浮游生物采样
浮游生物采样
7.3 采样时间
7.3.1同一类群的生物样品采集时间(季节、月份)应尽量保持一致。
浮游生物样品的采集时间以上午8:00～10:00时为宜。
7.3.2除特殊情况之外，生物体污染物残留量测定的生物样品应在秋、冬季采集。
7.3.3进行生物毒性试验的污水样品应在排污口排放的有毒污染物浓度最高时采集。
7.4 样品采集与保存
7.4.1浮游生物样品采集应符合以下要求：
1定性样品采集(浮游植物、原生动物和轮虫等)采用25号浮游生物网(网孔0.064mm)或PFU(聚氨酯泡沫塑料块)法；枝角类和挠足类等浮游动物采用13号浮游生物网(网孔0.112mm)，在表层中拖滤1～3min。
2定量样品采集，在静水和缓慢流动水体中采用玻璃采样器或改良式北原采样器(如有机玻璃采样器)采集；在流速较大的河流中，采用横式采样器，并与铅鱼配合使用，采水量为1～2L，若浮游生物量很低时，应酌情增加采水量。
3浮游生物样品采集后，除进行活体观测外，一般按水样体积加1％的鲁哥氏溶液固定，静置沉淀后，倾去上层清水，将样品装入样品瓶中。
表7.4.7生物样品保存方法
微生物
细菌总数总大
肠菌群数粪性
大肠菌数粪链
球菌数
灭菌玻璃
瓶
1～4℃<6h
最好在采样后2h内完成接种，并进
行培养。
如水样含有余氯或重金属
含量高，可按500mL样品瓶分别加
入0.3 mL10%硫代硫酸钠溶液或
1mL15%EDTA溶液
表B.16浮游生物分析记录表
样品来源样品类型共页第页
分析项目采样地点采样日期月日
属名数量（个）指示意义
优势种名
绝对优势种
生物密度（个/L）
结果分析
备注
分析人
员：
年月日校核：年月日
审
核：
年月日
表B.17生物种类统计记录表
样品来源样品类型共页第页
12345
分析人员：年月日校核：年月日审核：年月日。
7.实验七__浮游动物采集和定量
实验目的
掌握浮游动物采集、浓缩、定量的常用 方法。
实验仪器、用品
广口瓶、浮游生物网、量杯、甲醛、刻 度吸管。
实验内容
1.采样：采样点、采样层次 同浮游植物在野外 采集时，必须遵循先采定量样品，后捞定性标本 的原则。
2.浓缩：用广口采水器采10~30 L（30L）水， 用浮游生物Ⅲ型网（25#，200目， 0.064mm孔径）过滤。用5%甲醛固定。
5.生物量的换算：
测出每升水中浮游动物的数量后，再求得各种 浮游动物的平均重量后，生物量就能换算。
① 体积法：把生物体当做一个近似几何图形，按求 体积公式求得生物体积，并假定比重为1，由此得 到体重。
② 沉淀体积法：把浮游动物样品放在有刻度的滴定 管中，经一段时间沉淀后读出沉淀体积。
③ 直接称重法：就是要把称重的生物体，直接放在 微量天平中称其体重。
3.计数：如果数量少（＜1000），可以直接 全部计数。如果数量多，可在相应的计数框内 计数。
4.个体数的计算：
N=(n·V′)/(V·V″)
式中， N为每升的个体数（个/L）； n为取样计数的个体数（个）； V′为水样浓缩的体积（ml）； V″为取样计算的体积（ml）； V为采水量或滤水量（L）。
动物
中型浮游动物定 量：取1 ml浓缩 水样于浮游动物 计数框内全片计
数
大型浮游动物 定量：在解剖 镜下体中浮游动物的密度和生物量
图1 浮游动物采样 、定量流程
作业：1.列表表示各种类浮游 动物的数量。
表1 浮游动物数量计数记录表
标本编号
站号
层次（m）
采水量（L）
浓缩体积（ml） 计数体积（ml）
调查时间： 年 月 日
浮游动植物采样方法
浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶，直接在采样点装满水，加10-15ml的鲁哥试剂，摇匀。
鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中，待其完全溶解后，将4g碘充分摇动，待其完全溶解后，定容至100ml，即配成鲁哥氏液。
二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
三、浮游动物定量
表层取水样10L（中层和底层取20L水样）过25号浮游生物网，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，4%添加的福尔马林溶液。
福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1：9的比例混合配制而成。
四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
浮游生物分层采样网安全操作及保养规程
浮游生物分层采样网安全操作及保养规程一、概述浮游生物分层采样网是海洋调查中常用的一种生物采样工具，它能够实现对水体中浮游生物的垂直分层采样。
在实际操作中，应严格遵守安全操作规程，做好设备保养和维护工作。
二、基本构造和工作原理浮游生物分层采样网主要由采样器、导向框、密封环、采样瓶等组成。
采样时，导向框带动采样瓶向下下沉，直至采到目标深度的水样。
采样完成后，采样器和密封环可将采集的样品封闭保存。
三、安全操作规程1. 准备工作a.工作前检查设备是否正常，如发现问题及时修复或更换；b.熟悉采样网的各部分结构，了解操作方法和注意事项；c.确认采样地点和波浪情况，根据海况选择合适的采样器和采样深度。
2. 采样过程a.确认采样位置和采样深度，调整导向框和采样器位置；b.从船上缓慢放下采样网，避免突然下沉或摇晃；c.当采样器到达目标采样深度时，拉动导向框并轻轻晃动采样器，使其封闭采样瓶；d.采样完成后，缓慢提升采样网，注意不要急拉采样网，避免采样瓶破裂。
3. 采样结束a.将采样瓶标记好，记录采样时间、深度、地点等信息，并进行初步处理；b.将采样器和采样瓶进行清洗和消毒，存放在合适的地方，准备维护保养。
四、保养规程1. 清洗消毒a.将采样器拆解，用淡盐酸或乙醛等消毒剂清洗并消毒采样瓶；b.在清洗过程中避免重物碰撞，可用棉被或泡沫等材料进行保护；c.清洗时，使用软毛刷或者纤维棒清理采集器的细小孔洞。
2. 保养维修a.采样器及密封环应该保持干燥，并且要检查是否有发霉、生锈现象，如有请及时更换或清理；b.采集器部分的管道连接处及零部件经常需要更换，必须向延保单位购买原装配件。
五、总结浮游生物分层采样网在海洋调查中起着重要的作用，但操作不当会对人员和设备造成危险，因此必须要制定科学规范操作流程，并根据不同场合进行调整。
合理的维护和保养工作不仅可以延长使用寿命，而且能够减少事故发生，确保性能稳定可靠。
浮游生物采样
浮游生物采样7.3 采样时间7.3.1同一类群的生物样品采集时间(季节、月份)应尽量保持一致。
浮游生物样品的采集时间以上午8:00～10:00时为宜。
7.3.2除特殊情况之外，生物体污染物残留量测定的生物样品应在秋、冬季采集。
7.3.3进行生物毒性试验的污水样品应在排污口排放的有毒污染物浓度最高时采集。
7.4 样品采集与保存7.4.1浮游生物样品采集应符合以下要求：1定性样品采集(浮游植物、原生动物和轮虫等)采用25号浮游生物网(网孔0.064mm)或PFU(聚氨酯泡沫塑料块)法；枝角类和挠足类等浮游动物采用13号浮游生物网(网孔0.112mm)，在表层中拖滤1～3min。
2定量样品采集，在静水和缓慢流动水体中采用玻璃采样器或改良式北原采样器(如有机玻璃采样器)采集；在流速较大的河流中，采用横式采样器，并与铅鱼配合使用，采水量为1～2L，若浮游生物量很低时，应酌情增加采水量。
3浮游生物样品采集后，除进行活体观测外，一般按水样体积加1％的鲁哥氏溶液固定，静置沉淀后，倾去上层清水，将样品装入样品瓶中。
表7.4.7生物样品保存方法微生物细菌总数总大肠菌群数粪性大肠菌数粪链球菌数灭菌玻璃瓶1～4℃<6h最好在采样后2h内完成接种，并进行培养。
如水样含有余氯或重金属含量高，可按500mL样品瓶分别加入0.3 mL10%硫代硫酸钠溶液或1mL15%EDTA溶液表B.16浮游生物分析记录表样品来源样品类型共页第页分析项目采样地点采样日期月日属名数量（个）指示意义优势种名绝对优势种生物密度（个/L）结果分析备注分析人员：年月日校核：年月日审核：年月日表B.17生物种类统计记录表样品来源样品类型共页第页12345分析人员：年月日校核：年月日审核：年月日。
浮游植物取样测定规范
水体浮游植物分析规范参考淡水生物资源调查技术规范DB43/T 432-2009➢水层设置水深小于3m时，只在中层采样，混合均匀水体，可以只采表层（0.5m）水样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下除特殊需要外一般不采样，对于深水湖泊，取样的水层可以将取样间隔加大，如0m,10m,20m,50m, 100m。
➢采样定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。
泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。
分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。
大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。
➢固定浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。
如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
现行的一些规律性的方法为：取水样，500ml,加入5ml鲁格，虹吸到30-50ml,加入1ml甲醛。
➢水样的沉淀和浓缩固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。
充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。
虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。
吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。
用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。
如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。
浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。
浮游生物的测定实验报告
浮游生物的测定实验报告一、采样(一)采样工具1．浮游生物网浮游生物网有两种类型，即定性网和定量网。
2、采水器(1)瓶式采水器(2)水生81型有机玻璃采水器:3、透明度盘(二）采样层次（深度)1、一般常规生物监测，在江河中，由于水不断流动，上下层混合较快，可不分层采样，在水面下0。
5m左右采样即可;2、在湖泊、水库中，若水深不超过2m，一般可仅在表层（0。
5m深处）取样，如果透明度很小，可在下层加取一样，并与表层样混合制成混合样;3、水深5m以内的可在水面下0。
5m，1m，2m，3m，4m处采样，混合均匀，从中取定量水样。
(三)采样方法及采样量1、定性样的采集用浮游生物定性网在选定的采样点于水面和0。
5m深处以每秒20，30cm的速度作“oo”形循回缓慢拖动，时间为5，10分钟（视生物多寡而定)。
2．定量样的采集采集定量样可用采水器和定量网，常用的是采水器。
采水器，一般来说，浮游生物密度低采水量就要多。
对于藻类，一般采水1，2升;对原生动物、轮虫及未成熟的微小甲壳动物，采水1，5升;成熟的甲壳动物则要10，50升。
定量网,可选择适当型号的网，放入距水底0。
5米处，然后垂直上拖，以0。
5米、秒的均匀速度拖取，所采水样的体积可按下列公式推算出来。
水样体积=πr2H,式中r为网口半径，H为拖取的深度。
(四）采样频率一般常规生物监测，每年采样应不少于两次，一般在春秋两季进行，若要了解浮游生物周年的变化，则一年四季都要采样，特殊需要，则根据具体情况增加采样次数。
采样要尽量在晴朗无风的天气进行。
二、样品的固定、浓缩和保存三、浮游生物的测定(一）定性测定(二）定量测定定量测定主要是计数所采集的定量样品中浮游生物的数量，也可进行容量（体积）或重量的测定，这里只介绍计数方法。
1、计数框及其使用计数框的容量有0。
1mL、1mL、5mL和8mL四种。
常用的计数框有两种:(1）塞奇威克一拉夫脱计数框（简称S-R计数框）:该计数框长50mm，宽20mm，深lmm，总面积为1000mm2，总体积为lmL。
微生物浮游菌采样器的用途、使用细节
微生物浮游菌采样器的用途、使用细节1. 背景介绍随着海洋污染问题的日益严重，对微生物和浮游生物的监测需求越来越迫切。
微生物浮游菌采样器是浮游生物学中的一种采样工具，用于捕捉海洋中的浮游生物，采集样品并进行分析。
本文将介绍微生物浮游菌采样器的用途和使用细节。
2. 微生物浮游菌采样器的用途微生物浮游菌采样器主要用于海洋生物学、水文学、环境监测等领域。
在海洋环境中，浮游生物群落的类型和数量很大程度上反映了海洋生态系统的状态，包括生产力、营养盐循环等，因此浮游生物的采集对于评估海洋生态系统的状态非常重要。
微生物浮游菌采样器通常使用于不同水深下，从表层至底层采集水样，在采样过程中，它能同步记录水体的温度、溶解氧、盐度等水文物理学参数和浮游生物的相关题量，如五类胡索动物、水母、蓝藻等，还可对细菌、浮游生物、微型浮游生物等进行综合记录和分析。
通过这些浮游生物的样本，科学家能够研究海洋生物群落的数量和类型，在复杂的海洋环境中追踪微生物生态变化，评估海洋污染的影响，不仅可以用用在海洋科学领域，还可以在食品生产、生化调查、药物发现等领域广泛应用。
3. 微生物浮游菌采样器使用细节微生物浮游菌采样器的使用需要经过一定的操作步骤，包括：准备样品、安装采样器、进行采样、拆卸采样器和样品处理。
具体如下：3.1 准备样品在进行采样之前，首先需要准备好采样器和样品。
样品通常是指采样点的水体，而微生物浮游菌采样器则是采集采样样品的工具。
3.2 安装采样器安装好采样器后，需要选择合适的采样深度，防止取到水体的表面层会影响采集效果，通常建议在水深超过10米的深度范围外进行。
然后，将采样器放入水中，直至达到要求的深度，并按照说明书进行操作。
3.3 进行采样在采样过程中，需要进行一定的时间间隔和深度设定，以确保获取到准确的样品。
和采样深度一样，采样时间也需要进行适当的调整。
根据实际情况调整采样时间和深度，如果实验室要求采样时间和深度一致，则可以采用网格滤器，来控制在固定的时间和深度范围内进行采样。
浮游动植物采样方法
浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶，直接在采样点装满水，加10-15ml的鲁哥试剂，摇匀。
鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中，待其完全溶解后，将4g碘充分摇动，待其完全溶解后，定容至100ml，即配成鲁哥氏液。
二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
三、浮游动物定量
表层取水样10L（中层和底层取20L水样）过25号浮游生物网，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，4%添加的福尔马林溶液。
福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1：9的比例混合配制而成。
四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
浮游动物的采样方法
浮游动物生物量的测量方法自赵文《水生生物学》现存量：单位面积或体积中所存在生物体的数量或质量。
现存量若以个体数表示则可称为丰度或（数量）密度，单位为个/L。
若以质量表示则可称为生物量，单位为mg/L。
采集方法：一采水器采水后沉淀分离（适用原生动物、轮虫等小型浮游动物）；二用网过滤（适用于枝角类、挠足类等甲壳动物）。
仪器：采水器，（25#）浮游生物网，显微镜，计数框（计数原生动物用0.1ml计数框，计数轮虫和甲壳动物用1ml计数框）解剖镜，毛细管，目测微尺一采集1 设站根据浮游动物的分布设站。
2 采水层次由水体的深度决定。
切不可之采一个表层或一个底层水样。
（据夏季调查，东湖B站（水深4m左右），在2m的水层区，甲壳动物的数量约占31%，而入2m一下的水层占69%左右。
同时还发现，在夏季，一般幼体喜欢在表层，成体在深层。
）分层方法：是每隔0.5m或1m,甚至2m取一个水样加以混合，然后取得一部分作为浮游动物定量之用。
许多水库或深水湖泊，水深20m以上，这种水体在夏季及冬季存在温跃层（或称变温层）。
由于在温跃层一下缺乏光照，浮游植物数量极少，依赖植物生存的浮游动物数量也相应减少。
如果从养殖角度而言，只取温水层以上的水层就足够了。
3 采水量浮游动物不但种类组成复杂，而且个体大小相差也极悬殊。
因此要根据它们在水体中的不同密度二采不同的水量。
（目前计数原生动物、轮虫的水样量以1L为宜，枝角类、桡足类则以10~50L较好。
）4 采集时间采样时间要尽量保持一致。
一般在上午8:00~10:00进行为好。
在长江中下游采集，如果采集四次，则春、夏、秋、冬各一次。
如果只采一次，则应在秋季（9、10月）进行为好。
（这是因为9~10月正是鱼类摄食旺季，为鱼类生长的最佳时期，如果此时有较高的现存量，则可认为该水体中有较大的供铒能力。
）浮游动物样品的固定，原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林，加量同浮游植物（一般可与浮游植物合用同一样品）。
浮游生物样品采集与分析
浮游生物的种类与分布
浮游生物的种类繁多，分布广泛，几 乎存在于全球各地的水域中。
不同地区和不同水域的浮游生物种类 和数量分布各不相同，受到温度、光 照、盐度、水深等多种因素的影响。
浮游生物的生态作用
浮游植物通过光合作用产生氧气， 是水生生态系统中的主要生产者
采集浮游生物需要使用各种工具和设备，如浮游生物网、采水器、标本瓶、显微 镜、计数板等。这些工具和设备用于捕获、保存和观察浮游生物样品。
样品处理与保存
总结词
对采集到的浮游生物样品进行处理的步骤和方法。
详细描述
对采集到的浮游生物样品需要进行适当的处理和保存，以保持样品的代表性和完整性。处理方法包括洗涤、筛选、 浓缩、固定等，保存则通常采用加入适量固定剂或保存液，以及低温或冷冻等方法。样品处理和保存的步骤对于 保证分析结果的准确性和可靠性至关重要。
计数法
总结词
根据一定体积的浮游生物样品中含有的 个体数量进行计数。
VS
详细描述
计数法是浮游生物分析中最常用的方法之 一，通过在一定体积的样品中计数浮游生 物的个体数量，可以得出该体积内的浮游 生物密度。该方法需要使用计数板或计数 池等工具，操作简便，结果准确。
生物量测定法
总结词
通过测量浮游生物样品的重量、干重或湿重 来推算其生物量。
采样点的选择与布局
采样点选择
在选择浮游生物采样点时，应考虑水 体的类型、流速、水深、水质、底质 等因素，以确保采集到的样品具有代 表性。
采样点布局
采样点的布局应遵循均匀分布的原则 ，尽可能覆盖整个水体，避免出现采 样盲区。
采样时间与频率