质粒DNA的提取酶切及检测
基础生物化学实验实验六 质粒DNA的提取(碱裂解法)及酶切分析)

(2) 挑选单菌落,在无菌条件下放入5 ml LB液体培养基中 (100 g /ml氨苄青霉素),200-300 rpm,37℃过夜培养。 (3) 取1.5 ml菌液(其余菌液加入25%的灭菌甘油,放入对 应编号的1.5 ml离心管中,-70℃ 下作菌种保存),5000 g离心5 min。 (4) 弃上清夜,加入100 l预冷的溶液I,悬浮沉淀,室温 放 置5 min。 (5) 加入200 l 新鲜的溶液II,边加边震荡,但不能剧烈, 冰上放置5 min。 (6) 加入75 l溶液III,震荡混匀,冰上放置5 min。 (7) 12000 g 离心5 min。 (8) 取上清液,加入两倍体积的预冷无水乙醇,12000 g离 心10 min。 (9) 用1 ml 70%的乙醇洗涤沉淀,空气中放置3-5 min。 (10) 用30-50 l TE溶解,用紫外分光光度计进行DNA含量 测定,EB琼脂糖(1.4%)凝胶电泳分析。
实验六 质粒DNA的提取(碱裂解法)及酶分析
(1) 溶液配制: 溶液 I 50 mmol/L 葡萄糖 25 mmol/L Tris-Cl (pH 8.0) 10 mmol/L EDTA (pH 8.0) 溶液 II 0.2 mol/L NaOH 0.5% SDS 溶液 III 3 mol/L KAc (用冰醋酸调 pH值至5.0)
质粒DNA的酶切分析参照相关酶的说明书 操作步骤进行
质粒提取,定量,酶切鉴定实验报告

生物化学实验报告姓名:学号:专业年级: 2018级临床卓越创新班组别:第四实验室生物化学与分子生物学实验教学中心实验名称质粒DNA的提取、定量与酶切鉴定实验日期2019-11-05 实验地点第四实验室合作者指导老师评分XX 教师签名李某某批改日期2013-06-03一、实验目的1.学习并掌握碱裂解法提取质粒的方法2.掌握紫外吸收测定DNA的操作3.了解质粒酶切鉴定原理和方法4.掌握琼脂糖凝胶电泳技术原理,操作二、实验原理1. 碱裂解法:基于染色体DNA与质粒DNA的变性与复性的差异而达到分离目的。
1)pH =12.6(碱性),染色体DNA:氢键断裂,变性。
质粒DNA:大部分氢键断裂,但超螺旋共价闭合环状的两条互补链不会完全分离。
(不完全变性)2)(在1)溶液加入KAc溶液调节pH),中性,质粒DNA:复性,继续溶于溶液中染色体DNA:不能复性;形成了、缠连的网状结构。
3)离心后,染色体DNA与不稳定的大分子RNA、蛋白质-SDS复合物等一起沉淀下来2. 离心层析柱1) 硅基质膜在高盐、低pH值的状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA;2)通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除;3)低盐,高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱;3. 质粒DNA定量测定:紫外光分光光度计法1)物质在光的照射下会产生对光的吸收效应2)而且物质对光的吸收是具有选择性的3)各种不同的物质都具有其各自的吸收光谱4)因为组成核酸的碱基(G,A,T,C)在紫外光260nm处具有强吸收峰,所以通过测定260nm的吸收峰即可对DNA进行定量。
5)DNA对波长260nm的紫外光有特异吸收峰,蛋白质在280nm紫外光处有特异吸收峰,A260/A280可以反应DNA纯度。
4.质粒DNA的酶切分析限制酶特异性地结合于一段被称为限制酶识别序列的特殊DNA序列之内或其附近的特异位点上,并在此切割双链DNA5.琼脂糖凝胶电泳(有电荷效应,分子筛效应)不同的DNA,分子量大小及构型不同,电泳时的泳动速率就不同,从而分出不同的区带(迁移速度与分子量的对数值成反比关系)。
质粒dna酶切实验报告

质粒dna酶切实验报告实验目的:通过酶切实验分析质粒DNA的结构和性质。
实验原理:酶切是利用限制性内切酶切割特定的DNA序列的方法。
限制性内切酶是一种从细菌体内提取的一类酶,具有切割DNA的特异性。
实验步骤:1.实验准备:准备好所需试剂,包括限制性内切酶、缓冲液、质粒DNA等。
2.酶切反应:在一个离心管中,依次加入适量的缓冲液、质粒DNA、限制性内切酶及适量的蒸馏水,混匀后转入恒温水浴中进行酶切反应。
3.电泳分离:将酶切后的DNA溶液取出一定量,加入适量的电泳样品缓冲液,用于电泳分离。
4.染色观察:将分离出的DNA胶片浸泡于DNA染色剂中,染色后进行观察。
实验结果:通过电泳分离和染色观察,我们可以看到质粒DNA在电场作用下被分离成多个带状。
每个带状代表着一段特定长度的DNA序列,不同的长度代表着不同的DNA片段。
实验分析:1.酶切结果:酶切后的DNA片段的长度可以根据电泳结果得出。
通过比对DNA 片段与已知DNA序列的长度,我们可以推断得到质粒DNA的特异性序列。
如果我们使用了多种限制性内切酶,那么在电泳结果中会出现更多的带状。
2.质粒结构:通过酶切实验可以初步了解质粒DNA的基本结构。
如果酶切结果显示出多个相同长度的DNA片段,说明质粒DNA具有对称的环状结构。
如果酶切结果显示出不同长度的DNA片段,那么质粒DNA可能是线性的。
3.酶切效率:酶切效率是指限制性内切酶切割质粒DNA的效率。
酶切效率越高,产生的DNA片段长度越精确。
如果酶切反应时间过长或者酶切温度不合适,都可能导致酶切效率下降。
实验结论:通过质粒DNA酶切实验,我们可以初步了解质粒DNA的结构和性质。
这对于进一步研究质粒DNA的功能和应用具有重要意义。
质粒DNA提取与酶切方法的比较研究

结论总的来说,各种质粒DNA提取方法和酶切方法都有其优缺点。在选择方 法时,应根据具体的研究需求和实验条件进行选择。常规提取方法虽然操作繁琐, 但成本低廉且产量高;快速提取方法和生物素法则具有快速、简便和高纯度的优 点,但成本较高。对于酶切方法,单一酶切操作简便但适用范围有限;双酶切和 全酶切则能实现复杂切割,但操作较复杂且成本较高。
(2)双酶切
双酶切是使用两种不同的限制性内切核酸酶对DNA进行切割。该方法可实现 对复杂基因组或多个位点的精确切割,适用范围更广。但是,双酶切操作相对复 杂,需要更多时间进行优化和调整。
(3)全酶切
全酶切是使用一种或多种限制性内切核酸酶以及修饰酶等对DNA进行切割。 该方法可根据实验需求对DNA进行的优点是高度灵活,适用范围广泛。然而,全酶切需要更多的实验设计和操 作技巧,且成本较高。
比较研究
1、操作难易程度及成本
在操作难易程度方面,快速提取方法和生物素法相对简单,而常规提取方法 较为繁琐。在成本方面,生物素法和快速提取方法所需试剂和设备成本较高,而 常规提取方法成本较低。
2、纯度和产量
在纯度方面,生物素法和快速提取方法纯度较高,而常规提取方法纯度相对 较低。在产量方面,常规提取方法和快速提取方法产量较高,而生物素法产量较 低。
质粒DNA提取方法
1、常规提取方法
常规提取方法是一种经典的分步提取方法,包括裂解细胞、分离质粒DNA、 洗涤和纯化等步骤。该方法的主要优点是适用范围广,可从各种细胞中提取质粒 DNA。但是,该方法操作繁琐,提取周期较长,需要使用大量试剂和设备。
2、快速提取方法
快速提取方法是通过优化常规提取方法中的某些步骤,实现快速、简单的质 粒DNA提取。该方法主要优点是操作简便、快速,可减少试剂和设备的使用。但 快速提取方法可能会牺牲一些纯度或产量。
质粒酶切反应实验报告

一、实验目的1. 学习并掌握质粒DNA的提取方法。
2. 掌握限制性核酸内切酶的酶切原理和操作方法。
3. 通过琼脂糖凝胶电泳分析酶切结果,鉴定质粒DNA的酶切位点。
二、实验原理质粒DNA是细菌染色体外的DNA分子,常用于基因克隆和分子生物学研究。
限制性核酸内切酶(RE)是一种可以识别并切割特定DNA序列的酶,常用于分子生物学实验中。
本实验通过提取质粒DNA,利用限制性核酸内切酶进行酶切反应,并通过琼脂糖凝胶电泳分析酶切结果,以鉴定质粒DNA的酶切位点。
三、实验材料与试剂1. 实验材料:大肠杆菌菌株(含有目的质粒)、限制性核酸内切酶、琼脂糖、DNA 分子量标准、TAE电泳缓冲液、琼脂糖凝胶电泳仪、PCR仪等。
2. 试剂:Tris-HCl缓冲液、EDTA、NaCl、蛋白酶K、SDS、酚/氯仿、异丙醇、70%乙醇等。
四、实验步骤1. 质粒DNA的提取(1)取适量大肠杆菌菌株,加入适量无菌水,用玻璃棒轻轻搅拌,制成菌悬液。
(2)向菌悬液中加入适量的Tris-HCl缓冲液、EDTA和蛋白酶K,充分混匀。
(3)将菌悬液放入65℃水浴中,孵育30分钟。
(4)向菌悬液中加入适量的SDS和酚/氯仿,充分混匀。
(5)12,000 r/min离心10分钟,取上清液。
(6)向上清液中加入等体积的异丙醇,混匀,室温静置2小时。
(7)12,000 r/min离心10分钟,弃去上清液。
(8)向沉淀中加入70%乙醇,混匀,室温静置5分钟。
(9)12,000 r/min离心10分钟,弃去上清液。
(10)将沉淀溶于适量的无菌水中,即为质粒DNA。
2. 酶切反应(1)取适量的质粒DNA,加入适量的限制性核酸内切酶,混匀。
(2)将混合液置于37℃水浴中,孵育适当时间。
(3)酶切反应结束后,加入适量的EDTA,终止反应。
3. 琼脂糖凝胶电泳分析(1)配制琼脂糖凝胶,加入适量的DNA分子量标准。
(2)将酶切反应产物加入琼脂糖凝胶孔中,进行电泳。
酶切检测实验报告

一、实验目的1. 理解并掌握限制性核酸内切酶(RE)的原理及其在分子生物学中的应用。
2. 掌握质粒DNA的提取方法。
3. 学习并实践质粒DNA的酶切技术。
4. 掌握琼脂糖凝胶电泳技术及其在DNA分析中的应用。
5. 分析酶切结果,鉴定目的基因。
二、实验原理限制性核酸内切酶(RE)是一类能够识别特定的DNA序列并在该序列处切割双链DNA的酶。
它们在分子生物学中具有广泛的应用,如基因克隆、基因编辑、基因表达调控等。
质粒DNA是常用的克隆载体,其提取方法主要有碱裂解法、盐析法等。
本实验采用碱裂解法提取质粒DNA。
酶切是将质粒DNA切割成大小不同的片段,通过琼脂糖凝胶电泳技术分离这些片段,从而鉴定目的基因。
琼脂糖凝胶电泳是一种常用的DNA分析技术,其原理是利用DNA分子在琼脂糖凝胶中的迁移速率差异进行分离。
在电场作用下,DNA分子带负电荷,会向正极移动。
DNA分子的大小与其迁移速率成反比,因此,通过比较不同片段的迁移距离,可以鉴定DNA片段的大小。
三、实验材料1. 质粒DNA2. 限制性核酸内切酶(RE)3. 琼脂糖凝胶4. TAE缓冲液5. DNA marker6. 电泳仪7. 显色剂8. 紫外灯四、实验步骤1. 质粒DNA提取- 将含有质粒DNA的菌液接种于含有抗生素的LB培养基中,37℃培养过夜。
- 取适量菌液,加入等体积的碱裂解液,混匀,室温放置5分钟。
- 加入等体积的异丙醇,混匀,室温放置10分钟。
- 12,000 rpm离心5分钟,弃上清。
- 加入700 μL 70%乙醇,混匀,室温放置5分钟。
- 12,000 rpm离心5分钟,弃上清。
- 加入50 μL无菌水,混匀,即得质粒DNA。
2. 酶切- 取10 μL质粒DNA,加入10 μL限制性核酸内切酶缓冲液,混匀。
- 加入1 μL限制性核酸内切酶,混匀。
- 37℃水浴反应3小时。
3. 琼脂糖凝胶电泳- 配制琼脂糖凝胶,加入适量的DNA marker。
质粒的提取及酶切实验报告

质粒的提取及酶切实验报告
一、实验目标
本实验旨在提取低分子量DNA、质粒,通过酶切实验检测质粒DNA片段长度,并处理实验结果。
二、实验原理
1、质粒DNA提取:使用特定的提取试剂,先提取溶菌酶凝胶中的质粒DNA;
2、质粒DNA酶切:采用酶切的方法,对质粒DNA进行切割,形成小片段;
3、质粒DNA测序:采用测序仪对质粒DNA片段进行测序,从而确定其长度。
三、实验材料
1、提取试剂:主要由蛋白酶、乙腈、缓冲液、EDTA等混合而成;
2、PCR反应液:主要由dNTP、聚合酶、反应缓冲液等组成;
3、酶:主要由DNA内切酶和DNA外切酶组成;
4、测序仪:用于测序质粒DNA的片段长度;
四、实验步骤
1、提取质粒DNA:将实验样品放入提取试剂中,加热30分钟,然后用混合物洗涤一次,最后离心得到清澈的液体,含有提取的质粒DNA;
2、进行PCR反应:将提取的质粒DNA作为反应液™添加到PCR管中,在适当温度下反应10分钟;
3、酶切:将PCR管中的反应液加入内切酶和外切酶中,在规定温度下酶切1小时;
4、离心质粒DNA片段:将酶切后的反应液离心,以得到质粒DNA片段;
5、进行测序:将质粒DNA片段放置于测序仪中,逐一测序后得到结果;
五、实验结果及分析
实验结果:
质粒DNA片段长度:
0.31kbp、0.48kbp、0.51kbp、0.58kbp、0.68kbp等。
实验二-质粒DNA的提取及酶切

实验二质粒DNA的提取及酶切(8学时,6小时)一、实验目的:通过本实验学习和掌握碱裂解法提取和酶切质粒的技术与方法。
二、实验原理:碱裂解法提取质粒是根据共价闭合环状质粒DNA与线性染色体DNA之间在拓扑学上的差异而达到分离目的。
环状闭合的质粒DNA在限制性内切酶的作用下成为线状质粒DNA,内切酶能识别DNA分子中某一特定的核苷酸序列。
三、仪器、材料、试剂(一)仪器:1、恒温摇床2、台式离心机3、高压灭菌锅4、振荡器(二)材料:1、含PUC-18质粒的大肠杆菌2、乙二胺四乙酸(EDTA)3、三羟甲基氨基甲烷(Tris) 4.葡萄糖 5.氢氧化钠(NaOH) 6.十二烷基硫酸钠(SDS) 7、乙酸钾(KAc) 8、冰醋酸(HAc) 9、盐酸(HCl) 10、Tris饱和酚11、氯仿12、异戊醇13、乙醇14、胰RNA酶15、氨苄青霉素16、离心管(三)试剂:1、溶液І (pH8.0) 2、溶液Ⅱ3、溶液Ш4、TE缓冲液(pH8.0)5、0.5mol/LEDTA6、氯仿:异戊醇(V:V=24:1)7、Tris饱和酚:氯仿:异戊醇(V:V:V=25:24:1)8、70%乙醇9、胰RNA酶10、ECOR I酶四、实验步骤(一)质粒DNA的提取1、先在3mL LB液体培养基中加入3uL羧苄青霉素(终浓度50ug/mL),然后接入一个含puc-18质粒的大肠杆菌单菌落,37℃震荡培养过夜。
2、取过夜培养的菌液1mL加入1.5mL离心管中,4000r/min,倒出培养液,将所有菌体细胞收集在一个离心管中。
3、加入100µl溶液І于含菌体细胞的小指管中,旋涡震荡将细菌沉淀悬浮,室温放置10min。
4、加入200µl溶液Ⅱ(新鲜配置),轻轻混匀内容物,溶液逐渐变清亮后加入溶液Ш(千万不可用旋涡震荡器,裂解时间不超过5min)。
5、加入150µl溶液Ш(冰上预冷),盖紧管口,轻轻混匀数次。
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相关知识
? 基因工程又称 DNA重组技术 外源基因通过体外重组后,导入受体细胞内, 使这个基因能够在受体细胞内复制、转录、翻 译、表达的操作
? 包括基因的分离、重组、转移、基因在受体细 胞内的保持、转录、翻译表达等全过程
? 基因工程四要素:目的基因、工具酶、载体、 受体细胞
370C,190rpm振荡培养过夜 ?
取1.5菌液入1.5ml的dorf 管中
12000rpm、离心2s,弃上清,收集菌体 ?
100uL溶液I悬浮菌体(充分振荡),室温(或冰浴)3min ?
加入200uL溶液II(轻轻混匀),冰上静置3min裂解菌体
? 加入150uL溶液III(轻轻混匀),冰上静置5min质粒DNA复性
常用到的工具酶
? 限制性内切酶 ? 连接酶 ? 聚合酶 逆转录酶 ? DNA酶和RNA酶
载体
结构的三大要素: ? 多克隆位点 ? 选择标记(耐药性) ? 独立的复制单位 种类: ? 质粒 ? 噬菌体 ? 酵母人工染色体( YAC)
质 粒(plasmid)
? 是染色体外小型( 1-200kb )的共价、闭合、 环状的双链 DNA分子(cccDNA),能自主复制 并能稳定遗传的遗传因子。
Tris-Cl 控制溶液的pH ,葡萄糖使悬浮后的 大肠杆菌不会快速沉积到管子的底部。 EDTA 是Ca2+ 和Mg2+ 等二价金属离子 的螯合剂,配在分子生物学试剂中的主要 作用是:抑制DNase 的活性,
溶液II,0.2 N NaOH / 1% SDS ;
? NaOH 是最佳的溶解细胞的试剂,这是 由于细胞膜发生了从双层膜结构向微囊 结构的相变化所导致。SDS 是为下一步 操作做的铺垫。
? 用一个字母代表菌株或型,如流感嗜血菌 Rd 菌株用d,即Hind。
? 如果一种特殊的寄主菌株,具有几个不同 的限制与修饰体,则以罗马数字表示,如 HindⅠ, HindⅡ,HindⅢ等。
II型限制性内切酶能识别专一的核苷酸顺序, 并在该顺序内的固定位置上切割双链。由于 这类限制性内切酶的识别和切割的核苷酸都 是专一的。因此,这种限制性内切酶是 DNA 重组技术中最常用的工具酶之一。这种酶识 别的专一核苷酸顺序最常见的是 4个或6个核 苷酸,少数也有识别 5个核苷酸以及 7个、 8 个、 9个、 10个和 11个核苷酸的。 II 型限 制性内切酶的识别顺序是一个回文对称顺序, 即有一个中心对称轴,从这个轴朝二个方向 “读”都完全相同。这种酶的切割可以有两 种方式:
?
12000rpm,离心5min ?
沉淀用70%乙醇1mL洗涤两次(振荡混匀、离心) ?
12000rpm,离心2min ?
沉淀风干 ?
沉淀用20uL TE溶解,-200C保存
第二部分 质粒酶切
实验目的 Байду номын сангаас 理解限制性内切酶是DNA 重组技术的关
键工具 ? 掌握酶切的基本操作
实验原理
? 制性内切酶将质粒和外源基因用限制性内切酶 酶切,再经过 DNA 连接酶连接,便可获得携带 外源基因的重组质粒,重组质粒可以转移到另 一个生物细胞中去,进而复制、转录和表达外 源基因产物。限制性内切酶是能识别双链 DNA 分子中的特定碱基顺序,并以内切方式 水解核酸中的磷酸二酯键的核酸水解酶。
? 12000rpm ,离心5min,取上清记录体积到一新管
? 上清加等体积的酚:氯仿:异戊醇( 振荡混匀)
? 12000rpm,离心15min,取上清记录体积到一新管
? (可省略)上清加等体积的氯仿:异戊醇( 振荡混匀)
? 12000rpm ,离心2min,取上清记录体积到一新管
? 上清加2倍体积的无水乙醇(充分混匀),室温2min
? 常常编码一些对宿主有利的酶的基因,这些基 因的表型包括抗生素抗性、产生抗生素、限制 酶、修饰酶等
? 质粒的复制:严紧型复制( 1~n个) 松弛型复制( 20个以上)
实验目的和要求
学习和掌握质粒提取的原理与操作、 限制性内切酶的特性、酶解和琼脂糖 凝胶电泳的操作方法,并理解限制性 内切酶是DNA重组技术的关键工具, 琼脂糖凝胶电泳是分离鉴定DNA片段 的有效方法。
?平衡酚:氯仿(1:1)
作用:酚使蛋白质的变性,但是水饱和酚 的比重略比水重,不利于含质粒的水相的 回收;但加入氯仿后可以增加比重,使得 酚/ 氯仿始终在下层,方便水相的回收。
?乙醇:除去DNA水化层,使DNA沉淀
?TE缓冲液:溶解DNA
四、实验步骤
接含PUC18(或pET21a)质粒的单菌落于3ml LB Amp+液体培养基中 ?
溶液III,3 M醋酸钾/ 2 M醋酸。
? 钾离子置换了SDS中的纳离子形成了不 溶性的PDS ,而高浓度的盐,使得沉淀 更完全。钾钠离子置换所产生的大量沉 淀自然就将绝大部分蛋白质沉淀了,大 肠杆菌的基因组DNA 也一起被共沉淀。 因为基因组DNA 太长了。
? 醋酸中和NaOH ,因为长时间的碱性条 件会打断DNA 。
? 而质粒DNA 则留在上清液内,其中还含有蛋白 质,实验中加入碱性酚( pH8.0 )和氯仿混合 液的抽提可以除去蛋白质。
? 含有质粒DNA 的上清液用乙醇沉淀,获得质粒 DNA 。
三、主要试剂
溶液I ,50 mM 葡萄糖/ 25 mM Tris-Cl / 10 mM EDTA ,pH 8.0 ;
粘性末端;是交错切割,结果形成两条单链末端, 这种末端的核苷酸顺序是互补的,可形成氢键, 所以称为粘性末端。
第一部分 质粒DNA 的提取
碱裂解法
一、实验目的
?
通过本实验学习和掌握碱裂解法提取质粒的
原理与操作。
二、实验原理
? 在EDTA 存在的条件下,经过 NaOH 和阴离子去 污剂SDS 处理,使细胞膜崩解,从而达到菌体 充分的裂解。
? 此时,细菌染色体 DNA 缠绕附着在细胞膜碎片 上,离心时易被沉淀出来。
? EcoR Ⅰ和Hind Ⅲ的识别序列和切口是: EcoR Ⅰ:G ↓AATTC;Hind Ⅲ:A ↓AGCTT 。 G,A 等核苷酸表示酶的识别序列,箭头表示 酶切口。
限制性核酸内切酶的命名法
? 用属名的头一个字母和种名的头两个字母 表示寄主菌的物种名称,如 E. coli 用Eco表 示,所以用斜体字。