传染病样品采集方法
新冠肺炎病毒(CoVID-19)标本的采集及检测详解
怎样识别新冠病毒感染者呢？
• 离不开实验室检测
标本采集与实验室检测
• 医疗卫生机构要及时采集实验室检测标本 • 应在12小时内反馈实验室检测结果 • 标本采集、运送、存储和检测严格按照新型冠状病毒肺
炎实验室检测技术指南执行 • 各地区聚集性疫情病例，以及境外输入病例的所有原始
标本应当送至中国疾控中心进行复核 • 各地发生的首例和感染来源不明的病例以及环境监测发
拭子鼻拭子或特定部位组织样本，储存的样本可用 于后续的核酸等检测实验。 • 不能用于病毒培养分离。 • pH：不要求。
非灭活型病毒保存液
• 低温非冻型保存，不破坏病毒的外壳，保持病 毒完整性；
• 采样液中的抗生素能有效防止细菌和真菌污染； • 采样液添加了牛血清白蛋白，能保护病毒样本，
提高分离率。 • pH要求：7.4-7.6。 • 可用于病毒核酸提取等后续检测，也可用于病
• 上呼吸道标本：包括鼻咽拭子、咽拭子等。 • 下呼吸道标本：深咳痰液、肺泡灌洗液、
支气管灌洗液、呼吸道吸取物等。 • 便标本/肛拭子：留取粪便标本约10g（花生
米大小），或者3-5ml便液。推荐采集肛拭 子。 • 血液标本：尽量釆集发病后7天内的急性期 抗凝血，采 集量5ml，建议使用含有EDTA抗 凝剂的真空釆血管采集血 液。
• 商品化的采样器材：病毒采样管。咽拭子。 真空采血管及采血针等。
咽拭子
• 缠绕式咽拭子，植绒式咽拭子； • 有折断点位的； • 保存期（一般3年）； • 长短粗细不同规格。
咽拭子
商品化病毒采样管
• 病毒保存液：病毒样品在采集之后，通常 样品采集处都不能进行及时进行PCR检测， 所以需要对采集的病毒拭子样品进行运输， 而病毒本身在体外很快就会裂解掉影响后 续检测，所以在保存及运输时，就需要加 入养分离。 • 具有操作者被感染的潜在危险。
传染病样品采集方法
样品采集一、标本采集对象1、预警病例：2、医学观察病例、疑似病例、临床诊断病例及需要进一步研究地确诊病例。
3、其他需要进行诊断或排除者。
4、需要采集地环境标本。
二、标本采集要求1、从事标本采集地技术人员必须经过生物安全培训和具备相应地实验技能。
在标本采集过程中,采集人员必须采取相应生物安全防护。
2、住院病例地标本由所在医院医护人员在当地疾控机构专业人员地指导下采集.(人感染高致病禽流感标本采集技术方案)3、标本采集具体种类和数量由现场工作组确定。
4、密切接触者标本由当地疾控机构负责采集。
5、结果不好判断时，结合病程再次采样。
三、标本采集种类1、上呼吸道标本：包括咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱液、深咳痰液、最佳采集时间为发病后3天内。
2、下呼吸道标本；包括呼吸道抽取物、支气管灌洗液、肺组织活检标本.3、尸检标本：病人死后应依法尽早进行解剖，在严格按照生物安全防护地条件下进行尸检，主要采集肺、气管组织标本、条件允许下也可采集肝、肾、脾、脑、淋巴结等组织标本。
4、血清标本:每一病例必须采集血清标本.须采集急性期、恢复期双份血清.第一份血清应尽早（最好在发病后7天内）采集，第二份血清应在发病后第3—4周采集。
采集量要求5ml，以空腹血为佳，建议使用真空采血管。
5、其他标本：如果病例由腹泻症状,可采集粪便标本：有胸水者可采集胸水标本。
淤血点等。
四、标本采集方法1、咽拭子:用棉签擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁，将拭子头浸入含4~5ml采样液地管中,尾部弃去，旋紧管盖。
注：亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中，以便提高分离率,减少工作量.2、鼻拭子：将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。
以同一拭子拭两侧鼻孔。
将棉签浸入4~5ml 采样液中,尾部弃去，旋紧管盖.3、鼻咽抽取物或呼吸道抽取物：用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘液或从气管抽取呼吸道分泌物.先将收集器头部插入鼻腔或气管，接通负压,旋转收集器头部并缓慢退出.收集抽取的粘液，并用3ml采样液涮洗收集器1次4、咽漱液:用10ml不含抗菌素的采样液漱口，漱口时让患者头部微后仰，发“噢声"，让洗液在咽部转动。
传染病样品采集方法
传染病样品采集方法1. 喉拭子（Throat Swab）：将专用的喉拭子插入病患的口腔咽喉部位，轻轻向后刮拭。
采样时应避免与舌头和颊粘膜接触。
采样完成后，将喉拭子放入含有保护液的试管中。
2. 鼻拭子（Nasal Swab）：将专用的鼻拭子插入病患的鼻孔中，沿着鼻腔壁轻轻刮拭，收集分泌物。
采样完成后，将鼻拭子放入含有保护液的试管中。
3. 喉咽部分泌物（Pharyngeal Secretions）：采集方法类似于喉拭子，但是不使用喉拭子，直接让病患咽唾液入口后咳嗽，将咳嗽时产生的咽喉部分泌物收集入试管中。
4. 鼻咽分泌物（Nasopharyngeal Secretions）：要求病患保持直立，将吸管插入鼻孔中，直至吸管底部与鼻咽交界处，用手指夹住吸管底部并吸取分泌物，然后将吸管放入采样容器中。
注意采样时要避免伤害鼻腔粘膜。
5. 痰液（Sputum）：要求病患深呼吸几次，然后在舌头顶部用力咳嗽，尽量将咳嗽时产生的痰液吐出。
收集上午的第一次痰液，用无菌容器收集，并尽量避免采集唾液。
6. 血液（Blood）：采用无菌技术，穿刺或放血管提取适量的血液，注意采样时要保持无菌环境。
除了上述方法，还有其他一些特殊的传染病样品采集方法，如：7. 粪便（Stool）：要求病患将大便排出到无菌容器中，搅拌均匀后采集适量样本。
8. 尿液（Urine）：要求病患采集早上的第一次尿液，尽量用无菌容器收集样本。
9. 脑脊液（Cerebrospinal Fluid）：采用腰椎穿刺技术，将针头插入脊椎，以获得脑脊液。
10. 眼结膜炎患者眼结膜分泌物（Conjunctival Secretions）：将无菌棉签轻轻刮拭患者眼结膜分泌物，收集到无菌容器中。
在进行样品采集时，需要注意以下几点：1.采集前进行必要的准备工作，如戴好手套、准备好相应的采样容器和试剂。
2.采集时遵循无菌原则，避免污染。
3.根据不同传染病的病原体特点和临床表现，选择合适的样品采集方法。
常见传染病样品采集
常见传染病样品采集【常见传染病样品采集】1：引言1.1 目的本文档旨在指导医务人员进行常见传染病样品采集的操作流程，以确保样品的准确性和安全性。
1.2 适用范围本文档适用于所有医疗机构和实验室的医务人员。
2：采集前准备2.1 确定采集目的在进行样品采集之前，医务人员应明确采集的目的，包括检测特定传染病、确认感染的类型等。
2.2 准备采集工具和材料根据需要采集的样品类型，准备相应的采集工具和材料，例如采集棉签、采血针、尿液容器等。
2.3 检查采集工具和材料的完整性和消毒情况在进行样品采集前，检查采集工具和材料的包装是否完整，且确保已进行适当的消毒处理。
3：样品采集步骤3.1 样品采集前的个人防护医务人员在进行样品采集前，应佩戴个人防护装备，包括口罩、手套和护目镜，以防止交叉感染的发生。
3.2 采集不同样品的具体步骤针对不同类型的样品，进行如下的具体采集步骤：3.2.1 咽拭子采集步骤：先让患者张开口腔，用棉签沾取咽部分泌物，刮拭扁桃体和咽后壁，避免碰触舌头和牙龈。
3.2.2 鼻拭子采集步骤：将拭子插入鼻腔约2厘米，旋转数圈后取出，注意不要碰触鼻中隔。
3.2.3 采血步骤：选择合适的采血部位，消毒后穿刺采血，并按照相应采血管的要求采集足够的血量。
3.2.4 尿液采集步骤：提醒患者先清洁外阴部，用无菌容器接尿，确保采集到足够的尿液。
4：样品处理与存储4.1 处理样品前准备医务人员在处理样品前，应先将样品适当标识，并确保配备了正确的实验室材料和试剂。
4.2 样品的处理方法根据不同的实验室需求，对样品进行适当的处理，例如离心沉淀、稀释等。
4.3 样品的存储方式根据样品的性质和要求，选择合适的存储方式和条件进行样品保存，确保样品的稳定性和可靠性。
5：附件本文档涉及的附件包括：- 传染病样品采集记录表- 样品处理记录表- 样品存储记录表6：法律名词及注释- 样品采集：指从患者身体中采集样品用于疾病诊断或研究的过程。
院感监测采样方法简版
院感监测采样方法
引言概述：
院感（医院感染）监测采样方法是医疗机构常用的一种手段，用于监测和控制医院内感染的发生和传播。
正确的院感监测采样方法对于提高医疗质量、保障患者安全至关重要。
本文将从五个大点来详细阐述院感监测采样方法。
正文内容：
1. 采样方法选择
1.1 根据感染类型选择合适的采样方法
1.2 根据患者病情选择合适的采样方法
1.3 采样方法的标准化和规范化
2. 采样时机
2.1 根据感染病程选择合适的采样时机
2.2 根据临床表现选择合适的采样时机
2.3 采样时机的准确判断和控制
3. 采样器械选择
3.1 根据采样部位选择合适的采样器械
3.2 根据采样目的选择合适的采样器械
3.3 采样器械的消毒和质量控制
4. 采样部位选择
4.1 根据感染病灶选择合适的采样部位
4.2 根据感染途径选择合适的采样部位
4.3 采样部位的消毒和标记
5. 采样技术操作
5.1 采样前的准备工作
5.2 采样时的操作技巧
5.3 采样后的处理和保存
总结：
综上所述，院感监测采样方法是医疗机构重要的一环，合理选择采样方法、准确判断采样时机、选择合适的采样器械、采样部位和掌握采样技术操作是保证采样质量的关键。
只有严格按照标准化和规范化的要求进行操作，才能有效地监测和控制医院感染的发生和传播，提高医疗质量，保障患者的安全。
采集标本的种类和方法
采集标本的种类和方法（一）水样的采集1．污染区水样的采集如可疑污染区内有水点、水库、河流等，可按有小不采大，有静不采动的原则采取表面水。
每点采100~500ml，用聚乙烯袋或洗净的瓶子盛装，要扎紧袋口或塞好瓶塞，不得使水外溢。
如有采样箱，可用箱中的硝酸纤维膜滤器过滤采集水样，可达到集菌的目的。
过滤的水可供检查毒素或病毒之用。
2．井水的采样为检查井水是否污染，可从表面取水100~500ml。
可使用采水桶，将系有绳索的采水桶垂直接触水面使桶下沉时，井水冲开安装在桶底的单向活瓣进入桶内，水满后，猛力提起水桶，使活门受水压闭合，将可进入桶内的水提出。
如连续使用采水桶时要点燃酒精灯或酒精棉烧灼消毒后再用。
3．自来水采样为监视供水系统是否被污染，可从自来水采样检查。
采样前先点燃酒精棉球，烧灼水龙头口。
然后，将水龙头开放5~10分钟，再用500毫升灭菌瓶接水。
为中和自来水中的余氯，瓶中要预先加入2毫升1%硫代硫酸钠。
（二）空气采样1．平板沉降法适用于室内和或气流较稳定的场所，主要用于空气中细菌的检测。
根据检出目的菌的特征，选用相应的平板培养基，在室内四角和中央处各放一个平板。
同时打开平皿盖，扣放于底旁并暴露15分钟，盖好，置37℃培养24小时。
计算5个平板上平均菌落数。
2．惯性撞击采样法可利用LWC－1型离心式空气微生物采样器。
通电后，开始采样，采样时间根据情况而定，一般在0.5～8min，流量为40L/min。
采样后，取出含有培养基地胶条，37℃培养24小时，计算菌落数。
（三）食物采样1．鱼类标本用灭菌镊子先将鱼的腮盖骨掀起，用棉花拭子在腮上反复涂擦后，置于灭菌试管中。
鱼肠或腮用灭菌剪刀剪碎、研碎后，按1:5或1:10 比例加入灭菌生理盐水，放无菌试管送检。
2．贝壳类标本先将贝类外壳用毛刷充分洗刷干净，用钝刀将贝壳打开，用灭菌镊子夹取壳内全部或胃肠道置于灭菌钵中研碎，加少量灭菌生理盐水，放在灭菌试管中送检。
实验七 病料的采集、包装和运送
实验七病料的采集、包装和运送一、实验前的几点说明提前十分钟进入实验室，抄写板述。
上课，点名入座。
二、板述内容：1、目的要求1.1、认识病料的采集、包装和运送的意义。
1.2、掌握病料采集、包装和运送的一般原理、操作实验内容。
2、实验内容1.1、家兔心脏采血20ml，置无菌平皿供分离血清用。
1.2、用注射器先及2ml肝素、家兔心脏采血10ml置无菌试管供分离病毒用。
1.3、解剖家兔，采集心肝、肝、脾、肺、肾及淋巴结等盛入无菌平皿中供细菌学检查。
1.4、将上述所采脏器置50﹪磷酸甘油缓冲液上保存，供病毒学检查。
1.5、将上述平皿内所析出的血清移入另一试管加入适量抗生素供血清学检验用。
1.6、将溶器表面消毒，注明病料来源、种类、保存方法及采集时间。
用蜡封口，将所有病料放入盛有冰块的保温箱中，带送检单专人送检。
三、实验内容对传染病患畜（禽）进行微生物学诊断，并获得准确结果，是诊断传染病最确切的依据之一。
要分离病原微生物，必须准确采集含菌（病毒）最多的病料。
而要准确采集病料，又必须充分了解各种病原微生物在患畜（禽）体内及其分泌物和排泄物中的分布情况。
不同是病原微生物在患畜（禽）体内的分布情况是不同的；即使是同一种病原微生物，在病程的不同时期和不同病型中分布也不相同。
因此在采集病料之前，必须根据该传染病的流行病学特点、临床表现和病理解剖学检验的结果，对被检动物可能患有什么样的疫病作出初步的诊断。
然后有针对性地采集最合适的病料进行微生物检验，这样才容易得到准确结果。
家畜传染病给畜牧业生产带来的损失是众所周知的，因此，迫切要求对传染病进行快速而准确的诊断。
这对早期扑灭传染病的流行是非常必要的。
采集病料时应尽可能避免杂菌的污染，要求尽量做到无菌操作，所用的器械、容器等均要求无菌。
生前采集的病料，如血液、脓汁、分泌物、粪尿等应尽早送检，不宜久置。
患畜（禽）死后，应立即剖检采取病料，以防组织腐败、不利于病原体的分离。
采得的病变组织亦应立即送检。
新冠核酸标本采集
废弃物处理及消毒操作
废弃物分类收集
对采样过程中产生的废弃物进行分类收集，确保不同类别的废弃物 不混放。
废弃物安全处理
按照相关规定对废弃物进行安全处理，如高压灭菌、化学消毒等。
消毒操作规范
对采样器材、环境等进行定期消毒，确保消毒操作规范、有效。
06
结果解读与报告出具
结果解读原则及注意事项
阴性结果解读
表示标本中未检测到新 冠病毒核酸，但并不能 完全排除感染，需结合 患者症状、流行病学史 等综合分析。
阳性结果解读
表示标本中检测到新冠 病毒核酸，可确诊患者 感染新冠病毒。
注意事项
结果解读时需考虑标本 采集、运输、保存及检 测过程中的影响因素， 避免出现假阴性或假阳 性结果。
异常结果分析及处理建议
异常结果定义
采集目的和计划
明确采集标本的目的和计划，包 括检测项目、采集时间、标本保 存和运输等。
选择合适采集部位
01
02
03
鼻咽拭子
适用于普通人群的新冠病 毒核酸检测，采集方便、 快捷。
口咽拭子
适用于无法配合鼻咽拭子 采集的人群，如儿童、老 年人等。
深部呼吸道分泌物
适用于重症患者或疑似肺 部感染的人群，采集难度 较大，需要专业人员操作 。
专用保存管
使用专用的核酸保存管进行保存， 确保密封性良好，防止标本泄漏或 污染。
标本运输方式选择
干冰运输
对于远距离运输，建议使用干冰作为制冷剂，将标本置于密封良好的保温箱内 进行运输。干冰的使用量应根据运输时间和环境温度进行调整，以确保标本在 运输过程中保持低温状态。
冷藏车运输
对于近距离或城市内运输，可以使用冷藏车进行运输。冷藏车应具备良好的制 冷和保温性能，确保标本在运输过程中保持稳定的低温环境。
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样品采集一、标本采集对象1、预警病例：2、医学观察病例、疑似病例、临床诊断病例及需要进一步研究地确诊病例。
3、其他需要进行诊断或排除者。
4、需要采集地环境标本。
二、标本采集要求1、从事标本采集地技术人员必须经过生物安全培训和具备相应地实验技能。
在标本采集过程中，采集人员必须采取相应生物安全防护。
2、住院病例地标本由所在医院医护人员在当地疾控机构专业人员地指导下采集。
（人感染高致病禽流感标本采集技术方案）3、标本采集具体种类和数量由现场工作组确定。
4、密切接触者标本由当地疾控机构负责采集。
5、结果不好判断时，结合病程再次采样。
三、标本采集种类1、上呼吸道标本：包括咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱液、深咳痰液、最佳采集时间为发病后3天内。
2、下呼吸道标本；包括呼吸道抽取物、支气管灌洗液、肺组织活检标本。
3、尸检标本：病人死后应依法尽早进行解剖，在严格按照生物安全防护地条件下进行尸检，主要采集肺、气管组织标本、条件允许下也可采集肝、肾、脾、脑、淋巴结等组织标本。
4、血清标本：每一病例必须采集血清标本。
须采集急性期、恢复期双份血清。
第一份血清应尽早（最好在发病后7天内）采集，第二份血清应在发病后第3—4周采集。
采集量要求5ml，以空腹血为佳，建议使用真空采血管。
5、其他标本：如果病例由腹泻症状，可采集粪便标本：有胸水者可采集胸水标本。
淤血点等。
四、标本采集方法1、咽拭子：用棉签擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁，将拭子头浸入含4～5ml采样液地管中，尾部弃去，旋紧管盖。
注：亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中，以便提高分离率，减少工作量。
2、鼻拭子：将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。
以同一拭子拭两侧鼻孔。
将棉签浸入4～5ml 采样液中，尾部弃去，旋紧管盖。
3、鼻咽抽取物或呼吸道抽取物：用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘液或从气管抽取呼吸道分泌物。
先将收集器头部插入鼻腔或气管，接通负压，旋转收集器头部并缓慢退出。
收集抽取的粘液，并用3ml采样液涮洗收集器1次4、咽漱液：用10ml不含抗菌素的采样液漱口，漱口时让患者头部微后仰，发“噢声”，让洗液在咽部转动。
然后，将咽漱液收集于50ml无菌的螺口塑料管中。
无条件可用平皿或烧杯收集咽漱液并转入10ml螺口采样管中。
注：取鼻洗液和漱口液时，需预先了解患者是否对抗菌素有过敏史，如有洗液和含漱液中不应含有抗菌素。
5、深咳痰液：要求病人深咳后，将咳出的痰液收集于50ml含3ml采样液的螺口塑料管中。
6、呼吸道灌洗液：将收集器头部从鼻口处插入气管（约30cm）深处，注入5ml生理盐水，接通负压，旋转收集器头部并缓慢退出。
收集抽取的粘液，并用采集液涮洗收集器1次。
7、胸水：在B超定位下进行胸腔穿刺，抽取胸水5ml，置于无菌的塑料口管中。
8、肺组织活检标本：在超声或X线定位下，经皮穿刺取肺组织活检标本，置于含3ml采样液的塑料螺口管中。
9、尸检标本：每一采部位分别使用不同消毒器械，以防交叉污染；每种组织应多部位取材，各部位应取20—50g，淋巴结取2个。
10、粪便标本：采取5-10g粪便置于含5-10ml采样液无菌螺口管中，严格密封。
11、血清标本：用真空负压血管采集血液标本5ml，室温静止30分钟，1500-2000rpm离心10分钟，收集血清于无菌螺口塑料管中。
12、淤血点：选病人皮肤上的新鲜淤斑或淤血点，消毒后用针头挑破，挤出组织液，用无菌棉签蘸取先接种含双抗的葡萄糖增菌肉汤管中增菌8~12小时后分离培养或直接接种EPV平板，再涂片染色直接镜检。
涂片也可做免疫荧光检查。
13、尿液标本：取病人急性期尿液5ml加20ml无水乙醇，置4 ℃2小时，离心（3000转/分钟，15分钟），弃上清，收集沉淀部分加0.25ml磷酸盐缓冲液将其溶解，同前离心，吸取上清液检测脑膜炎奈瑟氏菌（Nm）群特异抗原麻疹、风疹：取病人急性期尿液5--10ml于无菌螺口塑料管中。
14、脑脊液(CSF)：如果怀疑为脑膜炎，CSF是用于分离和鉴定病原体最好的标本。
取患者CSF2-3ml ，注入无菌的试管内。
3000转/分，离心20分钟，用无菌吸管取沉淀物直接接种到10%羊血巧克力色琼脂平皿上做细菌培养。
CSF 沉渣还可涂片，作革兰氏染色镜检。
CSF离心后的上清液可置-20℃，供做血清学检查脑膜炎奈瑟氏菌（Nm）群特异性抗原。
五、采样液1、普通肉汤2、ph7.4～7.6的Hank’s3、5%水解乳蛋白液。
为防止细菌和真菌生长，在采样液中需加入抗菌素，以往抗菌素多用青、链霉素（每毫升含青霉素1000单位.链霉素100微克），近来发现不少种类细菌对它们具有耐药性，故近来多用庆大霉素（其终浓度为每ml 采样液中加入0.1m1的l0mg／ml）水解乳蛋白 5.0g NaCI 0.85g 加去离子水100ml 高压灭菌后4度保存4、0.85%生理盐水六、标本运送1、实验室间传递的样品应为血清或血浆，除特殊情况外一般不运送全血.和其他标本。
2、应采用WHO提出的三级包装系统2.1 第一层容器：装样品，要求防渗漏。
样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受检者姓名、种类和采集时间。
在试管的周围应垫有缓冲吸水材料，以免碰碎。
随样品应附有送检单，送检单应与样品分开放置。
2.2 第二层容器：要求耐受性好、防渗漏、容纳并保护第一层容器，可以装若干个第一层容器。
将试管装入专用带盖的容器内，容器的材料要易于消毒处理。
2.3 第三层容器：放在一个运输用外层包装内，应易于消毒。
在第三层容器外面要贴标签（数量，收、发件人）。
3、血清和血浆样品应在2~8℃条件下由专人运送。
用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品应在室温下18~23℃运送。
每一包装的体积以不超过50ml为宜。
4、运送感染性材料必须有记录。
七、样品接收1 含有感染性样品的包裹必须在具有处理感染源设备的实验室内由经过培训的、穿戴防护衣的工作人员打开，用后的包裹应进行消毒。
2 核对样品与送检单，检查样品管有无破损和溢漏。
如发现溢漏应立即将尚存留的样品移出，对样品管和盛器消毒，同时报告有关领导和专家。
3 检查样品的状况，记录有无严重溶血、微生物污染、血脂过多以及黄疸等情况。
如果污染过重或者认为样品不能被接受，则应将样品安全废弃。
并要将样品情况立即通知送样人。
4 打开标本容器时要小心，以防内容物泼溅。
样品处理时若内容物有可能溅出，则应在生物安全柜中戴手套进行。
同时应戴口罩、防护眼镜，以防皮肤或粘膜污染。
5、接收样品时应填写样品接收单。
八、拒收样品1、严重溶血、微生物污染、血脂过多以及黄疸等情况2、样品破碎、样品溢出的情况3、没按要求进行样品包装三层保护的情况4、样品姓名、编号脱落，模糊的情况5、无送检单，有送检单没领导签字和公章的情况九、样品保存l、标本应在低温下，24小时内运送至实验室。
标本至实验室后，病毒分离标本应尽快进行接种分离，48h内能进行接种的可置于4℃保存，如未能接种应置－70℃或以下保存。
2、血清标本可在4℃存放一周，长期保存置－20'C或以下。
3、试验前血清标本以56℃30分钟处理，去除非特异性物质及补体4、用于抗原和核酸检测的血浆和血细胞样品应冻存于-20℃以下，进行病毒RNA检测的样品如需保存3个月以上应置于-80℃。
5、用于CD4+/CD8+T淋巴细胞测定的样品不能长期保存，样品采集时间超过48h则不可检测。
在室温下（18 23℃）保存和运输样品，避免极端温度（冷冻或过热）。
超过37℃的温度会破坏细胞，对血液学和流式细胞仪的检测有影响。
天气热时，需要用一个隔热的容器装样品，并且把这个容器放于另一个有冰袋和吸热物质的容器中。
这种方法有助样品的保存。
CD4+和CD8+ T淋巴细胞样品采集、运输和接收1 样品的采集1.1 选择合适的抗凝剂，分别用于血液学检测和流式细胞仪的免疫表型检测。
1.1.1 用于血液学检测的抗凝剂（1） EDTA（1.5±0.15mg/ml血液）。
（2）在血球分析仪生产商允许的时间范围内检测，不超过30h，不检测超出抗凝时间范围的样品。
1.1.2 用于流式细胞仪免疫表型检测的抗凝剂（1）用K3EDTA抗凝，收集样品应在30h以内，尽早（8h以内）处理。
（2）用ACD或肝素抗凝，收集样品在48h以内，尽早（8h以内）处理。
1.2 静脉采血收集血样，将血液注入一个事先加入适当抗凝剂的试管（有条件者最好用真空试管）。
1.2.1 当收集儿童样品时，采用儿童用注射器、小试管。
1.2.2 采血后立即握住试管两端，颠倒混匀数次，将血液与抗凝剂混匀，以防止凝固。
1.3 准备适当数量的样品管1.3.1 当同一样品的血球检测和流式细胞仪免疫表型检测在同一个实验室内进行时，用1个装有K3EDTA的试管即可。
1.3.2 在所有其它条件下用2个试管（用K3EDTA作血球检测，用K3 EDTA、ACD或肝素作流式细胞仪免疫表型检测）。
1.4 对所有样品编号，并写明日期和收集时间。
2 样品运输2.1 在室温下（18 23℃）保存和运输样品，避免极端温度（冷冻或过热）。
超过37℃的温度会破坏细胞，对血液学和流式细胞仪的检测有影响。
天气热时，需要用一个隔热的容器装样品，并且把这个容器放于另一个有冰袋和吸热物质的容器中。
这种方法有助样品的保存。
2.2 尽可能快地将样品送至免疫表型检测实验室。
2.3 如需运送样品到其它地点时，应将装样品的试管放于一个防漏的容器中，并将此容器放于一个装有充足的吸水性物质的纸罐中，以防止震动并可吸收所有因试管破裂漏出的血液。
盖紧纸罐，用橡皮带系紧。
2.4 应选择特定的方案，并且安排合适的时间收集和运输样品。
3 样品接收3.1 样品到达以后立即检查试管及其所装的血样。
3.2 如有以下现象发生，采取正确的方法处理：3.2.1 如果样品较热或较冷，但没有明显的溶血或结冰，可以处理样品，但要在工作表的报告上注明温度条件。
不要马上加热和冷冻样品以使其达到室温，因为这样会对免疫表型检测的结果产生不利的影响，散射光模式的不正常会显示出所受到的影响。
3.2.2 不可检测溶血或结冰的样品。
3.2.3 不可检测凝血的样品。
3.2.4 如果样品的采集时间已超出48h，不可检测。
流脑标本采集1、脑脊液(CSF)：如果怀疑为脑膜炎，CSF是用于分离和鉴定病原体最好的标本。
取患者CSF2-3ml ，注入无菌的试管内。
3000转/分，离心20分钟，用无菌吸管取沉淀物直接接种到10%羊血巧克力色琼脂平皿上做细菌培养。
CSF沉渣还可涂片，作革兰氏染色镜检。
CSF离心后的上清液可置-20℃，供做血清学检查脑膜炎奈瑟氏菌（Nm）群特异性抗原。
2、血液：疾病早期，病人高热时采取静脉血5～7ml ，往盛有50ml 葡萄糖肉汤的三角瓶内注入3～5ml血做增菌培养。