浮游藻类及水样的采集方案

浮游藻类及水样的采集方案

一、采集地点：东河

二、采集工具

（1）器材：浮游生物网（25#）；水温计；大镊子；GPS；pH 计；；透明度盘(直

径30mm)；溶解氧瓶；PH试纸；1L采水器（藻类）; 采水器（水桶、瓶子）；

采集记录本；标签；有机玻璃瓶；

(2)试剂：4%福尔马林；鲁哥氏液；硫酸；

三、标本的采集量：1L

四、一些理化指标的测定

（1）水温：奖水温计插入一定深度的水中，放置5min后，迅速提出水面并读取温度值。当气温与水温相差较大时，应立即读数，避免受气温的影响。必要时，重复插入水中，再次读数。

（2）透明度：讲透明盘在背光处放入水中，逐渐下沉，至恰恰不能看见盘面的白色时，记取气尺度，就是透明度，以cm为单位，观察时需反复二、三次。（3）PH:使用PH计，先按照仪器使用说明书进行准备，进行校正；测定时，先用蒸馏水仔细冲洗电极，再水样冲洗，然后浸入水样中，小心搅拌或摇动，待读数稳定后记录PH值。

五、浮游藻类采集方法(采样过程包含测定水温、pH、透明度、等理化水质指标) （1）定性采集

用25#浮游生物网采集，于水面下“∞”状拖动浮游网，每秒20~30cm，约2min。将浓缩于网头的水样收集于50ml标本瓶，用4%福尔马林现场固定，以

待镜检鉴定。(在标本瓶贴上注明采样地点、日期、采样点以及采样时间等标签。定性水样用于浮游植物种类组成的鉴定)

（2）定量采集

用1L采水器于水面下采样，置于lL采样瓶中，加入15 ml鲁哥氏液固定，静置48 h后吸去上清液留30 ml备用。显微镜检计数时，充分

摇匀，吸取0.1 ml滴入计数框内，用视野法计数，计算1 L水中浮游藻类的数量(在

显微镜下进行藻类计数。每个水样计数3片，并计算平均值).

六、水样采集的一般方法(采集测定溶解氧、生化需氧量和有机污染物的水

样时应注满容器，上部不留空间，并采用水封)。

采水器第一次使用时，应用10%盐酸（或硝酸）浸泡24h，用自来水洗净，

然后用去离子水多次冲洗晾干，加盖保存。

采样时通常还应先用所取之水样将盛水器(水样瓶)洗涤2～3次，然后再将水

样灌进容器。不过，当水样含有可能会被容器壁吸附的被测物质。如固体、金属、

油脂等时，就应该用十分消洁和无水干燥的盛水器，一次灌进。水样灌好后，瓶塞和瓶盖对水样的污染也应防止（采集表层0.3~0.5m）。

水样采得后应立即在盛水器(水样瓶)上贴上标签或在水样说明书上作好详

细记录。水样说明书内容应包括水样采集的地点、日期、时间、水源种类、水体外观、水位高度、水源周围及排出口的情况、采样时的水温、气温，气候情况，分析目的和项目、采样者姓名等等。

注：（1）用于测定总氮的水样，采集后用硫酸酸化到PH﹤2，在24小时内进行测定。

（2）用于测定总磷的水样，采集后加硫酸酸化至PH≤1保存。

（3）用于测定溶解氧的水样，先采集到溶解氧瓶中后，应立即加固定剂，并存于冷暗处，记录水温和大气压。

1.水样的运送

水样在运送过程中不应破损或丢失，有以下三点值得注意。

(1)水样采集后应尽快进行分析检验，以免水中所含物质由于发生物理的，化学的和生物学的变化而影响分析结果的正确性。因此水样也应尽快得到运送。水样运送过程中还可能需要冷冻设备。如果实在来不及将水样送到中心实验室时，一些不稳定的测定项目(如细菌、生化需氧量)应该在当地实验室里得到化验。

(2)盛水器应当妥善包装，以免它们的外部受到污染，特别是水样瓶颈部和瓶塞。

(3)冬季水样可能结冰。如果盛水器用的是玻璃瓶，则要小心防冻以免破裂。

2.水样的保存

(1)冷藏或冰冻保存

原则上讲，从采样到分析的时间间隔应越短越好。水样若不能及时进行分析，一般应保存在5℃以下(大约3～4℃左右为宜)的低温暗室内。这样可使生物活性受到抑制，生物化学作用显著降低。

(2)加入保存药剂

水样保存的另一种方法是加入保存药剂。加入的方法可以是在采样后立即往水样中投加化学药剂，也可以是事先将化学药剂加到盛水器里。

对保存药剂的一般要求是，有效、方便、经济并且应对测定无干扰和无不良影响。不同水样和不同的被测物要求使用不同的保存药剂，最常用的保存药剂是酸。加酸保存能控制水样的pH值，也能大大抑制和防止微生物的絮凝和沉降，减少容器表面的吸附。如HgCl2,可以抑制细菌，适用于监测各种氮和磷。

一般，清洁水保存不超过12小时；轻度污染水样不超过48小时；重度污染水样不宜超过12小时。