急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

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大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良

大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良

大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良吴庆景;高凤敏;杨艳娜;侯广玉;杨国宏;孙晓冬【期刊名称】《解剖学杂志》【年(卷),期】2017(040)003【摘要】目的:为大鼠急性心肌梗死模型制作提供更快、更稳定的方法.方法:所有大鼠按气管插管方法-开胸扩开第3肋间隙方法随机分为:灌胃针-开睑器组(传统组)、灌胃针-缝合线开睑器组、自制插管-开睑器组、自制插管-缝合线开睑器组(改良组),麻醉后分别用相应方法行气管插管和开胸,暴露术野,结扎冠状动脉前降支,记录每组大鼠气管插管时间、气管插管次数、手术时间、术后呼吸道哮鸣音发生率、肺损伤程度和死亡率.术后第2天和第4天随机取各组大鼠5只,行心电图、左心室插管和心肌染色检测模型心功能及心肌梗死面积.结果:使用自制插管的两组插管时间和次数与使用灌胃针的两组差别无统计学意义,但术后呼吸道哮鸣音发生率及死亡率明显低于使用灌胃针两组;使用缝合线开睑器的两组手术时间、术中肺损伤程度及术后死亡率明显低于使用开睑器的两组;各组间心功能及心肌梗死面积差异无统计学意义,改良组组内心功能及梗死面积差异性较小.结论:改良后大鼠急性心肌梗死模型制作方法简单、成活率较高、模型质量较高,值得推广.【总页数】4页(P299-302)【作者】吴庆景;高凤敏;杨艳娜;侯广玉;杨国宏;孙晓冬【作者单位】牡丹江医学院红旗医院心内科,牡丹江157000;牡丹江医学院红旗医院心内科,牡丹江157000;牡丹江医学院红旗医院心内科,牡丹江157000;牡丹江医学院组织学与胚胎学教研室,牡丹江157000;牡丹江医学院组织学与胚胎学教研室,牡丹江157000;牡丹江医学院组织学与胚胎学教研室,牡丹江157000【正文语种】中文【相关文献】1.改良大鼠急性心肌梗死模型的制备方法 [J], 许官学;石蓓;盛瑾;郭小英;杨文笔;雷艳娟2.SD大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改进 [J], 陈会强;崔炜;方敬;贾云芳;侯仙明;呼海娟3.大鼠急性心肌梗死模型制作方法的改良 [J], 吴庆景;高凤敏4.两种大鼠急性坏死性胰腺炎模型制作方法的改良和比较 [J], 刘纳新;管敏强;陈通克;赵惠玲;陈锡文5.血管性痴呆大鼠模型制作方法的改良 [J], 顾静;李海龙;杨长生;车敏;吴红彦因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备

急性大鼠心肌梗死实验模型的制备
陈红霞;高英茂;邴鲁军
【期刊名称】《中国组织化学与细胞化学杂志》
【年(卷),期】2005(014)001
【摘要】目的建立一种稳定可重复的急性心肌梗死动物模型.方法 Wistar大鼠经戊巴比妥钠麻醉后,气管切开插管,连通呼吸机,开胸后结扎左冠状动脉前降支.4周后取出心脏做病理组织学和心肌特异性肌钙蛋白T免疫组织化学染色检测.结果成功制备心肌梗死动物模型,并进行了病理组织学和免疫组织化学染色证实.结论本文建立的实验方法操作简单,成功率高,结果可靠.
【总页数】4页(P70-73)
【作者】陈红霞;高英茂;邴鲁军
【作者单位】山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012;山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012;山东大学医学院组织胚胎学教研室,济南,250012【正文语种】中文
【中图分类】R541
【相关文献】
1."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠心肌形态学、心肌酶学及血液流变学变化的比较 [J], 王佳;曲绍眷;于晓风;周金影;睢大筼
2."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠心脏血流动力学及心电图变化的比较 [J], 于晓风;王佳;曲绍春;周金影;西月;睢大筼
3."血瘀证"下急性心肌梗死模型与单纯急性心肌梗死模型大鼠血液生化学比较 [J],
曲绍春;于晓风;王佳;周金影;谢昊霖;睢大筼
4.大鼠急性心肌梗死模型制备及对心功能影响的实验研究 [J], 侯春丽;张冬梅;侯学红;杨少军
5.大鼠急性心肌梗死模型制备方法研究进展 [J], 曹珏;李贻奎;陈孟倩;姚魁武
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心肌梗死动物模型具体方法及步骤

心肌梗死动物模型具体方法及步骤

心肌梗死动物模型具体方法及步骤原型物种人来源结扎冠状动脉左前降支(LAD)导致心梗模式动物品系SPF级SD大鼠,健康,3-4W,雌雄各半,体重为180g-200g。

实验分组实验分六组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组。

实验周期72h建模方法心肌梗死是指心肌的缺血性坏死,是一种急性及严重的心脏状态。

心脏作为血液循环动力中心这一功能的实现,需要冠状动脉不断提供的血流供应,当冠状动脉发生病变而狭窄或堵塞,使得冠状动脉的血流急剧减少或中断,便会使相应的心肌出现严重而持久地急性缺血,心肌无法得到足够氧气,最终导致心肌不可逆的缺血性坏死,心脏的收缩和舒张功能降低,机体供血不足,严重者最终导致机体死亡。

1. 大鼠用3%戊巴比妥钠(30mg/kg),腹腔注射麻醉,用小动物剃毛器剃除大鼠胸部及腋下毛发(充分暴露手术区),用碘酒和75%乙醇术区消毒。

2.气管插管:麻醉后,夹趾检测无反应即可进行MI手术。

打开外置光源、显微镜开关,打开呼吸机,设置好各参数(呼吸比2:1,潮气量6-8 mL,频率70 次/min),将气管插管沿声门插入气管,取下大鼠接上呼吸机,观察大鼠呼吸状况,胸廓起伏与呼吸机频率一致表示插管成功,即可进行MI手术。

3. 大鼠采用右侧卧位,用眼科剪在左前肢腋下,用显微剪于三、四肋间打开胸腔充分暴露心脏,显微直镊轻轻夹起少量心包并于左心耳下撕开少许心包,充分暴露左冠状动脉前降支(LAD)或所在区域。

4. 结扎冠状动脉:于显微镜下找到LAD走向或可能所在位置,持针器持取5-0带针缝合线,于左心耳根部下方肺动脉圆锥旁以5-0 无创缝合线穿过左冠状动脉前降支( LAD),以完全阻断LAD血流。

5.关胸:结扎完成后,5-0缝线完全缝合胸腔开口(保证无缝隙、无错位)关闭胸腔,由内向外逐层缝合各层肌肉和皮肤。

6.术后管理:术后密切关注大鼠状态,有无呼吸异常等。

待大鼠自然苏醒后将大鼠从呼吸机上取下并取下气管插管,正常饲养。

心肌梗死的动物模型制作

心肌梗死的动物模型制作

心肌梗死的动物模型制作心肌梗死是一种严重的心血管疾病,其主要病理特征是冠状动脉的阻塞导致心肌缺血与坏死。

为了研究心肌梗死的发病机制和寻找可能的治疗方法,研究人员常常利用动物模型来模拟心肌梗死的发生。

下面,我将介绍一种常用的大鼠心肌梗死动物模型制作方法。

制作大鼠心肌梗死动物模型可以按照以下步骤进行:1.动物选择。

常用的实验动物有大鼠和猪。

由于大鼠的心血管解剖和生理特征与人类较为接近,同时成本较低,因此大鼠是一种常见的选择。

2.麻醉动物。

使用适量的麻醉剂,如异氟醚或七氟醚等,来使动物处于麻醉状态。

确保动物处于无痛苦的状态。

3.固定动物。

将动物固定在手术台上,以避免动物在手术过程中的移动。

4.体表消毒。

在手术区域进行局部消毒,以防止感染。

5. 做出胸骨切口。

在胸骨两侧做出1-2cm的胸骨切口,用手术器械将胸骨分开,暴露出心脏。

6.找到冠状动脉。

用吸引管或者类似的器械将心包囊抽吸,暴露出心脏表面。

紧邻左心室肌肉的左前降支是心肌梗死的常见发生区域。

7.梗死诱导。

用细导管或者相似的器械将一根可以封堵冠状动脉的丝线或者微球导入至冠状动脉中,使其堵塞。

这一步骤可以模拟冠状动脉的阻塞引发心肌梗死。

8.恢复心脏正常血流。

待梗死产生一段时间后(一般为30分钟-60分钟),再次将导管或器械取出,恢复冠状动脉的血流。

9.缝合胸骨。

将胸骨进行缝合,确保伤口能够愈合。

10.外科处理。

术后外科处理,如用抗生素进行预防性治疗,避免可能的感染。

研究人员可以通过观察心肌梗死后的心电图变化、心肌组织的病理切片等方式来评估心肌梗死的程度与发展。

总的说来,大鼠心肌梗死动物模型是一种常见的研究心肌梗死发病机制的实验模型。

通过制造大鼠心肌梗死动物模型,研究人员可以更好地模拟心肌梗死的发生,寻找新的治疗策略和探索其发病机制。

当然,在制作动物模型时,需要严格遵循相关伦理规范和动物保护法律法规,确保动物的利益和权益不受损害。

此外,动物模型只是研究的一部分,结合体外实验和临床数据,才能更全面地了解心肌梗死的病理机制及治疗方法。

大鼠急性心肌梗死模型的制备

大鼠急性心肌梗死模型的制备

实验流程: 1、麻醉动物 2、建立人工气道,机械通气 3、开胸,暴露心脏,结扎左冠状动脉 4、心电图验证损伤电流,确认心肌梗死 5、关胸,抗感染处理 6、附加实验,可练习制备心动过缓模型
实验步骤:
大鼠称重后用戊巴比妥钠溶液(30 mg/kg)或水合氯醛(300 mg/kg) 腹腔注射,麻醉后仰卧固定于手术 台板上。手术野皮肤去毛,碘酒、 酒精消毒,铺消毒巾。同时连心电 图机,用肢体导联进行心电图监测。
实验步骤:
迅速将心脏复位,逐层缝合;
最后一针先穿针打虚结,通过此间隙用注射器 抽出胸腔内气体,恢复胸腔负压后关胸。 待动物苏醒后拔除气管插管,以7/0 无损伤逢 合针将切口处相邻两个气管软骨环拉拢后闭合 气管。(如为经口腔插管则不需缝合。) 术后每天肌肉注射青霉素80万U,预防感染3 d。
关键要点: ① 剪开心包,挤压右侧胸腔使心脏暴露于 胸腔外,或用小药匙将心脏小心移出胸腔。 ② 以左冠状静脉主干为标志,于左心耳根 Байду номын сангаас下方2mm处进针,在肺动脉圆锥旁出针。 观察心电图,待其稳定后双重结扎前降支。 此后的心电图变化才能说明冠脉结扎情况。
附加实验——大鼠缓慢心率模型制备
结扎冠脉成功后,可不关胸,继续进行缓慢 心率模型制备练习 实验方法:
用棉签蘸40%甲醛,于上腔静脉根部与右 房交界处,接触1min,损伤窦房结,观察 心电图,如出现心率减慢,提示模型成功, 其余关胸步骤同前。
(因心梗可出现缓慢心率,此结果判定不排 除是心肌梗死引起的,仅供练习。)
实验步骤: 颈部正中切开气管并插管,用动物 人工呼吸机进行人工呼吸;潮气量 30 ml/kg,机械通气频率60-70次 /min。 人工呼吸下,在胸骨左缘扪及心脏 搏动处纵行切开皮肤约3 cm,逐层 分离皮下组织、肌肉,于第4肋间开 胸,剪开心包,暴露心脏、血管。

大鼠心肌梗死动物模型的制备

大鼠心肌梗死动物模型的制备

Reut S ria aeo h a d l a 0 .L EFo eAM[go p d ce s dsg ic nl ( <0 O , o ae sl s uvv lrt ftert mo e s % w 6 V ft h ru e rae inf a t P i y . 1) C mp rd w t h h m go p.L S n -d / to eA ru erae inf a t ( <0 0 i tes a ru h V P a d 1 p d ft MIgo pd ce sdsg i cnl P - h i y . 5,P<0 O ),b t h V P .1 u eL ED t
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率 6% ; 0 手术 组 L E V F较假 手术 组 显 著 降 低 ( 0 0 ) 与 假 手术 组 比 , 术 组 的 L S P< . 1 ; 手 V P明显 下 降 ( 00 ) ±d/ P< . 5 , p d 显 著 降 低 ( 0 0 ) 而 L E P明 显 升 高 ( 00 ) 病 理 组 织 学 检 查 可 见 瘢 痕 形 成 , 维 组 织 增 生 。 结 论 本 t P< . 1 , V D P< . 1 ; 纤

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估-最新文档资料

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估-最新文档资料

大鼠急性心肌梗死动物模型的建立和评估1 对象与方法?1. 1研究对象清洁级雄性Spreague-Dawley (SC)大鼠20 只,体质量250〜300 g (275± 15. 3) g,由广州中医药大学实验动物中心提供。

随机分为假手术组和心肌梗死组。

1 .2 研究方法?1 . 2. 1 MI 模型的建立[2-3] 氯胺酮( 75 mg/kg )腹腔注射麻醉,经口人工呼吸(导管置于大鼠的舌体与上颌之间),连接小动物呼吸机予以正压通气,潮气量3〜5 ml/100 g ,呼吸频率60次/min,吸呼比1? : ?1。

左侧胸部备皮,消毒手术区域,经胸骨左缘第4 肋间开胸,钝性分离肌肉,以眼科开睑器撑开肋间肌切口,暴露心脏,剪开心包,于肺动脉圆锥与左心耳之间距主动脉根部2~3 mm处,用7-0眼科无创缝合针,穿过前降支深部连同一小束心肌一并结扎。

根据心电图和心肌组织颜色确定冠脉结扎成功。

逐层缝合胸壁,自主呼吸恢复后拔出通气导管。

大鼠清醒后送动物房饲养,规律照明,自由进食和饮水。

术后连续3 d 予以青霉素40 万U 腹腔注射以预防感染。

假手术对照组除不结扎冠状动脉外,其余步骤相同。

1. 2. 2 超声心动图检查[4]3% 戊巴比妥钠( 45 mg/kg )腹腔注射麻醉,用Philips Sonos 5500型多功能超声诊断仪( S12探头,频率5~12 MHz),在胸骨旁以二维超声和M型超声测量左室收缩末径(LVSd、左室舒张末径(LVDd、舒张期左室后壁厚度(PWd、舒张期左室前壁厚度(AWd Ml组为梗死区室壁厚度)、左室射血分数(LVEF和短轴缩短率(FS),分别计算梗死区变薄指数(BBZS即舒张期左室前壁厚度/后壁厚度)和非梗死区增厚指数(ZHZS即舒张期左室后壁厚度/前壁厚度)。

所有参数均在3 个连续的心动周期中进行测量并取平均值。

1.2.3 血流动力学检查[5]3%戊巴比妥钠(45mg/kg)腹腔注射麻醉,气管切开插管,保持呼吸道通畅。

大鼠心肌梗死模型建立方法选择及心电图表现

大鼠心肌梗死模型建立方法选择及心电图表现

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中国实验动物学报 2011 年 12 月第 19 卷第 6 期
Acta Lab Anim Sci Sin , December , 2011 , Vol. 19. No. 6
spectively. There was no myocardial infarction and the survival rate was 100% in the sham operation group. ECG : QRS-T wave displayed an intersection “M ” shape in the sham group and before left coronary artery ligation. The R wave and T wave fused into one large tent-like single wave after the left coronary artery ligation ,and without visible ST segment. Histopathological changes of myocardial infarction were seen at 4 weeks after operation. Conclusions tip ,and all ECG showed no visible ST segment in the rats. 【Key words 】 Rat ; Model ,myocardial infarction ; Electrocardiogram It is a novel method to establish myocardial infarct model that the suture is placed about 2 mm distal to the horizontal line of left atrial appendage
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建模原理
生物体各组织器官要维持其正常的生命活动, 生物体各组织器官要维持其正常的生命活动,需要心 脏不停地搏动以保证血运。 脏不停地搏动以保证血运。而心脏作为一个泵血的肌性动 力器官,本身也需要足够的营养和能源, 力器官,本身也需要足够的营养和能源,供给心脏营养的 血管系统,就是冠状动脉和静脉,也称冠脉循环。 血管系统,就是冠状动脉和静脉,也称冠脉循环。冠状动 脉是供给心脏血液的动脉,起于主动脉根部,行于心脏表 脉是供给心脏血液的动脉,起于主动脉根部 行于心脏表 冠状动脉收集代谢后的静脉血, 面。冠状静脉伴随 冠状动脉收集代谢后的静脉血,归流 于冠状静脉窦,回到右心房。正常情况下, 于冠状静脉窦,回到右心房。正常情况下,冠状动脉 之 尚有丰富的吻合支或侧支。冠状动脉虽小, 间,尚有丰富的吻合支或侧支。冠状动脉虽小,但血流量 很大。占心排血量的5%,这就保证了心脏有足够的营养, 很大。占心排血量的 ,这就保证了心脏有足够的营养, 维持它有力地昼夜不停地跳动。如果冠状动脉突然阻塞, 维持它有力地昼夜不停地跳动。如果冠状动脉突然阻塞, 不能很快建立侧支循环,常常导致心肌梗塞。 不能很快建立侧支循环,常常导致心肌梗塞。但若冠状动 成的,则侧支可逐渐扩张, 脉阻塞是缓慢形 成的,则侧支可逐渐扩张,并可建立新 的侧支循环,起代偿的作用。 的侧支循环,起代偿的作用。左冠状动脉为最大冠状动脉 分支.主要供应左心室前壁和侧壁 主要供应左心室前壁和侧壁, 分支 主要供应左心室前壁和侧壁,其主要分支是左前降 支和左回旋支.选用结扎鼠左冠状动脉前降支中上 选用结扎鼠左冠状动脉前降支中上1/ 处 支和左回旋支 选用结扎鼠左冠状动脉前降支中上 /3处 结扎的方法,冠状动脉突然阻塞 冠状动脉突然阻塞, 结扎的方法 冠状动脉突然阻塞,侧支循环不及起代偿的 作用.以建立稳定的、适于细胞移植治疗心肌梗死. 作用 以建立稳定的、适于细胞移植治疗心肌梗死 以建立稳定的
甲状软骨下缘
1.5开胸及冠状动脉结扎 开胸及冠状动脉结扎 心前区域剃毛, 在心脏搏动最明显处,第三肋间隙 心前区域剃毛 在心脏搏动最明显处 第三肋间隙 水平开胸,皮肤切口约 皮肤切口约1. ~ 水平开胸 皮肤切口约 5~2. 0 cm,逐层钝性分 逐层钝性分 离肌肉至胸膜。剪开胸膜,用眼科开睑器撑开肋间 离肌肉至胸膜。剪开胸膜 用眼科开睑器撑开肋间 肌切口,以无菌棉球向下压迫左肺以保护肺脏剪开 肌切口 以无菌棉球向下压迫左肺以保护肺脏剪开 心包,用无菌棉签推开左心耳 用无菌棉签推开左心耳。 心包 用无菌棉签推开左心耳。在左心耳下距主动 脉根部2~ 线穿过一小束心肌,并 脉根部 ~3 mm处,用6 - 0线穿过一小束心肌 并 处用 线穿过一小束心肌 结扎。 结扎后左室壁变苍白 结扎后左室壁变苍白,并出现室壁运动减 结扎。(1)结扎后左室壁变苍白 并出现室壁运动减 术中结扎成功标识:心电监护见 导联大鼠 弱。(2)术中结扎成功标识 心电监护见 导联大鼠 术中结扎成功标识 心电监护见II导联 于结扎冠状动脉后QRS波峰降低,J点上移,ST 波峰降低, 点上移 点上移, 于结扎冠状动脉后 波峰降低 段明显抬高.证明心肌缺血存在心肌梗死 证明心肌缺血存在心肌梗死( 段明显抬高 证明心肌缺血存在心肌梗死(证明结 扎成功,心电图于结扎前与结扎后的心电图改变, 扎成功,心电图于结扎前与结扎后的心电图改变 排除手术操作造成人为性大鼠心肌缺血) 排除手术操作造成人为性大鼠心肌缺血) 。然后 加大通气量,充分使肺复涨 并清理胸腔。 充分使肺复涨,并清理胸腔 加大通气量 充分使肺复涨 并清理胸腔。
1 实验步骤和观察项目
1. 1 实验动物 健康雄性 健康雄性Wistar大鼠 只, 大鼠30只 大鼠 体质量250 ±25 g制作心肌梗死动物模型 体质量 制作心肌梗死动物模型 的大鼠体重以200~ 250 g为宜(动物太小, 为宜( 的大鼠体重以 ~ 为宜 动物太小, 不利于操作,耐受创伤能力低; 不利于操作,耐受创伤能力低;而体重及 鼠龄太大,则不利术后观察生存期, 鼠龄太大,则不利术后观察生存期,而且 麻醉剂量不好掌握,凝血功能较差, 麻醉剂量不好掌握,凝血功能较差,不易 止血。 止血。实验动物由广西医科大学实验中心 提供。) 提供。)
3 结果讨论
两只实验鼠死亡原因讨论: 两只实验鼠死亡原因讨论: ①号实验鼠在结扎冠状动脉时心脏停止跳动死亡 ②号实验鼠在关闭胸腔时呼吸停止死亡 考虑以下可能原因: 考虑以下可能原因: 鼠龄过大,适应手术能力较适龄鼠差, ⑴. 鼠龄过大,适应手术能力较适龄鼠差,多篇文 献提出实验鼠体重以250 ±25 g 为宜,本次实验 献提出实验鼠体重以 为宜, 鼠体重分别为① 鼠体重分别为① 290g及②360g; 及
结扎冠状动脉时部位未掌握好, ⑹. 结扎冠状动脉时部位未掌握好,结扎部位 过高(结扎到左主干), ),大鼠出现严重心 过高(结扎到左主干),大鼠出现严重心 律失常乃至心跳骤停, 律失常乃至心跳骤停,尽管已施以胸外按 压等抢救措施, 压等抢救措施,但是最终没有成功使实验 鼠复苏; 鼠复苏; 呼吸机频率和潮气量没有掌握好; ⑺. 呼吸机频率和潮气量没有掌握好; 时值冬季,气温较低,手术操作时间较长, ⑻. 时值冬季,气温较低,手术操作时间较长, 开胸后实验鼠体温丧失较大,存在低体温、 开胸后实验鼠体温丧失较大,存在低体温、 手术和麻醉多重打击。 手术和麻醉多重打击。
实验鼠体重较实验前预期的要重, ⑵. 实验鼠体重较实验前预期的要重,麻醉剂 有使用过量的可能, 有使用过量的可能,实验鼠术中出现呼吸 抑制; 抑制; 开睑器撑开术口压迫肺脏时间过长, ⑶. 开睑器撑开术口压迫肺脏时间过长,可能 存在气胸肺不张造成实验鼠缺氧; 存在气胸肺不张造成实验鼠缺氧; 压迫心脏时造成大血管移位扭转, ⑷. 压迫心脏时造成大血管移位扭转,重要脏 器供血不足; 器供血不足; 术中失血过多, ⑸.术中失血过多,造成血压下降,失血性休 术中失血过多 造成血压下降, 克;
1. 4气管插管 气管插管 大鼠仰卧固定于手术台上。 大鼠仰卧固定于手术台上。沿颈部中线切 开皮肤,分离组织暴露气管, 开皮肤,分离组织暴露气管,用7号注射针 号注射针 头做为插管以45度斜进针从甲状软骨下缘 头做为插管以 度斜进针从甲状软骨下缘 轻轻水平插入约0.7~1.5cm 斜面朝上。固 斜面朝上。 轻轻水平插入约 定好,气管插管,呼吸比为1:2,呼吸频率 定好 气管插管,呼吸比为 : , 气管插管 90次/rain,潮气量 ml/kg。关闭呼吸 次 ,潮气量14 / 。 四肢接心电图机记录术前心电图。 机,四肢接心电图机记录术前心电图。完 毕打开呼吸机, 此时作心电图与开胸后结 毕打开呼吸机, (此时作心电图与开胸后结 扎前心电图对照,验证是否为先天变异或实 扎前心电图对照 验证是否为先天变异或实 验前异常-心电图机未借到, 验前异常-心电图机未借到,所以心电图 未能做) 未能做
大鼠心肌梗死实验模型的制备
背景
有关心肌梗死模型的制作,国内外采用结扎、 有关心肌梗死模型的制作,国内外采用结扎、 药物、冷冻、栓塞、电凝等方法制作兔、大鼠、 药物、冷冻、栓塞、电凝等方法制作兔、大鼠、 狗等不同动物的心肌梗死模型, 狗等不同动物的心肌梗死模型,但大多数学者认 为结扎法复制的心肌梗死模型与心肌梗死实际发 病过程更符合。 病过程更符合。 由于临床大多心肌缺血或心肌梗死都是一渐 进性过程,会不断发生缺血或梗死后再灌现象。 进性过程,会不断发生缺血或梗死后再灌现象。 而冠状动脉结扎法能人为地仿造临床心肌梗死过 程的冠状动脉梗死,其梗死部位、 程的冠状动脉梗死,其梗死部位、分布范围相对 一致,病理生理、 一致,病理生理、生化改变与临床心肌梗死更相 似。 综上所述,结合实际操作条件 结合实际操作条件,选用结扎大鼠 综上所述 结合实际操作条件 选用结扎大鼠 冠状动脉结扎的方法,以建立稳定的 以建立稳定的、 冠状动脉结扎的方法 以建立稳定的、适于细胞移 植治疗心肌梗死的大鼠动物模型。 植治疗心肌梗死的大鼠动物模型。
1. 2 试验材料和药品 : 10%水合氯醛溶液、青霉素注射液、碘伏、 水合氯醛溶液、 水合氯醛溶液 青霉素注射液、碘伏、 小动物呼吸机、心电图机、大白鼠手术板、 小动物呼吸机、心电图机、大白鼠手术板、 5ml注射器 个、7号或 号针头、眼科剪、 注射器2个 号或4号针头 注射器 号或 号针头、眼科剪、 手术灯、眼科开睑器、小镊子、小弯钳、 手术灯、眼科开睑器、小镊子、小弯钳、 缝针、缝合线(6 线 、 缝针、缝合线 - 0线)、小无菌棉签 1.3 麻醉 SD大鼠称重 两只Wistar大鼠体重各为① 大鼠称重(两只 大鼠体重各为① 大鼠称重 两只 大鼠体重各为 290g及②360g), ① 号鼠腹腔注射乌拉坦 及 1.45ml②号鼠腹腔注射 10%水合氯醛 水合氯醛1ml。 ② 水合氯醛 。
1.7 术后抗感染及护理 大鼠本身具有比较强的抗感染能力,但是 大鼠本身具有比较强的抗感染能力, 预防感染有利于促进术后恢复, 预防感染有利于促进术后恢复,并且良好 的术后护理可以提高动物模型的生存率。 的术后护理可以提高动物模型的生存率。 因此,术前所用手术器械均要用75% 因此,术前所用手术器械均要用 %酒精 浸泡消毒。术后腹腔注射青霉素80万 。 浸泡消毒。术后腹腔注射青霉素 万U。待 大鼠麻醉清醒后即可与其糖水和饲料, 大鼠麻醉清醒后即可与其糖水和饲料,无 须禁食。术后可适量补充能量。 须禁食。术后可适量补充能量。冬天应注 意保嗳。 意保嗳。
2 检测指标
2.1 术前和术中做的心电图 2.2 组织病理学检查 开胸结扎冠状动脉后1d、 及 分批处死 开胸结扎冠状动脉后 、2d及3 d分批处死 实验鼠。取其心脏, 实验鼠。取其心脏,沿心脏纵轴剖开左右 心室, 心室,用10%福尔马林溶液固定 h,然 %福尔马林溶液固定24 , 后垂直于心脏纵轴从心尖部至心底部分别 横切4个切面 石蜡包埋,连续5 个切面, 横切 个切面,石蜡包埋,连续 um厚度切 厚度切 染色, 片,HE染色,观察左室壁心肌组织的病理 染色 变化,确定心肌梗死的存在。 变化,确定心肌梗死的存在。
左心耳
在左心耳下距主动脉根部2~3 mm处可见一粉红色细小血管
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