植物体内可溶性糖与可溶性蛋白含量的测定

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苹果、梨以及香蕉中所含可溶性糖和蛋白质的比较测定和探讨

苹果、梨以及香蕉中所含可溶性糖和蛋白质的比较测定和探讨

苹果、梨以及香蕉中所含可溶性糖和蛋白质的比较测定和探讨姓名:赵云霞同组者:辛芝红指导教师:郝雪峰(太原师范学院生物系112班学号2011131229)摘要本文用考马斯亮蓝法、蒽酮法分别对苹果、梨和香蕉提取液中蛋白质含量、可溶性糖含量进了测定。

结果表明:等质量的香蕉、苹果、梨中,香蕉含糖量最高,苹果次之、梨最低;香蕉含蛋白质量最高、其次为梨、苹果最少。

Abstract this paper by Coomassie brilliant blue,anthrone colorimetry respectively on apple, pear and bananaextracts.Protein content, soluble sugar content in the determination of. The results show that: the quality of banana,apple, pear, banana and sugar content of apples, pears was the second highest, lowest; Banana containing proteinIs the highest, followed by the least, apple pear 关键词苹果、梨、香蕉、可溶性蛋白质、可溶性糖Key words apple, pear, banana, soluble protein, soluble sugar 引言苹果和梨、香蕉是我们生活中最常见也是最多糖是单糖缩合的多聚物。

水果多糖作为天然植物多糖中的一类,虽然早就引起了人们的注意,但早期的研究主要是为了搞清其作为结构物质在水果质构方面的作用及在水果贮藏与加工过程中的变化与控制,以改善和保持水果及其加工制品的感官品质。

近年来随着天然活性多糖研究的深入,对水果多糖的研究重点也逐步转向了以开发利用为目的的水果多糖的提取分离、结构、化学和生物活性及应用研究,已有人对苹果果肉中多糖蛋白质进行过测定(刘杰超,焦中高2009),但还没有人对三叶草体内多糖做过相关的研究,也未对其叶和茎中所含多糖进行过对比。

苹果、橘子、香蕉中可溶性糖和蛋白质的提取及含量测定

苹果、橘子、香蕉中可溶性糖和蛋白质的提取及含量测定

ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ

再 缓慢加入 5 浓硫 酸 , 盖上试 管塞 后 , 轻轻摇 匀 , 再置沸 水浴 中I ( Y A-  ̄( 比色空 白 用2 蒸馏 水和0 . 5 蒽酮试 剂混 合 , 并一 同置 于 沸水浴 中保温 l O A Z -  ̄) 。 冷却 至室 温 后, 在6 2 1  ̄r n 波长下 比色 , 记 录光 吸收值 。 查 标准 曲线上得 知对应 的葡 萄糖含 量 ( g ) ( 4 ) 、 实 验结 果 多糖 标 准 曲线 的绘制 : 测得 标 准 曲线 的 方程 为 : y =0 . 0 0 1 2 x + 0 . 0 0 0 8 样品糖含量= 样品含量( u g ) + 稀释倍数* 1 0 0 /{ 样品重( g ) * } g /l O O g 鲜重 2 、 植 物 组 织 中可 溶性 蛋 白质 含 量 的测 定 ( 1 ) 蛋 白质 标准 曲线的 绘制 取6 支试管 , 按 下表 加入 试剂 , 摇匀, 向各 试管 中加人 5 考 马斯 亮蓝试 剂 , 摇
实 验 原理 考 马斯 亮蓝 G 一 2 5 0 法 是利 用蛋 白质— 染 料 结合 的原理 , 定量地 测 定微量 蛋 白质浓 度 的快 速 、 灵敏 的方法 。 考 马斯亮蓝 _ 2 5 薛在 着两种 不同 的颜 色形 式 , 红色和 蓝色 。 它和蛋 白质通 过范德瓦尔 键结合 , 在一 定蛋 白质浓 度范围 内, 蛋 白质 和染料结合符 合 比尔定律 。 此染 料与蛋 白质结合后 颜色 由红 色形式转变成 蓝色形 式, 最大光 吸收 由4 6 5 m1 变 成5 9 5 n m, 通 过测 定5 9 5 r 】 I I 1 处光 吸收的增 加量可 知与其 结合蛋 白质 的量 。 蛋白质和染料结合是一个很快的过程, 约2 mi n  ̄ 1 ] 可反应完全, 呈现最大光 吸收 , 并可 稳 定 l h, 之后, 蛋 白羼 染料 复合 物发 生聚 合并沉 淀 出来 。 此法 灵敏 度高 , 易 于操 作 , 干扰 物质 少 , 是一 种 比较好 的定 量法 其 缺点 是在 蛋 白质 含 量 很高时线性偏低 , 且不同来源蛋白质与色素结合状况有一定差异 。 糠 醛或羟 甲基糠醛 进一 步与蒽 酮试剂 缩合产 生蓝绿 色物质 , 其在可 见光 区 6 2 0 n m波长处有 最大 吸收 , 且 其光 吸收值在 一定范 围 内与 糖的含量 成正 比关系 。 此法 可用 于 单糖 、 二糖 和 多糖 的含量 测定 , 并具有 灵敏度 高 , 简便 快 捷 , 适 用于微 量 样 品的 测定 等优 点 。 二. 实 验 材料 . 试 剂 与器 材

植物生理学实验课件9植物组织中可溶性蛋白的测定

植物生理学实验课件9植物组织中可溶性蛋白的测定
取0.1 ml 加入5ml考马斯亮蓝,595nm比色;
可溶性蛋白质含量的计算
可溶性蛋白含量 (μg/g.FW)=标准曲线上查得的 蛋白质量( μg ) × 提取液体积5/0.1
示意如下:
0.35
Y=-0.00381+0.032029*X 0.30 r=0.9992
0.25
Absorbance
0.20
植物组织中可溶性蛋白的测定
植物叶片衰老过程中,叶绿素含量下降,叶 色变黄,蛋白质含量减少(可溶性蛋白)
课上笔记
三个指标
– 蛋白质含量
考马斯亮蓝
– 新叶2份 – 老叶2份,一次次加 – 转移到1.5毫升 – 显色反应做2次,合计4次(调零磷酸+考马斯亮蓝
– MDA含量
沉重,磨好, 反求诸己
实验原理
in darkness at 30
No 3: 10ppm ABA 20 ml 提取
称叶龄差异明显的叶片各1.00g ,加入5ml 磷酸缓冲液(50mmol, pH值为7.8)及少量石英砂,于冰浴中研磨提取,匀浆液以10 000g 离心力作用下(4度)离心10min,其上清液即为蛋白提取液。
显色反应
可溶性蛋白测定:缓冲液提取后可溶性蛋白溶于 上清液中,蛋白质提取液与考马斯亮蓝G-250反 应呈蓝色。在595nm处有最大吸收峰。
实验步骤
制备匀浆
48小时前预处理:称取叶片三份,每份1g(最好打圆孔),30度恒 温箱放置。
No 1: water 20ml (control);
No 2: 10ppm BA 20 ml; ℃ 2d.
0.15
0.10
0.05
0.00 0
2 4 6 8 10

植物生理学中各项生理指标的测定方法

植物生理学中各项生理指标的测定方法

植物生理学中各项生理指标的测定方法一.实验内容实验1MDA(丙二醛)含量测定所需试剂:10%三氯乙酸(TCA)(纯)0.25%硫代巴妥酸(纯)实验2:可溶性蛋白含量测定所需试剂:考马斯亮蓝G-25095%乙醇85%磷酸实验3:SOD(超氧化物歧化酶)酶活性测定所需试剂:dl-甲硫氨酸(Met)NBTEDTA-Na2核黄素实验4:CAT(过氧化氢酶)活性(过氧化氢酶)测定所需试剂:PBS(PH=7.0)30%H2O2实验五:Ap某(抗坏血酸过氧化物酶)活性(即ASA—POD活性)测定所需试剂:ASA(分子量167.12)(乙=胺四乙酸=钠)EDTA—Na2PBS(pH7.0)30%H2O实验6:ASA(维生素C)含量测定偏磷酸95%乙醇磷酸4%2,2-二联吡啶FeCl3(或FeCl3·6H2O)实验7:GSH(谷胱甘肽,媚力肽GSHGSH是由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸结合而成的三肽化合物)含量测定所需试剂:NaH2PO4·2H2ODTNB(二硫代硝基苯甲酸)PBS(PH6.8)实验8:脯氨酸测定所需试剂:磺基水杨酸甲苯茚三酮冰乙酸85%磷酸试验9:叶绿素含量测定。

80%丙酮试验9:GR活性测定试验10:过氧化氢含量测定。

三氯乙酸试验11:超氧阴离子含量测定二.酶液和母液提取1.酶液提取所需试剂:50mmol/L磷酸缓冲液(PH=7.8)(内含1%(m/v)聚乙烯吡哆烷酮PVP),0.1mmol/LEDTANa2或EDTA),也可为(内含2%(m/v)PVP),0.2mmol/LEDTANa2或EDTA)(先配制后用缓冲液定容)2.ASA.GSH母液提取所需试剂:5%偏磷酸1.抗氧化酶酶液提取(SOD.POD.CAT):1g(根据样品的量,少的可以适当减少)叶片加入预冷5ml.50mmol/L 磷酸缓冲液(PH=7.8)↓4℃冷冻15000g离心20分钟↓上清液即为酶液(5℃下保存一两天内备用,中短期用-20℃保存)2.ASA.GSH母液提取:0.1g叶片加入3ml预冷5%偏磷酸溶液↓4℃冷冻14000g离心10分钟↓上清液即为母液(5℃下保存备用)(偏磷酸可显著沉淀蛋白质和保护ASA)酶液提取所需试剂:PVP(聚乙烯吡哆烷酮):1%(1g溶于100ml水),1000ml需称取10g,此处用PBSEDTA-Na2:0.1mmol/L(37.2mgEDTA-Na2溶于1000ml蒸馏水),此处用PBSPBS(缓冲液)配制方法:①Na2HPO4·12H2O②NaH2PO4·2H2O取①71.64g,蒸馏水定容至1L,取②31.21g定容至1L,放置4℃冰箱备用PH=7.8取①91.5ml+②8.5ml=100ml(浓度0.2mol/L)需要0.05mol/L→将上述溶液烯释至400ml(0.2mol/L某0.1=0.05mol/L某V)母液提取所需试剂:5%偏磷酸:称5g纯偏磷酸,定容至100ml蒸馏水(需加热溶解,温度在50-60℃)偏磷酸有剧毒(偏磷酸难溶解,先得用研钵提前研碎,后用磁力搅拌器溶解一到两天后再定容)(现所用为38%HPO3,所以需称65.7895g,定容至500ml)三.实验步骤实验1:MDA含量测定1.1所需试剂:10%三氯乙酸(TCA)(纯)称10g定容至100ml0.25%硫代巴妥酸(纯)称0.25g用10%TCA定容至100ml(配制时,可一次完成,先配TCA,不要定容,再加入硫代巴比妥酸,然后定容,若难溶解,可以在磁力搅拌器上微热)1.2步骤:取0.3g叶片,加4ml磷酸缓冲液研磨,加入4ml0.25%的硫代巴比妥酸(溶于10%的三氯乙酸)溶液↓摇匀95℃加热15分钟↓快速冷却3000g离心15分钟↓取上清测定OD532,OD600,OD450值↓按公式求MDA浓度=6.45某(OD532-OD600)-0.56OD450(μmol/L)可溶性糖浓度=11.71某OD450(mmol/L)-3最后计算MDA含量(μmol/gFW)=[4某(MDA浓度某)某10/0.1]-3同时,可测得可溶性糖含量(mmol/gFW)=4某(可溶性糖浓度χ)某10/0.1(用多波长测定,在测定之前一定要矫正基线,公式中的参数可以直接在分光光度计上输入)注意:以0.25%的硫代巴妥酸溶液作空白调零MDA含量测定的改进1.可以用做酶活性时提取的酶液来直接测定MDA含量,用量可以定为1.0、1.5或2.0(较好)ml。

设计性实验报告植物可溶性蛋白质和糖含量的测定

设计性实验报告植物可溶性蛋白质和糖含量的测定

设计性实验报告题目植物可溶性蛋白质和糖含量的测定课程名称:基础生物化学实验实验学期:2011至2012学年第一学期植物组织中可溶性蛋白质和糖含量的测定摘要本文以生菜、苹果为材料,采用考马斯亮蓝法(蛋白质)、蒽酮法(糖)、分光光度计法进行了可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定。

结果表明:生菜的蛋白质含量为5.88(mg/g),糖含量为0.0739g/100g;苹果中蛋白质含量为0.2926(mg/g),糖含量为0.2126g/100g。

即说明:生菜中蛋白质含量高于苹果,但苹果中的糖含量更高。

关键词可溶性蛋白、可溶性糖,考马斯亮蓝G-250染色法,蒽酮法,含量测定1、材料与方法1.1 蛋白质含量测定标准蛋白质溶液、考马斯亮蓝试剂、生菜、苹果分光光度计、离心机、研钵、烧杯、电子秤、移液管、试管等1.2 糖含量测定200ug/ml标准葡萄糖、蒽酮试剂、浓硫酸、生菜、苹果试管、水浴锅、分光光度计、研钵、电子秤、移液管、量筒、试管架2、实验步骤蛋白质含量的测定(考马斯亮蓝G-250染色法)2.1标准曲线的绘制取六只试管,按下表加入试剂,摇匀,向个管加入5ml考马斯亮蓝试剂,摇匀,并放置5min左右,以0号试管为空白对照,在595nm下比色测定吸光度。

以蛋白质含量为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。

2.2样品测定2.2.1样品提取分别秤取生菜、苹果鲜样 0.25~0.5g,用5ml蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后,3000r/min离心10min,上清液备用。

2.2.2 吸取样品提取液1.0ml(蛋白质含量适当稀释),放入试管中,加入5ml考马斯亮蓝试剂,摇匀,放置2min后在595nm下比色,测定吸光度,并通过标准曲线查得蛋白质含量。

糖含量测定2.3.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管,编号,按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。

在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢地加入5ml浓H2SO4,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值(OD),以标准葡萄糖含量为横坐标,光密度值为纵坐标,作出标准曲线。

各生理指标的测定方法

各生理指标的测定方法

各生理指标的测定方法一、脯氨酸含量的测定1.茚三酮法1.1原理在正常环境条件下,植物体内游离脯氨酸含量较低,但在逆境(干旱、低温、高温、盐渍等)及植物衰老时,植物体内游离脯氨酸含量可增加10-100倍,并且游离脯氨酸积累量与逆境程度、植物的抗逆性有关。

用磺基水杨酸提取植物样品时,脯氨酸游离于磺基水杨酸的溶液中,然后用酸性茚三酮加热处理后,溶液即成红色,再用甲苯处理,则色素全部转移至甲苯中,色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。

在520nm波长下比色,从标准曲线上查出(或用回归方程计算)脯氨酸的含量。

1.2步骤试剂:(1)25%茚三酮:茚三酮------------0.625g冰乙酸------------15ml6mol/L磷酸--------10ml70°C水浴助溶;(2)6mol/L磷酸:85%磷酸稀释至原体积的2.3倍;(3)3%磺基水杨酸:磺基水杨酸------3g加蒸馏水至------100ml实验步骤:(1)称取0.1g样品放入研钵,加5ml 3%磺基水杨酸研磨成匀浆,100°C沸水浴15min;(2)冰上冷却,4000rpm离心10min;(3)提取液2ml+冰醋酸2ml+25%茚三酮2ml混合均匀,100°C沸水浴30min,冰上冷却;(4)加4ml甲苯混合均匀,震荡30s,静置30min;(5)以甲苯为空白对照,再520nm下测定吸光值。

1.3计算方法脯氨酸含量(μg/gFW)= X * 提取液总量(ml)/样品鲜重(g)*测定时提取液用量(ml)*10^6公式中:X-----从标准曲线中查得的脯氨酸含量(μg)提取液总量---------------------------5ml测定时提取液用量---------------------2ml问题及质疑:1.酸性体系下,脯氨酸与茚三酮加热反应后的最终产物为红色,再实验过程中,仅有少数时候能发现红色产物。

设计性实验报告植物可溶性蛋白质和糖含量的测定

设计性实验报告植物可溶性蛋白质和糖含量的测定

设计性实验报告题目植物可溶性蛋白质和糖含量的测定课程名称:基础生物化学实验实验学期:2011至2012学年第一学期植物组织中可溶性蛋白质和糖含量的测定摘要本文以生菜、苹果为材料,采用考马斯亮蓝法(蛋白质)、蒽酮法(糖)、分光光度计法进行了可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定。

结果表明:生菜的蛋白质含量为5.88(mg/g),糖含量为0.0739g/100g;苹果中蛋白质含量为0.2926(mg/g),糖含量为0.2126g/100g。

即说明:生菜中蛋白质含量高于苹果,但苹果中的糖含量更高。

关键词可溶性蛋白、可溶性糖,考马斯亮蓝G-250染色法,蒽酮法,含量测定1、材料与方法1.1 蛋白质含量测定标准蛋白质溶液、考马斯亮蓝试剂、生菜、苹果分光光度计、离心机、研钵、烧杯、电子秤、移液管、试管等1.2 糖含量测定200ug/ml标准葡萄糖、蒽酮试剂、浓硫酸、生菜、苹果试管、水浴锅、分光光度计、研钵、电子秤、移液管、量筒、试管架2、实验步骤蛋白质含量的测定(考马斯亮蓝G-250染色法)2.1标准曲线的绘制取六只试管,按下表加入试剂,摇匀,向个管加入5ml考马斯亮蓝试剂,摇匀,并放置5min左右,以0号试管为空白对照,在595nm下比色测定吸光度。

以蛋白质含量为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。

蛋白质含0 20 40 60 80 100量(ug)2.2样品测定2.2.1样品提取分别秤取生菜、苹果鲜样 0.25~0.5g,用5ml蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后,3000r/min离心10min,上清液备用。

2.2.2 吸取样品提取液1.0ml(蛋白质含量适当稀释),放入试管中,加入5ml考马斯亮蓝试剂,摇匀,放置2min后在595nm下比色,测定吸光度,并通过标准曲线查得蛋白质含量。

糖含量测定2.3.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管,编号,按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。

在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢地加入5ml浓H2SO4,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值(OD),以标准葡萄糖含量为横坐标,光密度值为纵坐标,作出标准曲线。

实验植物组织中可溶性糖含量的测定

实验植物组织中可溶性糖含量的测定

实验方案一、实验目的通过实验,掌握测定萝卜品质的方法(一)萝卜外部形态的测定1、实验材料取鲜样3个∕小区直尺、蒸馏水、笔、记录本、吸水纸2、实验方法.用自来水将各组萝卜洗净后,再用蒸馏水洗涤,擦干表面水分.每个小区取3个重复,用电子天平称量每株的鲜重,用直尺测量植株的茎长、茎粗、叶长,取平均值作为指标值实验(二) 植物体内可溶性糖含量的测定(蒽酮法)一、实验目的了解蒽酮法测定可溶性糖含量的原理;掌握分光光度计的使用二、实验原理糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一,也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。

不同载培条件,不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。

因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定,可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。

蒽酮比色定糖法是一个快速而方便的定糖方法,在强酸性条件下,蒽酮可以与游离的或多糖中存在的己糖、戊糖及己糖醛酸(还原性和非还原性)作用生成蓝绿色的糖醛衍生物,其颜色的深浅与糖的含量在一定范围内成正比。

蒽酮也可以和其他一些糖类发生反应,但显现的颜色不同。

当存在含有较多色氨酸的蛋白质时,反应不稳定,呈现红色。

上述特定的糖类物质,反应较稳定。

该法特点:灵敏度高,测定量少,快速方便。

三、材料、仪器及试剂1.材料:植物种子、白菜叶、柑桔2.仪器:分光光度计;恒温水箱; 20ml具塞刻度试管(3支)漏斗;100ml容量瓶;刻度试管;试管架;剪刀;研钵3.试剂(1)200μg/ml标准葡萄糖:AR级葡萄糖100mg,蒸馏水溶解,定容至500ml。

(2)蒽酮试剂:1g蒽酮,用乙酸乙酯溶解,定容至50ml,棕色瓶避光处贮藏;(3)浓硫酸四、实验方法1.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管,编号,按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。

在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢地加入5ml浓H2SO4,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值(OD),以标准葡2.称取1克白菜叶,剪碎,置于研钵中,加入少量蒸馏水,研磨成匀浆,然后转入20ml刻度试管中,用10ml蒸馏水分次洗涤研钵,洗液一并转入刻度试管中。

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植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定
摘要:目的通过标准曲线的绘制,测定白菜、芹菜、菠菜中可溶性蛋白和可溶性糖的含量,了解可溶性糖和可溶性蛋白的测定方法。

方法分别用蒽酮法和考马斯亮蓝染色法来测定植物体内可溶性糖和可溶性蛋白的含量。

结论
关键词:白菜;芹菜;菠菜;可溶性蛋白含量;可溶性糖含量;蒽酮法;考马斯亮蓝染色法
1 引言
植物体内的可溶性糖和可溶性蛋白含量是重要的生理生化指标。

在作物的碳素营养中,作为营养物质主要是指可溶性糖和淀粉。

它们在营养中的作用主要有:合成纤维素组成细胞壁;转化并组成其他有机物如核苷酸、核酸等;分解产物是其他许多有机物合成的原料,如糖在呼吸过程中形成的有机酸,可作为NH 3 的受体而转化为氨基酸;糖类作为呼吸基质,为作物的各种合成过程和各种生命活动提供了所需的能量。

由于碳水化合物具有这些重要的作用,所以是营养中最基本的物质,也是需要量最多的一类。

可溶性蛋白是植物体内氮素存在的主要形式,其含量的多少与植物的代谢和衰老有密切的关系,同时它与植物体维持渗透压抗脱水也有很大关系。

白菜是十字花科芸薹属叶用蔬菜,味道鲜美可口,营养丰富,素有“菜中之王”的美称,为广大群众所喜爱。

芹菜属伞形科植物,富含蛋白质、碳水化合物、胡萝卜素、B族维生素、钙、磷、铁、钠等,同时,具有有平肝清热,祛风利湿,清肠利便、润肺止咳、降低血压、健脑镇静的功效。

菠菜藜科一年生草本植物,菠菜含有丰富的维他命A、维他命C及矿物质,它对各种贫血症和糖尿病、肺结核、高血压、风火赤眼等诸多疾病可起辅助治疗作用。

2 材料与方法
2.1 植物体内可溶性糖含量的测定
2.1.1材料
新鲜的白菜、芹菜、菠菜叶片(剪碎后各取0.5—1.0g)
2.1.2试剂
葡萄糖标准溶液(200ug/ml)、蒽酮试剂
2.1.3仪器设备
分光光度计;分析天平;恒温水浴;试管;三角瓶;移液管;剪刀;玻璃棒;滤纸;研钵
2.1.4测定方法
样品中可溶性糖的提取:称取剪碎混匀的新鲜样品0.5 ~1.0 g (或干样粉5~100 mg ),放入大试管中,加入15 ml 蒸馏水,在沸水浴中煮沸20 min,取出冷却,过滤入100 ml 容量瓶中,用蒸馏水冲洗残渣数次,定容至刻度。

标准曲线制作:取6 支大试管,从0~5分别编号,按下表加入各试剂。

试剂管号
0 1 2 3 4 5
200ug/ml葡萄糖标准溶液(ml)0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
蒸馏水(ml) 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0
蒽酮试剂(ml) 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0
葡萄糖量(ug)0 20 40 60 80 100
将各管快速摇动混匀后,在沸水浴中煮10 min,取出冷却,在620nm波长制标准曲线。

样品测定:取待测样品提取液1.0ml加蒽酮试剂5ml ,同以上操作显色测定光密度。

重复3次。

结果计算:
可溶性糖含量(%)=从标准曲线查得糖的量(μg)×提取液体积(ml)×稀释倍数/【测定用样品液的体积(ml)×样品重量(g)×106】×100
2.2 植物体内可溶性蛋白含量的测定
2.2.1材料
新鲜的白菜、芹菜、菠菜叶片(剪碎后各取0.5—1.0g)
2.2.2试剂
标准蛋白质溶液:用牛血清白蛋白配成含蛋白质100μg/的标准蛋白溶液;
90%乙醇;85%磷酸(W/V);考马斯亮蓝G-250溶液
2.2.3仪器设备
分光光度计;量筒;研钵;烧杯;量瓶;移液管;具塞刻度试管;分析天平;恒温水浴;
2.2.4测定方法
0~100μg/ml标准曲线的制作:取六支试管,分别按下表数据配制0~100μg/ml血清白蛋白液1ml。

准确吸取所配各管溶液0.1ml,分别放入10ml具塞试管中,加入5ml考马斯亮蓝G—250试剂,盖塞,反转混合数次,放置2min后,在595nm下比色,绘制标准曲线。

管号 1 2 3 4 5 6
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
100μg/ml牛血清
蛋白量(ml)
蒸馏水量(ml) 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0
0 20 40 60 80 100
蛋白质含量(μ
g)
样品提取液中蛋白质浓度的测定:吸取样品提取液1.0ml,放入具塞试管中(每个样品设置两个重复),加入5Ml考马斯亮蓝G-250溶液,充分混合,放置2min后在595nm下比色,记录吸光值,并通过标准曲线查得蛋白质含量。

结果计算:样品蛋白质含量(mg/g鲜重)=(C*V/a)/W
式中C-查标准曲线所得每管蛋白质含量(mg);
V-提取液总体积(ml);
a-测定所取提取液体积(ml);
W-取样量(g)。

3 结果分析
3.1 植物体内可溶性糖含量的测定
3.1.1可溶性糖标准曲线
表一:各试管中标准葡萄糖的吸光值
管号0 1 2 3 4 5
葡萄糖含量
0 40 80 120 160 200
(ug)
吸光度0 0.195 0.370 0.518 0.690 0.706
3.1.2芹菜、白菜、菠菜中可溶性糖的吸光值
吸光值样品名称
芹菜白菜菠菜A1 0.358 0.347 0.333
A2 0.361 0.352 0.327
A3 0.367 0.351 0.327
平均值0.362 0.350 0.329
对照标准曲线,可以得出:在1g蔬菜样品中移取的1ml样品溶液中,芹菜样品溶液含糖量为80.930μg;白菜样品溶液的含糖量为78.139μg;菠菜样品溶液的含糖量为73.256μg。

3.1.3可溶性糖含量计算
样品含糖量=样品含量(ug)*稀释倍数*100/{样品重(g)*106}g/100g鲜重
样品质量/g 吸光值查表所得含
糖量/μg 稀释倍数可溶性糖含量
/μg
芹菜 1.00 0.362 80.830 100 0.8083 白菜 1.00 0.350 78.139 100 0.7813 菠菜 1.00 0.329 73.256 100 0.7325 由表可知:芹菜中可溶性糖含量最高,白菜中含量居中,菠菜中可溶性糖含量最低。

3.2 植物体内可溶性蛋白含量测定
3.2.1 可溶性蛋白标准曲线
表1 各试管中标准蛋白质的吸光值
管号0 1 2 3 4 5
蛋白质含量
(ug)
0 20 40 60 80 100
吸光度0 0.286 0.578 0.852 0.921 1.250。

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