植物组织与细胞培养定义和过程
植物组织培养步骤
生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。
植物组织培养概念〔狭义〕指用植物各局部组织，如形成层.薄壁组织.叶肉组织.胚乳等进展培养获得再分化形成再生植物。
组织培养的步骤一、培养基配制配制培养基有两种方法可以选择，一是购置培养基中所有化学药品，按照需要自己配制；二是购置商品的混合好的培养基根本成分粉剂，如MS、B5等。
自己配制可以节约费用，但浪费时间、人力、且有时由于药品的质量问题，给实验带来麻烦。
就目前国内的情况看，大局部还是自己配制。
为了方便起见，现以MS培养基为例介绍配置培养基的主要过程。
1、配制几种母液〔1〕配制MS大量元素母液一般将大量元素分别配制成100倍的母液，使用时再分别稀释100倍。
分别称取NH4NO3 165g KH2PO4 17gKNO3 190g CaCl2·2H2O 44gMgSO4·7H2O 37g各自配成1L的母液。
倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。
〔2〕配制MS微量元素母液一般将微量元素配制成100倍母液。
依次称取KI 0.083g Na2MoO4·2H2O 0.025gH3BO3 0.62g CuSO4·5H2O 0.0025gMnSO4·H2O 1.69g CoCl2·6H2O 0.0025gZnSO4·7H2O 0.86g配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。
CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O 由于称取量很小，如果天平准确度没有到达万分之一，可先配成调整液。
分别称取CuSO4·5H2O 0.05g CoCl2·6H2O 0.05g各自配成100ml的调整液，然后取5ml就还有0.0025g的量。
〔3〕配制MS有机母液一般配制成100倍MS有机母液。
依次称取肌醇10g 盐酸硫胺素〔VB1〕0.01g烟酸0.05g 甘氨酸0.2g盐酸吡哆醇〔VB6〕0.05g配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。
植物细胞培养的基本概念
植物细胞培养的定义----植物组织和细胞培养 是指在无菌条件、人工控制的营养和培养基、 人工控制的环境条件如光照、温度下，研究植 物的细胞、组织、器官，以及控制其生长发育 的技术。
植物细胞培养概况
1、可供培养的植物种类 （1）到目前为止，有研究显示，近300种植物的
细胞培养物能够产生400多种有效的药用成份。 （2）许多药用植物如人参、长春花、紫草、甘草、
（7）培养过程具有结构、功能上的全能性。
（11）突变体---细胞本身由于变异、或者是通过 应用诱变技术进行处理，所获得的遗传变异性新 细胞，称为突变体。
（12）原代培养和继代培养---由外植体上切下 来的组织细胞的第一代培养称为“原代培养”、 从此以后的多代培养则称为“继代培养”
（13）连续培养---是指在培养罐中不断地加入 新的培养基、并且连续收集培养物，以保持反 应平衡而进行的长期不转移的培养方式。
素细胞壁。 （2）培养过程生长速度缓慢，易受微生物污染、
需要用抗生素。 （3）在细胞生长的中期和对数期，容易凝聚成
直径达350-400um的团块，悬浮培养比较困难。
（4）培养时需要供氧，培养液粘度较大，不能 耐受强力通风搅拌。
（5）细胞具有群体效应、无锚地依赖性和接触 抑制性。
（6）细胞培养产物多数滞留于细胞内，产量较 低。
紫杉、银杏、黄连等，其细胞培养十分成功。 （3）据初步统计，有约30种化合物在培养细胞中
的含量已经超过1%，如紫草素的含量可达12%、 小檗碱的含量可达1%，人参皂苷可达7%。
2、目前现存的问题 （1）技术工艺还不够成熟。 （2）提高单位培养基中有效物质的产量 （3）降低目的产物的生产成本 （4）改进培养条件 （5）筛选高产细胞株 （6）研制适合于植物细胞培养的新型反应器
植物组织培养
1.植物组织培养（离体培养）：是指在无菌条件下，将植物体的任何一部分，培养在人工配制的培养基上，并给予适宜的培养条件，使之发育形成完整植物体的过程。
2、植物组织培养的类型（1）根据培养基的类型分为:固体培养液体培养半液半固体培养（2）根据培养材料（外植体类型）分为：植株培养器官培养组织培养原生质体培养胚胎培养细胞培养（3）按培养过程分：初代培养继代培养生根培养3、植物组织培养的一般工作流程1.准备阶段：（1）查阅资料，制定培养方案；（2）清洗组培用器皿、工具；（3）配制所需试剂和培养基；（4）试剂、培养基与器皿、工具的灭菌。
2.外植体的选择与消毒；3.初代培养；4.继代培养；5.生根培养；6.炼苗移栽4、植物细胞的全能性概念：指植物体的每个活细胞都携带有该物种的全套遗传信息，在适宜条件下，离体细胞都具有发育为一个完整植株的潜在能力。
注意：（1）活细胞（2）离体细胞（3）细胞全能性表达的难易程度取决于细胞的分化程度5、细胞全能性的强弱表现：（1）植物细胞全能性根据细胞的性质不同由强到弱：营养生长中心＞形成层＞薄壁细胞＞厚壁细胞（木质化细胞）＞特化细胞（导管等）（2）植物细胞全能性根据所处的组织不同由强到弱：顶端分生组织＞侧生分生组织＞居间分生组织＞薄壁组织＞厚角组织＞输导组织＞厚壁组织6、植物组织培养中全能性表达的条件：1.无菌条件；2.离体条件；3.一定的营养物质；4.植物生长调节物质；5.适宜的外界条件。
7、胚性细胞的特点：未分化状态；细胞具有旺盛分裂能力；具有两极性8、脱分化：指在一定条件下，已分化成熟的细胞、组织或器官恢复到未分化的分生状态，并进行细胞分裂形成未分化的细胞团，如愈伤组织的形成过程。
9、愈伤组织形成的三个时期：（1）诱导期又称启动期（最难）。
（2）分裂期（3）分化期10、优良愈伤组织的特征：（1）具有旺盛的增殖能力；（2）容易散碎；（3）具有高度的胚性或再分化能力，便于植株再生；（4）经过长期的继代保存而不丧失胚性。
高中生物植物的组织培养技术知识点总结
高中生物植物的组织培养技术知识点总结导读：我根据大家的需要整理了一份关于《高中生物植物的组织培养技术知识点总结》的内容，具体内容：植物组织培养技术是高中生物的一个重要组成部分，学生需要掌握相关知识点，下面是我给大家带来的高中生物植物的组织培养技术知识点，希望对你有帮助。
高中生物植物的组织培养技术基础知识点...植物组织培养技术是高中生物的一个重要组成部分，学生需要掌握相关知识点，下面是我给大家带来的高中生物植物的组织培养技术知识点，希望对你有帮助。
高中生物植物的组织培养技术基础知识点1、植物组织培养过程：(1)原理：植物细胞具有全能性。
(2)过程：2、用途：(1)微型繁殖微型繁殖就是用于快速繁殖优良品神的植物组织培养技术，也叫快速繁殖技术。
繁殖过程中的分裂方式是有丝分裂，亲、子代细胞内DNA不变，所以能够保证亲、子代遗传特性不变。
(2)作物脱毒作物脱毒是利用茎尖、根尖等无毒组织，进行微型繁殖，所获幼苗是无毒的。
(3)人工种子：通过组织培养技术，可把植物组织的细胞培养成在形态及生理上与天然种子胚相似的胚状体，也叫作体细胞胚。
这种体细胞胚有于叶、根、茎分生组织的结构。
科学家把体细胞胚包埋在胶囊内形成球状结构，使其具备种子机能。
所以，人工种子是一种人工制造的代替天然种子的颗粒体，可以直接播种于田间。
①制作方法：人工种子是利用植物组织培养获得胚状体、不定芽、顶芽和腋芽等，然后包上人丁种皮就形成了人工种子，如图：②优点：可使在自然条件下不结实或种子昂贵的植物得以繁殖;保持亲本的优良性状，因该过程为无性繁殖;节约粮食，减少种子的使用;可以控制添加一些物质，如除草剂、农药、促进生长的激素、有益菌等。
周期短，易储存和运输，不受气候和地域的限制。
(4)细胞产物的工厂化生产：从人工培养的愈伤组织细胞中提取某种成分，如紫草素、香料等。
高中生物植物的组织培养技术重要知识点1、植物细胞的全能性(1)概念：具有某种生物全部遗传信息的任何一个细胞，都具有发育成完整生物体的潜能。
植物组织培养的六大步骤
植物组织培养的六大步骤植物组织培养是指通过体外不断培养植物细胞、组织和器官，以研究其发育过程和生物学特性，也包括人工繁殖植物和生产植物次生代谢产物。
在植物组织培养的过程中，需要进行一系列的步骤，下面将详细介绍植物组织培养的六大步骤。
第一步：选择适宜的材料植物组织培养需要选取适宜的材料作为起始材料，这通常是从植物体中选择健康、无病虫害并具有较高再生能力的组织部分，如茎、叶片、种子等。
同时，还应注意选择具有较高再生能力的植物品种或种质资源，以提高培养成功率。
第二步：消毒处理为了减少外界微生物的污染，必须对选取的材料进行消毒处理。
常用的消毒方法有酒精消毒、双氧水消毒、高温高压消毒等。
消毒后的材料在无菌操作下移到无菌培养室，准备进行下一步的操作。
第三步：组织分离和培养经过消毒处理的材料，可以通过组织分离的方法来获得组织的单个细胞或小块组织。
常用的组织分离方法有切割法、振荡法、酶解法等。
分离得到的组织或细胞可以直接进行培养，也可以在培养基中添加适当的生长调节剂，以促进组织的增殖和分化。
第四步：培养基的选择和配置培养基是植物组织培养中重要的因素之一，它为植物细胞提供养分和生长因子，同时调控其生长和分化。
培养基通常由无机盐、有机物质、糖类、维生素、生长调节剂等组成。
根据需要，培养基可以分为基础培养基和不同类型的专用培养基。
基础培养基通常为MS培养基或白培养基，而专用培养基则针对不同的组织和目的进行调配。
第五步：培养条件的调控和优化在植物组织培养的过程中，培养条件的调控和优化对细胞和组织的生长和分化起着至关重要的作用。
光照、温度、湿度、pH值以及培养物的搅拌等因素都需要合理控制和调节。
此外，根据不同类型的组织和目的，还需要添加适量的生长调节剂、抗生素和其他辅助因子。
第六步：再生植株的分离和繁殖最后一步是将培养的组织或细胞分离出来，得到再生植株。
这需要将培养物转移到含有较稀释生长因子的培养基上，以便干扰物的去除和适度延长培养时间。
植物细胞培养的基本过程和方法
植物细胞培养的基本过程和方法植物细胞培养是一种将植物细胞体外培养的技术，其主要目的是为了研究细胞的生理、生化过程以及植物的生长发育等方面的问题，也可以用于植物遗传改良、利用细胞培养生产植物品种等领域。
下面将对植物细胞培养的基本过程和方法进行详细介绍。
1.材料准备：选择合适的植物组织作为培养材料，如茎段、叶片、根尖等。
同时还需要准备一些基本的实验仪器和培养基成分。
2.细胞分离：将选取的植物组织进行表皮剥离、细胞壁酶解等操作，将细胞分离出来。
可以使用显微镜观察细胞的分离程度。
3.培养基配制：根据不同的培养目的和植物类型，调配适合的培养基。
培养基通常包括无机盐、有机物、维生素、激素等成分，用于提供细胞生长所需的养分。
4.细胞培养：将分离得到的细胞悬浮在培养基中，将其培养在恒温恒湿的培养箱中。
培养箱中的温度和光照条件可以根据植物的特性进行调节。
5.观察和保存：定期观察细胞的生长情况，包括细胞的形态、分裂情况等。
同时可以进行细胞生长速率、物质代谢等方面的研究。
对于需要保存的细胞，可以使用液氮冷冻或低温贮藏的方法保存。
1.组织培养：将植物组织培养在含有适当激素的培养基上，促使其分化和增殖。
常用的组织培养方法包括愈伤组织培养、种子发芽培养、胚培养等。
2.悬浮细胞培养：将植物细胞分散在培养基中形成悬浮细胞。
可以利用悬浮细胞进行物质代谢、遗传变异等研究。
3.离体培养：将完整的植物器官（如茎尖、叶片等）切分成适当大小的组织块，培养在含有激素的培养基上，使其分化为根、茎、叶等组织。
4.离体器官培养：将完整的植物器官（如拟南芥的花蕾、水稻的胚等）取出，培养在含有细胞分裂素和植物生长素的培养基中，经过适当的处理后，可以使其分化为新的植株。
5.基因转化：将外源基因导入植物细胞中，使其产生新的表型特征。
常用的基因转化方法包括农杆菌介导的转化、基因枪轰击法等。
总之，植物细胞培养是一种重要的实验手段和研究方法，通过培养和处理植物细胞，可以为植物生物学和生物技术研究提供重要的理论基础和实验依据。
植物组织培养与细胞培养知识重点
第一个发明的培养基为White 培养基培养基中的铁盐采用Fe-EDTA 形态IAA/CTK比例高时，促进生根培养，比例低时，促进芽的分化植物组织培养：（广义）人工控制条件下培养形成再生植株（狭义）对植物组织器官产生愈伤组织进行培养直至生成完整植株。
外植体：从植物体上分离下来的用于离体培养的材料愈伤组织：在离体培养的条件下切口处形成的一团具有分生能力的不规则的细胞团分化：细胞在分裂过程中发生结构和功能上的改变形成各类组织和器官的过程脱分化：已分化好的细胞在人工诱导条件下恢复分生能力恢复到分生组织状态的过程再分化：由脱分化的细胞重新形成各类组织和器官的过程初代培养：诱导愈伤组织、侧芽或不定芽、胚状体（形似胚，具有配的功能）过程继代培养：更换新鲜培养基繁殖同一类型材料生根培养：将芽苗转移到生根培养基上培养形成完整植株驯化培养：将组培苗经人工炼苗驯化使其能够在苗床上生长器官培养：是指对植物体各种器官的离体培养离体胚培养：指从植物种子中分离出胚组织进行离体培养的技术细胞悬浮培养：将植物的细胞或细胞小聚体悬浮在液体培养基上进行培养，使之在体外繁殖、生长、发育，并在培养过程中能保持很好的分散性的技术原生质体培养：指从细胞中分离出来的原生质体经过离体培养使其分裂、增殖进而分化成完整植株的技术。
器官发生：又名器官形成，是指植物根茎叶花果实等器官的分化与形成灭菌：用物理或化学方法，杀死物体表面或空隙间的微生物消毒：杀死，消除或抑制部分微生物，使之不发生作用褐化：接种后外植体表面产生酚、醌类棕褐色物质，细胞停止代谢生长玻璃化：离体植物嫩茎或叶呈半透明水状，生理失调不能进行光合作用指示植物：能够对病毒汁液产生迅速和特有的反应的某类转株寄主植物细胞的全能性：每个植物细胞都具有母体的全部遗传特性；每一个细胞都可以在特定条件下发育成与母体一样的植株灭菌方法：物理法：灼烧、常压蒸煮，紫外线，超声波，微波，过滤清洗。
化学法：升汞，过氧化氢，甲醛，酒精，高锰酸钾，漂白粉，次氯酸钠，抗菌素四大母液：大量元素母液，微量元素母液、铁盐母液、有机物质母液、激素母液实验室安排：贮藏室、药品室、洗涤间、消毒室、接种室，准备室、暗室、分析室、培养室离体培养基本设备：天平、酸度计、移液管、容量瓶、三角瓶添加活性炭的目的：活性炭具有吸附作用，可吸附非极性物质和色素大分子物质，茎尖初代培养使可防止褐化，促进生根，防止玻璃化苗几种维生素：VB1：有利于植株生根，促进愈伤组织产生VB6：促进根的生长VC：防止褐化VB5：影响植物代谢和胚的发育VE、VB12各培养基的特点：White：无机盐浓度低，适宜于生根培养；MS：无机盐浓度高，为比较稳定的离子平衡溶液，其养分的数量和比例比较合适，可满足植物的营养和生理需要，硝酸盐含量相对较高，广泛应用于植物器官，花药，细胞和原生质体培养，效果良好；B5：含较低的铵对不少培养物的生长有抑制作用。
3.植物细胞培养（植物组织培养）
3.植物细胞培养（植物组织培养）第三章植物细胞培养植物细胞培养：指对从植物器官或由愈伤组织上分离的单细胞（或⼩细胞团）进⾏培养，形成单细胞⽆性系或再⽣植株的技术。
Haberlandt（1902）⾸次尝试分离和培养植物叶⽚单细胞。
细胞培养的意义有利于进⾏细胞⽣理代谢以及各种不同物质对细胞代谢影响的研究。
进⾏细胞培养，通过单细胞的克隆化，即称为“细胞株”（cell line），可以把微⽣物遗传技术⽤于⾼等植物以进⾏农作物的改良。
细胞培养的增殖速度快，适合⼤规模悬浮培养，⽣产⼀些特有的产物，如许多种植物的次⽣代谢产物，包括各种药材的有效成分等，⽤于医药业、酶⼯业及天然⾊素⼯业，这是植物产品⼯业化⽣产的新途径。
由于植物组织培养中细胞之间在遗传和⽣理⽣化上会出现种种变异，这些细胞形成的植株也都表现出⼀定的差异。
这种差异反映在它们的植株的形态、产量、品质、抗病⾍和抗逆性等⽅⾯。
所以由单细胞培养获得的单细胞⽆性繁殖系，并对不同的细胞进⾏研究，在理论上和实践上都有很重要的意义。
细胞培养就是从⾼等植物的某个特定的器官或组织中取得单个细胞进⾏培养，并诱导其分裂增殖，由细胞分裂形成细胞团，再通过细胞分化形成芽根等器官或胚状体，长成完整植株。
第⼀节植物细胞培养⼀. 单细胞培养(⼀)单细胞分离1.机械法2.酶解法3.从愈伤组织中分离(⼆)单细胞的培养⽅法1、平板培养（细胞的⽣长周期）2、看护培养3、微室培养 4. 条件化培养⼆. 细胞悬浮培养（⼀）悬浮培养的⽅法1、分批培养（细胞的⽣长周期）2、半连续培养3、连续培养——封闭型、开放型（化学、浊度恒定式）4、固定化培养（⼆）培养细胞的同步化1. 化学⽅法(饥饿法、抑制法、有丝分裂抑制法）2. 物理⽅法（分选、低温）（三）培养基振荡⼀、单细胞培养（⼀）单细胞的分离1.机械法: Ball(1965)⾸次由花⽣成熟叶⽚利⽤机械的⽅法使叶⾁细胞得到分离的技术。
⑴⼑⽚刮: 取下叶⽚→叶⽚消毒(75%酒精或7%次氯酸钠)→撕去下表⽪(露出叶⾁细胞) →⽤解剖⼑刮下细胞→单细胞悬浮培养⑵研磨离⼼法: 取下叶⽚→叶⽚消毒(75%酒精或7%次氯酸钠) →研磨匀浆(10g叶⽚+40ml研磨介质)→匀浆过滤(细纱布) →离⼼(先低速去碎屑) →游离细胞沉降到底部(净化细胞) →植株培养或悬浮培养研磨介质: 20µmol蔗糖+ 10µmol MgCl2 + 20µmol Tris-HCl (pH7.8)机械法的特点：⑴细胞不受酶的伤害；⑵不发⽣质壁分离。
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一、 植物组织培养定义
❖ 是指在无菌的条件下，将离体的植物器官、组织、 细胞、胚胎、原生质体等培养在人工配制的培养 基上，给予适当的培养条件，诱发产生愈伤，长 成新的完整植株的一种实验术。
二 、发展历史
❖ 1、探索阶段（20世纪初至20世纪30年代）
❖ 1902年，德国植物学家哈伯兰德（Haberlanclt）就预言，植物细胞具有 全能性，即高等植物的器官和组织可以不断分割，直至分到单个细胞的 观点，并设想离体植物活细胞具有能够发育成为完整植株的潜在能力。
20世纪80年代初，随着土壤农杆菌成功的用于植物遗传转化，植物基因工程开始成为 研究的热点。1983年Zambryski首次用农杆菌转化烟草，获得首例转基因植物。
三、特点
❖ 1.培养条件可人为控制 ❖ 2.生长周期短繁殖率高 ❖ 3.管理方便，利于自动化 ❖ 4.遗传品质一致 ❖ 5.培养材料经济 ❖ 6.误差小、重复性强
❖ 1943年,white 正式提出了植物细胞具有全能性的学说. ❖ 1948年，Skoog和催澄在烟草茎段和髓培养以及器官形成
的研究中发现，腺嘌呤或腺苷可以解除生长素（IAA）对芽 形成的抑制作用，而诱导形成芽，从而确定了腺嘌呤/生长 素的比例是控制芽和根形成的主要条件之一。
❖ 1956年，Miller发现了激动素后，用它代腺嘌呤的效果更好。 ❖ 1958年，在美国工作的英国人Stewward，从胡萝卜愈伤组
而且进行了相关实验：培养植物叶片细胞。 ❖ 因此，被称为——
植物组织培养的father
❖2、奠基阶段（20世纪30年代中至50年代未）
两个重要发现：1、认识了B族维生素对植物生长的重要意义； 2、发现了生长素是一种天然的生长调节物质。
1933年我国的李继侗和沈同研究银杏的胚培养，将银杏胚乳提取物加入培养基， 获得成功。 1934年Went 发现了生长素。随后相继发现了吲哚丁酸、萘乙酸和2，4-D等。 B簇维生素。 1934年，美国的White由番茄根建立了第一个活跃生长的无性系，使根的培养首 次获得了真正的成功。（培养基：无机盐、酵母提取物和蔗糖，后来用3种B族 维生素：吡哆醇、硫胺素和烟酸取代酵母浸提物获得成功） 1934年Gautheret在山毛柳和黑杨等形成层组织的培养中发现培养基中加了B族 维生素和IAA后，形成层的生长明显增加，揭示了B族维生素和IAA在植物组织 培养中的作用，直接导致了1939连续培养胡萝卜根形成层获得首次成功。 1939年Nobecourt的胡萝卜也建立了连续生长的培养物。 故三人被誉为植物组 织培养的奠基人。
1970年Power首次成功实现原生质体融合。1971年Takebe等首次由烟草原生质体获得 再生植株，这一成功促进了体细胞杂交技术发展，同时也为外源基因导入提供了理想 的受体材料。1972年，Carlson等通过原生质体事例首次获得了两个烟草物种的体细胞 杂交种。
1978年Murashige提出了人工种子的概念。
❖ （3）称量室（天平室）
❖ 要求干燥、密闭，无直射光照，避免腐蚀性药品和 水气直接接触。有固定的水磨石平台，安放普通天 平和万分之一分析天平（电子天平），要有电源插 座，最好设计在阴面的房间，这样对怕光药品的保 存和称量有利，称量室紧邻培养基配制室较好，以 方便配制母液和培养基。如房间较少时，可以与药 品储藏室合二为一。
四、意义和应用
（1）能够有效保持优良品种特性 （2）获得无病毒植株 （3）快速繁殖新品种，加速优良品种推广 （4）节约耕地，提高农民产品产出率 （5）在遗传、生理生化和病理等研究上的应用 （6）便于运输与种质资源保存
五 、 实验室、设备要求和实验室设计
பைடு நூலகம்
植物组织培养是在无菌的条件下进行离体植物材料 培养的技术。要达到无菌操作和无菌培养，
实验室：植物组织培养工作的开展除需要培养室 外，还应该有与之配套的洗涤室、药品室、称量室、 培养基配制室、灭菌室、接种室、培养室、细胞学实 验室、暗室和物品存放室等。
❖ （1）洗涤室
❖ 洗涤培养容器、小用具等，要求有工作台面、 上水和下水，水池、培养容器摆放支架、电源、 电热干燥箱等。洗涤室墙壁要有耐湿、防潮功 能。
首先是要有一定的无菌环境，使用无菌的容器和用
具（经过灭菌处理的）进行无菌操作，将无菌的植 物材料接种在无菌的培养基上，
然后把要培养的植物材料放在一定的温度、湿度、
光照、营养条件下，使其生长、发育和繁殖，这就 必须要有一定的设备和条件。
5．1 植物组织培养室的基本结构
选址： 在建造植物组织培养室时，应选择采光好、 通风好、环境干净的地点，以利于组织培养的顺利进 行和降低培养过程的污染率。
织和细胞培养中，诱导分化产生了个体植株，给“全能性” 理论以科学论证。
3、迅速发展阶段（20世纪60年代至现在）
1960年，Cocking用真菌纤维素酶在番茄幼根分离得到大量活性原生质体，开创了植 物原生质体和体细胞杂交研究工作。Kanta在植物试管受精研究中首次获得成功。 1960年，Morel用兰花茎尖培养实现了脱去病毒和快速繁殖方面已获成功，导致欧洲、 美洲和东南亚等许多国家兰花工业的兴起。（茎尖-原球茎-小植株） 1962年Murashige和Skoog发表了促进烟草组织快速生长的培养基组成，这就是目前我 们常用的MS培养基。 1964--1966年，印度的Guha和Maheshwari成功地在毛叶曼佗罗花药培养中由花粉诱 导得到了单倍体植株。
❖ 新购进的玻璃器皿首先要用1%左右浓度的稀盐 酸将可溶性无机物除去，再用中性洗涤剂洗涤， 一般器皿的洗涤可用洗衣粉洗涤，或用洗衣粉 加热洗涤，用自来水冲洗干净。
❖对较难洗涤的培养容器，如吸管
等可在重铬酸钾洗液中浸泡后再洗，
洗到玻璃表面上不沾水滴才算合乎
要求。
❖ （2）药品贮藏室
❖ 要求干燥、通风，避免光照，有存放各种药品试剂 的药品柜、冰箱等设备，化学试剂、玻璃器皿等物 品分类存放于柜中，有毒物品（HgCl2）需要专人密 封保存，需低温保存的药品和药液放置于冰箱中贮 藏，药品贮藏室紧邻化学称量室较好，便于工作。