植酸酶活力的测定方法及应注意问题(精)

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土壤植酸酶检测

土壤植酸酶检测

土壤植酸酶检测
土壤植酸酶(Soil phytases)是可催化肌醇六磷酸化合物水解成肌醇和磷酸的酶,能提高磷利用率,解除植酸对一些钙、锌、铁、铜等矿物元素的抗营养效应,参与土壤含磷化合物的主要部分—植素及其衍生物的脱磷酸化作用。

植酸酶测定常以植酸钠为基质,以酶解所产生的无机磷量表示酶活性。

土壤植酸酶活性的检测方法有近红外光谱法、琼脂平板法、酶联免疫吸附法、生物传感器法、高效液相色谱法等。

迪信泰检测平台采用生化法,可高效、精准的检测土壤植酸酶活性变化。

此外,我们还提供其他土壤酶类检测服务,以满足您的不同需求。

生化法测定土壤植酸酶样本要求:
1. 请确保样本量大于0.2g或者0.2mL。

周期:2~3周
项目结束后迪信泰检测平台将会提供详细中英文双语技术报告,报告包括:
1. 实验步骤(中英文)
2. 相关参数(中英文)
3. 图片
4. 原始数据
5. 土壤植酸酶活性信息。

植酸酶测定

植酸酶测定

植酸酶活性测定植酸(Phyticacid).其化学名称为六磷酸肌醇,由1分子肌醇和6分于鳞酸结合而成,分子式是C6H18O24P6,通式为C6H6[OPO(OH)2]6,分子660.8。

植酸及植酸盐中的磷即为植酸磷,植酸广泛存在于谷物籽实和油料作物种子。

植酸酶(phytases)能将磷酸残基从植酸上水解下来,因此破坏了植酸对矿物元素强烈的亲和力,所以说植酸酶能增加矿物元素的营养效价,而且由于释放出的Ca2÷可参加交联或其他反应中去,从而改变了植物性食品的质地。

植酸酶一般只适于在单胃动物中使用。

反刍动物由于瘤胃微生物能合成植酸酶,因此在饲料中一般不需要使用植酸酶。

植物体中的植酸一般不以游离形式存在,而是与钙、镁、钠、钾等结合形成复合盐,植酸盐在多数植物中以植酸钙镁复盐的形式存在,但大麦中主要是植酸钾镁复盐,小麦中主要是植酸铁。

饲料中的无机磷可直接为肠道所吸收,而有机磷则需要先经酶的作用水解为无机磷,然后方能为肠道吸收。

单胃动物消化道中无分解植酸的植酸酶,故对植酸磷的利用率很低。

植酸的抗营养作用不仅表现在植酸磷的低利用率上,还通过整合或络合作用影响其它矿物元素如铁、锌、铜、钙以及蛋白质的可消化性,并抑制淀粉酶、胰蛋白酶、胄蛋白酶的活性。

测定原理植酸酶可以水解植酸钠释放出无机磷,通过加入锐铝酸核显色/终止液使水解反应停止,同时与水解释放出的无机磷产生颜色反应,形成黄色的帆铝磷络合物(NHQPO4NH4VO3-16M O O3;,在415nm波长下测定磷的含量,以标准磷溶液为参照,计算酶活。

植酸酶的含量以酶活性单位表示。

1植酸酶单位定义为:在37℃、pH5.5的条件下,1分钟内从0.005ImOI1的植酸钠溶液中释放出1微摩尔(UmoD无机磷所需要的植酸酶量。

操作步骤样品准备样品粉碎过后过60目筛。

称取2.0g左右粉碎样品,放入4个IOom1烧杯中(每种样品4个重复)。

加入50m1浓度为0.25m1、PH为5.50、在冰箱中冷却的乙酸缓冲液并用磁力搅拌器搅动60分钟,使酶蛋白充分溶出,制成一个悬浮液。

植酸酶酶活测定

植酸酶酶活测定

四.实验步骤: 实验步骤:
1. 标准曲线的制作
(1)按下表的比例稀释成不同磷浓度溶液 (1)按下表的比例稀释成不同磷浓度溶液
标准符 标准 号 磷液 /ml 蒸馏 水/ml 相当于 无机磷 /ug 显色液 /ml OD660nm
1 2 3 4 5 6
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
3.0 2.8 2.6 2.4 2.2 2.0
0.9ml(TCA) 0.9ml(植酸 ( ) ( 钠) 3ml √ 3ml √
水浴显色20min 水浴显色
20分钟后, 20分钟后,四只 分钟后 试管中现象
用分光光度 计测OD值 计测 值
实验得到四只试管中的样液的OD值 值 实验得到四只试管中的样液的
A0(参照 = 0 A1= 0.547 参照) 参照 A2= 0.490 A3= 0.523
实验用品: 三.实验用品: 实验用品
• 试剂 乙酸缓冲液、植酸钠溶液、10%三 试剂:乙酸缓冲液、植酸钠溶液、 乙酸缓冲液 三 氯醋酸溶液、 钼酸铵溶液、 氯醋酸溶液、2.5%钼酸铵溶液、10%Vc 钼酸铵溶液 溶液、 硫酸溶液、 溶液、17%硫酸溶液、磷酸二氢钾、显色 硫酸溶液 磷酸二氢钾、 液配制: ) 液配制:(6)︰(水)︰(4)︰(5)=1︰2︰1︰1 ) ) ︰ ︰ ︰ • 仪器:恒温水浴锅、分光光度计、离心机、 仪器:恒温水浴锅、分光光度计、离心机、 烧杯、容量瓶、 烧杯、容量瓶、移液管
摇瓶
3000r/min离心 min 离心15
(2) 酶活测定 )
反应顺序
1. 加酶液 2. 加植酸钠 加植酸钠/TCA溶液 溶液 3. 加乙酸缓冲液 4. 混合均匀 5. 37℃水解 ℃
样品
0.3ml 0.9ml(植酸钠) (植酸钠) 0.9ml √

植酸酶活性测定方法

植酸酶活性测定方法

W×30
式中: P— ——由样品吸收度根据二次曲线方程求得的反应
总磷量, μmol
W— ——样品重量, g
F— — — 样 品 总 稀 释 倍 数
30— ——反应时间, s
6 结果
·44·
6.1 方法的重复性 抽取了 3 个批次的样品, 每个样品进行 3 次不 同日期的测定, 结果见表 2。
表 2 植酸酶产品中植酸酶含量的测定结果
·43·
广东饲料 第 15 卷第 5 期 2006 年 10 月
检测分析
5 操作方法 5.1 磷标准溶液及样品溶液配制 5.1.1 磷标准溶液: 称取基准磷酸二氢钾适量 于 105℃干 燥 2h, 置 干 燥 器 中 冷 却 至 室 温 后 , 精 确 称取 0.3415g 于具塞锥形瓶中, 加入约 100mL 醋酸 缓冲液并称量, 准确至 0.0001g, 得 25.0055μmol/g 磷标准液。用移液器准确移取磷标准液 0.1g、0.2g、 0.3g、0.5g、0.8g、1g, 置于 10mL 刻度试管中, 加醋酸缓 冲液至 5g( 精确至 0.0001g) , 配制成系列浓度的磷 标 准 液 : 0.5001μmol/g、1.0002μmol/g、1.5003μmol/g、 2.5006μmol/g、4.0010μmol/g、5.0011μmol/g。备用。 5.1.2 样品溶液: 称取 1g 植酸酶样品于具塞三 角 瓶 中 , 加 醋 酸 缓 冲 液 至 100g 并 称 量 ( 准 确 至 0.0001g) , 搅拌 30min 后取上清液于 4 000r/min 离 心 10min( 或用玻璃滤纸过滤) , 称取上清液 0.1g, 加 醋酸缓冲液稀释至 100g, 使得到酶活为 0.05FTU/g 左右的样品溶液, 所有称量均需精确至 0.0001g。 5.2 酶活反应及测定 称 取 磷 标 准 溶 液 、样 品 溶 液 、空 白 醋 酸 缓 冲 液 各 1g( 精 确 至 0.0001g) 于 试 管 ( 18mm×180mm) 中 , 按表 1 进行反应。样品反应操作间隔时间为 30s。

植酸酶活力的测定方法及应注意问题

植酸酶活力的测定方法及应注意问题

植酸酶活力的测定方法及应注意问题
郭会灿;李会然
【期刊名称】《科技信息》
【年(卷),期】2009(000)036
【摘要】酶活力大小是衡量酶制剂质量的主要指标,选择具有高度专一性和灵敏度的酶活测定方法是酶制剂质量的保障.
【总页数】1页(P11)
【作者】郭会灿;李会然
【作者单位】石家庄职业技术学院化学工程系;石药集团维生药业
【正文语种】中文
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温度_时间和pH对饲料中植酸酶活力的影响

温度_时间和pH对饲料中植酸酶活力的影响

温度、时间和pH对饲料中植酸酶活力的影响摘要 [目的]研究植酸酶在猪饲料中的应用条件。

[方法]采用钒钼酸法测定植酸酶活力,研究植酸酶活力及时间、温度和pH等因素对饲料中植酸酶作用的影响。

[结果]各样品溶液的OD 平均值分别为0.241、0.245和0.220,总磷量平均值分别为1.694 8、1.722 9和1.551 6Lmol/g,酶活平均值分别为5 891.78、5 743.00和5 171.89 IU/g。

植酸酶的最适温度为55e。

50~65e 下饲料中植酸磷的降解率接近100%,40e下其降解率为80%。

4 h后植酸磷的降解率为80%,5~6 h后植酸磷基本被完全降解。

pH值为2.5和5.5时植酸酶的活性最强;pH值为7.0时,植酸酶的活性很低。

在温度为55e和pH值为5.5的条件下,5 h以上植酸酶对植酸钠中植酸磷的降解率为60% ~100%;在温度为40e和pH值为2.5的条件下,4 h后其降解率为60%。

[结论]该研究为植酸酶在畜禽养殖中的应用提供了理论依据。

关键词植酸酶;酶活性;时间;温度;pHEffects ofTemperature, Time and pH on the Activity ofPhytase in FeedMA Dong-mei et al (LiaoningMedicalUniversity, Jinzhou, Liaoning 121000)Abstract [Objective] The purposewas to study the application condition ofphytase in pig feed. [Method] The influencesof factors such asphytase activity, tmi e, temperature and pH on the function ofphytase in feedwere studied by determining the activity ofphytasewith poly-va-nadium-molybdenum acid. [Result] The averageODvaluesofall the sample solutionswere0.241, 0.245 and 0.220 resp., theiraverage to-talphosphorous contentswere 1. 694 8, 1. 722 9 and 1. 551 6Lmol/g resp., their average enzyme activitieswere 5 891. 78, 5 743. 00 and5 171.89 IU/g resp. The optmi um temperature forphytasewas55e. The degradation rate ofphytate phosphorous in feedwas close to100%at50-65eand thatwas80% at40e. The degradation rate ofphytate phosphorouswas80% after4 h and the phytate phosphorouswasde-graded completely basically after5-6 h. When the pH valuewas2.5 or5.5, the phytasewasmostactive; when the pH valuewas7.0, theactivity ofphytasewas very low. The degradation rate ofphytate phosphorous in sodium phytatewas60% -100% while ithad been degradedunder the conditionwith temperature and pH value being55eand 5.5 formore than 5 h; itsdegradation ratewas60% while ithad been de-graded under the conditionwith temperature and pH value being40eand 2.5 for4 h. [Conclusion] The study supplied theoreticalbasis forthe application ofphytase in livestock and poultry breeding.Key words Phytase; Enzyme activity; Tmi e; Temperature; pH作者简介马冬梅(1960- ),女,辽宁阜新人,副教授,从事畜牧兽医教学和研究工作。

植酸酶的测定

植酸酶的测定

植酸酶活性的测定一、测定原理铝黄法(偏帆酸钱法)原理:植酸酶在一定温度和pH值条件下,水解底物植酸钠,生成正磷酸和肌醇衍生物,在酸牲环境中,用锐钳酸诫处理生成黄色复合物,在415nm波长卜进行比色分析。

二.反应条件的探讨r反应体系的温度及加热时间的探讨图1酶活性随温度的变化由上图町知,在温度为45摄氏度左右时,植酸酶的活性达到垠人,所以在酶促反应时应使温度稳定在45C左右,植酸酶的作用效率才最人。

2酶活性随pH变化pH由匕图可知,在PH为5左右时,植酸酶的活性达到最人,所以植酸酶缓冲液提供的的PH 环境应在5左右3、不同的离子及离子浓度对植酸稱活性的影响图3离子对酶活性的影响由上图町知,Ca离子和Na离子对酶的活性影响最小.Zn离子利Cu离子对酶的活•性抑制影响较大。

图4离子浓度对酶的影响Con圆点系列表示Cu"浓度对酶的活性的影响,随着浓度增加,酶的活性增加: 三角形系列表示Zn 2*浓度对酶活性的影响,随着Zn"浓度增加,酚的活性増加。

4、不同反应体系条件对植酸酶活性测定影响不同温度和PH 下的酶比活性变化3.64.2 55.86.87.2PH图5所示为正交实验时,不同温度和pH 的组介的条件下测得的植酸酚的比活性,在pH 为 5,温度在45C 左右时植酸酶活性达到最大。

酶比活性5.酶促反应时间的确定0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5 4 4.5 5 5.5 6 6.537rhr由上图町知,在05h以前,酶作用底物的速度呈直线关系.所以测定时反应的时间应该在30mm左右。

斜率=0.854523227相关性=0.997923599碱距=3.383740831根据上图町求得[S m]=2.53mmol/L7.酶的稳定性图8酶的稳定性time 由图町得,酶活性随时间而降低,故酚样品溶液需要现配现用三、实验步骤1、标准曲线的制作准确称取0.680g在105-C烘至恒朿的基准磷酸二氢钾()于100ml容最瓶中,用乙酸缓冲液溶解,并定容至刻度,浓度为50.0mmol/L按卜表的比例用乙酸缓冲液稀释成不同的浓度,与待测样-•起反应测定。

植酸酶活性的测定——钼蓝法(精)

植酸酶活性的测定——钼蓝法(精)

植酸酶活性的测定——钼蓝法1 原理针对预混料复杂的物料体系,用不同的缓冲液对其进行抽提,最大限度的减少饲料中无机磷,微量元素,多维及其他成分对植酸酶测定的影响,用钼蓝法对抽提液中植酸酶活性进行定量。

植酸酶在一定温度和pH条件下,水解底物植酸钠生成正磷酸和肌醇衍生物,在酸性环境中与钼酸铵显色剂反应生成蓝色的(Mo2O3•MoO3)复合物,在波长700nm下比色测定。

酶活力单位定义:在37℃、pH5.0条件下,每分钟从5.0mM植酸钠溶液中释放出1微摩尔的无机磷定义为1个酶活力单位(U)2 试剂本规定中所用试剂,在没有注明其它要求时,均指分析纯试剂;所用溶剂和水无注明时,均指蒸馏水。

清洗实验用容器不要用含磷清洗剂。

2.1 乙酸缓冲液A(0.25mol/L):称取14.355g无水乙酸钠,加入0.5gTriton X-100和0.5g牛血清白蛋白,900ml水溶解,冰乙酸调pH值至5.00±0.01,水定容至1000ml。

2.2乙酸缓冲液B(0.25mol/L):称取14.355g无水乙酸钠,加入1.0g吐温-20和30gEDTA,900ml水溶解,冰乙酸调pH值至5.00±0.01,水定容至1000ml。

2.3 植酸钠溶液(6.25mmol/L):称取577.4mg肌醇六磷酸钠,加入574.2mg无水乙酸钠,90ml水溶解,冰乙酸调pH值至5.00±0.01,水定容至100ml,现用现配(实际反应液中的最终浓度为5.0mmol/L)。

2.4 终止液:5%三氯乙酸(5%TCA)。

2.5 1.5%钼酸铵(试剂A):7.5g钼酸铵溶于400ml水中,慢慢加入22ml浓硫酸,水定容到500ml,冰箱储存,有效期1个月。

2.6 2.7%硫酸亚铁(试剂B):冰箱储存,有效期1个月。

2.7 显色剂:移取4份试剂A(2.5),1份试剂B(2.6)混合后使用,现用现配。

2.8 磷酸二氢钾:称量前于烘箱中烘至恒重,用乙酸缓冲液(2.2)配制50mmol/L标准液,再用50mmol/L 配制成4.0mmol/L磷酸二氢钾,溶剂为乙酸缓冲液(2.2),冰箱储存。

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科技信息
植酸酶是催化植酸及植酸盐水解成肌醇与磷酸的一类酶的总称 [1]。

植酸酶是一种胞外酶 [2], 广泛存在于自然界中, 植物、动物、微生物均可产生植酸酶。

植酸酶的活性因来源不同而有差异。

植酸酶能将肌醇六磷酸 (植酸分解成为肌醇和磷酸。

植酸酶可以专一性地水解植酸中的磷酯键, 使磷酸游离出来, 植酸酶将植酸分子上的
磷酸基团逐个切下, 形成中间产物肌醇五磷酸、肌醇四磷酸、肌醇三磷酸、肌醇二磷酸、肌醇一磷酸、终产物为肌醇和磷酸 [3]。

植酸酶的作用机理见图 1。

图 1植酸酶的作用机理
1. 植酸酶酶活力测定的意义酶活力也称酶活性, 是指酶催化一定化学反应的能力, 用在一定条件下, 酶所催化某一反应的速率表示。

酶活性是研究酶的特性, 分离纯化以及酶制剂生产和应用时的一项不可缺少的指标。

酶活力单位是以酶活力为根据而定义的。

国际生化协会酶委员会规定, 1min 内将1μmol 的底物转化为产物的酶量定为 1个单位,称为标准单位, 同时规定了酶作用的条件。

因标准单位在实际应用时不够方便, 故在生产上往往根据不同的酶, 制定各自不同的酶活力单位。

在测定酶活力时, 对反应温度、 pH 、底物浓度、作用时间都有统一规定, 以便同类产品互相比较。

但是酶活力单位并不能直接反映酶的绝对数量, 只不过是一种相对比较的依据 [4]。

植酸酶活性的定义为:在最适宜条件下, 每分钟从一定浓度的植酸钠溶液中释放1μmol 的无机磷所需要的酶量为一个酶活力单位。

确定植酸酶的酶活, 可以提高实验的标准性和效率。

2. 植酸酶活力测定的原理及方法
酶活力测定的原理都是利用酶水解植酸钠形成无机磷,然后测定无机磷的释放量。

植酸酶活性的测定方法较多 , 但至今尚没有被世界普遍公认的植酸酶的定量分析方法。

方法包括:钒 -钼酸铵法、硫酸亚铁 -钼蓝法、 Vc-钼蓝法、丙酮 -磷钼酸铵法、微板法和微量比色法等 [5]。

可根据实验需要选择不同的方法。

2.1钒 -钼酸铵法
该方法是利用植酸酶可以水解植酸磷释放出无机磷的原理。

通过加入酸性钼-钒试剂使水解反应停止 , 同时与水解释放出来的无机磷产生颜色反应 , 形成黄色的钒钼磷络合物 , 在 415nm 波长下测定磷的含量。

以标准植酸酶为参照物 , 间接计算被测样品中植酸酶的含量。

本法于 1994年列入 AOAC, 我国也已将此法的测定结果作为审批商品植酸酶注册许可证和验收进口产品的法定商检依据。

2.2硫酸亚铁 -钼蓝法
该方法利用植酸酶可以水解植酸磷释放无机磷的原理 , 通过加入三盐酸使水解反应停止 , 然后加入钼酸铵及 FeSO 4·7H 20的混合液使溶液显色 , 在 720nm 波长下测定其吸收值 , 以标准酶为参照物 , 间接计算被测样品中植酸酶的含量。

2.3Vc-钼蓝法
该方法是利用植酸酶可以水解植酸磷释放无机磷的原理 , 通过加入三氯乙酸使反应停止 , 然后加入钼酸铵与 Vc 的混合液 , 使溶液显色 , 在 820nm 波长下测定吸光度 , 再以标准磷溶液的吸光度及磷溶液浓度对应的酶活单位建立直线回归方程 , 最后以待测样品吸光度代入方程 , 计算出酶活性。

2.4丙酮 -磷钼酸铵法
磷酸盐与过量的钼酸铵在酸性条件下混合后 , 可慢慢生成黄色磷钼酸铵 , 加入丙酮后将黄色物质提出来 , 在 355nm 波长处测吸光度 , 灵敏度增加 10倍。

2.5方法比较
不同的测定方法, 各有优缺点。

钒 -钼酸铵法灵敏度最高, 丙酮法
稳定性最好, 抗干扰能力较强, 在测定饲料、发酵产物中植酸酶酶活, 采用丙酮法较好。

AOAC 法测定出现酶活力结果偏小 , 原因可能是由于显色反应需要在沸水浴中进行,溶液中已经存在的 TCA 可在高温下水解底物植酸
钠, 因此造成误差。

所以,
用 TCA 做酶的灭活剂时, 不能采用 AOAC 无机磷分析方法进行植酸酶的测定。

钼蓝 -Vc 显色法是在室温下进行的, 可减少 TCA 对植酸的水解作用, 分析结果相对准确。

空白样测定时, 当
采用 TCA 为灭活剂时,
可能产生假酶活问题。

如果改进程序, 先不加入底物植酸钠, 而是将酶液与缓冲液保温, 反应完成后用 TCA 将酶灭活, 然后加入底物,这样操作避免了 TCA 在热环境下对植酸钠的水解作用, 能够较准确地测定植酸酶水解底物后释放的无机磷的量, 酶活力分析结果更为准确。

3. 植酸酶活力测定中应注意的问题 3.1温度
植酸酶作为一种酶制剂, 对温度非常敏感, 温度低会降低它的生物活性; 温度高也会降低其生物活性, 甚至完全失活。

因此, 在检测过程中对温度的控制则显得非常重要,国标要求植酸酶活性测定时的温度为 (37±0.1 ℃。

在 33℃时植酸酶不能很
好地发挥其活性, 酶活与其真实值相比约低 10%; 在 40℃时, 部分植酸酶会失活, 酶活与其真实值相比
约低 8%。

另外,
水浴加热时, 水浴液面要超过试管内反应液液面, 使其在规定时间内充分反应。

3.2pH 值
pH 值在酶活测定时影响很大, 国标要求 pH 值为 5.5。

当 pH 值为 3.0时,植酸酶活力基本消失。

尽量不要用酸度计来调节缓冲液的 pH 值, 因为酸度计存在一定的误差, 使用时间长了会发生钝化, 使测定的
pH 值不准。

可以通过计算缓冲溶液中 H +
浓度的方法来配制一定 pH 值的溶液。

3.3底物植酸钠的型号植酸钠有两种型号, 一种是 Sigma p-3168, 分子量为923.8; 另一种是 Sigma p-8810, 分子量为 660.03。

根据国标要求,植酸钠应为 Sigma p-3168, 在实验中发现 Sigma p-3168植酸钠底色浅, 且作磷标准曲线时梯度较好检测植酸酶活性时用 Sigma p-3168为反应底物较好。

3.4离心速度和时间
当水浴 30min 终止酶解反应后, 需要进行离心。

国标要求 4000r/min,
离心 10min 。

若以 3000r/min离心 10min ,
则离心不彻底, 测吸光度时发现标准曲线吸光度不呈梯度; 以 5000r/min离心10min 时, 发现标准曲
线各梯度的吸光度与以 4000r/min离心 10min 时相比偏低。

如果应用国标改进法, 乙酸缓冲液中加入了牛血清白蛋白, 离心时间需要
15min 用国标改进法进行了时间对比实验,测定酶活时离心 10min 和 15min 后样品的吸光度, 发现离心时间对测定结果影响很大。

4. 结束语
在实际应用和理论研究中酶不易制成纯品, 其中含有很多杂质, 真正的含酶量并不多, 所以酶制剂中酶的含量都用酶活力来表示。

酶活力大小是衡量酶制剂质量的主要指标,选择具有高度专一性和灵敏度的酶活测定方法是酶制剂质量的保障。

不同的测定方法有不同的应用范围, 应根据实际情况进行选择, 并在测定中应注意其影响因素。

参考文献
[1]罗贵民 . 酶工程 . 第二版 . 北京 :化学工业出版社 ,2004:19-20[2]JUSTIN ANNE-MAR R IE. Synthetic Capacity of Arabidopsis Phosphatidylinositol Synthase Lexpressed in Escherichia Coli. Molecular and Cell Biology of Lipids, 2003(12:52-60
[3]陈武根, 肖美燕 . 植酸酶的研究与应用 . 食品工程 ,2006,9(3:46-49[4]张邦建 . 生物化学 . 高等教育出版社, 2007:41-42[5]张娜, 郭庆启, 赵新淮 . 发酵液中植酸酶活力测定方法的改进 . 食品工业科技 ,2006,27(12:173-174
基金项目:本文系石家庄职业技术学院青年专项课题, 课题编号:09YQ005。

作者简介:郭会灿 (1976- , 女, 河北石家庄人, 讲师, 研究方向为生物化工工艺。

植酸酶活力的测定方法及应注意问题
石家庄职业技术学院化学工程系
郭会灿
石药集团维生药业
李会然
[摘要 ]酶活力大小是衡量酶制剂质量的主要指标, 选择具有高度专一性和灵敏度的酶活测定方法是酶制剂质量的保障。

[关键词 ]植酸酶酶活力
测定方法博士 ·专家论坛
11——。

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