水通道蛋白的基本结构与特异性通透机理
水通道蛋白结构
水通道蛋白结构水通道蛋白是一类在生物体中起着重要作用的蛋白质。
它们存在于细胞膜上，形成了细胞膜的一种通道，能够允许水分子快速通过细胞膜。
水通道蛋白的发现和研究为我们理解细胞内外液体平衡以及水分运输提供了重要的线索。
水通道蛋白最早是在1980年代被发现的，研究者发现一种叫做水通道蛋白1（Aquaporin-1，简称AQP1）的蛋白质在红细胞膜上表达，能够加速水分子通过细胞膜。
这项发现引起了科学家们的广泛关注，并在接下来的几十年里，研究人员陆续发现了多种水通道蛋白。
水通道蛋白的结构非常特殊，它们由多个亲水性的氨基酸残基组成，形成了一条通道，通道中心是一个疏水性的区域，能够排斥离子和其他溶质，只允许水分子通过。
水通道蛋白的结构使其具有高度选择性和通透性，能够快速而特异地传输水分子。
水通道蛋白的结构在进化过程中发生了一些变化，目前已经发现了多种类型的水通道蛋白。
其中，AQP1是最早被发现的一种，广泛存在于多种细胞类型中，包括红细胞、肾脏和眼睛等。
AQP1的结构由四个相同的亚单位组成，每个亚单位由六个跨膜螺旋组成，形成了一个中央水通道。
除了AQP1之外，还有其他类型的水通道蛋白，如AQP2、AQP3等。
它们在组织和细胞中的分布具有一定的特异性，发挥着不同的生理功能。
例如，AQP2主要存在于肾脏中，调节尿液的浓缩和稀释；AQP3主要存在于皮肤和肠道中，参与水分的吸收和散发。
水通道蛋白的功能不仅仅局限于水分的传输，它们还参与了一系列重要的生理过程。
例如，水通道蛋白在维持细胞内外液体平衡方面发挥着重要作用。
细胞内外液体平衡的失调会导致细胞的肿胀或收缩，影响细胞的正常功能。
水通道蛋白能够调节细胞内外水分的平衡，保持细胞内外环境的稳定。
水通道蛋白还参与了一些特殊细胞功能的实现。
例如，在肾脏中，水通道蛋白能够调节尿液的浓缩和稀释，帮助维持体内水分的平衡。
在眼睛中，水通道蛋白参与了眼内房水的生成和排泄，维持了眼压的稳定。
水通道蛋白
水通道蛋白水通道蛋白（Aquaporin），又名水孔蛋白，是一种位于细胞膜上的蛋白质（内在膜蛋白），在细胞膜上组成“孔道”，可控制水在细胞的进出，就像是“细胞的水泵”一样。
水通道是由约翰霍普金斯大学医学院的美国科学家彼得·阿格雷所发现，他与通过X射线晶体学技术确认钾离子通道结构的洛克斐勒大学霍华休斯医学研究中心的罗德里克·麦金农共同荣获了2003年诺贝尔化学奖。
水分子经过Aquaporin时会形成单一纵列，进入弯曲狭窄的通道内，内部的偶极力与极性会帮助水分子旋转，以适当角度穿越狭窄的通道，因此Aquaporin的蛋白构形为仅能使水分子通过之原因水通道蛋白的发现编辑Agre等(1988)在分离纯化红细胞膜上的Rh多肽时，发现了一个28 kD的疏水性跨膜蛋白，称为形成通道的整合膜蛋白28(channel-forming inte—gral membrane protein，CHIP28)，1991年完成了其cDNA克隆(Verkman，2003)。
但当时并不知道该蛋白的功能，在进行功能鉴定时，将体外转录合成的CHIP28 mDNA 注入非洲爪蟾的卵母细胞中，发现在低渗溶液中，卵母细胞迅速膨胀，并于5 min 内破裂。
为进一步确定其功能，又将其构于蛋白磷脂体内，通过活化能及渗透系数的测定及后来的抑制剂敏感性等研究，证实其为水通道蛋白。
从此确定了细胞膜上存在转运水的特异性通道蛋白，并称CHIP28为Aquaporinl(AQPl)。
水通道蛋白分类编辑AQP0AQP0最初称之为主体内在蛋白(major intrinsic protein，MIP)，在晶状体纤维中细胞中表达丰富，与晶状体的透明度有关．AQpo的突变可能导致晶状体水肿和白内障。
小鼠缺乏AQPO将患先天性白内障[61]。
AQP1AQP1是1988年发现的,开始将这种蛋白称为通道形成整合蛋白(CHIP),是人的红细胞膜的一种主要蛋白。
水通道蛋白结构
水通道蛋白结构水通道蛋白（aquaporin）是一种在细胞膜上广泛存在的蛋白质。
它们扮演着调节细胞内外水分平衡的重要角色。
本文将从水通道蛋白的结构、功能和应用等方面进行阐述。
一、水通道蛋白的结构水通道蛋白是一类跨膜蛋白，由六个跨膜α螺旋构成。
这些α螺旋呈现出一种特殊的编折结构，形成了一个水分子通过的通道。
通道的内部是由高度保守的氨基酸残基组成，这些残基能够与水分子形成氢键，从而促进水分子的快速通过。
二、水通道蛋白的功能水通道蛋白的主要功能是通过调节细胞膜的通透性来控制细胞内外的水分平衡。
它们可以快速而选择性地促进水分子的跨膜运输，而阻止离子和其他溶质的通过。
这种高度选择性的水通透性使得细胞能够维持稳定的细胞内环境。
三、水通道蛋白的亚型水通道蛋白有多个亚型，其中最为典型的是AQP1、AQP2和AQP3。
AQP1广泛分布于许多组织和器官中，参与维持细胞内外液体平衡；AQP2主要存在于肾小管上皮细胞中，调节尿液的浓缩和稀释；AQP3主要分布在皮肤和肾脏中，参与水分的吸收和排泄。
这些不同的亚型在不同组织和器官中发挥着特定的生理功能。
四、水通道蛋白的应用水通道蛋白在许多领域都有重要的应用价值。
例如，在生物医学研究中，水通道蛋白可以作为肿瘤标志物，用于癌症的诊断和治疗。
此外，水通道蛋白还可以用于制备高效的水处理膜，用于海水淡化和废水处理等领域。
此外，水通道蛋白还被应用于药物传递系统的设计和开发，以提高药物的透过性。
因此，水通道蛋白的研究和应用具有广阔的前景。
总结：水通道蛋白是一类重要的蛋白质，通过调节细胞膜的通透性来控制细胞内外的水分平衡。
它们的结构独特，具有高度的水选择性通透性。
水通道蛋白有多个亚型，在不同组织和器官中发挥着特定的功能。
此外，水通道蛋白还具有广泛的应用价值，可以用于肿瘤诊断和治疗、水处理和药物传递系统等领域。
随着对水通道蛋白的深入研究，我们对其机制和应用的理解将进一步加深，为生命科学和工程技术的发展提供更多的可能性。
植物的水通道蛋白
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水通道蛋白简介
上图：注入水通道蛋白AQP1mRNA的蛙卵细胞在蒸馏水中迅速膨胀 下图：正常蛙卵细胞
水通道蛋白的性质
• 水通道蛋白家族主要存在于动物和植物中， 除一部分水通道蛋白允许少量甘油通过外， 其余的水通道蛋白只允许水分子快速通过。 AQP1就是一个只存在于哺乳动物体内的特 异性的水通道蛋白，它在哺乳动物中的保 守性非常好。 • 水通道蛋白传输水的速率大概是自由扩散 的25倍，每秒能通过30亿个水分子。
水通道蛋白的发现
• 阿格雷小组使用蛙的卵细胞进行这种蛋白 的功能测试。 • 将这种蛋白的mRNA注射到蛙卵细胞中，使 其细胞膜上具有这种蛋白。然后将蛙卵放 入蒸馏水中，结果卵细胞迅速吸水膨胀破 裂。 • 这个蛋白被命名为水通道蛋白，官方命名 为AQP1。 • 人们又陆续发现了10种水通道蛋白，构成 了水通道蛋白家族的主体。
• 其中，罗德里克· 麦金农是因为钾离子通道 蛋白结构和机理研究上的贡献获奖
水如何进入细胞？
b. 不同分子通过人工脂双层的渗透系数（cm/s）（引自B. Alberts等）
问题的提出
• 在人工脂双层的通透性实验中可知，水分 子可以以自由扩散的方式穿过脂双层。但 是在一些要求高通透性的细胞中水分子的 扩散速度是很缓慢的，例如红细胞、肾小 管、唾液腺等。 • 在20世纪50年代到80年代，很多研究红细 胞的学者提出在红细胞膜上应该有可以运 输水的蛋白。而且用汞的化合物处理红细 胞膜可以抑制水的转运，由此推断运输水 的蛋白应该是含巯基的蛋白。
水通道蛋白的发现
• 第一个水通道蛋白的发现和纯化纯属意外 收获。1988年，阿格雷的小组在研究Rh抗 原的过程中，总有一种28kDa的蛋白质被同 时提纯。开始认为是大的多肽的降解产物， 后来发现在红细胞膜上这种蛋白非常丰富， 大约每个红细胞上有200,000个。而且从结 构上分析它应该是一种通道。后来在肾小 管中也提取出了这种蛋白。
植物逆境生理水孔蛋白
• 螺旋3在邻近螺旋1的地方穿出胞膜。LoopC位于胞外，连接着螺 旋3和4。
• 螺旋4穿过胞膜，通过很短的靠近四聚体的loopD与螺旋5连接。
• SIP是AQP中的最小的家族，SIP1具有水通道的活性，而
SIP2则可能是其他小分子或离子的运输通道。
• 植物水孔蛋白主要分布在质膜和液泡膜上。 PIP与TIP之间 的氨基酸同源性较低 (约50%左右)，而且PIP较TIP具有 较长的N端。
• 水孔蛋白在植物中的含量也是相当高的。例如，萝卜的TIP 占总液泡膜蛋白的40%；萝卜的PIP也占总质膜蛋白的10%； 拟南芥PIP2则占总质膜蛋白的15% ；拟南芥的5种PIP1至少 占总质膜蛋白的1 %
• 每个单体紧密结合使得这个同 源四聚体比较稳定。在某些去污 剂中的不溶性表明，脂质与 AQPl结合非常紧密。在单体外 面的螺旋3和6，以及螺旋HB和 HE的氨基酸残基可以和磷脂的酰 基相互作用。
水孔蛋白中的水孔
• Jung等(1994)提出的“沙漏”模型(the hourglass model) “沙漏”模型依据B和E环都为典型的疏水结构，使两环分别 从膜两侧埋入膜内。通过分子的折叠， B和E环形成一狭窄 的水孔道。CHIP28中汞敏感位点，即E环的Cys189和可 能 存在于B环的Cys73就位于水孔道的上下方。
• Karl Windhage博士，将体外转录合成的CHIP28 cDNA注入非洲 爪蟾的卵母细胞中，发现在低渗溶液中，卵母细胞迅速膨胀，并 于5 min内破裂。
• 为进一步确定其功能，又将从红细胞中提取的高纯度的CHIP28蛋 白整合到脂质体上，进行高渗处理，通过内部荧光物质的荧光变 化来反映其体积的变化，与对照相比， CHIP28极大地增加了脂 质体的透水性并 受到了氯化汞的可逆抑制，表现为很低的活化能 ，证实其为水选择性，并称CHIP28为Aquaporinl(AQPl)。
水通道蛋白综述与展望
水通道蛋白水通道- 从原子结构到临床医学生物膜的透水性在生理学上是一个长期存在的问题，但负责此类蛋白质的蛋白质仍然未知，直到发现水通道蛋白1（AQP1）水通道蛋白。
AQP1由渗透梯度驱动的水选择性渗透。
人类AQP1的原子结构最近被定义。
四聚体的每个亚基含有允许水分子单文件通过但中断氢键通过质子所需的单独水孔。
已经鉴定了至少10种哺乳动物水通道蛋白，并且它们被水（水通道蛋白）或水加甘油（水甘油聚糖）选择性渗透。
表达位点与临床表型密切相关，从先天性白内障到肾源性尿崩症。
在植物，微生物，无脊椎动物和脊椎动物中发现超过200个水通道蛋白家族成员，并且它们对这些生物体的生理学的重要性正在被揭开。
在20世纪20年代发现脂质双层提供了当沐浴在较低或较高pH或含有毒性浓度的Ca2 +或其他溶质的细胞外液中时细胞如何维持其最佳细胞内环境的解释。
从1950年代开始发现离子通道，交换剂和共转运体为溶质的跨膜运动提供了分子解释。
然而，长期以来，假定水的输送是由于通过脂质双层的简单扩散。
来自具有高膜渗透性的多个实验系统的观察，例如两栖膀胱和哺乳动物红细胞，表明通过脂质双层的扩散不是水跨越膜的唯一途径。
虽然提出了各种解释，但直到10年前发现AQP1才能知道分子水- 特异性转运蛋白（Preston 等，1999）。
现在人们普遍同意扩散和通道介导的水分运动都存在。
通过所有生物膜以相对较低的速度发生扩散。
水通道蛋白水通道发现于上皮细胞的一部分10至100倍的水渗透能力。
值得注意的是，水通道蛋白水通道的选择性非常高，甚至质子（H3O +）被排斥。
在大多数组织中，扩散是双向的，因为水进入细胞并从细胞释放，而水通道蛋白介导的体内水流则由渗透或液压梯度引导。
扩散的化学抑制剂是未知的，扩散发生在高Ea（Arrhenius活化能）。
相比之下，大多数哺乳动物水通道蛋白受汞的抑制，Ea等同于大量溶液中水的扩散（〜5 kcal mol_1）。
水通道蛋白的发现说明了偶发性在生物学研究中的重要性，并且引起了上游流体运输过程中水如何穿过生物膜的范式的完全转变。
水离子通道蛋白
水通道蛋白概述水通道蛋白（Aquaporin），又名水孔蛋白，是一种位于细胞膜上的蛋白质（内在膜蛋白），在细胞膜上组成“孔道”，可控制水在细胞的进出，就像是“细胞的帮浦”一样。
水通道是由约翰霍普金斯大学医学院的美国科学家彼得·阿格雷所发现，他与通过X射线晶体学技术确认钾离子通道结构的洛克斐勒大学霍华休斯医学研究中心的罗德里克·麦金农共同荣获了2003年诺贝尔化学奖。
水分子经过Aquaporin时会形成单一纵列，进入弯曲狭窄的通道内，内部的偶极力与极性会帮助水分子旋转，以适当角度穿越狭窄的通道，因此Aquaporin的蛋白构形为仅能使水分子通过之原因。
水通道蛋白的发现Agre等(1988)在分离纯化红细胞膜上的Rh多肽时，发现了一个28 kD的疏水性跨膜蛋白，称为形成通道的整合膜蛋白28(channel-forming inte—gral membrane protein，CHIP28)，1991年完成了其cDNA克隆(Verkman，2003)。
但当时并不知道该蛋白的功能，在进行功能鉴定时，将体外转录合成的CHIP28 eDNA注入非洲爪蟾的卵母细胞中，发现在低渗溶液中，卵母细胞迅速膨胀，并于5 min内破裂。
为进一步确定其功能，又将其构于蛋白磷脂体内，通过活化能及渗透系数的测定及后来的抑制剂敏感性等研究，证实其为水通道蛋白。
从此确定了细胞膜上存在转运水的特异性通道蛋白，并称CHIP28为Aquaporinl(AQPl)。
水通道蛋白分类AQP0AQP0最初称之为主体内在蛋白(major intrinsic protein，MIP)，在晶状体纤维中细胞中表达丰富，与晶状体的透明度有关．hQpo的突变可能导致晶状体水肿和白内障。
小鼠缺乏AQPO将患先天性自内障[61。
AQP1AQP1是1988年发现的,开始将这种蛋白称为通道形成整合蛋白(CHIP),是人的红细胞膜的一种主要蛋白。
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水通道蛋白的基本结构与特异性通透机理王晶桑建利（北京师范大学生命科学学院北京 100875）摘要水通道蛋白是一个具有跨膜运输水分子功能的蛋白家族。
从1988 年Agre 等发现水通道蛋白起，目前在不同物种中已经发现了200 余种水通道蛋白，其中存在哺乳动物体内的有13 种。
概述了水通道蛋白的结构、组织特异性分布及特异性通透机理。
关键词水通道蛋白水分跨膜转运水分子的跨膜转运对维持不同区域的液体平衡和内环境稳态非常重要。
水分子作为一种不带电荷且半径极小的极性分子，很早被证实能通过自由扩散穿透脂质双分子层。
在发现水通道蛋白以前，人们一直认为这是水分子透过质膜的唯一方式。
但通过实验发现，红细胞和肾小管细胞中水的通透速率之快远非简单扩散强度所能提供的，因此猜测，质膜上可能存在某种通道介导水的转运。
1 水通道蛋白的发现1988年，Agre 等从人类红细胞膜上纯化分离分子量为32×106的Rh 多肽时，偶然鉴定到一种新的分子量为28×106的整合膜蛋白，并且通过免疫印迹发现这类蛋白也存在于肾脏的近端肾小管中［1］，把它称为类通道整合膜蛋白（channel-like integralmembrane protein, CHIP28）。
随后，在1991 年Agre 和Preston 成功克隆得到了CHIP28 的cDNA，通过分析其编码的氨基酸序列，发现CHIP28 含有6个跨膜区域、2个N-糖基化位点、且N 端和C 端都位于膜的胞质一侧。
另外，对比CHIP28 与早期从牛晶体纤维中克隆得到的主要内源性蛋白（major intrinsicprotein,MIP）的DNA 序列，发现二者具有高度同源性。
由于很早以前就证实了MIP 家族的成员蛋白参与形成允许水和其他小分子通透的膜通道，因此，推测CHIP28 可能也具有类似功能［2］。
1992 年，Preston 等通过在非洲爪蟾的卵母细胞中表达CHIP28，首次证实它是一种水通道蛋白。
非洲爪蟾的卵母细胞对水具有极低的渗透性，当向其中显微注射体外转录的CHIP28 的RNA后，卵母细胞在低渗溶液中迅速膨胀，并于5 min内破裂。
这一现象表明注射CHIP28 的RNA 后卵母细胞膜的水通透性有了明显提高。
为了进一步确定CHIP28 的功能，将提纯的CHIP28 构建在蛋白磷脂体中，构建后的蛋白磷脂体对水的通透性增长了50 倍，但对尿素却不具备通透性［3］。
这些结果最终证实了CHIP28 为水通道蛋白，后来它被命名为水通道蛋白-1（aquaporin-1，AQP1）。
水通道蛋白的发现，开辟了一个崭新的领域。
随着更多亚型的发现，水通道蛋白相关研究成为了膜转运方向的研究热点，Agre 也因其对水通道蛋白做出的突出贡献而获得2003 年诺贝尔化学奖。
2 水通道蛋白的分子结构水通道蛋白分布广泛，目前已在哺乳动物、两栖类、植物、酵母、细菌以及各种各样的有机体中发现水通道蛋白的存在。
水通道蛋白是一类高度保守的疏水小分子膜整合蛋白，各种亚型之间蛋白序列及三维结构非常相似。
哺乳动物水通道蛋白的分子大小在26×106～34×106之间，氨基酸序列同源性为19%~52%［4］。
因水通道蛋白的三维结构相似，一般以AQP1的结构作为代表。
AQP1 是一条由269 个氨基酸残基构成的单肽链，对比AQP1 分子前后半段的氨基酸序列，发现2 段序列具有相关性，推测AQP1在进化上可能是通过基因复制而来。
单肽链在细胞膜上往返折叠形成6 个α螺旋的跨膜区域，并且肽链的N 端和C 端都位于质膜内侧；6 个跨膜区域由5 条环（A~E loop）相连。
目前，被人们广为接受的水通道蛋白三维结构是“沙漏模型（hourglassmodel）”［4］，模型指出：肽链中的B 环和E 环具有高度保守的天冬酰胺- 脯氨酸- 丙氨酸（Asn -Pro - Ala，NPA）特征性序列，B 环和E 环折返进入膜双分子层，2个保守的NPA 序列在膜的磷脂双层中间位置相互结合，6 条跨膜区域在四周包围，共同构成了一个供水分子通过的亲水通道（图1）。
通过对AQP1 的三维结构进一步研究发现，B环和E 环折返入膜后分别形成短螺旋B（HB）和短螺旋E（HE），中心孔道处起稳定作用的2 条NPA基序几乎呈90°交叉，所形成的亲水通道的直径约为2.8×10－10 m，刚好能容纳单个水分子通过，外围6 条跨膜区域呈现右手螺旋包围。
构成中心孔道表面的除B 环和E 环外，还有螺旋2、5 以及螺旋1、4 的C 端部分。
有研究指出，将B 环和E 环联系在一起的作用力主要是2 条NPA 基序中脯氨酸残基间的范德华力，同时也受到离子键和氢键的稳定。
几乎所有AQP 分子的B 环和E 环上都有高度保守的NPA 特征性序列。
但也有少数例外：在AQP11 和AQP12 中仅发现E 环上具有NPA 序列，另一个在B 环上的NPA 序列分别由天冬酰胺-脯氨酸-半胱氨酸（Asn-Pro-Cys,NPC）和天冬酰胺-脯氨酸-苏氨酸（Asn-Pro-Thr,NPT）替代［6］。
在体内，AQP1 主要以同源四聚体的形式存在。
研究发现，四聚体中某个水通道蛋白单体发生突变并不会影响其他3 个蛋白单体的功能，即每一个水通道蛋白单体是一个独立的功能单位。
水分子的跨膜渗透是通过水通道蛋白单体的中心通道完成的，而无法通过中聚体的中央孔洞（4 个单体衔接处的中心缝隙）［7］。
每个单体通过跨膜的α螺旋与邻近的2 个单体相互作用。
这些相互作用很有可能受到一些氨基酸残基之间的氢键的稳固。
3 水通道蛋白的种类迄今为止，已有200 余种水通道蛋白在不同物种中被发现，其中存在于哺乳动物体内的水通道亚型有13 种，即AQP0-AQP12（见下表）。
根据它们的基因结构和通透性，这13 种水通道蛋白可划分为3 组：传统水通道蛋白（orthodox aquaporins）（包括AQP0、1、2、4、5、6、10）、甘油水通道蛋白（aquaglyceroporins）（包括AQP3、7、9）和未明确分类的AQP8、11、12。
目前对哺乳动物中较早发现的10 个水通道蛋白AQP0～AQP9 研究较为透彻，它们的功能也通过人类疾病的鉴定及对基因缺失小鼠的研究而被鉴定；而较近发现的3 个成员AQP10～AQP12 则相对研究较少，它们的胞内定位及表达异常导致的人类疾病都还未被鉴定［8］。
4 水分子特异性通透机理水通道蛋白对水分子具有高度选择性。
大部分水通道蛋白严格排斥除水分子O+）、甘油以外的所有物质通过，包括结合水分子的氢离子（水合氢离子，H3和各种离子等，但也有部分水通道蛋白对甘油等小分子中性溶质具有通透性。
AQP1膜蛋白的密度可达到大于109 个/μm2，。
这一密度远远高于普遍的离子通道的密度（除突触后膜上的乙酰胆碱受体外，大多小于1 个/μm2）。
水通道蛋白是怎样对水分子进行严格筛选的呢？首先，通道的空间大小只能容纳单个水分子，限制了比水分子大的分子通过。
以对水分子具有专一通透性的AQP1 为例，AQP1 的中心通道呈哑铃状，狭口处在脂双层中央B 环和E 环相互作用的NPA 序列位置附近。
构成中心孔道表面的氨基酸残基中，亲水和疏水的残基数量基本是对等的。
这些亲水残基在对水分子去水化过程中有重要作用。
另外，中心孔道最窄处由4 个残基构成，包括亲水的His180、Arg195、Cys189 和疏水的Phe56。
虽然这一缩口只有1 个氨基酸残基的跨度，但是它2.8×10－10 m 的直径仍然阻断了比水分子大的离子和溶质的通过。
因此，这4 个残基的变化都可以对水通道的选择性产生影响。
根据已有研究可知，His180 在只对水具有通透性的水通道蛋白中高度保守，但在一些对甘油也具通透性的水通道蛋白，如GlpF 中则被甘氨酸残基代替［11］。
另一个困扰人们已久的问题是何种机制阻断了水道蛋白对质子的跨膜运输。
早在短杆菌肽中的研究就已表明，水可以以连续不断的方式通过膜上的开放孔,这种水分子排列成一条直线、质子由一个水分子传递到另一个水分子、并伴随着氢键的断裂和重建的过程，被研究者称为“Grotthus 效应”。
既然水通道蛋白对水具有特异通透性, 那么可通过“Grotthus效应”传递的质子运输又是怎样被阻断的呢？目前被较多人接受的另一个机制是在NPA 序列处有1对偶极子对水分子起着定向作用。
在每个水通道的中心位置，NPA 序列上的Asn76 和Asn192 的氨基向孔道最窄处延伸。
此时，位于此处的水分子与其邻近的水分子之间的氢键发生断裂，其氧原子替代性地与Asn76 和Asn192 的氨基形成氢键。
这一变化重排了水的分子轨道，使最窄处水分子的2 个氢原子定向到与通道轴线垂直的方向（图2）。
因此，中心处水分子的2 个氢原子无法与周围邻近的水分子形成氢键；另外，在通道最窄处的残基附近的氨基酸残基都是疏水的，因此不会有另外的残基与水分子的2 个氢原子形成氢键。
这一模式使得位于通道上下2 部分中的水分子在取向上相反，不利于形成氢键链，从而也阻断了质子通过“Grotthus 效应”完成连续传输，同时，因为疏水氨基酸不参与形成氢键，也保证了水分子在通过孔道时只需要跨越一个相当低的能量障碍［7，12］。
a：NPA 基序上的偶极矩改变了中心水分子的定向，使通道上下水分子取向相反。
b，c：水分子与Asn192、Asn76 的氨基形成氢键，水分子的2 个氢原子重定向至与通道轴线垂直［7］据已有研究，水通道蛋白几乎严格排斥其他所有离子。
从理论上来说，水合化的离子直径为7.16×10－10 m，而去水合化的离子只有1.9×10－10 m的直径，是可以通过最窄处为2.8×10－10 m 的中心通道的。
孔道狭窄的阳离子通道就具有使离子去水合化的能力，如KcsA 钾通道中就有16 个羰基氧以4 个每环的结构垛叠排列，这一结构具有分离与离子水合的水分子的能力。
而AQP1 中孔道中的羰基氧的结构虽然足以分离体相水中的水分子，但是只能使水合离子部分去水合化，而后者则因直径仍大于狭口直径而无法通过水通道［13］。
主要参考文献1 Denker B.M.， Smith B.L.， Kuhajda F.P. et al . Identification，purification， and partial characterization of a novel Mr 28000 integral membrane protein from erythrocytes and renal tubules．J Biol Chem，1988，263(3):15634.2 Preston G. M.， Agre P.. Isolation of the cDNA for erythrocyte integral membrane protein of 28 kilodaltons:member of an ancient channel family. Proc Natl Acad Sci USA， 1991， 88:11110—11114.3 Preston G.M.,Carroll T.P., Guggino W.B.et al . Appearance ofwater channels in Xenopus oocytes expressing red cell CHIP28 protein.Science,1992, 256(5055):385—387.摘自《生物学通报》2011年第2期。