红细胞比容测定实验报告

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医学临床实验—血细胞比容测定

医学临床实验—血细胞比容测定

血细胞比容测定
【目的】
掌握血细胞比容的温氏测定法。

【原理】
将定量的抗凝血液灌注于温氏管中,经过一定的速度和时间离心沉淀后,观察压紧红细胞层占全血体积的比值。

【实验器材或试剂】
1 器材:温氏比积管、毛细吸管、离心机。

2 试剂:按EDTA-K223.5mg/每试管(或肝素钠0.2mg/每试管)标准,将抗凝剂分装于小试管中干燥。

【操作步骤】
1、抽取静脉血2.0ml,立即注入装有抗凝剂的抗凝管中并混匀。

2、用细长毛细滴管吸取混匀的抗凝血,插入温氏比积管底部,然后将血液缓慢注入至10cm 刻度处,避免产生气泡。

3、将加好血液的比积管置于水平离心机,以3000r/min的速度离心30min,读取压实红细胞层柱高的毫米数,然后再以同样速度离心10min至红细胞层高度不再下降为止。

【结果计算】
血细胞比容=红细胞层柱高的毫米数×0.01
【注意事项】
1、所用器材必须清洁干燥,以防溶血,如遇溶血现象应加以注明。

2、不能使用影响红细胞体积的抗凝剂。

3、离心速度和时间要规范化,否则血细胞比容的误差很大。

【临床意义】
1、参考范围:男性:0.40~0.50
女性:0.37~0.48
2、增高或降低
A、血细胞比容增高:见于各种原因所致的血液浓缩或红细胞绝对性增多。

临床上测定脱水病人的血细胞比容,作为计算补液量的参考。

B、血细胞比容减低:见于各类贫血。

3.1 红细胞比容的测定

3.1 红细胞比容的测定

[实验目的]
学习和掌握用温氏分血管测定红细胞比容的方法。

[实验原理]
将定量的抗凝血灌注于特制的、具有刻度的比容管内,定时、定速离心后,有形成分和血浆分离,上层淡黄色液体是血浆,中间一薄层白膜是白细胞和血小板(或栓细胞),下层不透明的暗红色部分为红细胞,彼此压紧而不改变细胞的正常形态。

根据红细胞柱及全血高度,可计算出红细胞在全血中的容积比值,即为红细胞比容(压积)。

[主要仪器与器械]
温氏分血管,普通离心机,长针头,干棉球等。

[实验方法与步骤]
1.取血
2.离心
3000r·min-1,30min。

3.读数
注意事项
☐选择抗凝剂必须考虑到不能使红细胞变形、溶解。

本实验采用柠檬酸钠抗凝。

☐血液与抗凝剂混合、注血时应避免动作剧烈引起红细胞破裂。

☐温氏分血管内壁必须清洁干燥。

血液进入分血管内的刻度读数要精确,血柱中不得有气泡。

思考题
☐在哪些情况下,红细胞的比容明显增加?
☐测定红细胞比容时,常出现的误差来源是什么?☐测定红细胞比容的实际意义是什么?。

实验九 红细胞比容的测定

实验九 红细胞比容的测定

1)液体透明红色,不分层: 完全溶血(最大渗透抵抗力或最小渗透脆性)
2)上层透明红色,下层浑浊红色: 部分溶血(最小渗透抵抗力或最大渗透脆性)
3)上层无色,下层浑浊红色: 无红细胞溶解
结果:
0.42~0.46 % NaCl 溶液:部分溶血 0.32%~0.34% 细胞沉降率测定 (示教)
记录血凝时间
观察项目
(1)正常 (2)少许棉花放入试管底部 (3)用石蜡油润滑整个试管内表面 (4)放在水浴槽中 (5)竹签搅拌血液(烧杯) (6)加肝素8单位 (7)放草酸钾 1~2ml
(8) 放组织液 0.1ml
实验报告: 目的,结果,讨论,结论
放血入肝素抗凝烧杯内 3)吸取10ml抗凝血入离心管,以3000rmp离心
30min 4)读数,计算红细胞比容(%)
结果:
男:40~50% 女:37~48%
实验十 红细胞渗透脆性(示教)
目的:学习测定红细胞渗透脆性 步骤:
1)配置各种低渗盐溶液(0.7%~0.25% NaCl) 2)每试管内加抗凝血1滴,与盐溶液充分混合 3)室温下放置1h,观察试管内液体分层
目的: 用惠氏法测定红细胞沉降率 步骤:
1)取抗凝血至惠氏沉降管0刻度,擦拭外面血迹 2) 将沉降管固定在固定架上 3) 1h 末读取红细胞下沉的毫米数
结果:男性 0~15 mm/h; 女性 0~20 mm/h
实验十五 血液凝固
目的:了解血液凝固的基本过程及
加速或延缓血凝的因素
步骤:
1) 家兔以乌拉坦(1g/kg,i.v.)麻醉、背位固定 2) 颈总动脉插管(近心端用动脉夹夹住) 3) 试管或烧杯内放血 2 ml 左右, 每30秒观察一次,
实验9 红细胞比容测定 (示教) 实验10 红细胞渗透脆性 (示教) 实验11 红细胞沉降率测定(示教) 实验15 血液凝固

红细胞比容血红蛋白测定

红细胞比容血红蛋白测定
溶解。本实验采用肝素钠抗凝。
• 血液与抗ห้องสมุดไป่ตู้剂混合、注血时应避免动作剧 烈引起红细胞破裂。
• 温氏分血管内壁要充分干燥。血液进入毛 细管内的刻度读数要精确,血柱中不得有 气泡。
二、血红蛋白的测定
• 目的 掌握用比色法测定动物的血红蛋白的含量。
• 原理 血红蛋白的颜色常与氧的结合量多少有关。 但当用一定的氧化剂将其氧化时,可使其转变为 稳定、棕色的高铁血红蛋白,而且颜色与血红蛋 白(或高铁血红蛋白)的浓度成正比。可与标准 色进行对比,求出血红蛋白的浓度,即每升血液 中含血红蛋白克数(g·L-1)。
离心后血液分层
layer after blood centrifugated
方法与步骤
改进的温氏分血管比容法 • 采血(加入抗凝剂肝素钠,抗凝血) • 用移液器取1 ml抗凝血,放入EP管中。 • 离心:将分血管以3000 r/min离心30 min,
取出分血管,读取红细胞柱的高度。
[注意事项] • 选择抗凝剂必须考虑到不能使红细胞变形、
具体测定方法如下:
①用滴管加5~6滴,0.1 mol·L-1 HCl到刻度 管内,(约加到管下方刻度”2”或多或10%处)。
②用微量采血管吸血至20μl,仔细揩去吸管外 的血液。
③将吸血管中的血液轻轻吹到比色管的底部, 再吸上清液洗吸管3次。操作时勿产生气泡,以 免影响比色。用细玻棒轻轻搅动,使血液与盐 酸充分混合,静置10 min,使管内的盐酸和血 红蛋白完全作用,形成棕色的高铁血红蛋白。
方法与步骤
沙里氏血红蛋白计测定 • 沙里氏比色法是用HCl使血红蛋白酸化形成棕色的高铁
血红蛋白,然后和标准比色板进行比色。 • 沙里血红蛋白计 主要具有标准褐色玻璃比色箱和1只方

血液生理实验实验一血液的组成和红细胞比容的测定

血液生理实验实验一血液的组成和红细胞比容的测定

血液生理实验实验一血液的组成和红细胞比容的测定实验一:血液的组成和红细胞比容的测定一、实验目的:1.了解血液的组成和各组成部分的功能。

2.掌握红细胞比容的测定方法及其临床意义。

二、实验原理:血液是由血浆和血细胞组成的混合物,其中血细胞包括红细胞、白细胞和血小板。

红细胞在血液中占有较大比例,其主要功能是运输氧气和二氧化碳。

红细胞比容是指红细胞在血液中所占的容积百分比,是反映血液中红细胞数量及血液浓度的指标之一。

三、实验步骤:1.准备实验材料:5ml移液管、10ml离心管、离心机、电子天平、称量纸、记号笔、标签纸、移液器、生理盐水、抗凝剂。

2.取5ml全血样本,用移液管准确加入10ml生理盐水中,摇匀制成混合液。

3.用电子天平称量混合液的总重量,并记录。

4.将混合液转移至离心管中,加入抗凝剂,标记好标签,放入离心机中,以3000r/min的速度离心5分钟。

5.离心结束后,将离心管取出,用移液器将上层血浆移出,称量剩余的血细胞及血浆重量,并记录。

6.根据公式计算红细胞比容:红细胞比容=血细胞重量/(血细胞重量+血浆重量)×100%。

四、实验结果:1.混合液的总重量为()g。

2.离心后的血细胞及血浆重量为()g。

3.根据公式计算得到红细胞比容为()%。

五、实验总结:通过本实验,我们了解了血液的组成和各组成部分的功能,掌握了红细胞比容的测定方法及其临床意义。

通过观察和测量全血样本中的红细胞比容,可以反映血液中红细胞的相对数量及血液的浓度,对于了解患者的血液循环状态、指导临床治疗具有一定的参考价值。

此外,实验过程中需要注意操作的规范性和准确性,以保证实验结果的可靠性。

例如,在称量血细胞及血浆重量时,需确保样品已经完全转移至称量纸上,避免误差的产生。

同时,在计算红细胞比容时,还需注意单位的换算和公式的正确使用。

六、注意事项:1.实验前需对实验材料进行充分的准备和检查,确保实验所需的试剂、仪器等均符合要求。

血液的组成和红细胞比容的测定

血液的组成和红细胞比容的测定

血液的组成和红细胞比容的测定[实验目的]:1、了解血液的组成,区别血浆、血清、血细胞及纤维蛋白。

2、测定红细胞比容。

[实验对象]:家兔[实验用品]:兔手术器械、动脉插管、试管、小烧杯、离心机、抗凝剂(肝素钠等)。

[方法与步骤]:1.兔颈动脉采血,徐徐注入试管A、B、C、D (肝素处理),F(未经肝素处理),封口膜封闭试管口,3000r/min离心30min。

取出,读取前4支试管血细胞柱刻度及全血刻度;再次离心5min,若血细胞柱刻度不变,取前4支试管血细胞压积的平均值,即为此家兔的血细胞压积值。

血细胞压积=血细胞柱刻度/全血刻度2.观察A、B、C、D、F试管中血液,分析其不同。

[实验结果]:1. A、B、C、D试管上层为血浆,下层为红细胞,中间一白色薄层为白细胞和血小板;而试管F中,上层为血清。

2.家兔血细胞比容测定:编号血细胞柱长度(cm) 全血柱长度(cm) 红细胞比容(%)ABCD此家兔红细胞比容为[分析讨论]:血液、血浆、血细胞比容血清、血浆[结论]:1、2[思考题]:1.测定红细胞比容的实际意义是什么?血液凝固及其影响因素[实验目的]:1、了解血液凝固的基本过程及加速或延缓血液凝固的因素。

2、学会兔颈部手术的基本操作。

[实验对象]:家兔[实验器材]:哺乳动物手术器械、兔手术台、动脉插管、动脉夹、气管插管、注射器、小试管8支、小烧杯2个、竹签、恒温水浴槽、冰块、棉花。

[药品]:25%乌拉坦溶液、石蜡油、肝素、草酸钾、肺组织浸液。

[实验步骤]:1.麻醉与固定仰卧位固定在兔台上,用1%普鲁卡因溶液局部麻醉。

2.手术颈动脉插管3. 观察项目(1) 观察加速或延缓血液凝固的因素,比较内源性凝血和外源性凝血将8支试管准备好(1,对照管;2,放棉花少许;3,蜡油润滑内表面;4,置于37℃水浴槽中;5,置于冰水浴槽中;6,加肝素8单位;7,加草酸钾1~2mg;8,加肺浸液1ml),打开动脉夹,每管加入血液2ml,即刻开始计时(6,7,8号试管加入血液后轻轻摇匀,使血液与试剂充分混合),每隔15s,将试管倾斜一次,至血液不再流动为止。

开放性实验血细胞比容测定(温氏法)(多媒体)

开放性实验血细胞比容测定(温氏法)(多媒体)

开放性实验血细胞比容测定(温氏法)(多媒体)【要求】了解血细胞比容测定的原理及方法,掌握血细胞比容参考值及其临床意义。

【原理】抗凝全血经离心沉淀后,可测出下沉的血细胞在全血中所占体积的百分比,即血细胞比容。

【试剂】EDTA-K2或双草酸盐抗凝剂。

1.5ml注射器、试管。

2.毛细滴管长约12cm,口径不大于2mm。

3.温氏(Wintrobe)管上以1mm为间隔,刻有0~100mm的刻度(图1-5)。

【操作】1.试管内加入抗凝剂,每管内加EDTA-K2或双草酸盐溶液0.5ml,烤干备用。

2.静脉采血2ml,立即注入抗凝管中,混匀。

3.用细长的毛细滴管取摇匀的抗凝血,从温氏管底部徐徐注入血液,随血液平面上升而渐渐向上抽提毛细滴管,直到血液至“100”刻度处,切勿产生气泡。

4.将注入血液的温氏管置水平离心机中,以相对离心力2264g(即有效半径22.5cm),即300rpm速度离心30min,读取红细胞层高度,然后再离心10min至红细胞不再下降为止,离心后血液分为5层,从上至下依次是:血浆层;白色乳糜层(主要为血小板);灰红色层(主要为白细胞和有核细胞);暗红色层(主要为被血细胞代谢还原的还原血红蛋白);鲜红色层(为含习红细胞)。

5.读取以暗红色红细胞层为准的红细胞柱高的毫米数,乘以0.01报告(或以百分比报告)。

【注意事项】1.所有器材必须清洁干燥,以防溶血。

2.抗凝剂与血液要充分混合,防止部分血液发生凝固,出现小凝块。

3.离心力大小直接影响结果,本试验一定要在达2264g的条件下进行离心。

4.采血后应尽快试验,最好不超过3h。

【参考值】男性 0.42~0.49(42%~49%)女性 0.37~0.48(37%~48%)【临床意义】1.血细胞比容减少见于各种贫血。

2.血细胞比容增多见于,①呼种原因所致的血液浓缩,如大量呕吐、腹泻、失水、大面积烧伤等;②真性红细胞增多症有时血细胞比容可高达0.80左右;③继发性红细胞增多症,如新生儿、高原居民及慢性心肺疾患。

诊断学实验报告

诊断学实验报告

实验诊断学实验报告红细胞计数试验实验目的:通过红细胞计数实验1、掌握红细胞计数方原理、方法及注意事项。

2、掌握血细胞计数板的结构试验器材:血细胞计数板、显微镜、盖玻片、试管、血红蛋白吸管、生理盐水实验原理:一定量的血液经一定量等渗性稀释液稀释后,充入血细胞计数池中显微镜下计数一定容积内的细胞,再换算成每升标本的细胞数报告。

操作步骤: 1、取红细胞稀释液2.0ml毫升,放入一小试管内。

2、用血红蛋白吸管吸血至l0ul处。

3、擦去管尖外部余血将血液迅速轻轻吹入盛有红细胞稀释液的试管内,上清液嗽洗吸管2-3次,立即摇匀。

4、将计数池与盖玻片用软布料擦净,将盖玻片覆盖于计数池上。

5、用吸管吸取混匀的红细胞悬液,充入计数池中。

6、待2—3分钟,让红细胞完全下沉后,将计数板平放在显微镜台上,用低倍镜观察,如红细胞分布均匀即可换高倍镜进行计数。

红细胞计数的区域:中心大方格中的5个中方格(正中一个和四角各一个)。

计数原则:数上不数下,数左不数右的计数原则即凡压在中方格边线(双线)上的红细胞,只计上侧与左侧线上的细胞,而压在下侧与右侧线上者不计入。

计算:红细胞数/l=5个中方格内红细胞数×5×10×201×106 或红细胞数/l=5个中方格内红细胞数÷100×1012 式中×5 5个中方格换算成1个大方格×10 1个大方格容积为0.1ul,换算成1.0 ul。

×201 血液的稀释倍数×106 由u1换算成l数据处理: rbc: ×l0/l12参考值男:(4~5.5)×10/l 12 女:(3.5~5)×10/l12 新生儿:(6~7)×10/l 12 答案不唯一,言之有理即可注意事项: 1、吸管、试管要注意清洁、干燥以防溶血,操作迅速避免血液凝固,如有血凝块应重新采血。

2充液前,红细胞复液要充分摇匀,红细胞悬液注入计数池内要求分布均匀,不可有气泡,亦不可有多余液体外溢。

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红细胞比容测定实验报告
实验目的:
1.了解红细胞比容的概念和意义;
2.掌握红细胞比容测定的方法和技巧;
3.分析不同因素对红细胞比容的影响。

实验原理:
1.取一定量的血液样本,加入抗凝剂进行抗凝处理;
2.用离心机进行离心,使血液离心沉积,红细胞沉积到底部形成红细胞柱;
3.读取红细胞柱的体积,即为红细胞比容。

实验仪器和试剂:
1.离心机;
2.采血器;
3.抗凝剂(例如EDTA);
4.离心管;
5.读数尺。

实验步骤:
1.用采血器采集一定量的患者血液样本;
2.加入适量的抗凝剂进行抗凝处理;
3.将抗凝后的血液样本转移到离心管中;
4.将离心管放入离心机中,进行高速离心;
5.离心结束后,取出离心管,观察离心后血液的形态变化;
6.用读数尺读取红细胞柱的高度,即为红细胞比容。

实验结果和数据处理:
通过实验测得的红细胞比容数值可以用来判断机体的贫血程度。

正常
人的红细胞比容数值一般在37%~54%之间,如果低于37%,则表明机体存
在贫血。

实验探究:
在实验中,还可以通过改变不同因素来观察对红细胞比容的影响。

例如,可以观察不同抗凝剂对红细胞比容的影响,不同离心速度对红细胞比
容的影响等。

通过这些观察和比较,可以得出一些关于红细胞比容的规律。

实验总结:
红细胞比容测定是一种简单而常用的实验方法,可以用来评估机体的
贫血程度。

通过实验,我们不仅了解了红细胞比容的概念和意义,还掌握
了测定红细胞比容的方法和技巧。

同时,通过观察和比较不同因素对红细
胞比容的影响,我们也对红细胞比容这一指标有了更深入的了解。

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