水果蔬菜可溶性糖测定法
苹果、橘子、香蕉中可溶性糖和蛋白质的提取及含量测定
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
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再 缓慢加入 ５ 浓硫 酸 ， 盖上试 管塞 后 ， 轻轻摇 匀 ， 再置沸 水浴 中Ｉ （ Ｙ Ａ－ ￣（ 比色空 白 用２ 蒸馏 水和０ ． ５ 蒽酮试 剂混 合 ， 并一 同置 于 沸水浴 中保温 ｌ Ｏ Ａ Ｚ － ￣） 。 冷却 至室 温 后， 在６ ２ １ ￣ｒ ｎ 波长下 比色 ， 记 录光 吸收值 。 查 标准 曲线上得 知对应 的葡 萄糖含 量 （ ｇ ） （ ４ ） 、 实 验结 果 多糖 标 准 曲线 的绘制 ： 测得 标 准 曲线 的 方程 为 ： ｙ ＝０ ． ０ ０ １ ２ ｘ ＋ ０ ． ０ ０ ０ ８ 样品糖含量＝ 样品含量（ ｕ ｇ ） ＋ 稀释倍数＊ １ ０ ０ ／｛ 样品重（ ｇ ） ＊ ｝ ｇ ／ｌ Ｏ Ｏ ｇ 鲜重 ２ 、 植 物 组 织 中可 溶性 蛋 白质 含 量 的测 定 （ １ ） 蛋 白质 标准 曲线的 绘制 取６ 支试管 ， 按 下表 加入 试剂 ， 摇匀， 向各 试管 中加人 ５ 考 马斯 亮蓝试 剂 ， 摇
实 验 原理 考 马斯 亮蓝 Ｇ 一 ２ ５ ０ 法 是利 用蛋 白质— 染 料 结合 的原理 ， 定量地 测 定微量 蛋 白质浓 度 的快 速 、 灵敏 的方法 。 考 马斯亮蓝 ＿ ２ ５ 薛在 着两种 不同 的颜 色形 式 ， 红色和 蓝色 。 它和蛋 白质通 过范德瓦尔 键结合 ， 在一 定蛋 白质浓 度范围 内， 蛋 白质 和染料结合符 合 比尔定律 。 此染 料与蛋 白质结合后 颜色 由红 色形式转变成 蓝色形 式， 最大光 吸收 由４ ６ ５ ｍ１ 变 成５ ９ ５ ｎ ｍ， 通 过测 定５ ９ ５ ｒ 】 Ｉ Ｉ １ 处光 吸收的增 加量可 知与其 结合蛋 白质 的量 。 蛋白质和染料结合是一个很快的过程， 约２ ｍｉ ｎ ￣ １ ］ 可反应完全， 呈现最大光 吸收 ， 并可 稳 定 ｌ ｈ， 之后， 蛋 白羼 染料 复合 物发 生聚 合并沉 淀 出来 。 此法 灵敏 度高 ， 易 于操 作 ， 干扰 物质 少 ， 是一 种 比较好 的定 量法 其 缺点 是在 蛋 白质 含 量 很高时线性偏低 ， 且不同来源蛋白质与色素结合状况有一定差异 。 糠 醛或羟 甲基糠醛 进一 步与蒽 酮试剂 缩合产 生蓝绿 色物质 ， 其在可 见光 区 ６ ２ ０ ｎ ｍ波长处有 最大 吸收 ， 且 其光 吸收值在 一定范 围 内与 糖的含量 成正 比关系 。 此法 可用 于 单糖 、 二糖 和 多糖 的含量 测定 ， 并具有 灵敏度 高 ， 简便 快 捷 ， 适 用于微 量 样 品的 测定 等优 点 。 二． 实 验 材料 ． 试 剂 与器 材
果蔬汁可溶固形物的测定
果蔬汁可溶固形物的测定果蔬汁的可溶固形物是指果蔬汁中可溶解的糖分、酸度和其他可溶性成分。
测定果蔬汁的可溶固形物有助于了解果蔬汁的口感、营养成分和质量控制等方面的情况。
下面将介绍果蔬汁可溶固形物的测定方法。
一、实验原理可溶固形物是指果蔬汁中可溶于水的所有成分，包括糖分、酸度和其他可溶性成分。
通过测定可溶固形物的含量，可以了解果蔬汁的口感、营养成分和质量控制等方面的情况。
本实验采用折光法测定果蔬汁的可溶固形物含量。
二、实验步骤1.仪器准备：准备折光仪、擦镜纸、吸管、电子天平等实验仪器。
2.样品制备：选取不同种类的果蔬，洗净后榨汁，过滤掉残渣，得到纯净的果蔬汁。
3.样品测定：用吸管取少量果蔬汁滴在折光仪的镜片上，用擦镜纸擦干净镜片，将折光仪对准光源，读取折光仪上的数值。
4.重复测定：按照上述步骤重复测定多个样品，每个样品至少测定三次，以减小误差。
5.数据处理：将测定结果记录在表格中，并计算平均值和标准差。
6.结果分析：根据测定结果，分析不同种类果蔬汁的可溶固形物含量及其差异，并探讨其可能原因。
三、实验结果根据实验结果，可以发现不同种类果蔬汁的可溶固形物含量存在差异。
一般来说，含糖量高的果蔬汁可溶固形物含量较高，如葡萄汁；含糖量低的果蔬汁可溶固形物含量较低，如西瓜汁。
此外，可溶固形物含量的差异也可能与果蔬的品种、生长环境、成熟度等因素有关。
四、实验讨论与建议1.本实验采用折光法测定果蔬汁的可溶固形物含量，该方法具有操作简便、快速准确的优点。
但是，需要注意的是，折光法仅适用于测量可溶于水的固形物，不包括不溶于水的物质。
因此，对于某些含有大量不溶性成分的果蔬汁，需要先进行过滤或离心等预处理才能进行测定。
2.在实验过程中，需要注意保持吸管和折光仪的清洁，以免影响测定结果的准确性。
同时，由于不同种类的果蔬汁具有不同的折光率，因此在进行测定前应对每种样品进行校正。
3.根据实验结果，可以对不同种类的果蔬汁的可溶固形物含量进行比较和分析，以便更好地了解各种果蔬的营养成分和口感特点。
植物体内可溶性糖含量的测定
植物体内可溶性糖含量的测定（蒽酮法）糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一，也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件，不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定，可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
一、目的：糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一，也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件，不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定，可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
二、原理糖类遇浓硫酸脱水生成糖醛或其衍生物，反应如下：糠醛或羟甲基糠醛进一步与蒽酮试剂缩合产生蓝绿色物质，其在可见光区620nm波长处有最大吸收，且其光吸收值在一定范围内与糖的含量成正比关系。
此法可用于单糖、寡糖和多糖的含量测定，并具有灵敏度高，简便快捷，适用于微量样品的测定等优点。
三、实验材料、仪器及试剂1．材料：植物组织叶片2．仪器：分光光度计恒温水箱20ml具塞刻度试管（3支）漏斗100ml 容量瓶刻度试管试管架剪刀研钵3．试剂：（1）200μg/ml标准葡萄糖：AR级葡萄糖100mg，蒸馏水溶解，定容至500ml。
（2）蒽酮试剂：1g蒽酮，用乙酸乙酯溶解，定容至50ml，棕色瓶避光处贮藏；（3）浓硫酸四、实验方法1．葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管，编号，按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂，再缓慢地加入5ml浓H2SO4，摇匀后，打开试管塞，置沸水浴中煮沸10分钟，取出冷却至室温，在620nm波长下比色，测各管溶液的光密度值（O D），以标准葡萄糖含量为横坐标，光密度值为纵坐标，作出标准曲线。
2．样品中可溶性糖的提取称取1克叶片，剪碎，置于研钵中，加入少量蒸馏水，研磨成匀浆，然后转入20ml刻度试管中，用10ml蒸馏水分次洗涤研钵，洗液一并转入刻度试管中。
置沸水浴中加盖煮沸10分钟，冷却后过滤，滤液收集于100ml容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度，摇匀备用。
可溶性糖测定方法
可溶性糖测定方法可溶性糖测定方法是一种常用的分析方法，用于测定食品、饮料、果汁等中的可溶性糖含量。
可溶性糖是指在水中能够溶解的糖类化合物，如葡萄糖、果糖、蔗糖等。
测定可溶性糖含量可以帮助我们了解食品的甜味程度，还可以用于质量控制和产品开发等方面。
目前常用的可溶性糖测定方法主要包括比色法、光度法和高效液相色谱法等。
下面我将分别介绍这些方法的原理和步骤。
首先是比色法。
这种方法基于可溶性糖分子与特定试剂的反应，生成具有一定颜色的复合物。
比色法最常用的试剂是菲龙试剂、安利试剂和硝酸铜试剂等。
测定步骤一般包括样品的准备、试剂的配制和比色测定。
样品的准备通常是将食品或饮料样品经过适当处理后，将溶液通过滤纸滤除杂质。
试剂的配制则是根据给定的比例将试剂与溶剂混合。
比色测定时，则是将样品溶液和试剂溶液混合，并在一定时间内测量其吸光度。
根据比色复合物的吸光度与可溶性糖含量的关系，即可计算出样品中可溶性糖的含量。
其次是光度法。
这种方法是利用可溶性糖溶液对特定波长的光的吸收特性进行测定的。
光度法需要使用专用的光度计或分光光度计进行测量。
测定步骤与比色法类似，首先是样品的准备和试剂的配制，然后将试剂与样品溶液混合，并将混合溶液转移到光度计中进行测量。
光度计会根据样品溶液对光的吸收情况，输出吸光度值。
根据吸光度与可溶性糖浓度的相关关系，可以计算出样品中可溶性糖的含量。
最后是高效液相色谱法。
这种方法需要使用高效液相色谱仪进行分析。
高效液相色谱法是通过样品中可溶性糖与色谱柱中的填料分离，进而进行测定的。
测定步骤包括样品的制备和高效液相色谱仪的设置。
样品的制备一般涉及样品的提取和净化等过程。
提取过程通常使用有机溶剂将可溶性糖从样品中提取出来，净化过程则是通过固相萃取等手段去除杂质。
高效液相色谱仪的设置则是根据样品特性，选择合适的色谱柱，并设置适当的流动相条件和检测波长。
测定时，样品溶液会经过自动进样器注入色谱柱，可溶性糖在柱中与填料相互作用而分离，然后通过检测器检测吸收峰面积或浓度，最终计算出样品中可溶性糖的含量。
GB6194—86 水果、蔬菜可溶性糖测定法2
GB6194—86 水果、蔬菜可溶性糖测定法作者不详摘自网上收集人气551 适用范围本标准适用于新鲜水果、蔬菜、干果可溶性糖的测定。
2 测定原理在沸热条件下，用还原糖溶液滴定一定量的费林试剂时将费林试剂中的二价铜还原为一价铜，以亚甲基蓝为指示剂，稍过量的还原糖立即使蓝色的氧化型亚甲基蓝还原为无色的还原型亚甲基蓝。
3 仪器设备a 高速组织捣碎机；b 电热恒温水浴；c 1000W调温电炉；d 玻璃仪器：200ml，250ml容量瓶，250m1锥形瓶，50ml碱式滴定管。
4 试剂配制4.1 费林试剂甲：称取硫酸铜（CuSO4·5H2O，分析纯）34.6g溶于水中，稀释至500ml，过滤，贮于棕色瓶内。
4.2 费林试剂乙：称取氢氧化钠50g和酒石酸钾钠（KNaC4O6H4·4H2O，分析纯）138g溶于水中，稀释至500ml，用石棉垫漏斗抽滤。
4.3 转化糖标准溶液：称取9.5g蔗糖（分析纯）用水溶解后转入1000ml容量瓶中，加入6MHCl（分析纯）10ml，加水至100ml。
在20-25℃下放置三天或在25℃保温24h，然后用水定容（此为酸化的1%转化糖液，可保存3-4个月）。
测定时，取1%转化糖液25.00ml放入250ml容量瓶中，加入甲基红指示剂一滴，用1MNaOH溶液中和后用水定容，即为1mg/ml转化糖标准溶液。
4.4 亚甲基蓝溶液：称取 . 5g亚甲基蓝（分析纯）溶于100ml水中。
4.5 乙酸锌溶液：称取21.9g乙酸锌〔Zn（OAC）2·2HzO，分析纯〕溶于水中，加冰乙酸3ml，稀释至100ml。
4.6 亚铁氰化钾溶液：称取10.6g亚铁氰化钾〔K4Fe（CN）6·3H2O，分析纯〕溶于水，稀释至100ml。
5 样品提取液制备取待测样品适量，洗净，用不锈钢刀将可食部分切成适当小块充分混匀后，按四分法取样。
称取10 0g鲜样加入等重量的水，放入组织捣碎机中捣成1.1匀浆，有些材料匀浆比例可适当调整，多汁果蔬类可直接捣浆。
果蔬中还原糖与总糖的测定
果蔬中还原糖与总糖的测定果蔬中总糖及还原糖含量的测定一、实验目的1、掌握总糖和还原糖含量的测定方法。
2、学习分光光度计的原理和操作方法。
3、了解蒽酮法测定可溶性糖含量的原理。
二、实验原理总糖是指样品中的还原单糖，在本实验条件下可水解为还原单糖的蔗糖和麦芽糖，以及可部分水解为葡萄糖的淀粉。
多糖为非还原糖，可用酸将没有还原性的多糖和寡糖彻底水解成具有还原性的单糖，再利用还原糖的性质进行测定，这样就可分别求出总糖和还原糖的含量。
糖在浓硫酸作用下，可经脱水反应生成糖醛，生成的糖醛或羟甲基糖醛可与蒽酮反应生成蓝绿色糖醛衍生物，在一定范围内，颜色的深浅与糖的含量成正比。
糖类与蒽酮反应生成的有色物质，在可见光区的吸收峰为630nm，可在此波长下进行比色，故可用于糖的定量。
三、实验器材1、材料：梨2.仪器：分光光度计、恒温水浴、电子分析天平、高速冷冻离心机、容量瓶（100ml）×2）玻璃漏斗、量筒、灰浆、锥形瓶、试管、移液管、pH试纸3。
试剂：蒽酮试剂：取2g蒽酮溶于1000ml体积分数为80%的硫酸中，当日配制使用。
标准葡萄糖溶液（0.1mg/ml）：称取100mg葡萄糖，溶于蒸馏水并稀释至1000ml（可加几滴甲苯作防腐剂）。
6mol/lhcl溶液20%氢氧化钠溶液：称取20g氢氧化钠固体，溶于蒸馏水中，稀释至100ml。
4、实验操作1、葡萄糖标准曲线的绘制：取6根大试管，从0到5编号，按下表加入每种试剂试剂管号标准葡萄糖溶液/ml蒸馏水/ml蒽酮试剂/mla620nm01.04.00.10.94.00.20.84.00.30.74.00.40.64.00.50.54.0012345置冰水浴中5min煮沸10min，冷却后室温放置10min，在620nm处比色以吸光度为纵坐标，各标准液浓度（mg/ml）为横坐标做图得标准曲线。
2、样品中还原糖的提取和测定称取1g梨，加入约3ml蒸馏水，在研钵中研磨成匀浆，移入三角瓶中，用约12ml蒸馏水冲洗研钵2~3次，将洗涤液移入三角瓶中。
实验植物组织中可溶性糖含量的测定
实验方案一、实验目的通过实验，掌握测定萝卜品质的方法（一）萝卜外部形态的测定1、实验材料取鲜样3个∕小区直尺、蒸馏水、笔、记录本、吸水纸2、实验方法．用自来水将各组萝卜洗净后，再用蒸馏水洗涤，擦干表面水分．每个小区取3个重复，用电子天平称量每株的鲜重，用直尺测量植株的茎长、茎粗、叶长，取平均值作为指标值实验(二) 植物体内可溶性糖含量的测定（蒽酮法）一、实验目的了解蒽酮法测定可溶性糖含量的原理；掌握分光光度计的使用二、实验原理糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一，也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件，不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定，可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
蒽酮比色定糖法是一个快速而方便的定糖方法，在强酸性条件下，蒽酮可以与游离的或多糖中存在的己糖、戊糖及己糖醛酸（还原性和非还原性）作用生成蓝绿色的糖醛衍生物，其颜色的深浅与糖的含量在一定范围内成正比。
蒽酮也可以和其他一些糖类发生反应，但显现的颜色不同。
当存在含有较多色氨酸的蛋白质时，反应不稳定，呈现红色。
上述特定的糖类物质，反应较稳定。
该法特点：灵敏度高，测定量少，快速方便。
三、材料、仪器及试剂1.材料：植物种子、白菜叶、柑桔2.仪器：分光光度计；恒温水箱； 20ml具塞刻度试管（3支）漏斗；100ml容量瓶；刻度试管；试管架；剪刀；研钵3.试剂（1）200μg/ml标准葡萄糖：AR级葡萄糖100mg，蒸馏水溶解，定容至500ml。
（2）蒽酮试剂：1g蒽酮，用乙酸乙酯溶解，定容至50ml，棕色瓶避光处贮藏；（3）浓硫酸四、实验方法1.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管，编号，按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂，再缓慢地加入5ml浓H2SO4，摇匀后，打开试管塞，置沸水浴中煮沸10分钟，取出冷却至室温，在620nm波长下比色，测各管溶液的光密度值（OD），以标准葡2.称取1克白菜叶，剪碎，置于研钵中，加入少量蒸馏水，研磨成匀浆，然后转入20ml刻度试管中，用10ml蒸馏水分次洗涤研钵，洗液一并转入刻度试管中。
水果、蔬菜制品中可溶性固形物含量的测定
实验4 水果、蔬菜制品中可溶性固形物含量的测定（GB/T 10788-89）【适应范围】本折射方法适用于水果、蔬菜制品中可溶性固体成分的测定。
本法特别适用于粘稠制品、含用悬浮物的制品和副含糖分的制品。
若制品含有其它可溶性物质，所得结果仅为近似。
然而用此方法得到的结果通常被视为测定可溶性物含量的比较方便的方法。
【原理】20℃的条件下，在折射仪上测定样品的折射读取折射值或直接读取样品中的可溶性固体的含量。
【仪器设备】1、折射仪（指示折射刻度）：刻度为0.001，估计到0.0002。
20℃调节蒸馏水的折射值为1.3330。
2、折射仪（批示蔗糖的百分含量）：刻度为0.5%，估计到0.25%。
20℃调节蒸馏水的显示值为0。
【测定步骤】1、根据样品性状选择不同的样品前处理技术。
（1）液体样：直接混合样品后进行测量。
（2）半粘稠样品：直接混合样品，将样品压滤通过纱布，将液体进行测量。
（3）粘稠样品：称取40g（精确到0.01g）样品于均衡烧杯中，加入100-150ml蒸馏水，加热沸腾2-3分钟，冷却至室温。
20分钟后称重，过滤，保留滤液待测。
2、检测样品：（1）折光计在测定前按说明书进行校正。
（2）分开折光计的两面棱镜，以脱脂棉蘸酒精擦净。
（3）用玻璃棒蘸取均匀试样汁液2~3滴，仔细滴于折光计棱镜平面之中央（注意勿使玻璃棒触及棱镜）（4）迅速闭合上下二棱镜，静置1分钟，要求液体均匀无气泡并充满视野。
（5）对准光源，由目镜观察，调节指示规，使视野分成明暗两部。
再旋动微调螺旋，使两部界限明晰。
（6）如折光计读数标尺刻度为百分数，即可可溶性固形物的百分率，按可溶性固形物对温度校正换算成20℃时标准的可溶性固形物百分率。
（7）如折光计读数标尺刻度为折光率，可读出其折光率，然后按折光率与可溶性固形物换算表查得样品中之可溶性固形物的百分率，再按可溶性固形物对温度校正表换算成20℃时标准的可溶性固形物百分率。
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５．１ 还原糖 （ ） 按式 （１） 计算
还 原 糖 ( % , 以 转 化 糖 计 ) = VG × W × 2 15 00 0 0 × 1 0 0 ５．２ 可溶性总糖 （ ） 按式 （２） 计算
（１）
可 溶 性 总 糖 (% ,以 转 化 糖 计 ) = G × A × 2 5 0 × 1 0 0
取待测样品 洗净 充分混匀后 按四分法取样 称取 １ＯＯｇ 鲜样加入等重量的 水 捣成 １ １ 匀浆 多汁果蔬类可直接捣浆 称取匀浆 ２５．０ 或 ５０．０ｇ 放人 １５０ｍＬ 烧杯中 含有机酸较多的材料加 ０．５ ２．０ｇ 粉状 ＣａＣＯ３调至中性 转入 ２５０ｍＬ 容量 瓶中 并调整体积约为 ２００ｍＬ 置 ８０ ２ 水浴保温 ３０ｍｉｎ 其间摇动数次 取出 加入乙酸锌溶液及亚铁氰化钾溶液各 ２ ５ｍＬ 冷却 定容 ４．２ 测定 ４．２．１ 费林试剂的标定 取费林试剂甲 乙各 ５．００ｍＬ 或 １０．００ｍＬ 等体积混合混合液 于 ２５０ｍＬ 锥形瓶中 放入玻璃珠 ４ ５ 粒 先加入比预测仅少 ０．５ｍＬ 的 １ｍｇ／ｍＬ 转化 糖标准液 电炉上加热 使其在 ２ｍｉｎ 左右沸腾 准确煮沸 ２ｍｉｎ 立即加入 ０．５ 亚 甲基蓝指示剂 ６ 滴 并继续以每 ４ ５ ｓ 的滴速滴加标准糖液 直至生成砖红色氧
褪尽为止 记下待测糖液的用量 Ｖ２ （毫升数） ４．２．３ 准确测定 取费林试剂甲 乙各 ５．００ｍＬ 或 １０．００ｍＬ 混合液加入锥形瓶中 加
入比预测仅少 ０．５ｍＬ 的待测糖液 并补加 Ｖ１－Ｖ２毫升水 以下按费林试剂标定同样操 作 继续滴至终点 前后沸热时间须在 ３ ｍｉｎ 左右 待测糖液消耗量应控制在 １５
５０ｍＬ 范围内 ４．２．４可溶性总糖测定 取已经制备的待测液 １００ｍＬ 于 ２００ｍＬ 容量瓶中 加 ６Ｍ ＨＣｌ
１０ｍＬ 在 ８０ ２ 水浴加热 １０ｍｉｎ 在冷水槽中冷却后 加甲基红指示剂二滴用 ６Ｍ
及 １Ｍ ＮａＯＨ 溶液中和 定容 以下步骤同 ４．２．２ ４．２．３
５ ． 结果计算
６ ．来源
中国国家标准 ＧＢ ６１９４ ８６
提取剂的选择
１ 本标准法是用水作提取剂 在测定可溶性总糖时 蔗糖需进行水解 但一些含菊
糖和可溶性淀粉较多的果蔬样品 当用水作提取剂时 这部分物质也会被提取出来
对该类样品要用 ８０ 乙醇作提取剂将多糖分离除去 具体操作步骤如下 ２ 取成熟度适中 有代表性的水果 蔬菜适量 洗净 充分混匀后按四分法取样 称取 １００ｇ 鲜样加入等重量的 ９５ 乙醇后捣成 １ １ 匀浆 称取匀浆 ２５．０ 或 ５０．０ｇ 放人 １５０ｍＬ 烧杯中 含有机酸较多的样品加 ０．５ ２．０ｇ 粉状 ＣａＣＯ３调至中性 继续 加入 ９５ 乙醇使其最后浓度约达 ８０ 用 ８０ 乙醇将样液全部转入 ２５０ｍＬ 容量瓶 中 并调整体积约为 ２００ｍＬ 置 ８０ ２ 水浴保温 ３０ｍｉｎ 其间摇动数次 取出冷却 至室温后 用 ８０ 乙醇定容 取一定量 （１００ ２５０ｍＬ）乙醇浸出液放入蒸发皿中 在 ６５ ７５ 水浴上蒸去乙醇 加少量水使沉淀物软化分散 加入乙酸锌溶液和亚铁 氰化钾溶液各 ２ ５ｍＬ 然后转入 ２５０ｍＬ 容量瓶 用水洗涤蒸发皿一并洗入容量瓶中 定容 过滤待测
化亚铜沉淀蓝色褪尽为终点 记下待测糖液的用量 Ｖ１得出 １０ｍＬ 费林试剂所相当的 糖的毫克数
４．２．２ 预测 取费林试剂甲 乙各 ５．００ｍＬ 或 １０．００ｍＬ 混合液于 ２５０ｍＬ 锥形瓶中 加
入待测糖液约 １５ｍＬ 加热至沸 约沸 １５ｓ 后迅速滴加待测糖液 至呈现极轻微的蓝
色为止 此时加入 ０．５ 亚甲基蓝指示剂 ６ 滴 继续滴加待测糖液 直至溶液蓝色
MMFSCNG0050 水果 蔬菜 干果 可溶性糖 氧化还原滴定法
MM_FS_CNG_0050 水果 蔬菜可溶性糖测定法
１ ． 适用范围 本方法适用于新鲜水果 蔬菜 干果可溶性糖的测定
２ 原理概要 在沸热条件下 还原糖溶液滴定一定量的费林试剂时可将二价铜还原为一价铜
以亚甲基蓝为指示剂用还原糖溶液进行标准滴定 ３ ．主要仪器和试剂 ３．１ 仪器设备 ３．１．１ 高速组织捣碎机 ３．１．２ 电热恒温水浴 ３．１．３ １０００Ｗ 调温电炉 ３．２．主要试剂 ３．２．１ 费林试剂甲 称取硫酸铜晶体 ３４．６ｇ 溶于水 稀释至 ５００ｍＬ 过滤 贮于棕色 瓶内 ３．２．２ 费林试剂乙 称取氢氧化钠 ５０ｇ 和酒石酸钾钠晶体 １３８ｇ 溶于水中 稀释至 ５００ｍＬ 用石棉垫漏斗抽滤 ３．２．３ 转化糖标准溶液 称取 ９．５ｇ 蔗糖用水溶解后转入 １０００ｍＬ 容量瓶中 加入 ６ｍｏｌ／Ｌ ＨＣＬ １０ｍＬ 加水至 １００ｍＬ 在 ２０ ２５ 下放置三天或在 ２５ 保温 ２４ｈ 然后 定容 测定时 取 １ 转化糖液 ２５．００ｍＬ 放入 ２５０ｍＬ 容量瓶中 加入甲基红指示剂 一滴 用 １Ｍ ＮａＯＨ 溶液中和后用水定容 ３．２．４ 亚甲基蓝溶液 称取 ０．５ｇ 亚甲基蓝 （分析纯） 溶于 １ＯＯｍＬ 水中 ３．２．５ 乙酸锌溶液 称取 ２１．９ｇ 乙酸锌 Ｚｎ （ＯＡＣ）２ ２Ｈ２Ｏ 分析纯 溶于水中 加 冰乙酸 ３ｍＬ 稀释至 １ＯＯｍＬ ３．２．６ 亚铁氰化钾溶液 称取 １０．６ｇ 亚铁氰化钾 Ｋ４Ｆｅ（ＣＮ）６ ３Ｈ２Ｏ 分析纯 溶于水 稀释至 １ＯＯｍＬ ４ ．过程简述 ４．１ 样品制备
（２）
V W 1000
式中 Ｗ—样品称重 ｇ Ｇ—１０ｍＬ 费林试剂相当的转化糖 ｍｇ Ｖ—准确滴定时所用待测液的体积 ｍＬ Ａ—稀释倍数
２５０—定容体积 ｍＬ １０００—由毫克换算为克 ５．３ 非还原糖 （ ） 按式 （３） 计算
非还原糖（ 以蔗糖计） （可溶性总糖 还原糖） ０．９５
（３）
式中 ０．９５—由转化糖换算成蔗糖的因数 ５．４ 结果表示
两次平行试验结果相对相差 含量在 ５ 以下的不得超过 ３ 含量在 ５ １０
的不得超过 ２ 含量在 １０ 以上的不得超过 １ 鲜样以鲜基表示 风干样以
风干基表示