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免疫亲和层析原理

免疫亲和层析原理

免疫亲和层析原理免疫亲和层析原理是一种利用抗原与抗体之间的特异性结合作用来分离和纯化生物大分子的技术。

在此过程中,使用具有高亲和力的抗体作为纯化目标分子的亲和基质,将待分离的生物大分子与亲和层析柱中的抗体结合,再用适当的缓冲液洗脱非特异性结合的杂质,最终得到纯化的目标分子。

在免疫亲和层析中,亲和基质是关键的一步。

它应该具有高亲和力,可以特异性地与目标分子结合,而且又能够稳定地与固定在柱子上的支持基质结合。

同时,亲和基质也需要具有耐受性,能够承受高浓度样品的负载和高盐浓度的洗脱缓冲液。

亲和基质的选取与设计是免疫亲和层析技术中的重要环节。

常用的亲和基质包括:蛋白A、蛋白G、蛋白L、亲和素、铜离子等。

例如,蛋白A可以特异性结合于大部分哺乳动物IgG的Fc区域上,因此常用于IgG的纯化;蛋白G可以结合多种种类的IgG,适用于不同种类IgG的纯化过程。

在免疫亲和层析中,样品的选择也是十分重要的。

通常,需要选择合适的抗体来作为亲和基质。

另外,样品的组成也需要考虑,以避免样品中的其他成分对目标分子的结合和纯化产生干扰。

此外,需要控制样品的pH和离子强度,使其适应亲和基质的结合条件。

免疫亲和层析技术具有以下优点:可以高效地分离和纯化目标分子,具有高度的特异性和选择性;分离过程可以在温和条件下进行,避免目标分子的变性和失活;可以应用于复杂的生物体系中,如血清、细胞酶制剂等;可以重复使用亲和基质,具有经济性和环保性。

但是,免疫亲和层析也存在一些缺点。

例如,亲和基质的成本较高,需要大量的抗体来制备;亲和基质对于目标分子的结合并非绝对特异性,可能会与非目标分子结合,导致分离纯化效果不佳;亲和基质的稳定性和重复使用次数有限,需要定期更换。

免疫亲和层析是一种有效的生物大分子分离和纯化技术,其原理基于抗原与抗体之间的特异性结合。

通过选取合适的亲和基质和样品,可以高效地纯化目标分子。

虽然该技术存在一些缺点,但其优点仍然使其成为生物分离纯化领域的重要技术之一。

亲和层析技术在生物科学中的应用及发展

亲和层析技术在生物科学中的应用及发展

亲和层析技术在生物科学中的应用及发展摘要:近几十年来,亲和层析技术发展十分迅速,广泛应用于生物分子(如结合蛋白、酶、抑制剂、抗原、抗体、激素、激素受体、糖蛋白、核酸及多糖类等)及组织(如细胞、细胞器、病毒等)的分离和纯化,是蛋白质组学研究中重要的技术之一。

介绍了亲和层析的基本类型及配体合成的研究进展,概述了亲和层析技术在蛋白质组学以及在其他方面的应用和发展动态。

关键词:亲和层析;基本原理;类型;应用亲和层析(amnitychromaloSraphy)是利用偶联亲和配体的亲和吸附介质为固定相亲和吸附目标产物,使目标产物得到分离纯化的液相层析法,近几十年来,亲和层析技术发展十分迅速,并在生物技术产品、生物分子及组织的分离和纯化领域取得令人瞩目的成就。

现已广泛用于分离纯化蛋白质、肽、酶及其底物和抑制剂、抗体及抗原、核酸及其特异性作用物、激素及受体、细胞及细胞表面物等等”。

基于此,本文针对亲和层析的基本类型,配体的选择和亲和层析在生物学特别是蛋白质组学中的应用等方面作一介绍。

1 亲和层析的类型亲和层析柱中被固定的配体是决定亲和层析成功的关键因素。

根据配体与生物大分子之间相互作用体系不同,可以把亲和层析分为以下4种类型。

1.1 生物亲和层析(BAFC)生物亲和层析是利用自然界中存在的生物特异性相互作用物质对的亲和层析。

通常具有高的选择性。

典型的物质对有酶-底物、酶-抑制剂、激素—受体等。

1.2 免疫亲和层析(1AFC)利用抗原抗体中的一方为配体,亲和吸附另一方的分离系统,称免疫亲和层析,免疫亲和层析应用相当广泛,许多典型的亲和层析纯化蛋白质的过程已经使用了单克隆抗体作为亲和配体,目前,利用抗体-抗原模式,有可能得到每一种目标蛋白的单抗,然后以单抗为配基,通过亲和层析技术分离纯化目标蛋白质。

此种方法的纯化倍数活性回收率非常高。

蛋白A和蛋白C作为抗体结合蛋白已被应用于免疫亲和层析技术,是分析人类免疫球蛋白,特别是IgG—类抗体的很好的免疫亲和层析的配体。

尿激酶的亲和层析分离研究

尿激酶的亲和层析分离研究

华南理工大学硕士学位论文尿激酶的亲和层析分离研究姓名:叶峰申请学位级别:硕士专业:生物化工指导教师:阮复昌20040301摘要摘要尿激酶(Urokinase)是体内纤溶酶原激活剂。

自从在尿液中发现尿激酶以来,人们对它的研究也日益深入和全面。

尿激酶参与纤溶过程,因而常用作治疗脑血栓、急性心肌梗塞和静脉栓塞等疾病。

尿激酶是一种糖蛋白,属丝氨酸蛋白酶类,等电点在8.4~9.7之间。

尿激酶的活性检测方法主要有直接法与间接法,采用间接法较为快捷,如荧光分光光度法和可见光分光光度法是使用较广泛的测定方法。

高纯度的药用尿激酶价格昂贵。

通常是从成年健康男性尿液中提取,制得粗酶后早期采用沉淀和传统层析相结合的多步分离法,后来发展用亲和层析纯化尿激酶。

本文采用Sepharose4B为基质,对氨基苯甲脒(P—aminobenzamidine,p-ABZ)年[I肌酸为亲和配基,制备亲和层析柱分离尿激酶。

在前人的研究工作基础上,本文选择对氨基苯甲脒层析柱在最优的条件下分离尿激酶:合成配基密度481.tmol・g。

1的亲和载体,最大吸附量达2.17×105Iug。

载体以上;选择pH7.5含O.5mol・L。

NaCI的0.05mol・L‘1Na2HP04~NaH2P04缓冲液为吸附条件,选择pH4.0含0.5mol・L‘1NaCl的0.1m01.L~NaAc~HAc缓冲液洗脱条件:将尿激酶粗酶纯化50.2倍,活性回收率为79%。

首次将肌酸应用于分离尿激酶,并取得较好的效果:合成配基为531.tmol・g。

的亲和载体,最大吸附量为1.28×105IU・g。

载体;选择pH4.5含0.5mol-L1NaCl,0.1t001.L~AICl,的0.1m01.L~NaAc—HAc缓冲液为吸附条件,选择pH7.0含0.5m01.L。

1NaCl的O.05m01.L~Na2HP04~NaH2P04缓冲液为最终洗脱条件;将尿激酶粗酶纯化63.7倍,活性回收率为8l%。

实验十一亲和层析(最后)

实验十一亲和层析(最后)

实验十一亲和层析(最后)实验十一亲和层析纯化胰蛋白酶一、引言前面我们所学的凝胶过滤法、离子交换法以及电泳等一系列分离纯化生物大分子的手段,比起早期采用的盐析法,有机溶剂及等电点沉淀法等,分离效果要好得多。

但是,这些方法中,或是利用生物大分子在一定条件下不同的溶解度、电荷分布、总电荷的不同,或是依据其分子的大小和形状的不同。

一句话,多是利用生物分子间物理和化学性质的差异来进行分离纯化的。

由于这些方法的特异性比较低,加之待分离物质之间的物化性质差异较小,常常要综合不同的分离方法。

经过许多步骤才能使生物分子达到一定的纯度。

这样既费时间,又费试剂,有时最后产品还不能令人满意。

另外,有些生物大分子,往往在生物组织或发酵液中的含量很低,相对地说杂质很多,特别是一些具有生物活性的分子,往往由于分离纯化的步骤很多,时间过长,造成破坏以致失活,产率很低。

这就促使人们去寻求新的方法来解决存在的问题。

亲和层析法是近十多年来迅速地发展并广泛被采用来分离纯化生物大分子的一种十分有效的方法。

它具有分离快速,纯化效率高。

特别是对于那些含量少,杂质多,采用常规方法难于分离的生物活性分子,显示了独特的优越性。

有时一次被分离物质的纯度可提高几倍,十几倍甚至几百倍。

因此,亲和层析技术已成为纯化生物分子,特别是纯化生物活性物质最重要的方法之一。

二、实验目的与要求1.理解亲和层析法的基本原理,并通过实验能初步掌握制备一种亲和吸附剂的操作方法;2.理解和掌握亲和层析实验操作技术;3.学会一种测定蛋白水解酶活力及比活的方法。

三、基本原理简言之,亲的层析主要是根据生物分子与其特定的固相化的配基或配体之间具有一定的亲和力而使生物分子得以分离。

这是由一种典型的吸附层析发展而来的分离纯化方法。

许多生物分子都有一种独特的生物学功能。

即它们都具有能和某些相对应的专一分子可逆地结合的特性(分子间通过某些次级键结合,如范德华力,疏水力,氢键等,在一定条件下又可解离)。

亲和层析技术在生物科学中的应用及发展

亲和层析技术在生物科学中的应用及发展

亲和层析技术在生物科学中的应用及发展近年来,高速发展的生物制*工业已广泛应用,以下是小编搜集整理的一篇探究亲和层析技术应用的论文范文,欢迎阅读参考。

摘要:近几十年来,亲和层析技术发展十分迅速,广泛应用于生物分子(如结合蛋白、酶、抑制剂、抗原、抗体、激素、激素受体、糖蛋白、核*及多糖类等)及组织(如细胞、细胞器、病毒等)的分离和纯化,是蛋白质组学研究中重要的技术之一。

介绍了亲和层析的基本类型及配体合成的研究进展,概述了亲和层析技术在蛋白质组学以及在其他方面的应用和发展动态。

关键词:亲和层析;基本原理;类型;应用亲和层析(amnitychromaloSraphy)是利用偶联亲和配体的亲和吸附介质为固定相亲和吸附目标产物,使目标产物得到分离纯化的液相层析法,近几十年来,亲和层析技术发展十分迅速,并在生物技术产品、生物分子及组织的分离和纯化领域取得令人瞩目的成就。

现已广泛用于分离纯化蛋白质、肽、酶及其底物和抑制剂、抗体及抗原、核*及其特异*作用物、激素及受体、细胞及细胞表面物等等”。

基于此,本文针对亲和层析的基本类型,配体的选择和亲和层析在生物学特别是蛋白质组学中的应用等方面作一介绍。

1亲和层析的类型亲和层析柱中被固定的配体是决定亲和层析成功的关键因素。

根据配体与生物大分子之间相互作用体系不同,可以把亲和层析分为以下4种类型。

1.1生物亲和层析(BAFC)生物亲和层析是利用自然界中存在的生物特异*相互作用物质对的亲和层析。

通常具有高的选择*。

典型的物质对有酶-底物、酶-抑制剂、激素?受体等。

1.2免疫亲和层析(1AFC)利用抗原抗体中的一方为配体,亲和吸附另一方的分离系统,称免疫亲和层析,免疫亲和层析应用相当广泛,许多典型的亲和层析纯化蛋白质的过程已经使用了单克隆抗体作为亲和配体,目前,利用抗体-抗原模式,有可能得到每一种目标蛋白的单抗,然后以单抗为配基,通过亲和层析技术分离纯化目标蛋白质。

此种方法的纯化倍数活*回收率非常高。

亲和层析纯化

亲和层析纯化

亲和层析纯化亲和层析纯化是一种常用的分离和纯化生物大分子的方法,它基于目标分子与特定配体之间的亲和作用,通过选择性地捕获、洗脱和回收目标分子。

本文将从亲和层析纯化的原理、步骤和应用方面进行阐述。

一、亲和层析纯化的原理亲和层析纯化是基于生物大分子之间特异的相互作用原理进行的。

在该方法中,目标分子与具有亲和性的配体发生结合,形成稳定的复合物。

这种特异的结合使得目标分子能够在混合溶液中被选择性地捕获和富集。

亲和作用可以是多种形式,如氢键、离子键、疏水作用等。

根据目标分子和配体之间的亲和性,可以选择不同类型的亲和层析介质,例如亲和树脂、亲和膜等。

亲和层析纯化通常包括以下几个步骤:样品预处理、柱填充与平衡、样品加载、洗脱和目标分子回收。

1. 样品预处理:首先需要将样品进行预处理,如细胞破碎、蛋白质去除等,以获得目标分子的纯化样品。

2. 柱填充与平衡:将选择的亲和层析介质填充到柱子中,并通过流动缓冲液进行平衡,使介质充分湿润。

3. 样品加载:将样品加入到柱子中,目标分子与配体发生亲和结合,被捕获在柱子内。

4. 洗脱:通过改变流动缓冲液的组成、pH值或离子强度等条件,使非特异性结合的杂质分子被洗脱,而目标分子仍保持与配体的结合。

5. 目标分子回收:通过改变条件,使目标分子与配体的结合解除,从而使目标分子得以回收。

这可以通过改变pH、离子强度、温度等来实现。

三、亲和层析纯化的应用亲和层析纯化在生物技术、生物医药等领域得到了广泛应用。

1. 蛋白质纯化:亲和层析纯化可用于从复杂的混合物中纯化目标蛋白质。

例如,通过选择性地捕获具有特定亲和性的标签蛋白质,如His标签、GST标签等,实现目标蛋白质的高效纯化。

2. 抗体纯化:亲和层析纯化也被广泛用于抗体的纯化。

通过使用抗体与特定抗原之间的亲和作用,可以高效地纯化特定抗体。

3. 生物药物纯化:亲和层析纯化在生物药物制造中起着重要的作用。

通过选择性地捕获和富集目标生物药物,可以实现高纯度和高产量的生物药物生产。

亲和层析法的原理

亲和层析法的原理亲和层析法呀,这可真是个神奇的技术呢!就好像是一把专门捕捉目标分子的“魔法钥匙”。

你想想看,在一个大混合物里面,有各种各样的分子在跑来跑去,就像一群调皮的小孩子。

而我们想要的那个分子呢,就像是其中一个特别的小孩,我们得想办法把它找出来。

亲和层析法就是这样一个厉害的办法。

它就像是给那个特别的分子准备了一个专属的“小窝”,这个“小窝”呢,就是我们特意设计的配体啦。

这个配体对我们要找的分子有着特别的吸引力,就像磁铁吸引铁钉一样。

当混合物通过这根层析柱的时候,其他的分子就像那些不感兴趣的孩子,直接就跑过去了,而我们的目标分子呢,就会开开心心地住进这个“小窝”里,被牢牢地抓住啦。

这多有意思呀!就好比你去参加一个聚会,里面有很多人,但你一眼就看到了你特别想见的那个人,然后你就紧紧抓住他不放手。

亲和层析法就是这样准确又高效地抓住我们想要的分子。

而且哦,这个方法还特别灵活呢!我们可以根据不同的目标分子,设计出不同的配体,就像给不同的孩子准备不同的玩具一样。

这样就能应对各种各样的情况啦。

它的应用那可真是广泛得很呢!在生物化学、医学研究等领域都大显身手。

比如说,要研究一种蛋白质的性质,我们就可以用亲和层析法把它从复杂的混合物中分离出来,然后再好好地研究它。

这就好像是从一堆沙子里找出那颗特别的珍珠一样,是不是很神奇?再想想,如果没有亲和层析法,我们要从那么多分子里找到我们想要的那个,得费多大的劲呀!可能就像在大海里捞针一样困难。

但是有了它,一切都变得简单多啦。

所以说呀,亲和层析法真的是科学家们的好帮手,是打开分子世界大门的一把神奇钥匙。

它让我们能够更轻松、更准确地探索分子的奥秘,为我们的科学研究和实际应用带来了巨大的帮助。

这难道不是很了不起吗?你说呢!。

用免疫亲和层析柱作为预处理通过LC-MSMS法检测农水产品中氯霉素的残留-毕业论文

---文档均为word文档,下载后可直接编辑使用亦可打印--- 摘要食品安全引人重视,国计民生时刻关注。

食品安全无疑是小民生里渗透着的大科学。

如何使民众的身体健康与生命安全的得到有效保障?严峻的形势亟待我们建立一种有效的针对食品中存在的有毒有害物质进行提取,纯化并与检测仪器结合使用的高效分析检测方法。

这种预处理方法还应该具备简单、便捷、高效和可靠的特点。

氯霉素作为一种对人体健康有害的,常被滥用于农水产品的抗生素,有必要施行对它的便捷的预处理,以便后续检测。

本实验旨在建立一种单组分的氯霉素的免疫亲和色谱法,用于萃取分离富集虾肉样品的氯霉素残留。

将样品用免疫亲和层析柱预处理,再用高效液相色谱-质谱联用检测,在准确可靠的前提条件下,使得样品预处理的操作简单高效化,从而缩短分析时间,达到了简单便捷,高效可靠的目标。

本研究采用的免疫亲和柱,是把Protein G 树脂胶纯化的氯霉素的单克隆抗体,和溴化氰活化Sepharose 4B琼脂糖凝珠共价结合交联,再将此种复合物分装进EP管中制备而成的多个微型小“柱”。

经过实验的验证,实际样品虾肉能够用采用这种方法制备的免疫亲和色谱柱分析:它能将氯霉素从虾肉样品中提取分离,每50μL柱胶的最大柱容量为200ng每50μL柱胶。

在探究上样、淋洗和洗脱的条件后,建立梯度浓度氯霉素标液的S型曲线测定,找到了线性关系、检测限,线性范围内标液的回收率为78.9%-129.9%。

之后的实际样品的加标测定结果为:虾肉和奶粉加标量分别为2ng g−1时,回收率在80%左右,奶粉达到了90%。

为保证实验严谨,还进行了空白样品过柱实验作为阴性对照,并用HPLC-MS/MS进行测定无信号证明虾肉基质本身呈阴性。

关键词:样品预处理免疫亲和层析柱虾肉检测氯霉素高效液相色谱-质谱联用食品安全AbstractFood safety and people's livelihood attracts attention a lot. Food safety is undoubtedly a kind of great science that permeates the small people's livelihood. How to ensure people's food security, health and life quality? This is a grim situation that calls for us to establish an effective detection method for harmful toxic substances contained in food. This method should be simple, convenient, efficient and reliable as well. Chloramphenicol as a kind of antibiotic that harmful to human health, is often abused in agricultural water products ,so it’s naturally to carry out a kind of convenient detection of it. The aim of this experiment was to establish a single component of chloramphenicol immunoaffinity chromatography for the extraction of chloramphenicol residues in the samples. The sample pretreatment with immune affinity chromatography column, then detect with HPLC-MS/MS detection, at the same time ensuring the premise that accurate and reliable, make sample pretreatment operation simple and efficient, so as to shorten the analysis time, to achieve a simple and convenient, reliable and efficient target.The immune affinity column used in this research adopts chloramphenicol monoclonal antibody that has been purified and dialysis with the Protein G resin, covalently combine with CNBr activated Sepharose 4B gel beads, then repackage this compound into EP tube into multiple tiny little "column". As the experimental verification shows, the actual samples of the preparation of shrimp can use this immune affinity chromatography column way to analysis: it can do extraction and separation of chloramphenicol from the shrimp samples, every 50μL column glue has the maximum column capacity of 200ng. Oninquiry, leaching and elution conditions, establish the gradient concentration determination of chloramphenicol to draw a standard curve that give us the linearity, detection limit and the recovery rate of the fluid inside the limits of 78.9%-129.9%.The result of the addition of the actual sample was: 2ng g-1,recovery of shrimp on average is 80% and for milk it’s 90%.In order to conduct an accurate enough experiment, the blank sample was carried out as the negative control, with detection using HPLC-MS/MS.The outcome shows relative standard deviation of the real sample is blank.Keywords: specimen pretreatment, immune affinity chromatography column ,shrimp flesh detection, chloramphenicol, HPLC-MS/MS, food safety.第一章绪论1.1 引言对样品进行分析测试的整个流程大致为:目标样品的收集,样品的分解,样品净化,样品进样前的处理和样品上机测定一共五个流程,并且除了样品的测定外,剩余步骤粗泛而言都属于样品预处理。

亲和层析的原理及应用

亲和层析的原理及应用1. 什么是亲和层析?亲和层析是一种分离和纯化生物分子的技术方法。

它基于生物分子之间的特异性相互作用,例如抗原与抗体的结合。

亲和层析通过利用这种特异性相互作用,将目标分子从混合物中有效地分离出来。

亲和层析可以用于纯化蛋白质、分离细胞、筛选药物等多种应用。

2. 亲和层析的原理亲和层析的原理基于生物分子之间的相互作用。

在亲和层析中,通常使用的是一对具有特定相互作用的分子,例如抗原与抗体、配体与受体等。

这对分子中的一个部分被固定在固相介质上,而另一个部分则与目标分子发生特异性相互作用。

亲和层析的步骤包括:•预处理:选择适当的固相介质,并将其与特异性相互作用的分子配对。

固相介质可以是固定在柱子或颗粒上的化学物质。

•样品加载:将待分离的混合物样品加到预处理后的固相介质上。

目标分子与固相介质上的特异性配对分子发生结合。

•洗涤:用缓冲液将非特异性结合的物质洗掉,以减少背景噪音。

•洗脱:用特定的洗脱液冲洗固相介质,破坏特异性相互作用,使目标分子从固相介质上解离出来。

•收集纯化物:通过收集洗脱液中的目标分子来获取纯化物。

3. 亲和层析的应用亲和层析在生物科学研究和工业领域中得到了广泛的应用。

以下是亲和层析的一些常见应用:3.1 蛋白质纯化亲和层析可以用于纯化蛋白质。

通过将特异性配对的分子与待分离蛋白质结合,然后用洗脱液洗脱,可以将目标蛋白质从混合物中高效地纯化出来。

亲和层析在蛋白质研究和生物制药等领域具有重要的应用价值。

3.2 细胞分离亲和层析可以用于分离特定种类的细胞。

通过将细胞与特异性配对的分子结合,然后用洗脱液洗脱,可以将目标细胞从混合物中分离出来。

这在细胞学研究和细胞治疗等领域具有重要的应用价值。

3.3 药物筛选亲和层析可以用于筛选药物候选物。

通过将潜在药物分子与特异性配对的分子结合,然后用洗脱液洗脱,可以筛选出具有特定相互作用的药物候选物。

这在药物研发过程中有着重要的应用价值。

3.4 DNA/RNA纯化亲和层析也可以用于DNA/RNA的纯化。

药物分析中的亲和层析法应用研究

药物分析中的亲和层析法应用研究亲和层析法(affinity chromatography)是一种基于亲和性的分离和纯化方法,广泛应用于药物分析领域。

本文将探讨亲和层析法在药物分析中的应用,并介绍其原理、操作步骤和优势。

一、亲和层析法概述亲和层析法是利用配体与目标分子之间的特异性相互作用进行分离和纯化的技术。

在药物分析中,亲和层析法通常用于研究药物与其靶标蛋白之间的相互作用、药物结合位点的鉴定和药物的筛选。

二、亲和层析法的原理1. 亲和剂的选择在亲和层析中,选择合适的亲和剂是至关重要的。

亲和剂通常是目标分子的衍生物或具有特异性结合能力的化合物,如抗体、金属离子等。

通过调节亲和剂与目标分子之间的结合条件,实现目标分子的选择性结合和纯化。

2. 亲和层析纯化步骤亲和层析法的纯化步骤一般包括样品处理、进样、洗脱和再生等过程。

首先,将样品与亲和层析柱填料之间的非特异性结合物洗脱,然后再用合适的洗脱缓冲液洗脱目标分子。

3. 分离效果评价亲和层析分离的效果主要通过检测目标分子在洗脱峰的峰面积或峰高来评价。

分离的效果好坏不仅取决于亲和剂的选择,还与样品的纯度、目标分子的亲和性以及平衡时间等因素有关。

三、亲和层析法在药物分析中的应用1. 药物与蛋白的相互作用研究亲和层析法可用于研究药物与蛋白质之间的结合特性以及药物-蛋白复合物的稳定性和解离动力学等。

通过该方法,可以揭示药物与蛋白之间的相互作用机制,为药物的设计和改进提供重要的依据。

2. 药物结合位点的鉴定亲和层析法可以用于鉴定药物在蛋白质分子中的结合位点。

通过与不同的亲和柱进行层析,可以确定药物与蛋白分子的结合位点,进而揭示药物与蛋白质之间的结构和功能关系。

3. 药物筛选与优化亲和层析法可用于筛选具有高亲和力和高选择性的药物。

通过将潜在药物与亲和剂结合,并利用洗脱步骤将药物从亲和剂中洗脱,可以筛选出具有良好亲和性的药物并进行后续的优化。

四、亲和层析法的优势1. 高选择性:亲和层析法可通过调节亲和剂和目标分子之间的结合条件,实现高度选择性的纯化和分离。

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关于亲和层析的论文
简介:
亲和层析(Affinity Chromatography)是利用生物分子间专一的亲和力而进行分离的一种层析技术。

人们很早就认识到蛋白质、酶等生物大分子物质能和某些相对应的分子专一而可逆的结合,可以用于对生物分子的分离纯化。

但由于技术上的限制,主要是没有合适的固定配体的方法,所以在实验中没有广泛的应用。

直到60年代末,溴化氰活化多糖凝胶并偶联蛋白质技术的出现,解决了配体固定化的问题,使得亲和层析技术得到了快速的发展。

亲和层析是分离纯化蛋白质、酶等生物大分子最为特异而有效的层析技术,分离过程简单、快速,具有很高的分辨率,在生物分离中有广泛的应用。

同时它也可以用于某些生物大分子结构和功能的研究。

亲和层析是利用生物分子所具有的特异的生物学性质-亲和力来进行分离纯化的。

由于亲和力具有高度的专一性,使得亲和层析的分辨率很高,是分离生物大分子的一种理想的层析方法。

基本原理:
生物分子间存在很多特异性的相互作用,如我们熟悉的抗原-抗体、酶-底物或抑制剂、激素-受体等等,它们之间都能够专一而可逆的结合,这种结合力就称为亲和力。

亲和层析的分离原理简单的说就是通过将具有亲和力的两个分子中一个固定在不溶性基质上,利用分子间亲和力的特异性和可逆性,对另一个分子进行分离纯化。

被固定在基质上的分子称为配体,配体和基质是共价结合的,构成亲和层析的固定相,称为亲和吸附剂。

亲和层析时首先选择与待分离的生物大分子有亲和力物质作为配体,例如分离酶可以选择其底物类似物或竞争性抑制剂为配体,分离抗体可以选择抗原作为配体等等。

并将配体共价结合在适当的不溶性基质上。

将制备的亲和吸附剂装柱平衡,当样品溶液通过亲和层析柱的时候,待分离的生物分子就与配体发生特异性的结合,从而留在固定相上;而其它杂质不能与配体结合,仍在流动相中,并随洗脱液流出,这样层析柱中就只有待分离的生物分子。

通过适当的洗脱液将其从配体上洗脱下,就得到了纯化的待分离物质。

基质的性质:
基质构成固定相的骨架,亲和层析的基质应该具有以下一些性质:
1) 具有较好的物理化学稳定性。

在与配体偶联、层析过程中配体与待分离物结合、以及洗脱时的pH、离子强度等条件下,基质的性质都没有明显的改变。

2) 能够和配体稳定的结合。

亲和层析的基质应具有较多的化学活性基团,通过一定的化学处理能够与配体稳定的共价结合,并且结合后不改变基质和配体的基本性质。

3) 基质的结构应是均匀的多孔网状结构。

以使被分离的生物分子能够均匀、稳定的通透,并充分与配体结合。

基质的孔径过小会增加基质的排阻效应,使被分离物与配体结合的机率下降,降低亲和层析的吸附容量。

所以一般来说,多选择较大孔径的基质,以使待分离物有充分的空间与配体结合。

4) 基质本身与样品中的各个组分均没有明显的非特异性吸附,不影响配体与待分离物的结合。

基质应具有较好的亲水性,以使生物分子易于靠近并与配体作用。

基质的活化:
基质的活化是指通过对基质进行一定的化学处理,使基质表面上的一些化学基团转变为易于和特定配体结合的活性基团。

配体和基质的偶联,通常首先要进行基质的活化。

载体的基本要求和选择:
①不溶于水,但高度亲水;②惰性物质,非特异性吸附少;
③具有相当量的化学基团可供活化;④理化性质稳定;
⑤机械性能好,具有一定的颗粒形式以保持一定的流速;
⑥通透性好,最好为多孔的网状结构,使大分子能自由通过;
⑦能抵抗微生物和醇的作用。

可以做为固相载体的有皂土、玻璃微球、石英微球、羟磷酸钙、氧化铝、聚丙烯酰胺凝胶、淀粉凝胶、葡聚糖凝胶、纤维素和琼脂糖。

在这些载体中皂土、玻璃微球等吸附能力弱,且不能防止非特异性吸附。

纤维素的非特异性吸附强。

聚丙稀酰胺凝胶是目前的首选优良载体。

配体的性质:
1.配体与待分离的物质有适当的亲和力。

.
2.配体与待分离的物质之间的亲和力要有较强的特异性,也就是说配体与待分
离物质有适当的亲和力,而与样品中其它组分没有明显的亲和力,对其它组分没有非特异性吸附作用。

这是保证亲和层析具有高分辨率的重要因素。

3.配体要能够与基质稳定的共价结合,在实验过程中不易脱落,并且配体与基质
偶联后,对其结构没有明显改变,尤其是偶联过程不涉及配体中与待分离物质有亲和力的部分,对二者的结合没有明显影响。

4.配体自身应具有较好的稳定性,在实验中能够耐受偶联以及洗脱时可能的的较剧烈的条件,可以多次重复使用。

亲和层析优缺点:
1. 亲和层析法是分离蛋白质的一种极为有效的方法,它经常只需经过一步处理即可使某种待提纯的蛋白质从很复杂的蛋白质混合物中分离出来,而且纯度很高。

2. 是最有效的生物活性物质纯化方法,它对生物分子选择性的吸附和分离,可以取得很高的纯化倍数。

此外蛋白在纯化过程中得到浓缩,结合到亲和配基后,性质更加稳定,其结果提高了活性回收率。

此外它可以减少纯化步骤缩短纯化时间,对不稳定蛋白的纯化十分有利。

3. 除特异性的吸附外,仍然会因分子的错误认别和分子间非选择性的作用力而吸附一些杂蛋白质,另洗脱过程中的配体不可避免的脱落进入分离体系。

4. 载体较昂贵,机械强度低,配基制备困难,有的配基本身要经过分离纯化,配基与载体耦联条件激烈等。

参考文献::《现代生物制药工艺学》主编:辛秀兰出版社: 化学工业出版社。

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