禽类采血方法

禽类采血方法
禽类采血方法

1.常用采血方法有: 1.胫静脉采血法:在胫骨关节附近大腿中段找出

中静脉或侧静脉,而以中静脉最易找到。助手将鸡体侧卧或背卧,并

将鸡腿伸直,术者将该处鸡毛沾湿使血管外露即可采血。这种方法适

用于小样品采血,不容易形成血肿。 2.心脏采血法:采血时助手一手

将鸡的两翅膀抓住,另一手将鸡腿伸直,最好是平放于平台或桌面上,

术者先在左胸部摸到心脏跳动的最强点,左手在左侧将心脏固定住,

右手持带有7号针头的注射器进针,进针深度根据鸡的大小和营养

状况而定。如果针尖碰到心脏,针头就会随心脏跳动而跳动,只需稍

调整一下则血液户回会自动流进注射器。其优点是可以大量采血,

缺点是对供血动物潜伏着生命危险。 3.枕骨静脉窦采血法:此法可

用于禽或水禽,也可以经常采血和给大鹦鹉输血。动物的头务必与颈

保持90度角,术者用大拇指找到第一颈椎骨和颅骨形成的枕骨大孔,

针头与颈部呈30一45度角进针。枕骨静脉窦非常浅表,易于采血,

但该法对供血者也潜在一定危险。

2.禽血样的采集家禽包括鸡、鸭、鹅、鸽、鸟等禽类,常用翼下静

脉和心脏采血法,前者所采血量一般能够满足检测所需要的量,后

一种方法的技术要求比较高,因此禽类翼下静脉采血法是一种比较

常用的采血方法。禽类翼下静脉采血:由助手将禽固定好,并使

禽翅膀展开,露出腋窝部,拔去该部羽毛,即可见到由翼根进入腋

窝的一条较粗的静脉,这就是翼根静脉。其远心端有一条较细的静

脉,即翼下静脉。消毒后,术者用左手拇指压迫翼下静脉的近心端,

使血管怒张,右手持带6号或7号针头的采血器,由翼根的肌肉处

进针,向翅膀方向斜向刺入翼下静脉,即可抽取血液。抽血时,一

定要缓慢、轻柔,否则会使静脉瘪陷而采不出来。采血完毕,拔出

采血针,采血部位以酒精棉按压片刻即可,由于肌肉自身的收缩压

迫止血,一般不会出血或者是形成出血性水肿。此种方法克服了

传统由皮肤直接刺向血管,拔出针头后一般都会出血或形成皮下出

血性肿胀,这也是一直控绕基层兽医工作者和养殖户之间的难点问

题,养殖户普遍认为禽类采血的扑捉就已经造成应激,影响养殖的

经济效益,如果再造成出血或出血性水肿,对养殖造成的影响就更

大了。上面这种采血方法恰好可以克服出血或出血性水肿这些缺点,

使采血对禽类造成的影响降到最低点。

鸡采血方法 1.剪破鸡冠可采血数滴供作血片用。 2.静脉采血将鸡固定,伸展翅膀,在翅膀内侧选一粗大静脉,小心拔去羽毛,用碘酒和酒精棉球消毒,再用左手食指、拇指压迫静脉心脏端使该血管怒张,针头由翼根部向翅膀方向沿静脉平行刺入血管。采血完毕,用碘酒或酒精棉球压迫针刺处止血。一般可采血10~30ml。少量采血可从翅静脉采取,将翅静脉刺破以试管盛之,或用注射器采血,; 3.心脏采血将鸡侧位固定,右侧在下,头向左侧固定。找出从胸骨走向

肩胛部的皮下大静脉,心脏约在该静脉分支下侧;或由肱骨头、股骨头、胸骨前端三点所形成三角形中心稍偏前方的部位。用酒精棉球消毒后在选定部位垂直进针,如刺入心脏可感到心脏跳动,稍回抽针栓可见回血,否则应将针头稍拔出,再更换一个角度刺入,直至抽出血液。若需较大量血,还以采心血为好,固定家禽使侧卧于桌上,左胸部朝上,从胸骨脊前端至背部下凹处连线的中点垂直刺人,约 1 寸深即可采得心血采完血后,先将血清放到37度2小时,然后再4度过夜,这样出的血清多。实在不行,将凝固的血液用针头划几下,效果比较好。如果成胶冻样,可以高速离心,就能分离出血清了。鸡的采血方法需血量少时,常用的取血方法是从其翼根静脉取血。取血时,可将动物翅膀展开,露出腋窝,拔去少量羽毛,即可见到明显的翼根静脉,此静脉是由翼根进入腋窝的一条较粗静脉。用碘酒酒精消毒皮肤。抽血时用左手拇指,食指压迫此静脉向心端,血管即努张。右手取连有2ml塑料注射器,针头由翼根向翅膀方向沿静脉平行刺入血管内,即可抽血。一般一只成年鸡可抽取5ml血液。

10、常见的疫苗免疫方法有滴鼻、点眼、饮水、皮下注射、肌肉注射、刺种、喷雾、涂肛等。使用疫苗时,其免疫方法应严格遵照说明书上的规定,因为不同的疫苗有其最佳免疫方法。如ND(新城疫)等弱毒苗以滴鼻、点眼为最好,NDI系苗以肌肉注射为最佳,法氏囊冻干苗最佳途径为滴口和饮水,鸡痘苗以翅膜刺种为最好。

11、使用点眼、滴鼻免疫法时,滴后应停1—2秒后再放鸡,以确保药液被吸入。饮水免疫的稀释用水可选用蒸馏水、冷开水或清洁的深井水,不应使用热开水或含重金属离子和卤族元素等消毒剂或消毒离子的水,当使用自来水时要静置2小时。饮水时如能加1—2%的脱脂鲜奶或0·1—0·2%的脱脂奶粉,免疫效果更佳。在饮水免疫前应停止供水一定时间,一般为2—4小时,时间的长短可根据舍内温度高低作适当调整。饮水免疫应有足够的饮水器,以保证三分之二的鸡只能同时饮水,且器皿应洁净。含疫苗的水应该在1—2小时内饮完,饮完之前不要添加任何水,使含疫苗的水成为免疫期间的唯一水源。喷雾免疫时,喷雾要均匀,雾滴大小、喷雾高度和密度要适当。

12、用注射免疫法(肌肉注射或皮下注射)免疫接种时,为防止细菌感染,所用注射器及针头应严格消毒;同时注射接种方法要正确,以免造成损伤。

13、疫苗接种工作结束后应立即用清水洗手并消毒,用过的用具、器材、稀释后剩余的疫苗液及疫苗瓶,应以燃烧或煮沸等方法进行消毒处理或深埋处理,不可随处扔放,以免活毒疫苗因毒力返强而侵袭禽群,造成危害。

14、接种疫苗的同时,为了使接种的鸡只产生坚强的免疫力(免疫接种后,一般需要5—7天方能产生抗体,油苗则需10—15天左右),在接种前后,要特别注意加强饲养管理,严格控制环境卫生,防止鸡只在尚未完全产生免疫力前感染强毒,而导致免疫失败。

15、养户或鸡场应对每次免疫有详细的记载,如所用疫苗的品种、批号、生产厂家、免疫剂量、免疫天龄、免疫的日期与时间、禽群数量以及免疫后的观察结果等等,以备查用。

实验动物采血指南

实验动物采血指南 采血方法的选择,决定于实验的目的所需血量以及动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定,血液涂片以及酶活性微量分析法等,可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时,若需反复多次,应自远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。例如,研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱,需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度,必须采取动脉血液。采血时要注意:⑴采血场所有充足的光线;室温夏季最好保持在25-28℃,冬季,15-20℃为宜;⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒;⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥;⑷若需抗凝全血,在注射器或试管内需预先加入抗凝剂. 不同动物采血部位与采血量的关系

(一)小鼠、大鼠采血法 1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤,并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约1/2-4/5的颈部前剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体

末梢采血操作方法

采血操作方法 一、抗凝管要求: 根据国际血液学标准化委员会(ICSH)推荐,使用EDTA-2K 作为血细胞分析仪的抗凝剂,用量为 1.5~2mg/ml血, XS-500i上机测试血常规,推荐使用工厂生产的管内喷有雾 化EDTA-2K采血管,如若条件限制,也可自行制备抗凝管:在圆底2ML离心管里加入10UL浓度为1%的EDTA-2K溶液, 用户可根据各自样本量决定制备数量,一般可配制一个星期 数量,敞开试管盖,置于37摄氏度温箱,烘干备用。 二、采血前准备: 准备制备好的抗凝管,75%酒精棉球,干棉球、消毒镊子, 试管架、无菌采血针、一次性微量吸管(40ul)、吸头、载 玻片与推片(备用) 三、采血 (1)采血部位:世界卫生组织(WHO)推荐采集左手无名指指端内侧血液,婴幼儿可采集大拇趾或足跟内外侧缘血液, 严重烧伤患者,可选择皮肤完整处采血,确认无烧伤、 冻疮、发绀、水肿或炎症等。除特殊情况外,不要耳垂 采血。 (2)按摩采血部位:轻轻按摩左手无名指指端内侧,使局部组

织自然充血。 (3)消毒:用75%乙醇棉球擦拭采血部位,使用无菌干棉球擦干,注意确保无水乙醇已经挥发完全,否则会引起溶血。(4)针刺:本试验具有创伤性,必须严格按无菌技术操作,防止采血部位感染,做到一人一针一管,避免交叉感染,使 用一次性器材。用左手拇指和食指固定采血部位使皮肤 和皮下组织绷紧,右手持一次性消毒采血针自指端腹内 侧刺入,深度2—3mm,立即出针。 (5)拭血:待血液自然流出后,用无菌干棉球擦去第一滴血。(6)吸血及编管:用一次性微量吸管吸血,然后用无菌干棉球压住伤口止血,如血流不畅,可用左手自采血部位远端向指 端稍施压使血液流出,慢慢排出吸管内的血液,标记好 患者编号。 (7)混匀:采血后,左手持试管上部,右手食指刮试管底部,使标本产生上下翻滚,充分与抗凝剂接触,有条件者可以置 于混匀器进一步混匀,双手轻搓试管,然后再上机检测。

末梢采血实验报告doc

末梢采血实验报告 篇一:血凝实验实验报告 影响血液凝固的因素 (一)实验目的:通过本实验来了解血液凝固的基本过程及了解影响血液凝固的一些因 素。 (二)实验对象:家兔 (三)实验步骤:(略) (四)实验结果: 1、观察纤维蛋白原在凝血过程中的作用:实验中可见到静置杯内血液发生凝固。搅拌杯 内血液不凝固,但在毛刷上见到红色的血凝块,经水冲洗后毛刷上缠绕有白色丝状物。 2、观察影响血凝的一些理化因素:如下表9-1所示。表9-3影响血凝的一些理化因素实验条件 1.加少许棉花 2. 用石蜡油均匀涂试管内壁 3.放置37℃水浴 4.放置冰水水浴 5.加肝素10个单位 6.加草酸钾2mg (表9-3文字说明:略)

3、观察内源性及外源性凝血过程:如下表9-2所示表9-2内源性和外源性凝血过程的观察试剂 1、富血小板血浆 2、少血小板血浆 3、生理盐水 4、羊肺悬液 5、0.025mol/l cacl2血液凝固时间 (表9-2文字说明:略) (五)讨论: 血液凝固是指血液由流动的液体状态变为不流动的冻胶状态血液凝固过程大致分为三个 主要阶段:①凝血酶原激活物形成;②凝血酶原激活成凝血酶,③纤维蛋白原转变为纤维蛋 白。在凝血酶原激活物的形成过程中分有两种不同的途径:内源性凝血途径和外源性凝血途 径。内源性凝血途径是由凝血因子?启动的,参与血凝的全部凝血因子都在血浆内。凝血因子? 可被各种带负电荷的物质等所激活,如血管内膜暴露的胶原纤维、玻璃、陶器等。外源性凝 血途径是由存在于血管外组织中的凝血因子ⅲ所启动的,其余参与的凝血因子也在血管内。 凝血因子ⅲ在脑、肺、胎盘组织含量很丰富。不管是

各动物采血方法

各种动物采血方法及注意事项 1牛的静脉采血 1.1牛颈外静脉采血颈外静脉位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间凹窝处的颈静脉沟内。牛站立,助手保定好头部,使头部稍前伸上仰并稍偏向对侧,颈部稍有弯曲,颈静脉暴露出来,局部剪毛,消毒,术者稍弓腰蹲于颈静脉暴露的一侧,用左手拇指或食指与中指在颈静脉沟稍下方(近心端)压迫静脉管,使颈静脉充盈怒张,部分牛由于膘肥看不清,此时就要用左手食指和中指点击颈静脉沟,有跳动,再按压,用右手食指和中指探摸跳动的部位,有波动和弹性的管状物,颈为颈外静脉。右手拇指、食指、中指夹住16号针头,对准颈外静脉,并使针头与皮肤接近垂直(75°角),用腕力迅速将针头扎进皮肤,穿入血管,血液会喷射出来,即可采血,停止采血后先松左手,后拔针头,用消毒棉球压迫采血部位1min。 1.2牛尾静脉采血牛自然站立保定,术者站于牛的正后方,左手抓住牛尾中段用力抬起,使之与地面平行,右手触摸尾椎前段腹侧凹陷沟(大约在尾后下方4-5cm处),消毒后持12号针头与尾椎纵轴成垂直方向,依靠腕力快进针0.5-1cm后血液即喷射出来。 2马的静脉采血 马的颈静脉比较浅显,位于静脉沟内,术者用左手拇指或食指和中指横压颈下1/3与颈中1/3处的颈静脉沟,使脉管充盈怒张,右手持16号针头沿颈静脉在压迫点前方与皮肤成45°角用腕力迅速刺入皮肤血管内,感到空虚无阻力即见回血后,再沿脉管向前进针使针头

靠近皮肤靠近皮肤以减小其间的角度,近似平行地将针头再伸入血管内1-2cm,血液流出,即可采血。停止采血后,先松左手,后拔出针头,并用消毒棉球压迫采血点2min止血消毒。 3猪静脉采血 3.1耳静脉采血用捕猪器将猪站立保定,耳静脉局部常规消毒处理,助手用手指捏压耳根部静脉管处或用胶带于耳根部结扎,使静脉充盈,怒张,也可用酒精棉球反复擦静脉血管使之充血,血管怒张,或用手指弹叩引起血管充盈。术者用左手拇指和食指把持耳尖,将耳拉直托平,用中指、无名指和小指在耳下面向上托,使采血进针部位稍高,右手持一次性血样采集针沿静脉管使针头与皮肤呈30°角,向远心端刺入血管,有空虚感无阻力时即进入血管。回血,立即插入负压管采血。采血结束后,先松开握耳根的手,再拔针头,干棉球压迫采血处1min,伤口不出血为止。 3.2前腔静脉采血:前腔静脉由左右两侧的颈静脉与腋静脉在第一对肋骨的胸腔入口的气管腹侧面汇合而成。采血部位在第一肋骨与胸骨柄结合处的前方,由于左侧靠近膈神经,易损伤,故多于右侧进行采血,针头刺入方向呈近似垂直稍向中央及胸腔倾斜,刺入深度依猪体大小2-6cm,针头7-12号。站立保定时进针部位在右侧,于耳根至胸骨柄的连线上,距胸骨端1-3cm处,术者拿连接针头的注射器,稍斜向中央刺向第1肋骨间胸腔入口处,边刺边抽动注射器活塞,见回血即可采血,仰卧保定时胸骨柄向前突出,并于两侧第1肋骨结合处的直前侧方呈两个明显的凹陷窝称为前腔窝:是第1肋骨与胸骨柄

犬猫的采血方法

犬猫的采血方法通常是在其前肢的前臂头静脉和后肢的阴静脉进行采血。对于一些静脉采血比较苦难的犬猫或采血量比较大时,可以考虑心脏采血。 2.1.采血前的准备 采血前的准备主要是保定,见前面。另外采血前的准备还包括准备好消毒棉球、合适的止血带、剪毛剪、干燥无菌的注射器和头皮针头等等。 2.2.采血的操作 在做好采血前的准备后,采血者选择一个合适的腿,然后在近心端用合适的止血绷带(小型犬猫可以用橡皮筋代替)扎紧,前肢扎在肘关节后面,后肢扎在踝关节上面。然后在前肢的臂部或后肢的掌部要采血的部位用酒精棉球消毒,用拇指的掌面部感受怒张的血管,必要的时候可以沿者怒张的血管进行剪毛(如果血管怒张不明显,可以沿者前肢中间的一根明显的韧带或后肢掌面的正中部)。如果血管不太清楚时,可以用酒精棉球上的酒精将采血的局部打湿,以促进血管怒张,有时还可以先松开止血带,轻柔一下采血部位,然后在扎上止血带。 找到血管后开始进针。将头皮针接在注射上,固定牢结合处。第一次的进针点选择在血管的远心端。当血管怒张不是太明显,动物挣扎不是太厉害时,可以正对着血管进针;血管怒张比较明显,动物挣扎比较厉害时,可以从血管的侧面进针,使动物适应后,再进入血管。开始进针时,左手握在其掌部(前肢),使腕关节弯曲,右手拿针,使针与皮肤呈45度,进针后见到血将针放平,沿着血管的走向往前进针,在运针时会有一种比较轻松的感觉。然后用左手的拇指压住头皮针的针柄,右手松开止血带后用用手抽动注射器进行采血,或者有助手来抽动注射器采血,操作者用右手挤压进针点的近心端或调整头皮针以利于采血。采足够的血后,放松注射器,使其呈自然状态,然后用右手快速的抽出头皮针,并及时的用棉球压迫。 2.3.采血后的处理 抽出头皮针后,用酒精棉球及时按压。按压点在扎针点上靠后一点,直到不在出血为止。然后,将采血用的器具收拾干净。

良好的实验动物给药和采血(包括途径和体积)规范指南

A Good Practice Guide to the Administration of Substances and Removal of Blood,Including Routes and Volumes 良好的实验动物给药和采血(包括途径和体积)规范指南 Karl-Heinz Diehl1, Robin Hull2, David Morton3, Rudolf Pfister4, Yvon Rabemampianina5, David Smith6,*, Jean-Marc Vidal7 and Cor van de V orstenbosch 8 1Aventis, PO Box 1140, D35001 Marburg, Germany 德国马尔堡市35001区1140信箱安万特公司 2N I B S C, Blanch Lane, South Miimms, Potters Bar, Hertfordshire EN6 3QG 英国赫特福德郡EN6 3QG波特斯巴镇South Miimms布兰奇道英国国家生物制品检定所 3The University of Birmingham, Medical School, Edgbaston, Birmingham B15 2TT 英国伯明翰市B15 2TT艾吉马斯顿伯明翰大学医学院 4Novartis Pharma AG, CH-4002 Basel, Switzerland 瑞士巴塞尔CH-4002诺华制药公司 5Centre de Recherche Pfizer, Etablissement d’Amboise, Z1 Poce′-sur-Cisse-BP 159 37401 Amboise Cedex, France 法国Amboise Cedex Z1 Poce′-sur-Cisse-BP 159 37401 Etablissement d’Amboise 辉瑞研究中心 6AstraZeneca R&D Charnwood, Bakewell Road, Loughborough, Leics LE11 5RH 英国莱斯特郡LE11 5RH拉夫堡市贝克韦尔路Charnwood阿斯利康研究中心 7Aventis, 102 Route de Noisy, 95235 Romainville Ce′dex, France 法国Romainville Ce′dex 95235 Noisy路102号安万特公司 8N V Organon, PO Box 20, 5340 BH Oss, Netherlands 荷兰BH Oss5340 20号信箱欧加农公司 Key words: blood volumes; blood removal; administration substances; laboratory animals; refinement. 关键词:血容量;采血;给药;实验动物;简化 This article is the result of an initiative between the European Federation of Pharmaceutical Industries Associations (EFPIA) and the European Centre for the Validation of Alternative Methods (ECV AM).Its objectives are to provide the researcher in the safety evaluation laboratory with an up-to-date, easyto-use set of data sheets to aid in the study design process whilst at the same time affording maximum welfare considerations to the experimental animals. 该文章为欧盟制药工业协会(EFPIA)和欧洲替代动物实验方法验证中心(ECV AM)之间的初步结果。其目的在于为安全性评价实验室的研究者提供最新的易于使用的数据库以帮助研究设计过程,同时最大可能地考虑到实验动物的福利。 Although this article is targeted at researchers in the European Pharmaceutical Industry, it is considered that the principles underpinning the data sets and refinement proposals are equally applicable to all those who use these techniques on animals in their research, whether in research institutes,universities or other sectors of industry. The implications of this article may lead to discussion with regulators, such as those responsible for pharmacopoeial

项目二十七 常用实验动物的接种和采血方法

项目二十七常用实验动物的接种和采血方法 一、接种方法 (一) 皮下注射 皮下组织疏松的部位都可皮下注射。一般小鼠在腹部两侧,豚鼠在腹部或大腿内侧,家兔取背部,大腿内侧或耳根部皮下注射。注射部位消毒后,左手提起皮肤,右手持注射器将针头水平刺入皮下,针头摆动无阻力,说明已进入皮下,慢慢注入,注射部位随即隆起。注射完毕,用棉球压住针刺处,再拔出针头。小鼠注入量一般为0.2~0.5ml。家兔或豚鼠注入量为0.5~1.0ml. (二) 皮内注射 先将动物注射部位的毛剪去,消毒,然后左手绷紧皮肢,针头斜面向上,紧贴皮肤表层刺入,然后向上挑起再稍刺入,缓慢注射。若注入皮内,注射部位马上有小泡隆起。皮内注射量一般为0.1~0.2ml。 (三) 肌内注射 应选择肌肉发达、无大血管通过的部位。一般多选臀部、大腿内侧或外侧。针头直接刺入肌肉,回抽针栓如无回血即可注射。家兔等大动物注射量不超过2ml。 (四) 腹腔注射 小白鼠腹腔注射时,用右手拉鼠尾,左手食指和拇指捏住脑背部皮肤,翻转鼠体,把鼠尾和一侧的后腿夹于小指和无名指之间,使动物处于头低位,使内脏移向上腹,右手持注射器在下腹部左侧或右侧刺入皮下,沿皮下朝头部方向进针0.5~1.0cm,再以45°角刺入腹腔,此时有落空感,回抽无肠液,尿液或血液即可缓缓注入。家兔等较大动物注射,应先固定,于腹部腹中线旁侧1cm处进针。小鼠注射量一般为0.5~1.0ml,家兔或豚鼠为5ml。 (五) 静脉注射 1.家兔将家兔固定,用酒精棉球轻轻按摩耳翼,压迫耳根部静脉,使耳缘静脉扩张。用左手拇指与中、食指抓住耳尖部,从耳尖部边缘静脉平行进针,试推进少量注射液,如果觉得没有阻力,局部也没有隆起,表示已进入静脉,将注射液缓缓注入。若失败,再逐步向耳根部移位重新注射。注射完毕,用棉球压住针眼处,拔出针头。注射部位一般选用耳外缘静脉,易固定,表浅;耳内缘静脉深,不易固定,故不常用。 2.小鼠于尾部两侧静脉注射。固定小鼠使尾巴露出,置45℃~50℃温水浸泡1~2min,使尾部静脉扩张。取出尾巴,擦干消毒,在末端1/3或1/4处用左手捏住尾巴,右手持注射器,针头与静脉平行缓慢进针,试注入少许注射液,如无阻力,皮肤不发白,表示针头刺入静脉,否则应更换部位重扎。注射时多选用4 1/2# 针头。最大注射量为0.5ml。 二、采血方法 (一) 小鼠采血方法 1.断尾采血将小鼠固定,露出尾巴,用手轻揉或浸泡于45℃温水中数分钟或用酒精棉球涂擦,使尾血管充血。将鼠尾擦干,用剪刀剪去尾尖1~2mm。然后用手指从尾根部向尾尖捋,血即从断端流出。采血结束后消毒止血。此法采血每只小鼠可采十余次,每次可采血约0.1ml。 2.眼眶后静脉丛采血左手抓注鼠耳间头部皮肤,将头按在桌面或鼠笼上,轻压颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分突出,眶后静脉丛充血。右手持长为7~10cm 玻璃滴管(毛细管端内径1~1.5mm,长约1cm)或7# 针头的1ml 注射器,在内眼角与眼球之

手指采血的学问

手指采血的学问 检验科徐红革 到医院做血常规检查,凡用血量少于0.1ml的检验项目,如血常规、血型等单项血液检查都可采取末梢血。末梢血又经常选用手指指尖(耳垂血多不使用)。当然不是所有手指都可以随意采用,而是多选用无名指指尖的尺侧采血,为什么呢?原来,这是从方便采血和对手部功能及生理结构能多方面综合应用的选择。其理由如下: 1.功能不受限:手指采血虽属微小的人为创伤,但小创口仍需经过数天后才能完全愈合。日常生活中,大多数人都为右利手,即精细的复杂动作大都需要右手来完成,如写字,绣花等。而左手则相对空闲时间较多,这样,选用左手取血,对手部功能的影响也相对较小,活动也不受限。拇指、食指和小拇指是人手的主要功能指,准确精细的动作要靠它们协同配合才能完成。中指在各项劳动中所承担的力量要大于无名指,所以化验采血的职责便理所应当的落到了左手无名指上。 2.简便且安全:手是人体体表裸露部位中运动最自如,最灵活的器官。手部取血便于医生操作。此外,由于手指尖部具有十分丰富的毛细血管网,血液循环较好,结果相对稳定,且无较大的动脉和静脉。因此选用手指部位取血,即能满足临床需求,又可以避免大量出血。 3.疼痛感觉轻:手指部位神经末梢分布丰富,不同手指所受神经的支配不同,其疼痛阀值也不尽一致。小指的掌心面由尺神经支配,拇指、食指和中指的掌心面由正中神经支配。无名指的尺侧由尺神经支配,桡侧则面由正中神经支配,如果在无名指指尖的中部取血,会是尺神经和正中神经的神经末梢同时受到刺激,那样引起的疼痛感较强。而取无名指指尖的尺侧取血,只会牵涉尺神经末梢,因影响范围较小,疼痛也较轻微。

4.创伤感染少:在解剖生理上,每个手指的屈指腱都有滑膜囊包裹,以起到润滑,抗震的作用。不同手指滑膜囊的大小深浅及解剖结构各不相同。其中拇指和小拇指的滑膜囊可直接通向掌心深部。这样,如果一个拇指或小拇指发生感染,就有可能继发整个手掌深部感染,还有可能殃及其他手指。而食指、中指和无名指的滑膜囊则相对独立,而且无名指的滑膜囊又位于手掌浅部,因此受到创伤后,即便有感染也不会引起手掌的深部病变,也不会累及其他手指。 综上所述:末梢采血以左手(左利手者则取右手)无名指指尖尺侧为最佳采血部位。当然,若患者为半岁以内的婴幼儿,因其手指太小不利于采血,则在其足部拇指或足跟采血。对于严重烧伤的病人,应选择皮肤完整的部位采血。

正确的指尖采血方法

采血方法 二采血方法 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本,静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童,血气分析多使用动脉血。 一)、静脉采血法 采血部位:肘静脉;手背部手腕部等体表静脉;幼儿可采用颈外静脉采血。 采血器材:一次性注射器,真空定量采血装置 注意事项: ( 1 )防止溶血:造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁;淤血时间过长;穿刺不顺利,组织损伤过多;抽血速度太快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫;震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后,未取针头直接将血注入真空管内,也易造成溶血。体内溶血属合格标本,但应在报告单上注明。 ( 2 )避免充血和血液浓缩:采血时应动作迅速,尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟,否则将使生化结果升高或下降。 ( 3 )若病人正在进行静脉输液,不宜在输液同侧手臂采血;若女性病人做了乳腺切除术,应在手术对侧手臂采血。 ( 4 )采血的体位:体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血,其二标本的测定值比卧位高 5 %~ 15 %。因此,采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位),以及体位的一致性。 ( 5 )采血时只能向外抽,决不能向静脉内推,以免注入空气,形成气栓而造成严重后果。 ( 6 )很多生化成分受膳食影响,因此,采血前要确认病人是否空腹。 (7)采血过程中晕厥:拔出针头,嘱其平卧,必要时可给患者嗅芳香氨酊、针刺(或拇指压掐)人中、合谷,静点葡萄糖或口服糖水 二)、皮肤采血法(毛细血管采血法) 部位:中指或无名指尖内侧,半岁以下拇指或足部,特殊伤员。 器材:采血针、吸管。 步骤:消毒、穿刺、采血。 采血为何选用左手无名指?

正确的指尖采血方法

正确的指尖采血方法 Document serial number【UU89WT-UU98YT-UU8CB-UUUT-UUT108】

采血方法 二采血方法 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本,静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童,血气分析多使用动脉血。 一)、静脉采血法 采血部位:肘静脉;手背部手腕部等体表静脉;幼儿可采用颈外静脉采血。 采血器材:一次性注射器,真空定量采血装置 注意事项: ( 1 )防止溶血:造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁;淤血时间过长;穿刺不顺利,组织损伤过多;抽血速度太快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫;震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后,未取针头直接将血注入真空管内,也易造成溶血。体内溶血属合格标本,但应在报告单上注明。 ( 2 )避免充血和血液浓缩:采血时应动作迅速,尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟,否则将使生化结果升高或下降。 ( 3 )若病人正在进行静脉输液,不宜在输液同侧手臂采血;若女性病人做了乳腺切除术,应在手术对侧手臂采血。

( 4 )采血的体位:体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血,其二标本的测定值比卧位高 5 %~ 15 %。因此,采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位),以及体位的一致性。 ( 5 )采血时只能向外抽,决不能向静脉内推,以免注入空气,形成气栓而造成严重后果。 ( 6 )很多生化成分受膳食影响,因此,采血前要确认病人是否空腹。 (7)采血过程中晕厥:拔出针头,嘱其平卧,必要时可给患者嗅芳香氨酊、针刺(或拇指压掐)人中、合谷,静点葡萄糖或口服糖水二)、皮肤采血法(毛细血管采血法) 部位:中指或无名指尖内侧,半岁以下拇指或足部,特殊伤员。 器材:采血针、吸管。 步骤:消毒、穿刺、采血。 采血为何选用左手无名指 拇指与小指肌腱活动的滑液囊较多,并向手掌中间延伸,而且相互流通。发生感染时,炎症就可能向掌心蔓延,引起手掌和另一个手指的感染,导致严重后果。食指和中指是人的功能手指,使用的机会较多,也不宜采血。在五个手指中,只有食指和无名指的滑液囊不向手掌部位延伸,是“独立循环”,互不相连,所以一般都在无名指上采血。 (三)真空采血法

小鼠取血方法

1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉或静脉,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度,小鼠约2~3mm,大鼠约4~5mm。当感到有阻力时即停止推进,同时,将针退出约0.1-0.5mm,边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将采血器拔出,以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练,用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml,可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤,并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈,约1/2-4/5的颈部前剪断,让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8~1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小,且心率较快,心脏采血比较困难,故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血,先将动物作深麻醉,打开胸腔,暴露心脏,用针头刺入右心室,吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml;大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血先将动物仰位固定,切开颈部皮肤,分离皮下结缔组织,使颈静脉充分暴露,可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉,离心端结扎,向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉,仰卧固定在手术架上,从腹正中线皮肤切开腹腔,使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液,防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织,夹住动脉近心端,用尖头手术剪刀,剪断动脉,使血液喷入盛器。 8.股动(静)脉采血先由助手握住动物,采血者左手拉直动物下肢,使静脉充盈。或者以搏动为指标,右手用注射器刺入血管。体重15-20g 小鼠采血约0.2-0.8ml,大鼠约0.4-0.6ml。

药理实验中对动物的给药体积与采血体积控制

药理实验中对动物的给药体积与采血体积控制 本文由wyj摘要翻译 本文是2001年由欧洲制药工业协会联合会 (The European Federation of Pharmaceutical Industries and Associations ,EFPIA)和欧洲替代方法验证中心(European Centre for the Validation of Alternative Methods,ECV AM)联合发布的关于对动物不同途径给药或采血时所能充许的给药体积和采血体积指导原则。动物包括小鼠、大鼠、兔、狗、猴、豚鼠,给药方法包括po、ip、im、sc、一次性iv、缓慢静注、静脉点滴等的一般给药体积、最大充许给药体积、给药速度等,采血包括各种动物的最大充许采血量和恢复时间等。是一部实用、全面而又难得的指导原则,相信对从事药理、毒理研究者及其他动物实验工作者有一定的帮助。 下面的节选由wyj摘要翻译,原文见欧洲联盟欧洲制药工业协会联合会,A Good Practice Guide to the Administration of Substances and Removal of Blood, Including Routes and Volumes(2000). J. Appl. Toxicol. 21, 15–23 (2001) 第一部分:动物实验中的给药体积与给药速度 一、一般给药体积与速度 对于各种给药途径的最大给药体积,取决实验动物种属和制剂性质。一般推荐给药最大容积为见附表((欧洲联盟欧洲制药工业协会联合会,2000)。 特殊给药途径每次的给药体积(英国药业会,1995):每眼0.01 ml;⑥直肠0.5 ml/kg;⑦阴道:大鼠0.2 ml,兔1 ml;⑧吸入2 mg/L;⑨鼻:猴或犬每鼻孔0.1 ml。 表1各种给药途径的给药体积及可能的最大给药体积a (欧洲联盟欧洲制药工业协会联合会,2000) 给药途径与体积 (ml/kg, except b ml/site)d 动物种属 Oral sc ip im iv (单次) iv (缓慢注射) 小鼠10 (50) 10 (40) 20 (80) 0.05b (0.1)b 5 (25) 大鼠10 (40) 5 (10) 10 (20) 0.1b (0.2)b 5 (20) 兔10 (15) 1 (2) 5 (20) 0.25 (0.5) 2 (10) 犬 5 (15) 1 (2) 1 (20) 0.25 (0.5) 2.5 (5) 猴 5 (15) 2 (5) C (10) 0.25 (0.5) 2 c 狨猴10 (15) 2 (5) C (20) 0.25 (0.5) 2.5 (10) 小型猪10 (15) 1 (2) 1 (20) 0.25 (0.5) 2.5 (5) 说明: a:给非水溶液后,确定再次给药时间时应考虑前次药物是否已被吸收。肌肉内注射每天不能 超过2次。皮下注射每天限制在2~3个部位,前述皮下注射部位,不包括弗氏佐剂的使用。

末梢血标本采集标准程序

末梢血标本采集标准程序 1. 目的 采集末梢血标本以做门诊血常规检验。 2. 适用范围 适用于门诊检验科做血常规等项目所需血液标本的采集。 3. 物品准备:一次性采血针、75%酒精、无菌棉球、0.5毫升离心管(EDTAK2抗凝管)、试管架、编号笔、微型震荡器、口罩。 4. 检验申请单填写要求: 4.1 检验申请单用钢笔填写,使用正楷字,字迹清楚,填写完整。 4.2 填写内容包括:受检者姓名、性别、年龄、化验单编号、临床诊断、送 检标本、检验项目、标本采集标本年月日时、申请医生及采样者签名。 5. 操作步骤: 5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备,向受检者解释操作 目的,以取得合作。 5.2 常用选择无名指,先用酒精棉球消毒,然后用一次性采血针穿刺,让血 液自然流出,用消毒棉球轻拭去第一滴后,将血液收集在0.5毫升离心管(EDTAK2抗凝管),约0.2-0.3毫升。 5.3 用干棉球压住穿刺部位,嘱采血对象按压2-3分钟。 5.4 在微型震荡器混匀。马上送检。 6. 注意事项 6.1 采血前应核对好姓名和检验项目,明确标本要求。 6.2 血常规用EDTAK2抗凝管收集血标本后,在微型震荡器混匀,使血液与抗凝剂充分混匀。 6.3 除特殊情况外,不要在耳垂采血。婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血。烧 伤患者可根据情况选用皮肤完整的肢体末端。采血部位应无炎 症或水肿。末梢采血不可用力挤压。 7. 标本运输及实验前存放: 立即送检,如需保存,可置2-8℃存放不超过8小时。

8. 其它:如分析失败,将对同一原始样本进行检验。如仍不能发出报告者,分析原因并告知受检者重新采样检验。 9. 相关文件 9.1 采样管理程序 9.2 标本管理程序 10. 相关记录

末梢血常规标本采集操作规程

末梢血常规标本采集操作规程 1.2采血方法 1.2.1 采血部位成人以左手无名指外为宜,半岁以上儿童无名指为好,半岁以下婴儿通常自拇指或足跟两侧采血。 1.2.2 轻按摩采血部位,使其自然充血,用碘伏消毒局部皮肤待干。 1.2.3 捏刺血部位,用无菌刺血针穿刺取血,动作应迅速,深度约2mm稍加挤压以血液能流出为宜。 1.2.4 干棉球擦去第一滴血,按需要依次采血。 1.2.5 采血完毕,用干棉球压住伤口,止血片刻。 1.3注意事项 除特殊情况外若在耳垂采血要避开冻疮、炎症、水肿等部位,以免影响结果。其他注意事项参考静脉血常规标本采集规程。 3.1 4.1 白细胞成年人静脉血:3.5~10.0x109/L;手指血:4.4~10.0x109/L;新生 儿:15.0~20.0x109/L;6个月~2岁:11.0~12.0x109/L。 3.1 4.2 红细胞成年男性:135~180g/L;成年女性:3.77~ 5.17x1012/L;新生儿: 6.0~ 7.0x1012L。 3.1 4.3 血红蛋白成年男性:135~180g/L;成年女性:115~155g/L;新生儿:170~200g/L。3.14.4 血细胞比容成年男性:0.400~0.517;成年女性:0.367~0.467。 3.1 4.5 血小板 100~300x109/L。 MCV:80~100Fl;MCH:27.2~34.4pg;MCHC:320~360g/L;RDW:0.145;PCT:男性0.183±0.041;女性0.198±0.042;MPV:男性10.07±1.78Fl;女性10.24±1.58fl;PDW:16.8%±0.63%。 3.15检验结果可报告区间 3.15.2警告/危急值白细胞<0.5x109/L;红细胞<1.0x1012/L;血红蛋白<30 g/L;血小板< 20x109/L。 3.1 4.1 白细胞成年人静脉血:3.5~10.0x109/L;手指血:4.4~10.0x109/L;新生 儿:15.0~20.0x109/L;6个月~2岁:11.0~12.0x109/L。 3.1 4.2 红细胞成年男性:135~180g/L;成年女性:3.77~ 5.17x1012/L;新生儿: 6.0~ 7.0x1012L。 3.1 4.3 血红蛋白成年男性:135~180g/L;成年女性:115~155g/L;新生儿:170~200g/L。3.14.4 血细胞比容成年男性:0.400~0.517;成年女性:0.367~0.467。 3.1 4.5 血小板 100~300x109/L。 3.1 4.6 其他参数 MCV:80~100Fl;MCH:27.2~34.4pg;MCHC:320~360g/L;RDW:0.145;PCT:男性0.183±0.041;女性0.198±0.042;MPV:男性10.07±1.78Fl;女性10.24±1.58fl;PDW:16.8%±0.63%。

关于动物取血问题

1、关于小鼠血液量的问题: 小鼠循环血量占体重的6%,或50-70ml/kg,采血占全血量的10%不会对机体造成严重的不良影响。3-4周后可以重新采集一次。特别注意的是:老年小鼠血量降低。疾病会加重不良反应,所以必须考虑这些影响因素。采血后应补充响应体积的液体,如果需要很短时间反复采血,比如每天一次,每次的采血量不应超过全血的1%。 2、关于取血方法的问题: (1)尾尖取血:当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用二甲苯等化学药物涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,剪去尾尖,血自尾尖流出,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间,多次采取鼠尾尖部血液,每次采血时,将鼠尾剪去很小一段,取血后,先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2~0.3ml血,切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查。 (2)眼眶后静脉丛取血:当需中等量的血液,而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突(示眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2~3mm,大鼠4~5mm。当感到有阻力时再稍后退,保持水平位,稍加吸引,由于血压的关系,血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后,拨出毛细管。若手法恰当,小鼠约可采血0.2~0.3ml,大鼠约可采血0.4~0.6ml。 (3)断头取血:当需要较大量的血液,而又不需继续保存动物生命时采用此法。左手捉持动物,使其头略向下倾,右手持剪刀猛力剪掉鼠头,让血液滴入盛器。小鼠可采血0.8~1.0ml,大鼠可采用5~8ml。 (4)眶动脉和眶静脉取血:此法既能采取较大量的血液,又可避免断头取血法中因组织液的混入导致溶血的现象,现常取代断头取血法。先使动物眼球突出充血后,以弯头眼科镊迅速钳取眼球,并将鼠倒置,头向下,眼眶内很快流出血液,让血液滴入盛器,直至不流为止。此法由于取血过程中动物未死,心脏不断在跳动,因此取血量比断头法多,一般可取鼠体重4~5%的血液量,是一种较好的取血方法。 (5)心脏取血:动物仰卧固定在固定板上,剪去心前区部位的被毛,用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3~4肋间,用左手食指摸到心搏处,右手取连有4~5号针头的注射器,选择心搏最强处穿刺,当针刺入心脏时,血液由于心脏跳动的力量自动进人注射器。此法要求实验者掌握以下要点:要迅速而直接插入心脏,否则,心脏将从针尖处滑脱;如第一次没刺准,将针头抽出重刺,不要在心脏周围乱探,以免损伤心、肺;要缓慢而稳定的抽吸,否则,太多的真空反而使心脏塌陷。若不需保留动物生命时,也可麻醉后切开动物胸部,将注射器直接刺人心脏抽吸血液。 (6)大血管取血:大、小鼠还可从颈动、静脉,股动、静脉和腋下动、静脉取血,在这些部位取血均需麻醉后固定动物,然后作动、静脉分离手术,使其暴露清楚后,用注射器沿大血管平行刺入(或直接用剪刀剪断大血管),抽取所需血量。切断动脉时,要防止血液喷溅。

常用实验大小鼠采血方法及其对实验动物福利的影响

2019年1月 第29卷一第1期 中国比较医学杂志 CHINESE JOURNAL OF COMPARATIVE MEDICINE January,2019 Vol.29一No.1 杨健莉,刘佳,郑志红.常用实验大小鼠采血方法及其对实验动物福利的影响[J].中国比较医学杂志,2019,29(1):90-94. Yang JL,Liu J,Zheng https://www.360docs.net/doc/a914734162.html,parison and analysis of blood sampling methods from rats and mice [J].Chin J Comp Med,2019,29(1):90-94. doi:10.3969/j.issn.1671-7856.2019.01.016 [基金项目]国家自然科学基金(2015408002)三 [作者简介]杨健莉(1989 ),女,学士学位,专业:实验动物学三E-mail:yangjianli0603@https://www.360docs.net/doc/a914734162.html, [通信作者]郑志红(1969 ),女,教授,研究方向:实验动物转基因与基因敲除研究三E-mail:zhihongzheng@https://www.360docs.net/doc/a914734162.html, 常用实验大小鼠采血方法及其对 实验动物福利的影响 杨健莉,刘一佳,郑志红? (中国医科大学实验动物部,沈阳一110122) 一一?摘要?一近些年大量的文献对实验大小鼠采血方法进行了比较研究,以探究出最适合的采血方法,从而获得 高质量的血液样本三本文主要介绍了几种实验大小鼠常用的采血方法,及不同采血方法对动物福利的影响,为选择最适的采血方法提供相关的理论依据,提高实验效率,降低实验影响三 ?关键词?一实验大小鼠;采血方法;实验动物福利 ?中图分类号?R -33一一?文献标识码?A一一?文章编号?1671-7856(2019)01-0090-05 Comparison and analysis of blood sampling methods from rats and mice YANG Jianli,LIU Jia,ZHENG Zhihong ? (Department of Laboratory Animal Science,China Medical University,Shenyang 110122,China) 一一?Abstract ?一Recently,many studies have compared different methods for blood collection from experimental rats and mice to determine the most suitable method to obtain high-quality blood samples.This review introduces several blood collection methods commonly used in rats and mice,and their effects on animal welfare.This will provide a theoretical basis for selecting the most suitable method of blood collection to improve experimental efficiency and reduce the impact on experimental results. ?Keywords ?一experimental rats and mice;methods of blood collection;laboratory animal welfare 一一实验大小鼠的使用在哺乳动物实验中约为 75%左右[1],主要应用于药代动力学二毒理学二行为学二遗传学以及肿瘤学等领域,对实验大小鼠进行血液采集是实验操作过程中重要的实验操作,不同的采血方法对动物组织损伤程度二采血间隔及采血量要求等各不相同;那么选择适合的采血方法,获得高质量的血液样本,是获得良好动物实验数据的基础三本文主要介绍几种大小鼠常用的采血方法,对采血量的确定二采血频率 的选择及不同采血方法对动物福利的影响进行阐述,为实验者在操作过程中选择合适的采血方法提供依据三1一常用的采血方法 依据采血位点不同实验大小鼠常用的采血方法可分为鼠尾采血二眼眶采血二颈静脉采血二隐静脉采血二面部采血二心脏采血和腹主动脉采血;下面分别对不同的采血方法要点及应用进行介绍三

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