山药多糖的研究进展
山药多糖的研究进展山药多糖是山药中重要活性成分之一。
本文总结近年来的文献期刊，对山药多糖的提取纯化和药理作用做一综述，为山药的开发与利用，奠定一个良好的基础。
标签：山药多糖；提取；纯化；药理活性山药作为我国第一批药食同源的药物，为薯蓣科植物薯蓣（Dioscorea opposita Thunb.）的干燥根茎。
山药味甘，性平，归肺、脾、肾经，具有补脾、养肺、固肾、益精之功效[1]。
薯蓣最早见于我国古代的《山海经》，在汉代《神农本草经》以及宋代的《图经本草》、《求薯蓣苗》、《种山药》，明代的《本草纲目》，清代的《植物名实图考》、现代《中华本草》等都有记载。
现代研究发现，山药中的主要成分为薯蓣皂苷元、黏液质、糖蛋白、甘露聚糖、植酸、尿囊素、山药素、胆碱、多巴胺、粗纤维、果胶、淀粉酶、多种微量元素等活性成分[2-3]，山药中起到药疗作用的主要成分是山药多糖，其具有很强的药理活性。
本文主要在多糖类的提取纯化、药理活性两个方面做一概述。
1 提取纯化山药多糖类成分主要有酸性多糖和中性多糖。
中性多糖主要由鼠李糖、木糖、甘露糖、半乳糖组成，其组成比例为8∶16∶25∶10，酸性多糖主要由鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、半乳糖组成，其组成比例为7∶3∶11∶19∶18[4]。
山药多糖的提取纯化方法很多，有传统的方法如溶剂法提取、酶法提取等，也有新技术、新方法，如微波、超声提取，柱层析法、膜分离法等。
以下简述山药多糖的提取纯化的方法。
1.1 提取方法1.1.1 溶剂法提取水提煎煮法是提取山药最常见的提取方法之一。
孙锋等[5]优选出的工艺为料液比1 g∶9 mL，75%乙醇提取时间2.5 h，提取温度50℃，得出的山药粗多糖收率为0.244 9%。
徐琴等[6]对淮山药的水提工艺进行优选后，得出最佳的工艺加入60倍量的水，在80℃提取6 h。
溶剂法优选后对山药的收率有着明显的提高。
1.1.2 酶提取赵希等[7]采用碱性蛋白酶法一步提取了山药中多糖成分，并确定了碱性蛋白酶提取山药多糖的优化工艺为山药粉∶10倍量的酶，酶用量为70 U/g（山药粉），提取时间1.5 h，同时pH和温度分别为9.5、45℃。
在最佳提取条件下，提取物得率为13.20%，山药多糖收率为78.81%，能够较好地提出山药中的多糖成分。
费玉婷等[8]使用纤维素酶提取山药中多糖成分，对影响多糖提取工艺的四个因素进行优选，并得出较佳工艺为酶用量为0.2%，提取温度为55℃，提取时间为3 h，pH 值为7.0。
紫山药多糖的提取实验表明传统水浸提法最佳工艺参数为60倍水，提取2.4 h温度80℃，粗多糖平均收率为5.65%；纤维素酶法提取最佳工艺参数为水提温度40℃、pH 5、加酶量0.50%，粗多糖平均收率为8.51%，较从而得出结论纤维素酶法更适用于紫山药中多糖成分的提取。
葛立军等[9]采用蛋白酶、纤维素酶、果胶酶复合提取山药多糖，得出酸性蛋白酶用量为2.0%、纤维素酶用量为1.5%、果胶酶用量为0.5%，酶温度50℃，酶H 值5.5，酶提取时间为1 h，总糖得率为5.38%。
1.1.3 微波法近年来，微波法由于有着高效、节能的特点，广泛应用于药材单体或生物活性成分提取中。
王安良等[10]利用通过二次回归正交旋转组合设计方法研究了山药多糖提取因素的影响，建立响应曲面模型，得到的优化工艺为：微波功率为546 W、微波时间为77 s、水提温度为64.7℃、水提时间为2.3 h，山药多糖的收率率为2.60%。
许本波等[11]采用微波辅助的方法对山药多糖的提取做优化工艺的选择微波功率464 W、料水比1∶20、浸提温度60℃、醇沉比4∶1，多糖收率为12%。
由此可见，微波法的工艺大大的提高了山药多糖的收率。
1.1.4 超声法陈少青等[12]就紫山药多糖的提取进行了水提和超声两种提取方式对比，最后得出水提的粗多糖平均得率为5.65%；而超声提取粗多糖平均得率为8.35%。
但超声有其局限性，不适用于大批量生产。
1.2 纯化方式山药多糖里面往往含大量的糖蛋白杂质（Sevage 法，盐酸法、三氯乙酸法、胰蛋白酶法）[13-14]、色素、溶剂残留杂质，故需要对其进行除蛋白和脱色，然后再进行初纯化处理。
1.2.1 柱层析法吴丹[4]在其实验中从山药的分离纯化开始，脱除两种沉淀蛋白质与酒精后，采用离子交换树脂DEAE-52和Sephadex G-100对山药多糖进行分离，结果得到中性和酸性两种不同性质的多糖，通过气相色谱和高效液相色谱分析得知中性多糖和酸性多糖的两种成分和组成和分子量。
高英春[14]提出的山药多糖经除杂后，经DEAE-52纤维素层析柱，和Sephadex G-100凝胶柱，得到RDPs-Ⅰ、RDPs-Ⅱ两个组成成分，经高效液相检测后，呈单一对称峰，表明达到一定的均一纯度。
王刚等[15]用葡聚糖凝胶柱层析纯化多糖，并用HPLC 法测定从山药中得到两个均一多糖，相对分子量分别为62 000和7 300 Dal。
1.2.2 膜分离法杨剑飞[16]通过复合膜来对山药多糖进行分离纯化，考查了复合膜的各个影响因素，确定纳米SiO2-聚偏氟乙烯复合膜对山药多糖进行纯化。
2 药理活性2.1 护肝作用自古以来，山药多糖就具有护肝作用。
孙设宗等[17]把实验小鼠均分为正常对照组、病理造模组、山药多糖保护组、镁离子保护组、镁离子山药多糖保护组5组，正常对照组腹腔注射调和油溶液，其余各组腹腔注射0.15%四氯化碳调和油溶液，眼球取血，分离血清测定ALT、AST、MDA、GSH、SOD、NOS及NO 含量。
结果表明镁离子保护组、山药多糖保护组能降低肝体指数及血清ALT和AST，与模型组对比差异有统计学意义（P < 0.05），同时提高GSH含量，降低MDA、NO含量和NOS活性，证明了镁离子和山药多糖有协同效应，对四氯化碳肝损伤有保护作用。
孙延鹏等[18]也同样把小鼠分为5组，即对照组、模型组、山药多糖高、中、低剂量保护组，于眼球取血，并测定血清中ALT、AST活性后，处死小鼠，测定肝组织中MDA、GSH 含量及SOD 和GSH-Px 活性。
结果发现，与模型组相比，山药多糖各剂量组均可降低小鼠肝指数、脾脏指数及降低血清ALT、AST 活性（P < 0.05），降低MDA的含量，增加GSH含量和GSH-Px 活性。
证明了山药多糖对卡介苗与脂多糖诱导的小鼠免疫性肝损伤有保护作用。
2.2 降血糖作用周燕平[19]将山药粗多糖用离子交换柱DEAE-52纯化后，得到MY组，对健康小鼠进行实验发现MY对糖尿病小鼠的血糖水平具有明显的降低作用。
郜红利等[20]建立了糖尿病小鼠模型，以10、20、30 mg/（kg·bw）的山药多糖给实验小鼠灌胃，正常对照组和糖尿病模型组均灌胃等量的蒸馏水，连续30 d，分别测定小鼠血糖值。
结果表明，模型山药多糖组、糖尿病模型组与正常对照组相比差异有统计学意义（P < 0.05），山药多糖组各剂量给药后小鼠血糖明显降低。
2.3 抗氧化作用许多疾病如癌症、冠心病、衰老等都是由于自由基得不到及时清除引起的。
王丽霞等[21]研究山药蛋白多糖在体外对氧自由基的清除作用，分别采用辣根过氧化酶法、核黄素光照法、2-脱氧-D-核糖法等生物化学方法测定了山药蛋白多糖对氧自由基的清除能力，同时用硫代巴比妥酸法和分光光度法分别测定山药蛋白多糖对小鼠肝组织脂质过氧化反应和小鼠红细胞溶血的抑制作用。
实验结果表明，山药蛋白多糖时活性氧自由基具有良好的清除作用，可以减少红细胞溶血和抑制小鼠肝匀装脂质过氧化反应。
梁亦龙等[22]将小鼠每天1次给予山药水溶性多糖，连续给药15 d，取小鼠血测过氧化物酶活性，取血、肝、肾测超氧化物歧化酶活性，脂质过氧化产物含量。
实验结果表明山药多糖物可显著提高过氧化物酶活性及血、肝、肾的超氧化物歧化酶活性，并减少血、肝、肾组织中MDA的含量，证明了山药水溶性多糖有提高小鼠体内过氧化物酶、超氧化物歧化酶活性及减少脂质过氧化产物的抗氧化作用。
许效群等[23]从山药中提取多糖，用小鼠对其进行DPPH、OH及O2清除能力的比较，结果表明，抗氧化能力还原力最强，对OH 和对DPPH的清除能力次之，对O2的除能力最弱结果表明山药多糖的还原力随着浓度的提高显著增强，具有氧化作用。
2.4 抗肿瘤作用赵国华等[24]对小鼠分别给予高、中、低3个剂量组多糖受试物1次，连续28 d，，结束后称量肿瘤组织，计算肿瘤组织抑制率，实验结果证明高、中、低3个剂量组都对肺癌有显著抑制作用。
3 总结与展望山药多糖虽然具有药理活性，目前还没有将其开发成新药。
开发新药还需要解决很多问题，如提取纯化的工业化。
因此，解决山药的产业化是开发新药的首要问题。
另外，还需对其药代动力学、作用机制等进行系统研究，为其将来开发成新药提供理论基础。
[参考文献][1] 国家药典委员会. 中华人民共和国药典一部[S]. 北京：化学工业出版社，2010：27.[2] 廖朝晖，朱必凤，刘安玲，等. 山药主要生化成分含量的测定[J]. 韶关学院学报（自然科学版），2003，24（6）：67-69.[3] 宋永刚，胡晓波，王震宙. 山药的活性成分研究概况[J]. 江西食品工业，2007，（4）：45-48.[4] 吴丹. 山药多糖提取工艺优化及结构分析[D]. 浙江大学生命科学学院，2004.[5] 孙锋，谷文英，丁霄霖. 山药粗多糖的提取工艺[J]. 食品与生物技术学报，2011，13（10）：48-51.[6] 徐琴，徐增莱，沈振国，等. 淮山药多糖提取工艺的研究[J]. 食品工艺科技，2006，28（12）：117-121.[7] 赵希，张黎明，王玲玲. 酶法提取山药中多种水溶性成分的工艺研究[J]. 精细化工，2009，26（1）：28-32.[8] 费玉婷，乔建卫，蒋立勤. 纤维素酶法提取山药多糖的工艺研究[J]. 农产品加工学刊，2008，46（6）：31-33.[9] 葛立军，朱振洪，沙跃，等. 正交实验优化复合酶法提取山药多糖工艺研究[J]. 时珍国医国药，2010，21（12）：3187-3188.[10] 王安良，云霞，杨红. 响应曲面法优化山药中多糖的微波提取工艺[J]. 食品科技，2007，28（12）：86-89.[11] 许本波，张世俊，江洪波. 微波辅助法提取山药多糖的研究[J]. 安徽农学通报，2007，13（12）：34-35.[12] 陈少青，蒋旭钢，汪财生，等. 紫山药多糖超声波辅助提取工艺优化及抗氧化性能研究[J]. 江苏农业科学，2009，21（5）：231-234.[13] 王震宙. 山药多糖的提取、分离、功能性及其功能食品工艺研究[D]. 南昌大学，2005.[14] 高英春. 山药多糖的提取分离及活性初步研究[D]. 江苏大学，2009.[15] 王刚，杜士明，肖淼生，等.山药多糖的提取分离及山药总多糖的含量测定[J]. 中国医院药学杂志，2007，27（10）：1414-1416.[16] 杨剑飞. 纳米SiO2-聚偏氟乙烯复合膜分离山药多糖的研究[D]. 天津大学，2007.[17] 孙设宗，唐微，张红梅，等. 镁离子、山药多糖对四氯化碳肝损伤的保护作用[J]. 中国现代医学杂志，2009，19（18）：2780-2783.[18] 孙延鹏，李露露，刘震坤，等. 山药多糖对小鼠免疫性肝损伤的保护作用[J]. 华西药学杂志，2010，25（1）：26-28.[19] 周燕平. 山药多糖的提取分离与结构初步解析[D]. 江南大学，2011.[20] 郜红利，肖本见，梁文梅. 山药多糖对糖尿病小鼠降血糖作用[J]. 中国公共卫生，2006，22（7）：804-805.[21] 王丽霞，刘安军，舒媛，等. 山药蛋白多搪体外抗氧化作用的研究[J]. 现代生物医学进展，2008，8（22）：242-245.[22] 梁亦龙，阎光凡，舒坤贤，等. 山药水溶性多糖的提取及抗氧化性研究[J]. 食品研究与开发，2007，128（11）：1-3.[23] 许效群，刘志芳，霍乃蕊，等. 山药多糖的体外抗氧化活性及对正常小鼠的免疫增强作用[J]. 中国粮油学报，2012，27（7）：42-46.[24] 赵国华，李志孝，陈宗道. 山药多糖RDPS2I的结构分析及抗肿瘤活性[J]. 药学学报，2003，38（1）：37-41.。
山药研究进展
应 ， 体外抗 氧化 能力 与蛋 白多糖浓 度呈正 相关 性 糖 衰 老大 鼠经 山药 治疗 后 半
脑 组织和 血清 中超氧化物 歧化 酶 （ Ｏ ， 二醛 （ Ａ） Ｓ Ｄ） 丙 ＭＤ ，
谷 胱甘肽 过氧化 物酶 （ Ｓ Ｇ Ｈ—Ｐ 的变化 。结果 显 示 山药 Ｘ）
武陟 、 温县 、 阳等地 ， 为怀 山 药 ） 沁 称 出产 的最 为 有名 。怀 山药含 多糖 、 粉 、 白质 、 离氨基 酸和微 量元 素等 多种 淀 蛋 游
成分， 具有免疫调节、 抗氧化 、 降血糖 、 降血脂、 抗肿瘤、 抗
突变 、 节脾 胃功能等 功效 ， 中国著 名 的补 益 中药 ， 调 是 也
根据 Ｂ ｘ Ｂｎｎｅ ｏ — ｅｈ ｋｎ中心组合试 验设 计原 理 ， 用 ３因素 采
３水平 的响应 面分析法 ， 后得 出山药 多糖 浸 提 的最佳 条 最 件 为 ： 水 比 １ １ ． （ ： ， 提 温 度 ８ ℃ ， 提 时 间 料 ： ７ ５ Ｗ Ｖ） 浸 ３ 浸
可显 著提高 脑 中的超氧化 物岐化 酶 （ Ｏ 、 胱苷 肽过 氧 Ｓ Ｄ） 谷 化酶 （ Ｓ Ｇ Ｈ—Ｐ 的活 性 ， Ｘ） 降低 氧化 产 物丙 二 醛 （ Ａ） ＭＤ 含
山药属薯 蓣 科 多年 蔓 生 草本 植 物 薯 蓣 （ ｉｓ ｒａｏ— Ｄ ｏｃ ｅ ｐ ｏ ｐｓａＴ ｕ ｂ ） ｏｉ ｈ ｎ ． 的根茎 ， 布 广 泛 ， ｔ 分 以古 怀 庆 府 （ 河南 省 今
２ 山药药理 作用
山药 气味平 和 ， 温补而 不骤 ， 微香 而不燥 ， 中 医常用 是 的一味健 脾补气 良药 ， 于治 疗慢 性 腹泻 ， 用 食少 ， 体倦 ， 虚 劳 咳嗽 ， 急慢性 肾炎 ， 尿病 ， 糖 甲状腺机 进等 病症 。 目前 药
山药有效成分及药理作用的研究进展
山药有效成分及药理作用的研究进展摘要：山药为薯蓣科，具有补肾易肺生津之功效，作为中国传统中医药中一味常用的药材，有极高的营养价值，且价格低廉，适于各种人群食用。
山药功效极多其主要成分包括：多糖、皂苷、山药素、粗纤维、果胶、糖蛋白、黏液质等。
具有美容养颜、增强体质、促进消化等功效关键词：山药；多糖；药理作用有效成分：1.多糖山药多糖可用于预防癌症，同时对免疫调节具有很理想的疗效。
山药多糖由多种糖类组成结构较为复杂，因此山药具有较大的分子质量，且分子质量大小不等。
组成山药的多糖主要有：杂多糖、均多糖、蛋白复合多糖等。
蛋白质构成了山药黏液质的主要成分，甘露醇次之，甘露聚糖和植酸构成了山药黏液质B的复合物。
研究人员先后从山药中提取出山药多糖RDPS—1、山药多糖RP等，研究表明，多糖在山药中含量丰富，含量较高，应该为山药主要药理作用的主要有效成分。
1.微量元素多位研究人员实验证实山药内含有较为丰富的微量元素，其机制可能为山药对微量元素的富集。
研究表明山药含有29种元素，其中磷的含量最高。
不同的发射光谱得到的结果不同，通过离子发射光谱检测到Cu、Co、Zn、Fe等含量仅次于磷。
而通过火焰原子吸收光谱法得到的结果是K、Ca的含量最高，而Zn、Cu的含量较之离子发射光谱得到的结果则相对较低。
研究还发现不同地域土壤和不同品种的山药对各种无机元素的富集量和能力也有很大不同。
1.蛋白质与氨基酸各国研究数据表明山药中氨基酸的含量约达到了1/10，种类在15种以上,各类氨基酸的含量也不尽相同。
丝氨酸、精氨酸在绝大多数山药的游离氨基酸中含量排名第一。
不同品种的山药中所含氨基酸种类都很丰富，约在15-17种以上。
其总含量为2．86％～6．64％，平均含量为4．95％。
1.尿囊素山药中含有尿囊素，尿囊素可广泛应用于临床，具有消炎杀菌、缓解疼痛的作用，此外还可用于麻醉。
尿囊素对治疗皮肤性疾病有较好的作用，其使细胞生长增殖的作用也可用于损伤皮肤的修复。
山药多糖的提取工艺及其生物活性研究现状
究 ， 行 山 药 的 精 深 加 工 ， 发 以 山药 多 糖 为 主 的 多 功 进 开
能生 物 制 品， 提高 人们 的健 康水 平有 十分重 要 取 时 间 和 提 取 次 数 。 以 山 药 多 糖 的 提 取 率 为 考 察
进 行 了 研 究 。得 到 了 山药 多 糖 提 取 的最 佳 条 件 为 ： 处 预 理 时 间 ４ ｈ， 取 时 间 为 ２ ｈ， 度 为 ６ 提 温 ０℃ ， 液 质 量 比 料
了研究 。得到怀 山药 与怀地 黄多糖 同步 提取 的最佳 条
指 标 的 最 优提 取 工 艺 为 ： 料液 比 １： 提 取 次 数 为 ２次 ， ８， 每次的提取时 间为 ３ 用 于醇沉 的乙醇 浓 度为 ６ ％。 ｈ， ０ 李 兰 等 通 过 单 因素 试 验 和 Ｌ ３ 正 交 试 验 ， 究 了 ９（ ４） 研 料 液 比 、 取 温 度 、 取 时 间 和 提 取 次 数 对 怀 山药 多 糖 提 提
山药 多 糖 的 提 取 方 法
１ １浸 提 法 提 取 山药 多糖 ．
张 季 冬【 采 用 下 面 浸 提 步 骤 。 山 药 － 脱 脂 一 乙醇 ３ ＋
回 流＿ 热 水 浸 提＿ 冷 却 一 离 心 分 离 一 减 压 浓 缩 － 醇 沉 ＋ ＋ ＋
提 取 率 和 含 量 的影 响 ， 到 怀 山药 多 糖 最佳 的 提 取 条 件 得
用 光 度 分 析 法 、 因 素 分 析 法 及 正 交 设 计 法 ， 提 取 的 单 对
对 醇 沉 浓 度 、 沉 时 问 和 醇 沉 次 数 进 行 考 察 。得 到 了水 醇
提 正 交 试 验 的 优 化 结 果 ， 液 比 为 １： ０， 度 为 料 １ 温
山药多糖提取纯化工艺研究进展
2013年第2期江苏调味副食品总第133期山药多糖提取纯化工艺研究进展余芳，朱秋红(江苏经贸职业技术学院工程技术学院，江苏南京211168)摘要：山药多糖作为药食兼用植物山药中的重要活性物质，具有增强免疫、抗衰老、抗肿瘤、降低血糖等多种生物活性。
对近年来山药多糖的提取分离工艺、纯化方法等研究进行系统分析，为进一步探索山药多糖的提取新工艺，促进山药资源的综合开发利用提供参考。
关键词：山药多糖；提取；纯化中图分类号：TS218文献标志码：A文章编号：1006—8481(2013)02—0013—04山药是传统的药食同源植物，为薯蓣科植物的块茎，具有补脾养胃、补肺养肾的功效，首见于《神农本草经》，被列为上品，言其“主伤中补虚赢，除寒热邪气，补中益气力，长肌肉，久服耳目聪明，轻身不饥延年”。
山药含有粗纤维、果胶、多糖、淀粉酶、黏液质、糖蛋白、尿囊素、皂苷、山药素、胆碱、脂肪酸等成分，以及碘、钙、铁和磷等人体不可缺少的微量元素。
山药多糖是目前公认的山药有效成分，也是山药化学和药理研究的重点。
大量研究表明，山药多糖具有增强免疫-l j、抗衰老‘2J、抗肿瘤口J、降低血糖H1等多种药理作用。
山药多糖的组成和结构较为复杂，不同研究者提取分离出不同的山药多糖，其中有均多糖、杂多糖、蛋白复合多糖等；就分子质量而言，覆盖了7×103到2×106的偌大范围，其糖基组成也各不相同。
这些多糖的获得与研究者采用的提取纯化方法密不可分。
1山药多糖的提取方法1．1水提法影响水浸提多糖的因素主要有提取时间、提取次数、溶剂体积、浸提温度、pH值、醇析浓度和植物颗粒大小等。
用水提取山药多糖，成本低、不破坏生物活性、方便实用且安全性高，但耗时长、提取率不高。
赵卫星等以光皮长柱型新鲜山药为原料，利用水提法工艺浸取鲜山药中的多糖，并用苯酚硫酸法测定其粗多糖的含量”J。
此实验以浸提温度、料液比、浸提时间等为自变量，进行单因素实验，最终确定料液比为1g：9m L、提取温度为70℃、浸提时间为3h、提取多糖总含量为0．905％。
山药多糖的提取分离及活性初步研究的开题报告
山药多糖的提取分离及活性初步研究的开题报告题目：山药多糖的提取分离及活性初步研究1. 研究背景山药是一种常见的蔬菜，富含多种营养成分。
其中山药多糖是一种重要的生物活性成分，具有较强的免疫调节、抗肿瘤、抗氧化等生物活性，因此备受关注。
本研究旨在提取分离山药多糖，并对其生物活性进行初步研究，为山药多糖的开发利用提供科学依据。
2. 研究内容（1）提取山药多糖的最佳工艺条件的研究：采用不同浓度、不同比例的溶剂，对山药多糖的提取工艺进行优化，得到最佳工艺条件。
（2）山药多糖的分离纯化：采用氨基硅胶柱层析、凝胶过滤层析、超滤等方法进行山药多糖的分离纯化。
（3）山药多糖的物化性质研究：包括分子量、糖含量等的测定。
（4）山药多糖的生物活性研究：主要包括免疫调节、抗氧化、抗肿瘤等方面的活性测试，探究山药多糖的生物学功能。
3. 研究意义山药多糖作为一种生物活性成分，具有广泛的开发利用价值。
本研究可以进一步探究山药多糖的生物学功能，为其在保健食品、药品等领域的应用提供科学依据。
4. 研究方法（1）植物材料的购买和加工：从市场上购买山药，并进行加工处理。
（2）山药多糖的提取：采用不同的提取条件，包括溶剂体系、提取时间、提取温度等条件的优化，提取山药多糖。
（3）山药多糖的分离纯化：采用氨基硅胶柱层析、凝胶过滤层析、超滤等方法进行山药多糖的分离纯化。
（4）山药多糖的物化性质研究：包括分子量、糖含量等的测定。
（5）山药多糖的生物活性研究：主要包括免疫调节、抗氧化、抗肿瘤等方面的活性测试。
5. 预期结果本研究预期能够提取纯化山药多糖，并进行初步的物化和生物活性研究，进一步探究山药多糖的功能，为其在保健食品、药品等领域的应用提供科学依据。
山药多糖的研究进展
山药多糖的研究进展王瑞娇; 马凡怡【期刊名称】《《化学研究》》【年(卷),期】2019(030)005【总页数】4页(P547-550)【关键词】山药; 多糖; 提取; 活性【作者】王瑞娇; 马凡怡【作者单位】河南大学天然药物与免疫工程重点实验室河南开封475004【正文语种】中文【中图分类】R284.2多糖是山药中有效成分之一，具有抗肿瘤、抗氧化、抗衰老、增强免疫、降低血糖等作用.山药多糖主要由葡萄糖、半乳糖及甘露糖组成，但其结构尚不明确.山药多糖的构效关系是目前研究的热点.1 山药多糖的提取和分离山药多糖的提取方法主要有水浸提法[1-7]、超声辅助法[5]、超滤浓缩提取法[8]、微波辅助法[10]和酶法[11]等.温度、时间、pH值三种提取条件会对其多糖产率、相对分子量、单糖组成、构象和潜在的生物活性造成影响，尤其温度对多糖结构的影响是最大的(见表1).2 山药多糖的生物活性2.1 抗氧化山药多糖普遍具有抗氧化活性[3, 5-9]，且其抗氧化能力的大小和山药多糖相对分子量、糖醛酸含量有关.相对分子量小的山药多糖水溶性较好，与自由基接触的面积大[5]，其抗氧化能力较强.糖醛酸的抗氧化作用归因于它们的供氢能力.在多糖中，糖醛酸基团的存在可以触发异头碳的氢原子，较高的含量意味着较强的氢原子供给能力,因此有较低相对分子量和较高糖醛酸含量的山药多糖显示出较强的抗氧化活性.表1 山药的提取Table 1 Extraction of Dioscorea opposita Thunb提取方法提取比例/W:V提取温度/℃提取时间/h其他多糖产量/%相对分子量/Da单糖组成多糖含量/%功能及生物活性参考文献水浸提法1∶880320%醇沉淀 4.6651 25065.80∶19.60∶7.92∶4.89 a63.2540%醇沉淀 2.143523071.10∶19.30∶3.75∶3.89 a64.4360%醇沉淀 0.483479061.60∶22.60∶5.47∶7.05 a80.1380%醇沉淀 1.70363169.60∶13.60∶12.60∶3.17 a56.37乳化、流变性能[1-2]水浸提法1∶8801.55.1916 6191.52∶1 b抗氧化、抗菌[3]水浸提法1∶2010020.51.09:0.51:1.0:3.03:1.77 c免疫调节[4]水浸提法1∶40251.5超声4.3440 30066.87∶10.52∶3.66∶0.28∶2.77∶15.92 d0.841∶40251.53.8536 50048.38∶8.71∶6.46∶0.84∶3.08∶32.15 d0.621∶40501.511.5448 700, 1076 40079.09∶0.46∶15.71∶0.25∶0.08∶4.12 e17.501∶40801.512.3912 000,100 420081.18∶15.10∶0.22∶0.08∶2.99 f6.51还原能力、抗氧化、降血糖[5]水浸提法1∶156****0001∶13.057∶26.56∶6.07∶2.22g410001∶0.024∶0.05∶0.084∶2.59∶0.13∶0.14 g230001∶0.82∶3.86∶2.68∶12.88∶1.29∶0.54 g抗氧化、降血糖、抗肿瘤[6]水浸提法1∶1510030.5∶1.2∶0.3∶0.3 h63.2抗氧化[7]超滤浓缩提取20过滤88.750.8∶24.2∶11.8 i抗增殖[8]降解提取降解13 20005.32% j63.8794 0006.04% j66.4836 0006.54% j68.219 0008.68% j68.33抗氧化、抗诱变、脂质过氧化作用[9]注：a Glu∶Gal∶Man∶Xyl (w/w); b Glu∶Gal(mol/mol); cMan∶GalA∶Glu∶Gal∶Arab (mol/mol); d Rha∶Gal∶Xyl∶Arab∶GlcA∶GalA (w/w); e Rha∶Glu∶Gal∶Xyl∶Arab∶GalA (w/w); f Rha∶Gal∶Xyl∶Arab：GalA (w/w); g Man∶Rha∶GlcA∶Glu∶Gal∶Xyl∶Arab (mol/mol); hMan∶Glu∶Gal∶GlcA (mol/mol); i Glu∶Man∶Gal (w/w); j uronic acid (w/w).其中 Glu：葡萄糖；Gal：半乳糖；Man：甘露糖；Xyl：木糖；GalA：半乳糖醛酸；Arab：阿拉伯糖；Rha：鼠李糖；GlcA：葡萄糖醛酸；uronic acid：糖醛酸. YANG等[3]发现纯化的山药多糖含有糖醛酸，可以清除羟基自由基和超氧自由基，其清除能力随着多糖浓度的增加而提高，但这种能力低于维生素C(Vc). JU等[7]得到的山药多糖含有12.4%的糖醛酸，具有清除羟基自由基的能力，清除效果随着浓度的增加而增加，他们的研究还表明山药多糖是羟基自由基的良好清除剂，并且对猝灭超氧自由基也有相似的清除作用.ZHAO等[5]通过四种方法提取山药多糖，如表2所示，得到相对分子量和组成有所差异的山药多糖UAE、CWE、WWE、HWE，其中UAE和CWE相对分子量分别为4.03×104和3.65×104 Da，水解产物的糖醛酸(GlcA和Gal A)含量分别为18.69%和35.23%.UAE和CWE的相对分子量较低、糖醛酸含量较高，与它们具有良好的抗氧化活性相呼应. ZHU等[6]纯化得到三种多糖CYZ、CYS-1、CYS-2，相对分子量分别为2.2×104、4.1×104和2.3×104 Da，CYS-2的糖醛酸含量明显高于CYS-1 和CYZ，其抗氧化活性按CYS-1、CYZ、CYS-2 粗多糖的顺序增加.ZHANG等[9]所得山药多糖用不同浓度的H2O2和维生素C降解，得到不同相对分子量的山药多糖DP、LP1、LP2和LP3，相对分子量大小分别为1.32×105、9.4×104、3.6×104和9×103 Da，且LP3含有更多的糖醛酸，其抗氧化能力明显高于其他样品.表2 几种山药多糖的组成和生物活性Table 2 Biactivities of polysaccharides山药多糖相对分子量(×104 Da)GlcA(%)GalA(%)AGI IC50(μg/mL)AAIIC50(mg/mL)UAE4.032.7715.9235.827.41CWE3.653.0832.1527.413.66WWE 4.87,107.64ND4.12263.7519.75HWE1.20,100.42ND2.99274.3647.572.2 抗肿瘤山药多糖同样具有抗癌活性[6, 8].ZHU等[6]从山药中提取到CYS-1、CYS-2及CYZ三种多糖，并研究了其对黑色素瘤细胞的抑制作用.结果发现，CYZ对B16小鼠黑色素瘤细胞没有明显的抑制作用；CYS-2在高剂量时具有显著的抑制作用，在中剂量具有明显的抑制作用； CYS-1在中高剂量范围内对B16小鼠黑色素瘤细胞具有显著的抑制作用；但粗多糖却显示出比任何纯化的多糖更强的抑制活性.究其原因可能是因为粗多糖是聚合物，组成较为复杂，有其他成分共同作用，对黑色素瘤细胞产生影响的不单只有多糖.但其协同抑制作用仍需要进一步研究.XUE等[8]实验得到山药多糖CYP在体外对BGC-823细胞的增殖产生剂量依赖性抑制.当CYP浓度从12.5 μg/mL增加至800 μg/mL时，抑制率从20.5 %增加至52.3 %.但在高浓度的CYP水平下，抑制率的增加率下降，可能是因为高浓度的药物会引起耐药性.CYP抑制癌细胞生长的复杂机制尚不明确.2.3 抗菌YANG等[3]研究了不同山药多糖浓度下对多种菌的抗菌活性，发现其对枯草芽孢杆菌、金黄色葡萄球菌和尼氏杆菌均没有抑制活性，但对大肠杆菌显示出一定的抑制活性，且其抑制活性随样品浓度的增加而提高，最小抑制浓度(MIC)为2.5 g/L.2.4 抗炎LI等[4]发现山药多糖NSCYP对促炎细胞因子如IL-6和TNF-α有一定的影响，通过实时PCR定量IL-6和TNF-αmRNA的含量，发现用200～800 mg/L NSCYP 处理16 h后，与对照组脂多糖(LPS)相比，RAW264.7细胞中IL-6和TNF-αmRNA的转录显著增加，与RT-PCR结果一致，在NSCYP处理下释放到培养基中的IL-6和TNF-α细胞因子显着高于载体对照组. NSCYP诱导IL-6和TNF-α的产生是剂量依赖性的，与LPS处理相当，但作用要强.2.5 增强免疫山药多糖可增强免疫活性的表达[12].LI等[4]对山药多糖NSCYP的增强免疫功能进行了研究，发现其可通过TLR4-NF-κB信号通路对巨噬细胞发挥免疫调节活性，可作为一种潜在的免疫调节剂.2.6 降血糖糖尿病，是身体不再产生足够的胰岛素或无法利用胰岛素的一种慢性疾病[13-14].糖尿病主要分为两类，其中Ⅰ型糖尿病即胰岛素依赖型糖尿病，而Ⅱ型糖尿病主要是胰岛素作用无效[15].近年来许多中药多糖包括山药多糖[16]都被发现有降血糖作用.ZHAO等[5]研究了山药多糖的降低血糖作用，发现餐后血糖的突然增加与通过α-葡糖苷酶和α-淀粉酶将多糖分解代谢为葡萄糖的淀粉水解有关.他们针对患有Ⅱ型糖尿病的个体中α-葡糖苷酶和α-淀粉酶进行研究，通过α-葡萄糖苷酶抑制试验(AGI)和α-淀粉酶抑制试验(AAI)测定山药多糖对这些酶的抑制率.如表2所示，在AGI测定中CWE、UAE、WWE和HWE表现不同的IC50值，介于27.41 mg/L～274.36 mg/L之间，而AAI测定样品的IC50值范围为3.66～47.57 g/L.与其他植物如Livingstone马铃薯相比，山药多糖显示出良好的AGI和AAI活性和降血糖能力，可以作为潜在的降血糖药物.其中HWE相对分子量较大，糖醛酸含量最低，具有最低的降血糖作用.WWE的糖醛酸含量和抗糖尿病活性略高于HWE.CWE具有最高的糖醛酸含量和较小的相对分子量，其AGI和AAI活性最佳.UAE的相对分子量较小，糖醛酸含量较高，降血糖作用接近CWE,与抗氧化呈现相同的变化规律. 2.7 抗突变ZHANG等[9]在不同浓度的过氧化氢和抗坏血酸中，将相对分子量为1.32×105 Da的山药多糖(DP)降解为相对分子量分别为9.4×104、3.6×104、9×103 Da的LP系列(LP1、LP2、LP3)降解多糖.他们利用微核中无定形片段或滞后染色体结果的检测，观察有丝分裂的抑制率，来验证其抗突变活性.结果显示，LP2和LP3的IC50值分别为65.6 mg/L和48.3 mg/L，相对分子量小的LP3显示出最高的抑制率.3 结论山药多糖的单糖组成、相对分子量大小和糖醛酸含量等对其作用机制、功能活性都会产生影响，而相对分子量小、糖醛酸含量高的山药多糖活性更佳.目前，虽然有关山药多糖的研究正不断深入，但仍需进行大量的药理和毒理学实验，以进一步拓展其功能性应用，为山药多糖的开发利用提供新的理论支撑，并带动医药、食品、化妆品等领域的发展.参考文献：【相关文献】[1] MA F, ZHANG Y, LIU N, et al. Rheological properties of polysaccharides from Dioscorea opposita Thunb. [J]. Food Chemistry, 2017, 227: 64-72.[2] MA F, ZHANG Y, WEN Y, et al. Emulsification properties of polysaccharides from Dioscorea opposita Thunb. [J]. Food Chemistry, 2017, 221: 919-925.[3] YANG W, WANG Y, LI X, et al. Purification and structural characterization of chinese yam polysaccharide and its activities [J]. Carbohydrate Polymers, 2015, 117: 1021-1027. [4] LI M, CHEN L, CHEN S, et al. Non-starch polysaccharide from Chinese yam activated RAW 264.7 macrophages through the Toll-like receptor 4 (TLR4)-NF-κB signaling pathway[J]. Journal of Functional Foods, 2017, 37: 491-500.[5] ZHAO C, LI X, MIAO J, et al. The effect of different extraction techniques on property and bioactivity of polysaccharides from Dioscorea hemsleyi [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2017, 102: 847-856.[6] ZHU Y, LI Y, ZHANG C, et al. Structural and functional analyses of three purified polysaccharides isolated from Chinese Huaishan-yams [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2018, 120: 693-701.[7] JU Y, XUE Y, HUANG J, et al. Antioxidant chinese yam polysaccharides and its pro-proliferative effect on endometrial epithelial cells [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2014, 66: 81-85.[8] XUE H, LI J, LIU Y, et al. Optimization of the ultrafiltration-assisted extraction of chinese yam polysaccharide using response surface methodology and its biological activity [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2019, 121: 1186-1193.[9] ZHANG Z, WANG X, LIU C, et al. The degradation, antioxidant and antimutagenic activity of the mucilage polysaccharide from Dioscorea opposita [J]. Carbohydrate Polymers, 2016, 150: 227-231.[10] 李建刚, 李庆典. 微波提取山药多糖的研究[J]. 中国酿造, 2012, 31(10):103-105.LI J G, LI Q D. Study on microwave-assisted extraction of chinese yam polysaccharides [J]. China Brewing, 2012, 31(10):103-105.[11] 张卫明, 单承莺, 姜洪芳, 等. 酶解法测定山药多糖含量的研究[J]. 食品科学, 2009, 30(20): 403-405.ZHANG W M, SHAN C Y, JIANG H F, et al. Enzymatic hydrolysis treatment for determination of polysacchrides in chinese yam [J]. Food Science, 2009, 30(20): 403-405.[12] ZHAO G, KAN J, LI Z, et al. Structural features and immunological activity of a polysaccharide from Dioscorea opposita thunb roots [J]. Carbohydrate Polymers, 2005, 61(2): 125-131.[13] WU J, SHI S, WANG H, et al. Mechanisms underlying the effect of polysaccharides in the treatment of type 2 diabetes: A review [J]. Carbohydrate Polymers, 2016, 144: 474-494.[14] MOOTOOSAMY A, MAHOMOODALLY M F. Ethnomedicinal application of native remedies used against diabetes and related complications in Mauritius [J]. Journal of Ethnopharmacology, 2014, 151(1): 413-444.[15] CHEN Q, ZHU L, TANG Y, et al. Preparation‐related structural diversity and medical potential in the treatment of diabetes mellitus with ginseng pectins [J]. Annals of the New York Academy of Sciences, 2017, 1401(1): 75-89.[16] ZHENG Y, BAI L, ZHOU Y, et al. Polysaccharides from chinese herbal medicine foranti-diabetes recent advances [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2019, 121: 1240-1253.。
山药多糖提取分离纯化及生物活性的研究进展
山药多糖提取分离纯化及生物活性的研究进展作者：刘明月周维群邹荣灿来源：《现代农业科技》2019年第22期摘要; ; 山药多糖（Rhizoma dioscorea polysaccharide，RDP）的提取、分離纯化及生物活性等对山药多糖的深度研发具有重要意义。
本文通过查阅国内外近年来有关山药多糖的提取、分离纯化及生物活性研究进行分析和总结，结果表明，山药多糖的提取方法有热水浸提法、超声波辅助提取法、微波辅助提取法、酶法、超声波-酶辅助提取法;含量测定方法有苯酚-硫酸法和蒽酮-硫酸法、紫外分光光度法、高效液相色谱法（HPLC）;分离纯化方法有离子交换树脂法、凝胶过滤柱色谱法。
不同提取和分离纯化方法之间存有利弊，建议科研工作者对自身研究的目的、条件及研究结果对其合理选择;RDP的生物活性研究虽已取得一定进展，但更多局限于RDP粗提物，对于开发更多符合临床需求的药物制剂及相关保健产品有待进一步深入研究。
关键词; ; 山药多糖;提取;分离纯化;生物活性中图分类号; ; R284;R284.1; ; ; ; 文献标识码; ; A文章编号; ;1007-5739（2019）22-0171-02; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ; ;开放科学（资源服务）标识码（OSID）Abstract; ; Rhizoma dioscorea polysaccharide（RDP）of extraction，isolation and purification and biological activity are of great significance to the depth of the research and development ofR.dioscorea polysaccharide.In this paper，the following results were analyzed and summarized by referring to the relevant literatures on the extraction，purification and biological activity of polysaccharides from at home and abroad in recent years.The results showed that the extraction methods of polysaccharides from R.dioscorea included hot water extraction，ultrasonic assisted extraction，microwave-assisted extraction，enzymatic extraction and ultrasonic-assisted extraction.The content determination methods of R.dioscorea polysaccharide included phenol-sulfuric acid method，anthrone-sulfuric acid method，ultraviolet spectrophotometry and high performance liquid chromatography（HPLC）.Although some progress has been made in the study of the bioactivity of R.dioscorea polysaccharides，it is mostly confined to crude extracts.Therefore，the development of more drugs and related health products in line with clinical need further in-depth research.Key words; ; Rhizoma dioscorea polysaccharide;extraction;isolation and purification;biological activity山药为薯蓣科薯蓣属地下块茎，其为珍惜的药食同源植物。
山药的化学成分和药理作用及临床应用研究进展
山药的化学成分和药理作用及临床应用研究进展一、本文概述山药，作为中医药学中的重要药材，自古以来就在我国传统医学中占据重要地位。
随着现代科学技术的进步，对山药的研究逐渐深入，尤其是对其化学成分、药理作用以及临床应用的研究更是取得了显著的进展。
本文旨在全面概述山药的化学成分、药理作用及其在临床应用中的研究进展，以期为山药的进一步开发和应用提供理论支持和实践指导。
在化学成分方面，山药含有多种活性成分，如多糖、皂苷、黄酮等。
这些成分的存在使得山药具有独特的药理作用。
在药理作用方面，山药具有健脾益胃、补肾益精、养肺止咳等功效，对多种疾病具有治疗效果。
在临床应用方面，山药已经被广泛应用于治疗脾胃虚弱、肾虚腰痛、肺虚咳嗽等症状，且取得了一定的疗效。
然而，尽管山药的研究取得了一定的进展，但仍存在许多问题需要进一步探讨。
例如，山药中各种化学成分之间的相互作用机制、山药对特定疾病的疗效机制等都需要进一步深入研究。
因此，本文希望通过概述山药的化学成分、药理作用及临床应用研究进展，为相关领域的研究者提供参考，推动山药研究的进一步发展。
二、山药的化学成分山药作为一种传统的中草药和食补食材，其丰富的化学成分是其药理作用及临床应用研究的基础。
经过众多研究者的深入研究，发现山药中含有多种活性成分，包括多糖、皂苷、黄酮类化合物、尿囊素、黏液质、胆碱、氨基酸、维生素及微量元素等。
山药多糖是山药中最主要的化学成分之一，具有显著的免疫增强、抗氧化、抗肿瘤、降血糖等药理作用。
山药中还含有多种皂苷成分，如薯蓣皂苷、薯蓣皂苷元等，这些成分具有抗炎、抗疲劳、抗氧化、抗心血管疾病等多种药理活性。
黄酮类化合物是山药中的另一类重要成分，具有抗氧化、抗炎、抗心血管疾病、抗肿瘤等多种生物活性。
同时，山药中还含有尿囊素、黏液质等特有成分，这些成分对于改善消化、促进伤口愈合、调节免疫等方面有着独特的药理作用。
除了上述成分外，山药中还含有胆碱、氨基酸、维生素及微量元素等多种营养成分，这些成分对于维持人体正常生理功能、促进健康等方面也有着重要作用。
☆山药多糖研究进展
凝胶柱层析、高效液相层析、微晶纤维素柱层析、 ＤＥＡＥ—ＳｅｐｈａｒｏｓｅＣＬ－６Ｂ柱层析和透析法等方法纯 化山药多糖，然后利用层析法鉴定纯度，ＨＰＬＣ测 定分子质量，ＧＣ－ＭＳ测定单糖摩尔比，ＩＲ和ＮＭＲ 分析其结构。何书英等口７３纯化得山药多糖ＲＰ，相 对分子质量８１ ０００，摩尔比１：１．２４：６．４２（岩藻 糖：丙三醇：赤藓醇），主要由带有分枝的１—４连接 的吡喃糖苷骨架构成，同时含有少量１—３键型的 岩藻糖。Ｚｈａｏ等［１８］纯化得白色粉末状山药多糖 ＲＤＰＳ－Ｉ，相对分子质量４２ ０００，比旋光度＋１８８．４。
（ｃＯ．８０，Ｈ２
和７ ３００。从各学者的研究发现山药多糖的种类较
多，分子质量差异大，单糖组成多样，糖苷键连接方 式多。这是由于山药的品种繁多，山药生长环境不 同，产生的山药多糖也多种多样，不同结构组成的 功能活性及其作用机理将成为未来探讨的方向。 ３
生理活性
３．１促进肠胃功能
Ｏ），特性粘度［．，１］一１６．４８
ＷＡＮＧ
（Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｆｏｏｄ
Ｈｏｎｇ—ｘｉｎ，
ＷＡＮＧ Ｙｕａｎ－ｈｕｉ
Ｓｃｉｅｎｃｅ
ａｎｄ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｊｉａｎｇｎａｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｗｕｘｉ ２１４１２２，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｃｈｉｎｅｓｅ ｙａｍ（Ｒｈｉｚｏｍａ Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ）ｗａｓ ｗｉｄｅｌｙ ｕｓｅｄ ｉｔｓ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ，ｔｈｅ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ（ＲＤＰ）ｗａｓ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔ ｒｅｖｉｅｗｅｄ ｃｈｅｍｉｃａｌ
Ｓｕｍｍａｒｙ ｏｆ ｔｈｅ ｏｐｔｉｍｕｍ
１．３微波辅助法 微波辅助是在水浸提的同时加入微波，利用不 同结构的物质在微波场中吸收微波能力的差异，使 物质中的某些区域或提取体系中的某些组分被选 择性加热，从而使被提取物从物质或体系中分离， 该法溶剂用量少，提取率高，提取速度快［９］。许本 波等采用正交试验优化微波辅助提取山药多糖工 艺，粗多糖得率１０．５２％，最佳工艺：功率为４６４ Ｗ、 料水比１
山药化学成分及现代药理研究进展
山药化学成分及现代药理研究进展摘要:山药主要化学成分有多糖、尿囊素、皂甙、色素等，具有抗氧化、抗衰老、调节免疫、抗肿瘤、降血糖等作用。
近年来，国内外学者对山药的化学成分、现代药理进行了深入研究，本文对相关研究成果作综述，为进一步开发研究提供支撑。
关键词:山药；化学成分；现代药理山药，别名怀山药、淮山药、土薯、山薯、玉延等，主要产于中国华北、西北及长江流域的江西、湖南等地。
山药其主要化学成分有多糖、尿囊素、皂甙、色素等，味甘，性平，归脾、肺、肾经，具有补脾养胃、生津益肺、补肾涩精等功效。
现代药理研究表明，其具有抗氧化、抗衰老、调节免疫、抗肿瘤、降血糖等作用。
近年来，国内外学者对山药化学成分、现代药理进行深入研究，现将其综述如下。
一、山药化学成分研究白氏等采用硅胶柱色谱分离纯化、薄层色谱及波谱等手段从山药乙醇提取物中分离并鉴定了12个化合物，分别为β－谷甾醇、油酸、β－谷甾醇醋酸酯、棕榈酸、5－羟甲基－糠醛、β－胡萝卜苷、壬二酸、环(酪氨酸－酪氨酸)、环(苯丙氨酸－酪氨酸)、柠檬酸单甲酯、柠檬酸双甲酯、柠檬酸三甲酯、柠檬酸双甲酯。
白氏等又采用硅胶柱层析方法从怀山药乙醇提取物中分离出了3个化合物，经鉴定分别为7－羰基－谷甾醇(Ⅰ)、尿嘧啶(Ⅱ)、腺苷(Ⅲ)，均首次从薯蓣属植物中分离得到，其中腺苷应为怀山药中的有效成份之一。
刘氏等采用硅胶柱色谱，从山药中分离得到2个脂肪酸类化合物，经鉴定分别为二十一碳二烯酸与硬脂酸，均为首次从山药中分离得到。
王氏等研究山药中尿囊素含量的HPLC的测定方法。
采用ODS－C(200mm×4．6mm，dp5μm)；流动相:甲醇－水(1∶9)；流18速:0．5ml/min；柱温:30℃；检测波长:224nm。
结果尿囊素在0．05～0．5μg范围内线性关系良好，r=0．9998；尿囊素的平均回收率为101.8%，ＲSD=2．0%(n=5)。
李氏等研究发现，山药多糖提取的最佳工艺参数为:提取温度为60℃，提取时间为3．0h，料液比为1∶8，pH值为8，在最佳工艺条件下，山药多糖的平均提取率为15．1%。