胰岛素过量反应及解救实验报告结果
注射胰岛素的副作用的原因分析及护理对策
2014.01临床经验104随着糖尿病的患病率和糖尿病患者数量急剧上升，糖尿病及其并发症给人类的健康和社会发展带来了严重的负担。
胰岛素治疗是控制高血糖重要手段。
因此提高应对胰岛素副作用的能力至关重要。
1 注射胰岛素的副作用1.1 低血糖反应1.1.1 原因注射胰岛素后没有及时进餐或进餐延迟、进食过少，胰岛素剂量过大、运动量过多；进餐前剧烈运动，没有及时加餐；空腹饮酒或饮酒后运动；肌肉注射均可发生低血糖反应。
1.1.2 预防措施为了避免在使用胰岛素的过程中出现低血糖反应，必须从小剂量开始使用，谨慎调整剂量，密切的监测血糖，应用胰岛素时应注意剂量准确，及时进餐定期更换注射部位，注射时抽回血，勿注入血管或肌肉。
跑步时避免在大腿前侧和外侧注射，防止胰岛素吸收过快引起低血糖。
随身携带糖果或甜点，以便在出现低血糖反应时能随时自我救治。
1.2 疼痛经研究证实在各种导致患者接受胰岛素治疗依从性差的原因中，因注射疼痛导致的不愿进行胰岛素治疗的比例达50.8% 。
1.2.1 原因（1）低温的胰岛素会诱发疼痛和不适；（2）用酒精消毒皮肤表面未干燥，酒精从针眼带到皮下引起疼痛；（3） 体毛根部附近有丰富的神经末梢，在体毛根部注射增加机体对疼痛的敏感性；（4）针头多次使用会造成针尖钝化，针头表面的润滑层脱落，增加患者疼痛；（5）患者异常敏感而感觉疼痛。
1.2.2 减轻疼痛的方法（1）室温保存正在使用的胰岛素；（2） 酒精彻底挥发后再进行注射；（3） 避免在体毛根部注射；（4）选择直径小、长度较短的针头；（5）针头不要重复使用；（6）进针速度要快，熟练掌握注射技术；（7）长度较短的针头具有较好的安全性和耐受性，研究显示长度较短的针头（5MM ）能显著降低出血，挫伤，和疼痛。
1.3 出血和淤血注射时针头会触及血管，导致局部出血注射胰岛素的副作用的原因分析及护理对策郑桂玲江苏省徐州市铜山区人民医院 江苏省徐州市 221006【摘 要】目的：探讨预见性分析注射胰岛素的副作用的原因及护理对策。
影响药物作用的因素
影响药物作用的因素实验报告课程：机能学实验系级班姓名：学号：组员：实验原理1，硫酸镁不同给药途径，药理作用不同：口服，泻下、利胆；注射，松弛平滑肌，肌肉松弛，降压；外敷，消炎祛肿。
2，氯丙嗪广泛引起中枢抑制，抑制延髓催吐化学感受区及下丘脑体温调节中枢。
不同剂型对氯丙嗪的吸收效果不同。
3，钙离子对钠通道有屏蔽作用，可降低心肌兴奋性和传导性，快速注射钙离子使血钙浓度升高导致房室传导阻滞、心脏骤停等。
而慢速注射可由血液稀释，引起的不良反应较弱。
4，尼克刹米可直接兴奋延髓呼吸中枢或刺激颈动脉体和主动脉体化学感受器，反射性兴奋呼吸中枢。
过量导致中枢兴奋及惊厥。
5，胰岛素是机体唯一降血糖的激素。
机体血糖突然降低会导致脑缺氧，产生心悸、出汗、、动物发生惊厥、抽搐等现象。
可用葡萄糖解救。
【实验目的】1.观察不同给药途径对药物作用的影响。
2.比较不同剂型、剂量、给药速度对药物作用的影响。
3.观察胰岛素的降低血糖作用，胰岛素惊厥的表现并掌握其解救方法。
【实验动物】动物：小白鼠药品：10%硫酸镁、墨汁生理盐水0.1%氯丙嗪水溶液0.1%氯丙嗪阿拉伯胶溶液（含10%阿拉伯胶溶液）1% CaCl2 溶液 1.25%尼可刹米溶液5%尼可刹米溶液10%尼可刹米溶液40U/ml胰岛素溶液、50%葡萄糖器材：注射器（1ml 5ml 10ml 20ml) 小鼠笼、天平、大镊子、小鼠灌胃器大烧杯剪刀【实验步骤】一、观察不同给药途径对药物作用的影响。
（1）称量体重，将小鼠分为1，2，3三组，每组1只.（2）1号小鼠腹腔注射0.3ml/10g的硫酸镁溶液，2号小鼠灌胃0.3ml/10g硫酸镁墨汁溶液，3号小鼠灌胃0.3ml/10g生理盐水溶液。
观察现象二、不同剂型、剂量、给药速度对药物作用的影响1.不同剂型1）称量体重，将小鼠分为甲、乙两组，每组两只。
2）甲组小鼠皮下注射0.2ml/10g的0.1%的氯丙嗪水溶液，乙组小鼠皮下注射0.2ml/10g 的0.1%的氯丙嗪阿拉伯胶溶液，观察并记录小鼠入睡的时间。
胰岛素耐糖实验报告
一、实验目的1. 了解胰岛素对血糖浓度的影响；2. 掌握胰岛素耐糖实验的操作方法；3. 分析胰岛素耐糖实验的结果，评估受试者的胰岛素敏感性。
二、实验原理胰岛素是一种由胰岛β细胞分泌的激素，具有降低血糖的作用。
胰岛素耐糖实验是通过观察受试者在给予葡萄糖负荷后血糖的变化，以及胰岛素分泌的情况，来评估受试者的胰岛素敏感性。
三、实验材料1. 受试者：年龄、性别、体重、身高等基本资料；2. 仪器：血糖仪、胰岛素测定仪、葡萄糖粉、注射器等；3. 药品：胰岛素；4. 其他：记录表、计算器等。
四、实验方法1. 受试者空腹8-12小时，采集空腹血糖和胰岛素；2. 受试者口服葡萄糖粉（75g），并在服用前、服用后30分钟、1小时、2小时、3小时分别采集血糖和胰岛素；3. 比较空腹和负荷后各时间点的血糖和胰岛素水平，计算胰岛素敏感性指数（ISI）。
五、实验结果1. 空腹血糖：受试者空腹血糖水平为（4.2±0.6）mmol/L；2. 空腹胰岛素：受试者空腹胰岛素水平为（8.5±2.1）μU/ml；3. 负荷后血糖和胰岛素水平：- 30分钟：血糖（6.8±1.2）mmol/L，胰岛素（12.3±3.5）μU/ml；- 1小时：血糖（8.5±1.5）mmol/L，胰岛素（20.6±4.8）μU/ml；- 2小时：血糖（6.2±1.1）mmol/L，胰岛素（15.2±3.9）μU/ml；- 3小时：血糖（5.0±0.9）mmol/L，胰岛素（10.4±2.6）μU/ml；4. 胰岛素敏感性指数（ISI）：受试者ISI为（5.4±1.2）。
六、实验分析1. 受试者空腹血糖和胰岛素水平正常；2. 负荷后血糖和胰岛素水平在1小时内达到峰值，2小时后逐渐下降，3小时恢复至空腹水平；3. 受试者ISI处于正常范围，表明受试者胰岛素敏感性良好。
胰岛素兴奋实验报告
一、实验目的1. 了解胰岛素对血糖调节的作用；2. 掌握胰岛素兴奋实验的基本操作；3. 分析胰岛素兴奋实验的结果，探讨胰岛素对血糖调节的影响。
二、实验原理胰岛素是由胰岛β细胞分泌的一种激素，具有降低血糖的作用。
胰岛素兴奋实验通过给动物注射一定量的胰岛素，观察动物血糖变化及临床症状，以了解胰岛素对血糖调节的影响。
三、实验材料1. 实验动物：小鼠；2. 胰岛素；3. 胰岛素注射器；4. 血糖仪；5. 生理盐水；6. 实验记录表。
四、实验方法1. 实验动物准备：选取健康小鼠若干只，随机分为实验组和对照组。
2. 实验分组：实验组小鼠按体重给予一定量的胰岛素，对照组小鼠给予等量的生理盐水。
3. 血糖测定：在实验前后，分别用血糖仪测定实验组和对照组小鼠的血糖水平。
4. 观察记录：观察实验组和对照组小鼠在实验过程中的行为变化，如精神状态、活动能力、呼吸频率等。
5. 数据分析：对实验数据进行分析，比较实验组和对照组小鼠血糖变化及临床症状的差异。
五、实验结果1. 实验组小鼠在注射胰岛素后，血糖水平显著降低，与对照组相比有显著性差异（P<0.05）。
2. 实验组小鼠在血糖降低过程中出现精神萎靡、活动能力下降、呼吸频率加快等临床症状。
3. 对照组小鼠血糖水平无明显变化，临床症状不明显。
六、实验分析1. 胰岛素兴奋实验结果表明，胰岛素具有降低血糖的作用。
2. 实验组小鼠在注射胰岛素后，血糖水平显著降低，可能与胰岛素促进组织细胞摄取、利用、储存葡萄糖有关。
3. 实验组小鼠在血糖降低过程中出现临床症状，提示胰岛素兴奋实验对动物具有一定的应激作用。
七、实验结论1. 胰岛素兴奋实验成功证明了胰岛素具有降低血糖的作用。
2. 实验组小鼠在注射胰岛素后，血糖水平显著降低，并出现临床症状，提示胰岛素兴奋实验对动物具有一定的应激作用。
3. 本实验为胰岛素在临床治疗中的应用提供了理论依据。
八、实验讨论1. 胰岛素兴奋实验在动物实验中具有较高的可靠性，但实验结果可能受到动物个体差异、实验操作等因素的影响。
血糖的影响实验报告
一、实验目的1. 掌握血糖测定的原理和方法。
2. 研究胰岛素和肾上腺素对血糖浓度的影响。
3. 了解血糖浓度与人体健康的关系。
二、实验原理血糖是人体内重要的能量来源，维持在一定范围内对身体健康至关重要。
胰岛素和肾上腺素是两种重要的激素，它们对血糖浓度具有调节作用。
胰岛素可以降低血糖，而肾上腺素则可以升高血糖。
本实验通过观察胰岛素和肾上腺素对血糖浓度的影响，进一步了解血糖调节的机制。
三、实验材料与试剂1. 实验动物：家兔两只（体重2-3公斤）。
2. 实验试剂：胰岛素（5单位/ml）、肾上腺素（0.5mg/ml）、碘酒、消毒酒精、棉球、血糖测定仪、标准葡萄糖溶液等。
3. 实验器材：注射器、剪刀、烧杯、试管、试管架、温度计等。
四、实验步骤1. 准备实验动物：选取健康家兔两只，分别称重并记录体重。
2. 实验分组：将两只家兔随机分为甲、乙两组，甲组为实验组，乙组为对照组。
3. 实验操作：a. 将甲组家兔禁食14-16小时，乙组家兔正常饮食。
b. 分别从甲、乙两组家兔的耳缘静脉抽取10ml血液，分别测定血糖浓度。
c. 将甲组家兔注射胰岛素（5单位/kg体重），乙组家兔注射等量生理盐水。
d. 注射后30分钟，再次从甲、乙两组家兔的耳缘静脉抽取10ml血液，分别测定血糖浓度。
e. 比较甲、乙两组家兔注射前后血糖浓度的变化。
五、实验结果1. 甲组家兔注射胰岛素前血糖浓度为X1，注射后血糖浓度为Y1。
2. 乙组家兔注射生理盐水前血糖浓度为X2，注射后血糖浓度为Y2。
实验结果显示，甲组家兔注射胰岛素后血糖浓度明显降低，乙组家兔注射生理盐水后血糖浓度无明显变化。
六、实验分析1. 胰岛素具有降低血糖的作用。
注射胰岛素后，家兔体内胰岛素水平升高，促进葡萄糖进入组织细胞，从而降低血糖浓度。
2. 肾上腺素具有升高血糖的作用。
注射肾上腺素后，家兔体内肾上腺素水平升高，促进糖原分解，使血糖浓度升高。
七、实验结论1. 胰岛素和肾上腺素对血糖浓度具有明显的调节作用。
实验十 胰岛素惊厥蛙类血管血液循环的观察实验报告
实验十胰岛素惊厥蛙类血管血液循环的观察一、目的和要求1．了解胰岛素调节血糖水平的机能2．观察各种血管内血液流动的特点二、基本原理1．胰岛素是调节机体血糖的激素之一，当体内胰岛素含量增高时，便引起血糖下降，动物出现惊厥现象。
2．蛙类的肠系膜及膀胱壁很薄，在显微镜下可以直接观察其血液循环。
根据血管口径的粗细、管壁的厚度、分支的情况和血流的方向等可以区分动脉、静脉和毛细血管。
三、动物与器材1．小白鼠6只、1ml注射器、胰岛素溶液、50%葡萄糖溶液、酸性生理盐水2．蟾蜍、常用手术器械、显微镜、载玻片、玻璃片、任氏液，带孔的薄板四、方法与步骤胰岛素惊厥：1．取6只小鼠称重后，分实验组一，实验组二和对照组，每组2只。
2．给实验组的动物腹腔注射胰岛素溶液（0.1ml/10g体重）。
3．给对照组动物腹腔注射等量的酸性生理盐水。
4．将三组动物都放在30~37℃的环境中，并记下时间，注意观察并比较两组动物的神态，姿势及活动情况。
5．当动物出现角弓反张、乱滚等惊厥反应时，记下时间，并给实验组二的动物立即皮下注射葡萄糖溶液（0.1ml/10g体重）。
6．比较对照组动物、注射葡萄糖的动物、已经出现惊厥而未抢救的动物的活动情况。
7．实验后小鼠断颈处死。
观察蛙类血液循环：1．将双毁髓的蟾蜍背位置于带孔的薄板上，使腹部靠近孔，再将载玻片的一端靠腹部并盖在板孔上。
2．用手术镊提起右侧腹壁，再用手术剪在腹壁上剪一长约1cm的纵向开口。
3．轻轻拉出小肠袢，将肠系膜平铺在小孔上（勿拉破系膜）。
在显微镜下可以观察肠系膜的血液循环。
五、实验结果分析1．注入胰岛素的一组小鼠出现惊厥，而注入酸性生理盐水的空白对照组则没有出现此现象。
第二组在注入葡萄糖后，小鼠逐渐恢复正常，而不作任何处理的第三组则惊厥依然。
这说明胰岛素有明显的降血糖的作用。
一旦机体内的胰岛素水平过高则出现低血糖惊厥现象。
2．观察蟾蜍的肠系膜，结果如下：六、实验注意事项：1．提夹腹壁肌时只能夹肌层，不能牵连内脏器官。
糖病患者常见问题解答如何判断胰岛素过量或过少
糖病患者常见问题解答如何判断胰岛素过量或过少糖尿病患者常见问题解答如何判断胰岛素过量或过少在日益增多的糖尿病患者中，胰岛素的使用成为控制血糖的重要手段之一。
然而，胰岛素的过量或过少都可能对糖尿病患者的健康造成严重影响。
那么，如何准确判断胰岛素的使用是否过量或过少，成为了糖尿病患者关注的重要问题。
本文将对此问题进行解答，并提供相应的分析和参考。
一、胰岛素过量的判断胰岛素的过量使用会导致血糖水平过低，即低血糖。
常见的低血糖症状包括头晕、乏力、饥饿、出汗、心悸等。
如果糖尿病患者出现了这些症状，可能是胰岛素过量所致。
判断胰岛素过量的方法如下：1. 血糖监测：低血糖发生时，及时测量血糖水平是判断胰岛素过量的重要手段。
如果血糖水平低于正常范围（一般在70mg/dL以下），可能存在胰岛素过量的风险。
2. 倾向性指标：胰岛素过量的倾向性指标主要包括A1C水平、饥饿程度等。
高于正常范围的A1C水平以及持续感到饥饿可能是胰岛素过量的表现。
3. 化验结果：通过化验检查如胰岛素水平和C肽水平来判断是否存在胰岛素过量。
正常情况下，这些指标应该处于正常范围内。
二、胰岛素过少的判断与胰岛素过量相对应的，胰岛素过少也会给糖尿病患者带来诸多问题。
血糖水平升高是胰岛素过少的主要表现，常见的症状包括口渴、多尿、疲劳等。
以下是胰岛素过少的判断方法：1. 血糖监测：超过正常范围（一般在180mg/dL以上）的血糖水平可能是胰岛素过少所致。
2. 糖化血红蛋白（A1C）指标：胰岛素疗法下，高于正常范围的A1C水平通常是胰岛素使用过少的表现。
3. 尿糖测试：根据尿液中的糖分含量，可以初步判断胰岛素是否过少。
在尿液中检测到大量糖分，可能意味着胰岛素过少。
4. 定期检查：定期进行医生检查，包括血糖监测和化验检查，以了解当前胰岛素的使用情况和血糖水平是否稳定。
综上所述，判断胰岛素过量或过少需要结合多种方法和指标进行综合分析。
血糖监测是判断胰岛素使用是否合理的重要手段，同时倾向性指标和化验结果也能够为胰岛素的使用提供一定的参考。
胰岛素
实验14.1 胰岛素引起的低血糖痉挛Hypoglycemic Convulsion Induced by Insulin胰岛素是调节机体血糖的重要激素，可促使细胞外液中的葡萄糖进入组织细胞，促进糖原合成，加速糖的氧化，也可抑制糖异生和分解，从而使血糖降低。
当体内胰岛素含量增高时，可引起低血糖症状，动物出现惊厥现象。
本实验通过大量注射胰岛素来观察低血糖症状，了解胰岛素调节血糖水平的功能。
1 材料和方法1．1 材料 小白鼠，1 ml 注射器，2 U/ml 胰岛素溶液、50％葡萄糖溶液、酸性生理盐水（pH 2.5～3.5）。
1．2 方法取小白鼠6只，称重后分实验组（4只）和对照组（2只）。
给实验组动物腹腔注射胰岛素溶液0.1 ml/10 g 体重。
给对照组动物腹腔注射等量酸性生理盐水。
将两组动物均放在30～37℃的环境中，并记下时间，注意观察并比较两组动物的神态、姿势及活动情况。
当实验组动物出现角弓反张、乱滚等惊厥反应时，记下时间，并立即给其中2只皮下注射葡萄糖溶液（0.1 ml/10 g 体重），另2只不予抢救。
注意事项①动物在实验前必须禁食18～24小时。
②需用pH 值为2.5～3.5的酸性生理盐水配制胰岛素溶液，因为胰岛素在酸性环境中才有效。
③酸性生理盐水的配制：将10 ml 0.1 mol/L 盐酸溶液加入300 ml 生理盐水中，调整其pH值至2.5～3.5，如果偏碱，可加入同样浓度的盐酸调整。
④注射胰岛素的动物最好放在30～37℃环境中保温，夏天可为室温，冬天则应高些，可到36～37℃。
因温度过低，反应出现较慢。
2 结果比较对照组动物、注射葡萄糖的动物以及出现惊厥而未经抢救的动物的活动情况。
3 讨论分析胰岛素调节机体血糖的机制。
探索性问题设计一个实验，确定胰岛素引起低血糖痉挛的阈剂量。
吴莉萍 周新妹实验14.2 大鼠性周期的观察Observation of Sexual Cycle in Rat伴随着性周期时间的推移，周期性排卵动物表现出生殖器官和附属生殖器官的形态学和功能学变化。
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胰岛素过量反应及解救实验报告结果胰岛素是一种能够下调血糖的激素，但在某些情况下，人会出现胰岛素过量反应，如糖尿病患者误注胰岛素、儿童偶然口服、超量注射胰岛素等。
胰岛素过量反应会造成低血糖，若不及时救治，可导致昏迷、甚至死亡。
本实验旨在探究胰岛素引起的低血糖症状以及解救方法。
实验设计：
将小鼠随机分为胰岛素组和生理盐水组，胰岛素组小鼠腹腔注射胰岛素(2 IU/kg)后建立模型。
两组小鼠在注射后分别12、24、48、72h时取血检测空腹血糖(FBG)、胰岛素浓度和肝、肌肉、脑组织内糖原含量，观察小鼠运动活力和体重等指标。
实验结果：
注射胰岛素后12h，胰岛素组小鼠FBG显著降低(P<0.05)，与生理盐水组差异有统计学意义。
注射后24、48、72h，胰岛素组小鼠FBG与生理盐水组无显著性差异(P>0.05)。
注射后12h，胰岛素组小鼠血清胰岛素浓度显著升高(P<0.01)，注射后24、48、72h，与生理盐水组无明显差异(P>0.05)。
胰岛素组小鼠肝、肌肉、脑组织内的糖原含量显著降低
(P<0.01)，注射后24、48、72h，与生理盐水组无明显差异(P>0.05)。
胰岛素组小鼠显著减少了运动活力和体重。
实验结论：
本实验模拟小鼠胰岛素过量反应，发现注射后12h小鼠出现低血糖症状，血糖水平下降明显；血清胰岛素浓度显著升高，并且组织内糖原含量降低。
注射后24、48、72h，以上指标与生理盐水组差异不显著。
此外，
小鼠在注射胰岛素后运动活力和体重显著减少。
因此，在胰岛素过量反应时，应尽快补充葡萄糖或给予稳定剂等解救措施。