复合侵染所致.生产中,应推广种植香蕉无毒试管苗,实施蕉园蚜虫综合防控,以减少香蕉病毒病的发生与传播.【期刊名称】《南方农业学报》【年(卷),期】2014(045)002【总页数】5页(P209-213)【关键词】香蕉;病毒病;调查;检测;海南【作者】王达新;马蔚红;殷晓敏;郭刚【作者单位】中国热带农业科学院海口实验站,海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海口570102;中国热带农业科学院海口实验站,海口570102【正文语种】中文【中图分类】S432.41【研究意义】香蕉为芭蕉科(Musaceae)芭蕉属(Musa)植物,是重要的经济作物和粮食作物,也是重要的热带、亚热带水果。

海南岛地处我国热区,生态和生产环境优越,是我国香蕉主产区之一,香蕉种植业已成为当地农民经济收入的重要来源。

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园艺学报,():– 2010375 829834 Acta Horticulturae Sinica收稿日期:2009–12–28;修回日期:2010–04–04nyhyzx07-29nycytx-33-062009B020201011 香蕉3种病毒的多重PCR 检测体系谭小勇,阮小蕾,吴丽婷,翟国会,李华平*(华南农业大学植物病毒研究室,广州 510642)摘 要:根据GenBank 中已发表的香蕉束顶病毒(Banana bunchy top virus ,BBTV )﹑黄瓜花叶病毒(Cucumber mosaic virus ,CMV )和香蕉线条病毒(Banana streak virus ,BSV )的基因序列,找出保守序列分别设计出特异引物,在建立各种病毒单项PCR 技术的基础上,通过优化多重PCR 反应条件,建立了能同时检测3种病毒的多重PCR 检测体系。

该体系可同时扩增BBTV 的615 bp 、CMV 的480 bp 和BSV 的945bp 的特异片段。

这些片段克隆测序结果表明,多重PCR 扩增的不同病毒片段是特异和专化的,其核苷酸序列与相应的病毒基因片段的相似性都达91%以上。

该体系的灵敏度测定结果表明,从相当于或大于10-2 mg感病植物组织中均能检测到这3种病毒。

关键词:香蕉;病毒;黄瓜花叶病毒;香蕉束顶病毒;香蕉线条病毒;多重PCR中图分类号:S 668.1 文献标识码:A 文章编号:0513-353X (2010)05-0829-06Development of a Multiplex PCR Protocol for the Detection of Three Viruses in BananaTAN Xiao-yong ,RUAN Xiao-lei ,WU Li-ting ,ZHAI Guo-hui ,and LI Hua-ping *(Laboratory of Plant Virology ,South China Agricultural University ,Guangzhou 510642,China )Abstract :Based on the establishment of the optimal PCR and RT-PCR for the detection of single virus ,a multiplex PCR protocol for the detection of three main viruses (Banana bunchy top virus ,BBTV ;Cucumber mosaic virus ,CMV ;Banana streak virus ,BSV) in banana is developed. Three specific fragments with molecular weights at 615 bp for BBTV ,480 bp for CMV and 945 bp for BSV were simultaneously amplified in one PCR reaction system. The sequence analysis of amplified fragments indicates that three virus fragments shared above 91 percent identities with that of other relative viruses. It was showed that the sensitivity of this protocol equaled to be able to detect the three viruses at the level of 10-2 mg banana tissue.Key words :banana ;virus ;Cucumber mosaic virus ;Banana bunchy top virus ;Banana streak virus ;multiplex PCR由香蕉束顶病毒(Banana bunchy top virus ,BBTV )引起的香蕉束顶病是香蕉生产上最主要的病毒病害之一,限制和威胁着世界上25%的香蕉种植区域的香蕉生产(Dale ,1987)。

香蕉花叶病毒病是由黄瓜花叶病毒(Cucumber mosaic virus ,CMV )引起,是我国南方香蕉生产上的主要的病毒病害,近年来由于工厂化香蕉组培苗的生产,使得发病情况更加严重(陈铣 等,2001)。

香蕉线条病毒(Banana streak virus ,BSV )引起的香蕉线条病已在世界上所有香蕉出产国都有报道(Harper基金项目:国家公益性行业科研专项();国家香蕉产业技术体系项目();广东省产业化推进项目专项()* 通信作者 Author for correspondence (E-mail :huaping@ )830 园艺学报37卷& Hull,1998;Lockhart & Jones,2000;Fauquet et al.,2005),造成香蕉减产(Laura et al.,2008)和果实成熟延迟(Daniells et al.,1998)。

目前香蕉生产上主要通过组织培养无病苗来预防这些病毒病害的发生,而稳定和有效的检测方法则是无毒苗生产的重要保证。

目前这些病害的主要检测方法有酶联免疫法(ELISA), PCR及免疫捕捉PCR等技术(李华平等,1997;肖火根和胡晋生,1999;费继锋等,2001;周莉娟和郑伟文,2001,2003;饶雪琴等,2005)。

Selvarajan等(2004)建立了BSV和BBTV 印度分离物的多重PCR检测体系,彭军等(2006)建立了CMV和BBTV两步PCR 法检测体系,管维等(2008)在此基础上成功建立了一步PCR法同时检测这两种病毒的检测体系。

为了提高病毒检测速度,作者通过从田间采集样品,优化反应条件,建立了能同时检测华南地区香蕉产区广泛分布的BBTV、CMV和BSV这3种病毒的多重PCR法。

该法不但灵敏度高、稳定性强,而且简化了操作步骤,降低了检测成本,缩短了检测时间,为实际生产提供了有力的技术保障。

1 材料与方法1.1 样品采集及引物设计取感染BBTV的香蕉叶脉组织(从广州番禺地区采样)、感染BSV和CMV的香蕉叶片组织(从本实验室基地采样)0.2 g,将其混合(Avijit et al.,2005)提取总核酸。

抽提物于–20 ℃下保存。

根据GenBank收录的BBTV、CMV、BSV全部序列,通过对比找到这些病毒的特异性区域,依据保守序列设计引物,其中BBTV的扩增片段为复制酶编码区域,CMV和BSV的扩增片段均为病毒衣壳蛋白编码区域(表1)。

表1 用于建立香蕉3种病毒检测体系的PCR扩增引物序列Table 1Nucleotide sequence of primers used for PCR experiments病毒Virus 引物名称Name of primer 引物序列Primer sequence(5′–3′) PCR产物大小/bp Size of PCR productBBTV P1P2 ATGTGGTATGCTGGATGTTC GTTCATATTTCCCGCTTTGA618CMV P1P2 TATGATAAGAAGCTTGTTTCGCG GCCGTAAGCTGGATGGACAA480BSV P1P2 AAGCTTCGGGTACACAAAATATCATC GGATCCGGTTTTCTTAACTTCTTC9451.2 两步法单重RT-PCR反应体系的建立CMV反转录体系20 μL,含下游引物1 μL,CMV的RNA 模板1 μL,dNTPs 1 μL, RNA酶抑制剂 (RNase Inhibitor,20 U · μL-1 ) 0.5 μL,反转录酶(Reverse Transcriptase M-MLV)0.2 μL,反转录酶缓冲液 4 μL,DEPC 处理ddH2O 16.3 μL,以上所用制剂均购自宝生物工程有限公司。

反应条件为30 ℃ 10 min,42 ℃ 30 min,99 ℃ 5min,5 ℃ 5 min。

取感染BBTV、BSV植株的总核酸及CMV反转录产物各1 μL为模板,上下游引物(10 μmol · L-1)各1 μL,10 mmol · L-1 dNTPs 0.5 μL,PCR buffer 2.5 μL,Taq酶0.2 μL,用ddH2O补足至25 μL。

将3种病毒分别按照上述反应体系配制成反应液,将装有反应液的PCR管放入不同温度(48 ~ 58 ℃)中进行单重PCR,每10 μL的PCR反应产物混入1 μL 10 × PCR 上样缓冲液,加入到1.0%的琼脂糖凝胶中在90 V电压下电泳,在紫外灯下观察,条带最亮的产物的退火温度为最佳退火温度。

1.3 两步法多重RT-PCR体系的建立取混合抽提的总核酸3 μL作为模板,依次加入CMV下游引物1 μL,10 mmol · L-1 dNTPs 1 μL,5期谭小勇等:香蕉3种病毒的多重PCR检测体系 831RNA 酶抑制剂(RNase Inhibitor 20 U · μL-1)0.5 μL,反转录酶0.2 μL,反转录酶缓冲液4 μL,DEPC 处理ddH2O 14.3 μL。

反应条件为30 ℃ 10 min,42 ℃ 30 min,99 ℃ 5 min,5 ℃ 5 min。

取反应液3.6 μL作为多重PCR的模板,加入10 mmol · L-1 dNTPs 1.2 μL,Taq(5U)0.5 μL,BSV上下游引物(10 μmol · L-1)各1.5 μL,BBTV上下游引物(10 μmol · L-1)各1.2 μL,CMV上下游引物(10 μmol · L-1)各1.0 μL,PCR buffer 5.0 μL,加ddH2O补足为50 μL。

反应条件为94 ℃ 5 min, 94 ℃ 30 s,48 ~ 58R℃ 30 s,72 ℃ 1 min,30个循环,72 ℃ 10 min。

在每10 μL的PC反应产物混入1 μL 10 × PCR 上样缓冲液,加入到1.0%琼脂糖凝胶中90 V电压下电泳,利用凝胶成像系统观察结果。

1.4 两步法灵敏度检测和一步法RT-PCR体系的建立将提取的总核酸用TE缓冲液按照10倍浓度进行系列稀释,取每个稀释后的样品3 μL作为反应模板,按照前述反应体系进行灵敏度试验。

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