浮游动物的采样方法
7.实验七__浮游动物采集和定量

实验目的
掌握浮游动物采集、浓缩、定量的常用 方法。
实验仪器、用品
广口瓶、浮游生物网、量杯、甲醛、刻 度吸管。
实验内容
1.采样:采样点、采样层次 同浮游植物在野外 采集时,必须遵循先采定量样品,后捞定性标本 的原则。
2.浓缩:用广口采水器采10~30 L(30L)水, 用浮游生物Ⅲ型网(25#,200目, 0.064mm孔径)过滤。用5%甲醛固定。
5.生物量的换算:
测出每升水中浮游动物的数量后,再求得各种 浮游动物的平均重量后,生物量就能换算。
① 体积法:把生物体当做一个近似几何图形,按求 体积公式求得生物体积,并假定比重为1,由此得 到体重。
② 沉淀体积法:把浮游动物样品放在有刻度的滴定 管中,经一段时间沉淀后读出沉淀体积。
③ 直接称重法:就是要把称重的生物体,直接放在 微量天平中称其体重。
3.计数:如果数量少(<1000),可以直接 全部计数。如果数量多,可在相应的计数框内 计数。
4.个体数的计算:
N=(n·V′)/(V·V″)
式中, N为每升的个体数(个/L); n为取样计数的个体数(个); V′为水样浓缩的体积(ml); V″为取样计算的体积(ml); V为采水量或滤水量(L)。
动物
中型浮游动物定 量:取1 ml浓缩 水样于浮游动物 计数框内全片计
数
大型浮游动物 定量:在解剖 镜下体中浮游动物的密度和生物量
图1 浮游动物采样 、定量流程
作业:1.列表表示各种类浮游 动物的数量。
表1 浮游动物数量计数记录表
标本编号
站号
层次(m)
采水量(L)
浓缩体积(ml) 计数体积(ml)
调查时间: 年 月 日
浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶,直接在采样点装满水,加10-15ml的鲁哥试剂,摇匀。
鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中,待其完全溶解后,将4g碘充分摇动,待其完全溶解后,定容至100ml,即配成鲁哥氏液。
二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。
三、浮游动物定量
表层取水样10L(中层和底层取20L水样)过25号浮游生物网,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,4%添加的福尔马林溶液。
福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1:9的比例混合配制而成。
四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。
浮游生物采样

浮游生物采样7.3 采样时间7.3.1同一类群的生物样品采集时间(季节、月份)应尽量保持一致。
浮游生物样品的采集时间以上午8:00~10:00时为宜。
7.3.2除特殊情况之外,生物体污染物残留量测定的生物样品应在秋、冬季采集。
7.3.3进行生物毒性试验的污水样品应在排污口排放的有毒污染物浓度最高时采集。
7.4 样品采集与保存7.4.1浮游生物样品采集应符合以下要求:1定性样品采集(浮游植物、原生动物和轮虫等)采用25号浮游生物网(网孔0.064mm)或PFU(聚氨酯泡沫塑料块)法;枝角类和挠足类等浮游动物采用13号浮游生物网(网孔0.112mm),在表层中拖滤1~3min。
2定量样品采集,在静水和缓慢流动水体中采用玻璃采样器或改良式北原采样器(如有机玻璃采样器)采集;在流速较大的河流中,采用横式采样器,并与铅鱼配合使用,采水量为1~2L,若浮游生物量很低时,应酌情增加采水量。
3浮游生物样品采集后,除进行活体观测外,一般按水样体积加1%的鲁哥氏溶液固定,静置沉淀后,倾去上层清水,将样品装入样品瓶中。
表7.4.7生物样品保存方法微生物细菌总数总大肠菌群数粪性大肠菌数粪链球菌数灭菌玻璃瓶1~4℃<6h最好在采样后2h内完成接种,并进行培养。
如水样含有余氯或重金属含量高,可按500mL样品瓶分别加入0.3 mL10%硫代硫酸钠溶液或1mL15%EDTA溶液表B.16浮游生物分析记录表样品来源样品类型共页第页分析项目采样地点采样日期月日属名数量(个)指示意义优势种名绝对优势种生物密度(个/L)结果分析备注分析人员:年月日校核:年月日审核:年月日表B.17生物种类统计记录表样品来源样品类型共页第页12345分析人员:年月日校核:年月日审核:年月日。
04第四章-海洋浮游动物

利用特殊仪器和设备(斯库巴潜水
/scuba-diving),在水中直接观察,发现了
许多新种(体制柔弱种类)。
三、终生浮游动物的分类和生物学
三、终生浮游动物的分类和生物学
1、原生动物
最原始和低等的单细胞动物,具有细胞 膜、细胞质和细胞核。
⑴腰鞭毛虫(夜光 虫): 具有鞭毛,部 分或全部异养生 活(一些种类具 有叶绿体,如眼 虫);摄食细菌、 硅藻或其他鞭毛 虫、纤毛虫。 夜光虫,常在 近海岸大量出现, 易形成赤潮。
⑵腔肠动物的浮浪幼虫、辐射幼虫 和蝶状幼体
①浮浪幼虫(planula larva): 具有世代交替的水螅水 母和旗口水母的实原肠 胚,其表面遍生纤毛, 能在海中游动,称浮浪 幼虫。经在海中浮游几 小时至数日之后,浮游 幼虫附着于物体上,继 续发育、生长。
②辐射幼虫(actinula):
筒螅(Tubularia)的浮 游幼虫称为辐射幼虫。 经短期浮游后,幼虫 基盘触手的膨大末端, 分泌粘液,借此吸附 在物体上改营固着生 活。
4、毛颚动物 (箭虫)
研究较详尽,数 量丰富;雌雄同体; 仅分布于海洋;体长 一般小于4厘米;平时 静止,捕食可快速弹 射运动;口周围有几 丁质钩,食物几乎没 有选择性;
5、环节动
物(多毛 纲/浮蚕)
身体由相似 的 体节构 成,40种,全为 捕食者,分布 广泛。
6、软体动物
身体柔软、不分节、体外被套膜,常分泌 有贝壳。仅个别种属于终生浮游动物。
五、浮游动物的垂直分布
人为将海洋浮游动物垂直分布划分为表层、上层、 中层和深层带
1、表层分布
漂浮生物:⑴始终生活于海水表面,而且部
分身体伸到空气中的种类;(僧帽水母)
浮游生物样品采集与分析详解

近岸海域常见; 体长0.8mm左右; 头胸部近纺锤形;
后侧角钝圆。
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双毛纺锤水蚤 Acartia bifilosa
太平洋纺锤水蚤 Acartia pacifica
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体长1.2mm左右; 后侧角尖锐。
头部一对很大的 复眼; 第三对胸足 非常细长;
体长最大可达
7mm。
细足法虫戎 Themisto gracilipes
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节肢动物门 Arthropoda,磷虾类 Euphausiacea
指
状
足
腮
太平洋磷虾
Euphausia pacifica
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嵊山秀氏水母 Sugiura chengshanense
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伞半球形,胶质薄
生殖腺位于辐管上,卵 形或线性
16-30条触手
触手间有平衡囊
半球美螅水母 Clytia hemisphaerica
[ 半球杯水母 Phialidium hemisphaericium ]
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桡足类的基本形态构造
北海区最重要的优势种之一; 桡足类模式种;
体长3mm左右; 后侧角短钝;
第5胸足内缘有齿。
后侧角
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中华哲水蚤 Calanus sinicus
体长0.8mm左右; 体型矮胖;
后侧角钝圆;
第5胸足短小。
现在是17页\一共有65页\编辑于星期四
浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法
对于水体中的浮游生物进行取样保存
浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶,直接在采样点装满水,加10-15ml的鲁哥试剂,摇匀。
鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中,待其完全溶解后,将4g 碘充分摇动,待其完全溶解后,定容至100ml,即配成鲁哥氏液。
二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。
三、浮游动物定量
表层取水样10L(中层和底层取20L水样)过25号浮游生物网,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,4%添加的福尔马林溶液。
福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1:9的比例混合配制而成。
四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1~3 min,获得的浓缩样,放入50ml的白色方瓶中,添加适量的鲁哥氏液固定。
淡水浮游生物的调查方法

~淡水浮游生物的调查方法淡水浮游生物调查有定性调查和定量调查两种类型。
定性调查是指采集浮游生物进行属种鉴定的过程,其目的在于了解水体中浮游生物的种类组成、出现季节及其分布状况。
定量调查是指采集浮游生物,确定个体数目或重量的过程,其目的在于探明各种浮游生物在水体中的数量及其变化情况。
定性调查是定量调查的基础,定量调查则是定性调查的发展和补充,二者相辅相成,在实践中常相互结合进行。
一、调查用品用具(1)网具①浮游生物定性网:用于表层50厘米内各种浮游生物的定性采集。
由铜环、缝在环上的圆锥形筛绢网袋及连在网袋末端的集中杯(网头)三部分组成(其外形见本书图2-3)。
由于浮游生物大小各不相同,为了采全各种浮游生物,应使用25#、20#、13#三种规格。
其中25#网适于采集个体较小的浮游植物,其网孔大小为毫米;20#网适于采集一般浮游植物及中小型浮游动物,其网孔大小为毫米;13#网适于采集大型枝角类和桡足类等浮游动物,其网孔大小为毫米。
中学生开展本项活动时,可以只用20#网进行采集。
定性网可以自己裁剪制作,裁剪时可按图8-1所示方法进行。
如网口直径为20厘米,其半径为10厘米,可依c=2rπ公式计算,从a到b的弧长为厘米,a至c为网的长度即60厘米,这样就可按照图8-1中的1与2所示方法进行裁剪。
缝合时,应该用细针,以免网上留下针孔,造成浮游生物自针孔流失。
网衣应该用10厘米宽的白布条固定在铜环上,使筛绢不与铜环直接接触。
在网的末端装配集中杯。
为了使网衣坚固耐用,最好在缝合处加缝2厘米宽的白布条。
)定性网各部分的尺寸规格,依型式不同而有差别,其尺寸规格见表8-1。
表8-1 浮游生物定性网规格单位:厘米②浮游生物定量网:用于表层50厘米内各种浮游生物的定量采集。
其组成、质地、规格尺寸和制作方法与定性网基本相同。
二者有两点区别。
一点是定量网前端有两个金属环(前小后大),两环间有一圈帆布,称为上锥部(附加套),用途在于减少由于曳网时浮游生物着逆流向外而流失;另一点是网身较定性网略长(图8-2)。
浮游植物的采集、计数与定量方法讲解

凡水深不超过2米者,可于采样点水下0.5m处采水,
水深2~10米以内,应距底0.5米处另采一个样, 水深超过10米时。应于中层增采一个水样。
⑴池塘:样点可设在距岸边1m处。水深小于2m时采一中 层水样。若水深大于2m时,最好采上、中、下层水样。 亚表层:水下20cm左右。 中 层:水体中间部分。 下 层:离底20cm左右。
每种藻类至少随机测量20个以上,求出 这种藻类个体种的平均值,一般都制成 附表供查找。此平均值乘上一升水种该 种藻类的数量,即得到一升水中这种藻 类的生物量(mg/L)。
由于同一种类的细胞大小可能有较大的 差别,同一属内的差别就更大了,因此 必须实测每次水样中主要种类(即优势 种)的细胞大小并计算平均重量,其他 种类可以参考附表计算。
每瓶标本计数数量:计数两片取其平均值 ,每片大约计算50~100个视野,但视野 数可按浮游植物的多少而酌情增减。 如平均每个视野不超过1~2个时,要数200 个视野以上,如果平均每个视野有 5 ~ 6 个时要数100个视野,如果平均每个视野 有十几个时数50个视野就可以了。
同一样品的两片计算结果和平均数之差 如不大于其均数的±15%,其均数视为 有效结果,否则还必须测第三篇。
浮游植物的 采集、计数与定量方法
浮游植物(Phytoplankon)又称浮游藻类, 是水中悬浮生活的若干种藻类的总称。浮 游植物及其生产力的作用:
水生态系统的重要成员与重要功能之一: 是鱼类天然饵料的重要组成部分; 由于浮游植物对环境的变化十分敏感,故 在环境监测中,也有重要作用。
种类和数量
采水时,每瓶样品必须贴上标签,标签上 药剂在采集的时间、地点、采水体积等 ,其他详细内容应另行做好记录,以备 查对,避免错误。
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浮游动物生物量的测量方法
自赵文《水生生物学》现存量:单位面积或体积中所存在生物体的数量或质量。
现存量若以个体数表示则可称为丰度或(数量)密度,单位为个/L。
若以质量表示则可称为生物量,单位为mg/L。
采集方法:
一采水器采水后沉淀分离(适用原生动物、轮虫等小型浮游动物);
二用网过滤(适用于枝角类、挠足类等甲壳动物)。
仪器:采水器,(25#)浮游生物网,显微镜,计数框(计数原生动物用0.1ml计数框,计数轮虫和甲壳动物用1ml计数框)解剖镜,毛细管,目测微尺
一采集
1 设站根据浮游动物的分布设站。
2 采水层次由水体的深度决定。
切不可之采一个表层或一个底层水样。
(据夏季调查,东湖B站(水深4m左右),在2m的水层区,甲壳动物的数量约占31%,而入2m一下的水层占69%左右。
同时还发现,在夏季,一般幼体喜欢在表层,成体在深层。
)
分层方法:是每隔0.5m或1m,甚至2m取一个水样加以混合,然后取得一部分作为浮游动物定量之用。
许多水库或深水湖泊,水深20m以上,这种水体在夏季及冬季存在温跃层(或称变温层)。
由于在温跃层一下缺乏光照,浮游植物数量极少,依赖植物生存的浮游动物数量也相应减少。
如果从养殖角度而言,只取温水层以上的水层就足够了。
3 采水量浮游动物不但种类组成复杂,而且个体大小相差也极悬殊。
因此要根据它们在水体中的不同密度二采不同的水量。
(目前计数原生动物、轮虫的水样量以1L为宜,枝角类、桡足类则以10~50L较好。
)
4 采集时间采样时间要尽量保持一致。
一般在上午8:00~10:00进行为好。
在长江中下游采集,如果采集四次,则春、夏、秋、冬各一次。
如果只采一次,则应在秋季(9、10月)进行为好。
(这是因为9~10月正是鱼类摄食旺季,为鱼类生长的最佳时期,如果此时有较高的现存量,则可认为该水体中有较大的供铒能力。
)
浮游动物样品的固定,原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林,加量同浮游植物(一般可与浮游植物合用同一样品)。
枝角类和桡足类一般用5%体积的甲醛固定。
原生动物、轮虫的种类鉴定需活体观察,为方便起见,可加适当的麻醉试剂,如普鲁卡因、乌来糖(鸟烷),也可用苏打水等。
二沉淀和虑缩
1 沉淀法操作方法与浮游植物定量样品的沉淀和浓缩方法相同。
(即在筒形分液漏斗中沉淀48小时后,吸取上层清液,把沉淀浓缩样品放入试瓶中,最后定量30或50ml。
一般原生动物和轮虫的计数可与浮游植物的计数合用一个样品。
)
2 滤缩法甲壳动物一般个体较大,在水体中的密度也较低,通常用过滤法浓缩水样。
注意:首先必须用25#浮游生物网作为过滤网;其次,应当有过滤网和定性网之分。
在不得已情况下,定要先采定量样品,后采定性标本。
如果再次过滤样品时,一定要反复洗净后方可使用。
同时切记用25#网过滤的水样,不能当做计数原生动物或轮虫的定量样品之用。
三计数
1 浮游动物、轮虫的计数计数时,成点样品应充分摇匀,然后用定量吸管吸0.1ml注入0.1ml 计数框中,在10*20的放大倍数下计数原生动物。
在10*10放大倍数下计数轮虫。
计数两片
取平均值。
2 甲壳动物的计数按上述方法取10~50L水样,用25#浮游生物网过滤,把过滤物放入标本瓶中,并洗3次。
如果样品中有过多的藻类则可加伊红染色。
无节幼虫是桡足类的幼体,据初步统计它们的数量占整个桡足类总数的40%~90%评均75%。
无节幼体一般很小,与轮虫相差无几,甚至有的还小于轮虫和原生动物。
在样品中如果桡足类数量不锁,可和枝角类、桡足类一样全部计数;如果桡足类数量很多,全部计数花时太多,那么可把过滤样品稀释若干体积,并充分摇匀,再取其中部分计数,计数若干片取平均值。
然后再换算成单位体积中个体数。
无节幼体也可在1L沉淀样品中,用轮虫相同的技术方法进行计数。
把计数获得的结果用下列公式换算为单位体积中浮游动物个数:
N=Vn/VVa
其中N为1L水中浮游动物个体数;V为采样体积;Vs,V a为沉淀体积(ml)和计数体积(ml);n为计数所取得的个体数。
四体重的测量方法
测量浮游动物生物量主要有体积法、排水容积法、沉淀体积法和直接称重法。
1 体积法本方法就是把生物体当作一个近似几何图形,按体积公式获得生物体积,并假定相对密度为1,就得到体重。
这种方法在原生动物、轮虫中广泛应用。
在活体情况下,在解剖镜下将所需轮虫仅能做微小范围运动为止,然后把载玻片放在显微镜下(不加盖玻片),用目测微尺测量其长和宽,轮虫的厚度也可通过显微镜微调进行近似测量。
2 排水容积法本法根据不可压缩的原理,用类似Tranten氏描述的装置来测定。
3 沉淀体积法把用网具拉去的浮游动物样品放在有刻度的滴定管中,经一定时间沉淀后读出沉淀体积(排水容积法和沉淀体积法所获得的是浮游生物的总体积。
如果水体中大型浮游动物占优势,则有较大的正确性。
应用本法采水量要大,样品量越大就越正确。
)
4 直接称重法就是把测重的生物体用微量天平直接称其体重。
(1)原生动物、轮虫体重的测定方法。
当某种原生动物或轮虫种群出现高峰时,用网捞取并在解剖镜下用适当口径大小的吸管逐个吸出并放在滤膜上,水要尽量少且越干净越好。
载有原生动物或轮虫的滤膜放在恒温干燥箱中(70℃左右),干燥24h后,用解剖针吧滤膜上的动物逐个挑出,放在已称重的铂片上,并迅速在电子天平上称重,即可获得每个原生动物或轮虫的平均值。
(2)甲壳动物体重的测量方法。
吧新鲜的或用4%福尔马林固定的标本,通过不同孔径的铜筛做初步分级,筛选出不同的规格级。
然后再解剖镜下,仔细挑选体形正常、规格接近的个体集中在一起。
枝角类测量从头部顶端(不含头盔)质壳刺基部的长度,桡足类测量从头部顶端至尾叉末端的长度,把体长基本一致的个体放在已称至恒重的盖玻片上。
根据个体大小确定称重个体的数目,一般为30~50个,体长小于80mm的个体则称重150个以上。
把待称重的标本选好后,用滤纸西大没有水痕的程度,迅速在天平上先称其湿重,后再恒温干燥箱中(30℃左右)干燥24h,再放在干燥器中干燥2h,然后把样品放在天平称其干重,并用统计方法获得相应的体长体重回归方程式。
W=bLªW为体重(mg)L为体长(mm)
枝角类的卵一般比较大,可直接从孵卵囊中取出,称其湿重和干重;桡足类的卵一般比较小,但均为球形,用体积法就可获得较佳的结果。
用目微尺法量出卵的平均直径(D)后,代入球体公式(V=1/6πD³)便求出体积V,再按相对密度为1.05秋初卵的质量。