神经干动作电位的观测实验报告
动作电位引导实验报告
一、实验目的1. 了解和掌握蛙坐骨神经干动作电位的引导方法。
2. 观察坐骨神经干动作电位的波形特征。
3. 学习并掌握动作电位传导速度的测定方法。
4. 了解神经兴奋传导的基本原理。
二、实验原理动作电位是神经细胞膜在受到刺激时产生的一种短暂而迅速的电位变化。
通过在神经干表面放置电极，可以记录到神经干动作电位的变化。
动作电位的传导速度可以通过测量神经干长度和兴奋传导时间来计算。
三、实验材料1. 实验对象：蛙或蟾蜍2. 实验器材：微机生物信号采集处理系统、蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备手术器械和药品1套、神经标本屏蔽盒、滤纸片、棉球、10% KCl溶液。
3. 实验药品：任氏液，2%普鲁卡因。
四、实验步骤1. 制备神经标本：将蛙或蟾蜍处死，用剪刀剪开背部皮肤，暴露坐骨神经，用手术剪分离出坐骨神经。
2. 连接电极：将两个电极分别放置在坐骨神经的远端和近端，确保电极与神经良好接触。
3. 设置信号采集系统：将电极连接到微机生物信号采集处理系统，设置好采样参数。
4. 给予刺激：用10% KCl溶液滴在近端电极上，给予神经刺激。
5. 观察并记录：观察微机屏幕上的波形，记录动作电位的波形特征。
6. 测定传导速度：测量神经干长度和兴奋传导时间，计算动作电位传导速度。
五、实验结果1. 动作电位波形：观察到的动作电位波形呈双相，先出现一个正向波峰，然后出现一个负向波峰。
2. 传导速度：根据实验数据计算得出动作电位传导速度约为15.2 m/s。
六、实验讨论1. 动作电位的产生和传导是神经细胞功能的基础。
通过本实验，我们了解了动作电位的引导方法，并观察到了其波形特征。
2. 动作电位传导速度的测定有助于了解神经系统的功能状态。
在本实验中，我们成功测定了动作电位传导速度，为后续研究提供了基础数据。
3. 实验过程中，我们发现动作电位波形呈现双相，这可能与神经干中不同类型的神经纤维有关。
在神经干中，存在不同传导速度和兴奋阈值的神经纤维，它们产生的动作电位叠加在一起，形成了复合动作电位。
神经干动作电位实验报告
神经干动作电位实验报告
神经干动作电位实验报告
一、实验目的
1. 学习蛙的坐骨神经干标本的剥制方法；
2.学习动作电位的测定方法；
3.了解双相和单相神经动作电位产生的基本原理。
二.原理
神经或肌肉发生兴奋时，兴奋部位发生电位变化，这种可扩布性的电位变化即为动作电位。
三、试剂与器材
蟾蜍或蛙、计算机、生物信号处理系统、解剖针、手术剪、眼科剪、圆头手术镊、尖头手术镊、玻璃勾针、神经屏蔽盒及连接导线，任氏液、棉花、蛙板、烧杯。
四、实验内容（步骤）
（一）坐骨神经标本的制备（看示范和录象）
（二）连接实验装置
（三）实验观察
1. 动作电位的观察：
2. 倒换神经干的放置方向，动作电位有无变化。
3. 在两记录电极之间滴上KCl溶液，观察动作电位的变化。
观察到变化后，用任氏液洗掉KCl溶液，直至动作电位恢复。
4. 在两电极之间滴上普鲁卡因，观察动作电位的变化。
（四）不应期的测定
采用双刺激。
调节刺激器的“延时”，逐渐缩短两刺激之间的时间间隔。
观察出现的效应
五.注意事项
标本剥制过程，尽量减少神经的损伤；
刺激参数设置要合理，过大会损毁神经。
双刺激的参数要一致。
六、结果和目标
观察和记录神经干动作电位并对其特性进行分析；测出动作电位的各个时期；
测出绝对不应期和相对不应期。
神经干动作电位实验报告
神经干动作电位实验报告一、实验目的研究神经干动作电位的基本特征及产生机制。
二、实验原理神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究。
神经干动作电位是由大量神经细胞同时产生的、电位差较大的电信号。
当神经细胞兴奋峰值超过一定阈值时，会产生神经冲动，传导到轴突末梢，并触发神经干动作电位。
三、实验器材和试剂1.脉冲发生器2.示波器3.探针4.青蛙腓肠神经5.盐水试剂四、实验步骤1.准备工作：将青蛙放入盐水中，使其神经麻痹，然后取出青蛙腓肠神经进行实验。
2.将脉冲发生器的输出端与示波器的输入端相连接，将示波器的探针分别连接到接地端和腓肠神经上。
3.调整脉冲发生器的参数，包括幅值、频率和脉冲宽度等，观察示波器上的波形变化。
4.记录神经干动作电位的波形、幅值和频率等特征。
五、实验结果和分析根据实验结果及已知知识，我们可以进一步分析神经干动作电位的产生机制。
神经细胞内外的离子浓度存在差异，细胞外Na+浓度较高，而细胞内K+浓度较高。
当神经细胞兴奋时，细胞膜上的离子通道会打开，导致Na+离子大量进入细胞内，从而产生快速上升期；随后，Na+通道关闭，而K+通道打开，导致K+离子大量流出，产生快速下降期。
在超极化期，细胞膜上的Na+/K+泵恢复细胞内外离子的平衡，使细胞膜电位恢复至静息状态。
六、实验结论通过神经干动作电位实验，我们掌握了神经干动作电位的基本特征和产生机制。
神经干动作电位具有典型的波形特征，包括快速上升期、峰值期、快速下降期和超极化期。
神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究，并且神经干动作电位的产生是由于细胞内外离子浓度差异以及离子通道的打开和关闭所导致的。
七、实验总结神经干动作电位是研究神经细胞兴奋状态的重要方法之一、通过实验，我们不仅了解了神经干动作电位的基本特征和产生机制，还掌握了记录和观察神经干动作电位的实验技巧。
该实验对于进一步研究神经细胞的功能和机制具有重要意义。
神经干动作电位的实验报告
神经干动作电位的实验报告神经干动作电位的实验报告引言：神经干动作电位（nerve conduction action potential）是指神经细胞在受到刺激后产生的电信号，它是神经系统正常功能的重要指标之一。
本实验旨在研究神经干动作电位的特征及其在临床应用中的意义。
实验方法：本次实验采用了小鼠尾神经为研究对象。
首先，将小鼠固定在实验台上，用电刺激仪器对尾神经进行刺激。
刺激强度和频率分别为10mA和1Hz。
同时，使用电极记录尾神经上的动作电位，并将信号放大放大后通过示波器显示和记录。
实验结果：经过实验记录和数据分析，我们得到了以下结果：1. 动作电位的波形特征：在实验中，我们观察到尾神经上的动作电位呈现出典型的波形特征。
首先是负向的初始反应，随后是正向的峰值反应，最后是负向的复极化反应。
这一波形特征反映了神经细胞在受到刺激后的电活动过程。
2. 动作电位的幅值和潜伏期：通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性。
实验结果显示，动作电位的幅值和潜伏期与刺激强度和频率呈正相关关系。
这一结果表明，神经传导速度和神经细胞的兴奋性受到刺激强度和频率的调节。
3. 动作电位的传导速度：实验结果显示，动作电位在尾神经中的传导速度为Xm/s。
这一结果与已有的文献报道相符，进一步验证了本实验的可靠性。
实验讨论：神经干动作电位的实验结果对于临床应用具有重要意义。
首先，通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性，从而诊断和监测神经系统疾病。
例如，在神经病学领域，动作电位的异常可以提示神经疾病的存在和发展。
其次，动作电位的传导速度可以用来评估神经损伤的程度和康复进展。
在临床上，这对于神经损伤患者的康复治疗和预后评估非常重要。
此外，神经干动作电位的实验方法还可以应用于药物研发和毒理学研究中。
通过测量动作电位的变化，我们可以评估药物对神经细胞兴奋性的影响，从而指导药物的合理使用和毒性评估。
神经干电位实验报告
一、实验目的1. 理解神经干动作电位的基本概念和形成机制。
2. 掌握神经干动作电位的引导方法和步骤。
3. 通过实验观察神经干动作电位的特点，包括波形、传导速度和不应期。
4. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化，如刺激强度、损伤和药物作用等。
二、实验原理神经干动作电位是神经纤维在受到有效刺激时产生的可传导的电位变化，是神经细胞兴奋的客观标志。
神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。
三、实验材料1. 实验对象：青蛙或蟾蜍2. 实验药品和器材：任氏液，2%普鲁卡因，各种带USB接口或插头的连接导线，神经屏蔽盒，蛙板，玻璃分针，粗剪刀，眼科剪，眼科镊，培养皿，烧杯，滴管，蛙毁髓探针，BL-420N系统四、实验方法和步骤1. 制备神经标本：将青蛙或蟾蜍处死，解剖出坐骨神经干，用任氏液浸泡并保持湿润。
2. 安放引导电极：将引导电极固定在神经干上，确保电极与神经干良好接触。
3. 安放刺激电极：将刺激电极固定在神经干上，距离引导电极适当距离。
4. 启动试验系统：连接BL-420N系统，打开软件，设置实验参数。
5. 观察记录：逐渐增加刺激强度，观察并记录神经干动作电位的波形、传导速度和不应期。
6. 分析实验结果：分析不同刺激强度下神经干动作电位的变化，以及损伤和药物作用对神经干动作电位的影响。
五、实验结果1. 神经干动作电位波形：观察到神经干动作电位呈双相波形，第一相为上升支，第二相为下降支。
2. 神经干动作电位传导速度：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高。
3. 神经干动作电位不应期：观察到神经干动作电位存在不应期，不应期随刺激强度的增加而缩短。
六、讨论1. 神经干动作电位的形成机制：神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。
2. 刺激强度对神经干动作电位的影响：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高，不应期缩短。
神经干研究实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解神经干的结构与功能特点；2. 掌握神经干动作电位实验方法；3. 观察神经干动作电位波形，分析其传导特点；4. 研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
二、实验原理神经干是由神经纤维组成的，具有传导神经冲动、调节器官功能等作用。
神经干动作电位是指神经纤维受到刺激时产生的电位变化。
本实验通过观察神经干动作电位波形，分析其传导特点，研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验药品：任氏液、2%普鲁卡因；3. 实验器材：神经屏蔽盒、蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统。
四、实验方法1. 捣毁脑脊髓：将蟾蜍置于蛙板上，用眼科剪剪开蟾蜍头部皮肤，暴露出脑和脊髓，用蛙毁髓探针捣毁脑和脊髓；2. 分离坐骨神经：将蟾蜍的四肢剪去，用眼科剪剪断坐骨神经，用眼科镊分离出坐骨神经干；3. 安放引导电极：将引导电极插入坐骨神经干的一端，另一端与BL-420N系统连接；4. 安放刺激电极：将刺激电极插入坐骨神经干的另一端，另一端与BL-420N系统连接；5. 启动试验系统：打开BL-420N系统，设置实验参数，启动实验；6. 观察记录：观察神经干动作电位波形，记录波形特点；7. 实验分组：将实验分为正常组、损伤组、局麻药组；8. 损伤组：用剪刀在坐骨神经干上剪一个小口，造成神经损伤；9. 局麻药组：在坐骨神经干上滴加2%普鲁卡因，观察局麻药对神经干动作电位传导的影响；10. 观察记录：观察各组神经干动作电位波形，分析其传导特点。
五、实验结果1. 正常组：神经干动作电位波形呈双相，传导速度约为10m/s；2. 损伤组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低；3. 局麻药组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低。
六、实验讨论1. 神经干动作电位波形呈双相，表明神经干由两种类型的神经纤维组成，即A类和C类纤维；2. 损伤组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明神经干损伤会导致动作电位传导障碍；3. 局麻药组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明局麻药可阻断神经干动作电位传导。
神经干动作电位的引导实验报告
神经干动作电位的引导实验报告一、实验目的做这个神经干动作电位的引导实验呢，就是想看看神经干在受到刺激的时候，动作电位到底是怎么个情况呀。
想知道这个电位是怎么产生的，又怎么传导的，这可太有趣啦。
二、实验原理神经细胞在静息的时候呢，膜内外有电位差，这就是静息电位啦。
当受到刺激的时候，膜的通透性就会改变，然后就会有离子的流动，这样就产生了动作电位。
这个动作电位呢，它可以沿着神经纤维传导，就像小火苗在导火线上面跑一样，哈哈。
而且这个动作电位有一定的特点，比如全或无啦，不衰减传导啦，这些可都是很神奇的地方呢。
三、实验材料与方法1. 实验材料我们用到了蛙或者蟾蜍，这可是神经生理学实验的老熟人啦。
还有任氏液，这是用来保持神经活性的，就像给神经泡个舒服的温泉一样。
还有刺激电极、记录电极、屏蔽盒之类的仪器设备。
2. 实验方法首先要把蛙或者蟾蜍处理一下，让它的神经干暴露出来，这一步可需要小心翼翼的，就像对待一件精美的艺术品一样。
然后把神经干放在屏蔽盒里面，用任氏液保持湿润。
接着呢，把刺激电极和记录电极都连接好，设置好刺激的强度和频率。
当我们给神经干一个刺激的时候，就可以通过记录电极来观察动作电位的变化啦。
四、实验结果1. 我们可以看到在示波器上出现了一个峰形的电位变化，这个就是动作电位啦。
它有一个上升相和一个下降相，就像爬山然后下山一样。
2. 当我们改变刺激强度的时候，发现动作电位有一个阈值。
在阈值以下的时候，没有动作电位产生，一旦达到阈值，就会产生动作电位，而且动作电位的幅度不会随着刺激强度的增加而无限增加，这就是全或无的特性啦。
3. 我们还发现动作电位的传导速度是比较快的，而且在神经干上不同的地方记录到的动作电位形状和幅度基本上是一样的，这就是不衰减传导的表现呢。
五、实验讨论1. 这个实验结果和我们学的理论知识是很相符的呢。
不过在实验过程中也可能会有一些小误差，比如说在处理神经干的时候可能不小心损伤了神经，或者仪器设备的精度不够之类的。
神经干动作实验报告
一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。
二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。
当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。
本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。
四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。
五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。
六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。
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实验四、神经干动作电位的观测实验报告实验名称:神经干动作电位的观测一、实验目的1、观察蛙坐骨神经干复合动作电位的基本波形，并了解其产生的基本原理。
2、学习测定蛙或蟾蜍离体神经干上神经冲动传导速度的方法和原理。
3、学习测定神经干兴奋不应期的基本原理和方法。
二、实验原理神经干在受到有效刺激以后可以产生复合动作电位，标志着神经发生兴奋。
如果在离体神经干的一端施加刺激，从另一端引导传来的兴奋冲动，可以记录出双相动作电位；假如在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损坏，阻断其兴奋传导能力，这时候记录出的动作电位就称为单相动作电位。
神经细胞的动作电位是以“全或无”的方式发生的。
但是，复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的增大而增大的。
如果在远离刺激点的不同距离处分别引导离体神经干动作电位，两引导点之间的距离为 m，在两引导点分别引导出的动作电位的时相差为 s。
即可按照公式 u= m/s 来计算兴奋的传导速度(conduction velocity,CV)。
蛙类的坐骨神经干属于混合性神经，其中包含有粗细不等的各种纤维，其直径一般为 3~29 um,其中直径最粗的有髓纤维为 A 类纤维，传导速度在正常室温下为 35~40m/s。
神经每兴奋一次及其在兴奋以后的恢复过程中，其兴奋性都要经历一次周期性变化，其全过程依次包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期 4 个时期。
为了测定坐骨神经在发生一次兴奋以后兴奋性所发生的周期性变化，首先要给神经施加一个条件性刺激(conditioning stimulus,S1)引起神经兴奋，然后在前一兴奋及其恢复过程的不同时相再施加一个测试性刺激(test stimulus,S2),用以检查神经的兴奋阈值以及所引起的动作电位的幅值，以判定神经兴奋性的变化。
当刺激间隔时间长于 25ms 时，S1 和 S2 分别所引起动作电位的幅值大小基本相同。
当 S2 距离 S1 接近 20ms 左右时，发现 S2 所弓引起的第二个动作电位幅值开始减小。
再逐渐使 S2 向 S1 靠近，第二个动作电位的幅值则继续减小。
最后可因 S2 落在第一个动作电位的绝对不应期内而完全消失。
三、实验材料1、实验动物：牛蛙2、实验器材：常用手术器械、计算机、信号采集系统、电子刺激器、神经屏蔽盒、任氏液。
四、实验步骤1、牛蛙坐骨神经干的标本制备参照实验2-1的方法剥离蛙的坐骨神经干，尽量把神经干标本剥离得长一些，要求上自脊髓附近，下沿腓神经与胫神经一直分离到踝关节附近；尽量把神经干周围的组织剔除干净，剥离时切勿损伤神经干标本。
2、实验装置的连接按照图1将神经屏蔽盒与PcLab机连接，屏蔽盒的地线良好接地。
图1 实验仪器的连接方法3、仪器的操作和实验参数的设置(1)本实验在Windows界面的生理信号采集系统平台下进行，打开生理信号采集系统。
(2)采样窗参数的设置点击快捷工具栏上的“采样条件设置”快捷按钮，打开“采样条件设置”窗口，“显示模式”为“记忆示波”，“采样间隔”为 25 u.s,“触发方式”为刺激器触发，“采样窗口”为1通道。
将采样窗右侧显示控制区的参数设置为“通用(mV)”,“全通”设置为10kHz。
(3)刺激参数的设置选取“主周期刺激”设定刺激参数。
选择刺激模式为“主周期”方式。
刺激器参数为:周期(s),1;波宽(ms),0.1;幅度(v),0.1~2(根据刺激需要调节)；间隔(ms)，50；延时(ms),1~20(根据显示需要调节)；脉冲数，1。
4、将蛙的坐骨神经干标本置于屏蔽盒内的电极上，神经干的中枢端置于刺激电极一侧，从末梢端引导动作电位。
5、刺激、观察、记录神经干复合动作电位点击“开始”按钮，采样窗开始扫描，再点击“刺激”按钮，刺激所产生的生物电信号即显示在采样窗上。
如果刺激中途需要停止，则点击“停止”按钮。
如果需要改变，轴的生物信号波幅，将鼠标箭头移至采样窗的右侧显示控制区，到上方时，则出现“放大图形”，到下方时，则出现“压缩图形”，用鼠标每点击一次，可使生物电信号图形成比例地放大或缩小一次。
也可点击采样窗最左侧的 “左显示控制区”按钮，改变放大器增益。
如果需要改变x轴的生物信号波形宽度，则用鼠标点击“x轴显示控制区”的“横向扩展曲线”或“横向压缩曲线”，以使生物信号图形显示为最佳需要状态。
(1)神经干兴奋阈值的测定刺激强度从0.1V开始，逐渐增加刺激强度，当刚刚出现动作电位时的刺激强度，即为神经干的兴奋阈值。
(2)在刺激阈值的基础上逐渐加大刺激强度，可见动作电位的图形为双相，而且它的幅值随刺激强度的增大而加大。
当刺激增加到一定强度时，可见动作电位的幅值不再增大(图2)。
(3)动作电位参数的测量用鼠标点击“快捷工具栏”的“观察”，移动鼠标，测出动作电位的波幅、波宽等一系列参数。
(4)在两个引导电极之间损伤神经干标本，即可使原来的双相动作电位的下相消失，变为单相；注意上相动作电位的图形有什么样的变化。
(5)选取最为理想的动作电位图形，保存下来，附于实验报告上。
图2 牛蛙坐骨神经干的复合动作电位双相动作电位，箭头所指为刺激伪迹6、神经干兴奋不应期的测定(1)采用一对引导电极引导。
可引导双相动作电位，也可引导单相动作电位。
(2)测定神经干兴奋不应期时实验参数设置如下:选用通道 1 记录神经干动作电位、通道 1 显示刺激的方波，刺激参数设置“自动间隔调节”、“波宽”0.1ms、“幅度”0.5~1 V(以动作电位达到最大幅值为准)、“首间隔”30ms、“末间隔”1ms、“延时”5ms、“增量”-1ms、“主周期”1s。
(3)用鼠标点击“开始”“刺激”，最初可见到相距30ms(首间隔)的两个动作电位图形，而且两个图形的幅值是同样大小的。
此后用鼠标再次点击“刺激”，每刺激一次，第二个刺激即按照“间隔”所设定的时间向第一个刺激靠近一次，从而使第二个动作电位图形向第一个动作电位相应靠近。
当发现第二个动作电位的图形幅值刚开始比第一个减小时，说明第二个刺激落人到第一次兴奋后的相对不应期。
第二个刺激越是靠近第一个刺激，其动作电位的幅值就越小。
当第二个刺激距离第一个刺激为1.5~2ms时，第二个动作电位则完全消失，表明第二个刺激落人到第一次兴奋后的绝对不应期(图3)。
本实验如在示波器上测定，要使用双脉冲刺激器。
首先将双脉冲刺激间隔调节至30ms以上，可以在示波器荧光屏上显示出两次刺激产生的动作电位图形，其波幅大小是一样的。
然后再逐渐缩小刺激器的双脉冲时间间隔，可见到当刺激间隔小于20ms以后，第二个动作电位的波幅开始减小，表明第二个刺激进人了前一次兴奋的相对不应期。
当刺激间隔缩小到1.5-2ms时，第二个动作电位则完全消失，表明第二个刺激落人到第一次兴奋后的绝对不应期内。
图3 神经干兴奋不应期的测定五、注意事项1、整个实验过程中要注意保持标本的活性良好，经常用任氏液湿润。
2、如果在显示窗上发现动作电位图形倒置，把引导的两个电板位置对换即可。
3、如果神经干足够长度，则尽量把两对引导电极的距离拉远一些，距离越远测定的传导速度就越准确。
4、将神经干搭在引导电极上时，尽量把神经干拉成直线，且勿下垂或斜向放置，这样会影响神经干长度测量的准确性，最终影响传导速度的计算。
5、尽量减小动作电位的刺激伪迹，这样更加容易确定动作电位离开基线的起始点。
6、为了测量数值的准确，测定动作电位幅值时要用鼠标点击“快捷工具栏” 的“测量”，采样窗的右侧即可自动显示动作电位的高度幅值数据。
也可点击“观察”，用鼠标拉动的十字测量线测量动作电位的高度幅值。
六、实验结果（一）刺激强度与神经干兴奋的关系经过测定可知，标本的阈强度为0.1v，阈上强度是0.1v到8v，最适强度是8 v。
如表1所示，分别是6v，7v,8v,9v,10v的强度刺激下复合电位的潜伏期，正向波的波长和波宽，以及负向波的波长和波宽。
如图4，5，6，7，8所示在一定范围内,神经干符合动作电位的幅度随刺激强度的增大而增大。
神经干动作电位由多根神经纤维的动作电位复合而成。
个神经纤维的兴奋性不同,随着强度的加强,兴奋的神经纤维的数目增多,所以神经干的复合动作电位增大,当所有神经纤维都兴奋后,动作电位的幅度就不再变化。
表 1 不同强度刺激下的波形图数据图4 神经干动作电位（6V）图5 神经干动作电位（7V） 图6 神经干动作电位（8V）图7 神经干动作电位（9V）图8 神经干动作电位（10V）（二）单相动作电位的观测及其与双相动作电位波形图之间的比较本次实验所选刺激强度分别为6V、7V、8V、9V、10V，5个不同刺激强度下所记录到的单相动作电位波形图如图9、图10、图11、图12、图13，所测得的单相动作电位的波幅和波宽数据如表2所示。
经与双相动作电位所测数据比较，在刺激强度同为6V、7V的条件下，单相动作电位的波宽均大于双相动作电位正相波的波宽，其波幅均小于双相动作电位正相波的波幅；在刺激强度同为8V、9V、10V的条件下，单相动作电位的波宽均大于双相动作电位正相波的波宽，其波幅也均大于双相动作电位正相波的波幅。
分析表1可知，在一定范围内，随着刺激强度的增加，单相波的波幅随之增大，单相波的波宽随之减小。
表2 不同刺激强度下的单相动作电位的波幅和波宽数据表刺激强度（V） 波幅（mv） 波宽（ms）6 3.92 1.87 5.15 1.78 5.58 1.659 6.03 1.5510 6.51 1.25信号波形实验名称：神经干动作电位实验日期：图9 6V刺激强度下单相动作电位波形图信号波形实验名称：神经干动作电位实验日期：图10 7V刺激强度下单相动作电位波形图信号波形实验名称：神经干动作电位实验日期：图11 8V刺激强度下单相动作电位波形图信号波形实验名称：神经干动作电位实验日期：图12 9V刺激强度下单相动作电位波形图信号波形实验名称：神经干动作电位实验日期：图13 10V刺激强度下单相动作电位波形图七、思考题1、神经干复合动作电位的图形为什么不是“全或无”的？答：一条神经干中有无数条神经纤维,每条神经纤维的直径和长度不同,膜特性也不完全一样,故兴奋性不同、阈值各异,而本实验记录到的双相动作电位是神经干中各条神经纤维动作电位的复合表现。
故神经干没有确定的阈值。
因此,神经干动作电位不会有“全或无”的特征。
2、本实验测量出来的神经干复合动作电位幅值和图形为什么与细胞内记录的不一样？神经干复合动作电位是许多条神经纤维的复合电位总和,不同神经纤维的阈刺激不一样，所以随着刺激不断增强,发生兴奋的神经纤维越来越多,此时,神经干动作电位就是这些电位的叠加。
细胞内记录的单根神经纤维在阈刺激以上才发生兴奋，兴奋后强度不再改变。
所以实验测量出来的神经干复合动作电位幅值和图形与细胞内记录的不一样。