培养基促生长实验操作
培养基促生长实验操作公司标准化编码 [QQX96QT-XQQB89Q8-NQQJ6Q8-MQM9N]
1 目的
制订培养基灵敏度实验操作，是为了规范、统一培养基灵敏度检测，确保微生物检测准确、安全进行。
2 范围
适用于所有配制好并灭菌的培养基。
3 编写依据
4 术语
无
5 职责
QC卫检组人员负责培养基的配制、灭菌、灵敏度实验。
6 内容
使用的设备、器具
生物安全柜、无菌培养皿、无菌刻度吸管或无菌注射器、无菌玻璃涂布器、酒精灯等使用的菌株
EP检测用ATCC的菌株:
金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus ATCC 6538
大肠埃希菌Escherichia coli ATCC 8739
铜绿假单胞菌Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027
枯草芽孢杆菌 Bacilllus subtilis ATCC 6633
沙门氏菌Salmonella enterica subsp ATCC 14028
白色念珠菌Candida albicans ATCC 10231
黑曲霉Aspergillus niger ATCC 16404
培养基灵敏度检测所用的菌株传代次数不得超过5代, 并采用适宜的菌种保藏技术，以保证试验用菌株的生物学特性。
检测频率
每批配制、灭菌后的培养基均应做灵敏度测试。
操作方法
6.4.1 对照标准培养基
用已经过实验证明合格的培养基或购买的有质量证书的成品平皿培养基作为对照标准培养基.
6.4.2 实验培养基
将琼脂类的实验培养基加热融化后，冷却至45℃左右，以无菌的方式在无菌培养皿中注入15～20ml，备用。
液体类的培养基直接使用。
6.4.3 菌悬液的制备
6.4.3.1 细菌菌悬液的制备
方法一：取细菌的斜面培养物1耳匙接种在酪蛋白大豆消化肉汤培养基中30～35℃培养18～24h，取上述培养物用无菌水按10倍系列稀释，分别制成10-7～10-8的菌悬液备用。
6.4.3.2 霉菌菌悬液的制备
取白色念珠菌的斜面培养物1耳匙接种在沙氏琼脂斜面上于20～25℃培养24～48h，加入无菌水4ml制成原液，取上述原液按10倍系列稀释，分别制成10-6～10-7的菌悬液备用。
取黑曲霉的斜面培养物加入无菌水4ml制成孢子悬液，取上述孢子悬液按10倍系列稀释，分别制成10-6～10-7的菌悬液备用。
方法二：直接用杭州微球生物技术有限公司的产品-培养基灵敏度指示剂，该产品已经帮我们精确控制了细菌数量，只要直接拿稀释液稀释下就可以直接取到10～100CFU试验菌。
使用方便，数量精确。
推荐用此方法操作。
6.4.4培养基的生长促进实验
6.4.4.1 琼脂类培养基的生长促进实验
每株菌用2个实验培养基平皿，用表面涂布法在每个平皿表面接种～的菌悬液（约10～100CFU试验菌），同时用2个对照标准的培养基平皿做对照，接种相同量的菌悬液试验，在规定温度下培养,取出平皿点计菌落数。
实验培养基上的微生物数量应为对照培养基上微生物生长数量的70%-150%范围内。
（注：每种培养基生长促进实验的具体菌株见附录1）
6.4.4.2液体类培养基的生长促进实验
每株菌用2管（或瓶）实验培养基，接种～的菌悬液（约10～100CFU试验菌），同时用2个对照标准的培养基或用已知合格的酪蛋白大豆消化琼脂平皿做对照，接种相同量的菌悬液试验，在规定温度下培养,对比或计数，在规定时间内能生长菌落为合格。
6.4.5 培养基的生长促进和抑制特性试验
6.4.5.1 液体培养基的生长促进特性试验
接种～的菌悬液（约10～100CFU试验菌）于一定量适合的培养基。
在特定温度下培养，培养时间不超过试验中规定的最短期限。
与对照标准的培养基获得的微生物生长相比，接种微生物的生长应明显。
6.4.5.2固体培养基的生长促进特性试验
采用表面涂布法，在每一块平皿上接种～的菌悬液（约10～100CFU试验菌）适宜微生物。
在特定温度下培养，培养时间不长于试验中规定的最短期限。
接种微生物的生长与对照标准的培养基获得的微生物生长相当。
6.4.5.3液体或固体培养基的抑制特性试验
用适当培养基接种至少100 CFU适宜微生物。
在特定温度下培养，培养时间至少为试验中规定的最长期限。
无受试微生物生长。
（注：每种培养基生长促进和抑制特性试验的具体菌株见附录1）
7 附录
附录1 培养基生长促进和抑制特性表
附录1：
培养基的生长促进、抑制特性表。
培养基促生长实验操作
培养基促生长实验操作 Prepared on 22 November 20201目的制订培养基灵敏度实验操作，是为了规范、统一培养基灵敏度检测，确保微生物检测准确、安全进行。
2 范围适用于所有配制好并灭菌的培养基。
3 编写依据4 术语无5 职责QC卫检组人员负责培养基的配制、灭菌、灵敏度实验。
6 内容使用的设备、器具生物安全柜、无菌培养皿、无菌刻度吸管或无菌注射器、无菌玻璃涂布器、酒精灯等使用的菌株EP检测用ATCC的菌株:金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus ATCC 6538大肠埃希菌Escherichia coli ATCC 8739铜绿假单胞菌Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027枯草芽孢杆菌 Bacilllus subtilis ATCC 6633沙门氏菌Salmonella enterica subsp ATCC 14028白色念珠菌Candida albicans ATCC 10231黑曲霉Aspergillus niger ATCC 16404培养基灵敏度检测所用的菌株传代次数不得超过5代, 并采用适宜的菌种保藏技术，以保证试验用菌株的生物学特性。
检测频率每批配制、灭菌后的培养基均应做灵敏度测试。
操作方法6.4.1 对照标准培养基用已经过实验证明合格的培养基或购买的有质量证书的成品平皿培养基作为对照标准培养基.6.4.2 实验培养基将琼脂类的实验培养基加热融化后，冷却至45℃左右，以无菌的方式在无菌培养皿中注入15～20ml，备用。
液体类的培养基直接使用。
6.4.3 菌悬液的制备6.4.3.1 细菌菌悬液的制备方法一：取细菌的斜面培养物1耳匙接种在酪蛋白大豆消化肉汤培养基中30～35℃培养18～24h，取上述培养物用无菌水按10倍系列稀释，分别制成10-7～10-8的菌悬液备用。
6.4.3.2 霉菌菌悬液的制备取白色念珠菌的斜面培养物1耳匙接种在沙氏琼脂斜面上于20～25℃培养24～48h，加入无菌水4ml制成原液，取上述原液按10倍系列稀释，分别制成10-6～10-7的菌悬液备用。
培养基适用性检查标准操作规程
培养基适用性检查标准操作规程目的：明确微生物限度检查用培养基质量检查操作规程。
范围：需进行微生物限度检测的培养基职责：QC检验员对本标准的实施负责。
1.概述培养基质量是影响微生物检验结果的重要环节。
计数测定用培养基的促生长能力是微生物限度检查结果判断的重要影响因素，控制菌检查用培养基也可能由于其促生长能力、指示能力、抑制能力的差异，从而对菌落颜色、形态等指标存在较大差异，影响结果判断的客观性。
培养基适用性检查是通过检验用培养基与对照培养基的比较，以阳性菌的生长状态或特征来评价拍段检验用培养基是否符合检验要求。
微生物限度检查用培养基主要分为细菌、霉菌及酵母菌计数测定用培养基和控制菌检查用培养基两部分。
2015版《中国药典》微生物限度检查法中收载了“适用性检查”对培养基质量进行控制。
2、培养基适用性检查实验的一般要求2.1培养基适用性检查适用范围2020版《中国药典》规定微生物计数用的成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基适用性检查。
培养基使用性检查试验可用于确定实验室所用培养基(包括购置的不同批号的成品培养基、不同批号的脱水培养基干粉、按处方自行配制培养基不同批次的原材料等)、制备程序（包括水质控制、配制方法、灭菌程序等）、保存条件（温度、湿度、时间及盛装培养基的容器条件等）等是否满足微生物限度检查用要求。
即上述影响培养基质量的各关键控制点应通过培养基使用性检查试验确定，如果任一控制点发生变化应重新进行培养基适用性检查。
但是影响培养基质量的关键控制点的变化应掌握在微生物实验室质量控制的一般原则内（见2.2），超过一般原则的培养及是否还能满足微生物限度检查用，无法通过培养基适用性检查确定。
当检查结果出现异常，或实验室质量控制需要，也可通过培养基适用性检查提供一定依据。
总之，培养基适用性检查是在正常条件下关于培养基质量的实验室控制措施，并不一定在每次具体的微生物限度检查样品检测试验活动中都必须同时进行培养基使用性检查试验，但每次微生物检查所用培养基均应经过适用性检查。
细胞生长曲线实验步骤
细胞生长曲线实验步骤一、准备细胞与培养基1.选择适宜于实验的细胞系，并确保细胞状态良好，无污染。
2.准备所需的培养基，按照说明书进行配制，并在使用前进行无菌过滤处理。
3.准备所需的无菌器械、吸管、离心管等。
二、接种细胞至培养板1.在无菌操作台上，用无菌吸管吸取适量的细胞悬液。
2.将细胞悬液均匀接种至培养板中，每个孔内的细胞数量应保持一致。
3.将接种好的培养板放入培养箱中，设置适宜的温度、湿度和二氧化碳浓度。
三、定时观察与计数1.在接种后的不同时间点（如每天或每24小时）观察细胞的生长情况。
2.使用倒置显微镜观察细胞的贴壁生长和形态变化，以及细胞数量的变化。
3.在特定时间点，使用血细胞计数板或自动细胞计数器对细胞进行计数。
四、记录数据1.将每次观察和计数的结果详细记录下来，包括细胞数量、形态变化等。
2.记录实验过程中的温度、湿度、二氧化碳浓度等环境参数。
五、绘制生长曲线1.根据记录的数据，以时间为横轴，细胞数量为纵轴，绘制细胞生长曲线图。
2.生长曲线应反映出细胞数量随时间的变化趋势。
六、数据分析1.分析生长曲线，计算细胞的倍增时间、生长速率等参数。
2.比较不同条件下的细胞生长情况，分析影响细胞生长的因素。
七、清洗与消毒1.实验结束后，将使用过的器械、培养板等进行清洗和消毒处理。
2.清洗可使用去离子水或清洗剂，消毒可使用75%酒精或紫外线照射等方法。
八、实验总结1.总结实验过程中的经验教训，分析可能存在的误差来源。
2.根据实验结果，提出改进实验方法的建议或对未来研究方向的展望。
请注意，以上步骤仅为一般性的细胞生长曲线实验步骤，具体实验过程可能因细胞类型、实验条件等因素而有所不同。
在实际操作中，请遵循实验室的安全规定和操作规程，确保实验结果的准确性和可靠性。
培养基促生长试验操作规程
1.0 目的制订培养基灵敏度实验操作，是为了规范、统一培养基灵敏度检测，确保微生物检测准确、安全进行。
2.0 适用范围适用于所有配制好并灭菌的培养基。
3.0 职责3.1. 研究人员负责依据本文件进行培养基促生长试验操作；3.2. 项目负责人负责依据研究项目特性审核本文件的适宜性；3.3. 质量负责人负责监督项目实施过程中的试验符合本文件规定。
4.0 工作流程4.1. 设备、器具压力蒸汽灭菌器、生物安全柜、无菌培养皿、无菌刻度吸管或无菌注射器、无菌玻璃涂布器、酒精灯等。
4.2. 试剂0.9%NaCl、对照培养基、沙氏琼脂、胰酪蛋白大豆消化肉汤培养基4.3. 使用的菌株4.3.1. EP检测用ATCC的菌株:金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus ATCC 6538大肠埃希菌Escherichia coli ATCC 8739铜绿假单胞菌Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027枯草芽孢杆菌Bacilllus subtilis ATCC 6633沙门氏菌Salmonella enterica subsp ATCC 14028白色念珠菌Candida albicans ATCC 10231黑曲霉Aspergillus niger ATCC 164044.3.2. 培养基灵敏度检测所用的菌株传代次数不得超过5代, 并采用适宜的菌种保藏技术，以保证试验用菌株的生物学特性。
4.4. 检测频率每批配制、灭菌后的培养基均应做灵敏度测试。
4.5. 操作方法4.5.1. 对照标准培养基用已经过实验证明合格的培养基或购买的有质量证书的成品平皿培养基作为对照标准培养基。
4.5.2. 实验培养基将琼脂类的实验培养基加热融化后，冷却至45℃左右，以无菌的方式在无菌培养皿中注入15～20 mL，备用。
液体类的培养基直接使用。
4.5.3. 菌悬液的制备4.5.3.1. 细菌菌悬液的制备取细菌的斜面培养物1耳匙接种在胰酪蛋白大豆消化肉汤培养基中30～35℃培养18～24h，取上述培养物用0.9%无菌NaCl按10倍系列稀释，分别制成10-7～10-8的菌悬液备用。
ms 培养基促进生根的方法
ms 培养基促进生根的方法以MS培养基促进生根的方法引言：生根是植物生长过程中重要的阶段，对于繁殖植物来说尤为关键。
MS培养基是一种被广泛应用于植物组织培养的基础培养基，其成分和浓度的合理调配对于生根的促进起到重要作用。
本文将介绍利用MS培养基促进生根的方法。
一、调整植物激素浓度MS培养基中含有多种植物激素，其中包括生长素和细胞分裂素。
这些激素对于植物的生根起到重要的调控作用。
为了促进生根，可以根据不同植物的需要调整激素浓度。
一般情况下，增加生长素的浓度可以促进生根的形成，而增加细胞分裂素的浓度则可以促进生根的生长。
因此，我们可以在MS培养基中适量调整这些激素的浓度，以达到促进生根的效果。
二、添加生长因子除了植物激素外，MS培养基中还可以添加一些生长因子，如维生素、矿物质等。
这些物质对于植物的生长和发育起到重要的调控作用。
在促进生根方面，适量添加维生素B1、B6和菸酸等可以增强植物的生根能力。
此外，添加一些矿质元素，如钙、镁、铁等，也可以促进生根的形成和生长。
三、调整培养基pH值pH值是影响培养基中养分吸收和植物生理代谢的重要因素。
对于促进生根来说，适宜的pH值范围是5.5-6.5。
如果pH值偏高或偏低，都会对植物的生根产生不利影响。
因此，在制备MS培养基时，应注意调整pH值，以保持适宜的生根环境。
四、光照和温度控制光照和温度是植物生长过程中必不可少的环境因素。
对于促进生根来说，适宜的光照和温度条件可以提高生根的成功率。
一般来说，光照强度为3000-5000勒克斯，温度为20-25摄氏度是较为适宜的生根条件。
此外，光周期也会对生根产生影响。
对于大部分植物来说，16小时的光照和8小时的黑暗是较为适宜的光周期。
五、培养基的配制和处理制备MS培养基时，应注意材料的选择和配比。
一般来说，MS培养基中的盐类成分是固定的，但可以根据植物的需要适当调整某些成分的浓度。
此外，培养基的pH值应调整到适宜的范围。
制备好的培养基应经过高压灭菌处理，以确保无菌状态。
植物生长发育实验技巧总结
植物生长发育实验技巧总结植物生长发育实验是研究植物生物学、生态学等领域的重要实验手段之一。
正确的实验技巧能够确保实验结果的准确性和可靠性。
本文将总结植物生长发育实验的一些常用的技巧，供科研工作者和实验室人员参考。
1.实验前准备在进行植物生长发育实验之前，我们需要先进行一些必要的准备工作，以确保实验的成功进行。
首先，选择合适的植物材料，并进行必要的处理，例如种子消毒、浸泡等。
同时，确定实验所需的环境条件，如温度、光照、湿度等，并合理安排实验的时间计划。
2.选择合适的培养基培养基在植物生长发育实验中起到关键作用。
根据实验目的和所研究的植物，选择合适的培养基对实验结果具有重要影响。
常见的培养基有MS培养基、Murashige和Skoog培养基等。
选择合适的培养基可以提供植物所需的养分和生长因子，促进植物生长发育的研究。
3.控制环境条件在植物生长发育实验中，环境条件的控制尤为重要。
温度、光照和湿度等环境因素对植物的生长发育起着至关重要的作用。
控制环境条件可以通过恒温箱、光照设备和加湿机等进行调控。
在实验过程中，要密切关注和记录环境参数的变化，确保实验结果的准确性和可靠性。
4.正确的实验操作在进行植物生长发育实验时，合理的实验操作能够确保实验结果的准确性。
例如，种子的播种要均匀密集，避免过于稀疏或过于密集；培养基的添加要准确无误，避免浓度过高或过低；对植物的处理要谨慎，避免人为因素对实验结果产生干扰等。
同时，要注意卫生和消毒，避免细菌和病原体的污染。
5.数据的收集与分析在植物生长发育实验中，收集和分析实验数据是科研工作的关键环节。
在实验过程中，要准确记录观察数据，如植物生长的高度、根系的长度等。
同时，利用适当的统计方法对实验数据进行分析，以得出科学准确的结论。
要注意数据的可重复性和统计学意义，确保实验结果的可信度。
总结：植物生长发育实验是研究植物生物学、生态学等领域的重要手段。
正确的实验技巧能够确保实验结果的准确性和可靠性。
ms 培养基促进生根的方法
ms 培养基促进生根的方法
在植物组织培养中，生根是一个重要的步骤。
MS培养基是一种经典的组织培养基，也是促进生根的主要培养基之一。
以下是使用MS培养基促进生根的方法：
1. 准备MS培养基：将MS培养基粉末加入蒸馏水中，搅拌均匀，然后加热至溶解。
调整pH值至5.8，并加入植物生长素（如IBA或NAA）以促进生根。
2. 准备植物材料：收集植物茎段、叶片或愈伤组织，进行消毒处理。
3. 制备生长环境：将准备好的MS培养基倒入无菌培养瓶中，然后将植物材料插入培养基中。
4. 培养条件：将培养瓶置于适宜的光照条件下（如光照强度为50-100μmol/m2s），温度保持在适宜范围内（如20-25℃）。
5. 观察和处理：观察植物材料的生长情况，将生长健壮的组织转移到新的MS培养基中，继续培养。
以上是使用MS培养基促进生根的基本方法。
不同植物材料和生长条件可能需要调整培养基配方和培养条件。
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发现植物的生长和养分吸收实验
发现植物的生长和养分吸收实验植物的生长过程及其对养分的吸收是植物学研究的重要方向之一。
为了更好地了解植物的生长和养分吸收机制，科学家们进行了一系列的实验。
本文将介绍一种发现植物的生长和养分吸收的实验方法，并探究实验结果所带来的启示。
实验材料：1. 植物种子（选择常见的小麦、豌豆等作为研究对象）2. 培养基（包含适量的养分和水分）实验步骤：1. 在一组培养皿中均匀撒上一层培养基。
2. 将相同数量的植物种子分别放入每个培养皿中。
3. 使用适量的水对每个培养皿中的种子进行浇灌。
4. 选择适当的光照条件和温度，放置培养皿并标记好各组样本。
5. 每天观察并记录不同样本的植物生长情况，包括根系生长、茎干伸展和叶片展开等。
6. 在一定时间内结束实验，并对根系、茎干和叶片等部位进行定量分析，测量相应的长度、面积和质量等。
实验结果与讨论：通过对实验结果进行统计和比较，我们可以得出以下几点结论：1. 光照条件对植物的生长和养分吸收具有重要影响。
在充足的光照下，植物的生长速度明显加快，茎干的生长也更加健壮，叶片的展开更加广阔。
这是因为充足的光照能够提供光合作用所需的能量，促进植物的养分合成和转运。
2. 温度对植物的生长和养分吸收也具有一定的影响。
适宜的温度可以促进植物生长，而过高或过低的温度则会抑制植物的正常发育。
这是因为适宜的温度能够维持酶活性和代谢速率在较高水平，从而有利于植物对养分的吸收和利用。
3. 养分的供应对植物的生长和养分吸收至关重要。
例如，含有较高氮、磷和钾等关键养分的培养基可以明显促进植物的根系生长和叶片展开。
这是因为这些养分在植物的生理代谢中扮演着重要角色，是构建细胞和组织的基本元素。
通过对实验结果的分析，我们可以得出以下启示：1. 提供适宜的光照和温度条件对植物的正常生长至关重要。
在种植植物时应尽量确保足够的光照和适宜的温度环境，从而为植物的生长提供有利条件。
2. 合理施用养分对植物的生长和发育至关重要。
培养基促生长试验和适用性检查的区别
培养基促生长试验和适用性检查的区别好吧，死磕这个问题已经好几次了，问题的起源在于之前有朋友在群里提问商业化的接触碟是否需要（每批）进行适用性检查？，之后请教过一位微生物的专业人士，得出的结论写在了Pharmaceutical Microbiology Manual (PMM)这篇文章中，同时也通过这篇文章推荐了一本很不错的FDA发布的微生物方面的手册，有兴趣的朋友可以好好读一读这两篇文章。
今天又得到了一位高手的支招，确切的说是约稿，希望今天的分享能够对大家有所帮助，感谢她热心的分享，基本上拷贝了她的原文，蓝色字体部分是对原稿的补充。
因为看到一位同事提及关于培养基的适用性检查和促生长到底是不是一个意思而写出以下短文供对本问题感兴趣的同行们参考。
培养基的适用性检查是中国药典2015版四部，1105和1106中规定，测试前需进行培养基的适用性检查。
为什么大家会对培养基适用性检查和促生长是不是一个概念感到困惑，很大一部分原因在于此二者非常接近，培养基适用性检查其实是包含了促生长实验但有时又不仅仅是促生长实验。
为了帮助大家更清楚地理解这二者之间的区别和联系，我们需要把培养基分成计数用培养基和控制菌检查用培养基来看。
一. 对于计数用培养基（胰酪大豆胨琼脂培养基和胰酪大豆胨液体）即Ch. P1105中所用的上述两种培养基，其培养基适用性检查就是促生长实验。
但是在1105中，并没有用促生长这个词，而是只用了计数用培养基适用性检查这样的表述，见下图上半部分。
笔者认为此处所谓的适用性检查就是促生长实验的理由有二：首先，实验就是以证明培养基可以促进目标的生长为目的；其次，1105的亲妈USP61，所使用的词就是Growth Promotion，见下图第二部分；顺道吐槽一下药典委，抄USP就全抄好了，干吗还要整出一些不一样的名词，混淆我这样小白的视听。
二. 控制菌检查用培养基此时的培养基适用性检查已经不是简单的促生长测试了。
控制菌检查用培养基的促生长能力
控制菌检查用培养基的促生长能力、抑制能力及指示能力检查记录1、培养基名称、批号及数量：被检培养基批号数量标准对照培养基批号数量被检培养基批号数量标准对照培养基批号数量被检培养基批号数量标准对照培养基批号数量2、设备：电热培养箱型号：HG303-4编号：130501-07-0793、菌液制备：试液批号配制日期；0.9%氯化钠溶液：批号配制日期接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌于营养肉汤培养基中，30~35℃培养18h~24h，用0.9%的无菌氯化钠溶液制成每1ml含菌数为10-100cfu的菌悬液。
4、接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌的培养物于被检营养肉汤培养基中，30~35℃培养18h~24h，同时用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述实验。
两管试验菌生长情况一致，判定营养肉汤培养基适用性。
4.1液体培养基促生长能力检查：分别接种不大于100cfu的大肠埃希菌于被检培养基（胆盐乳糖培养基）和对照标准培养基中培养18h~24h，必要时可延长48h。
比较两瓶培养物浑浊度一致，判定培养基适用性。
4.2再分别取上述培养物0.2ml接种至5ml被检MUG和对照MUG试管中，分别于5h、24h在366nm 紫外光下观察，同时用未接种的MUG培养基作本底对照，两管比较生长状态一致，判定MUG培养基适用性。
4.3若管内培养物呈现荧光，为MUG阳性；不呈现荧光，为MUG阴性。
观察后，沿培养管加入数滴靛基质试液，试液呈玫瑰红色，为靛基质阳性，本底对照应为MUG阴性和靛基质阴性。
被检培养基和对照培养基加入靛基质试剂，被检培养基管和对照培养基管试验菌生长情况，指示剂反应一致，判定培养基指示能力检查。
5、抑制能力检查：接种100cfu金黄色葡萄球菌于被检培养基中，30~35℃培养18h~24h，澄清，无浑浊现象，延时培养至48h，仍澄清，无浑浊现象，无试液菌生长。
判定抑制能力。
检验人：时间：复核人：时间：。