各种标本的采集操作程序
尿培养标本采集操作流程及要点说明(全面完整版)
尿培养标本采集操作流程及要点说明(全面完整版)(可以直接使用，可编辑全面完整版资料，欢迎下载）二、尿培养标本的采集【护理目标】遵循无菌操作原则，标本无污染，患者安全。
【操作重点步骤】1．核对医嘱与患者。
2．评估患者心理状况、膀胱充盈情况。
3．告知患者／家属尿标本采集的目的和配合方法。
4．按严格无菌操作要求进行尿标本采集：女患者留中段尿法：患者取坐位或仰卧位，垫便盆，按导尿法清洁、消毒外阴部，再用2％碘伏消毒尿道口。
嘱患者自行排尿，弃前段尿液，护士用试管夹夹住无菌试管，留取中段尿约lO mL。
留尿前后均将无菌试管及管塞在酒精灯火焰上消毒，盖紧管塞送检。
男患者留中段尿应注意把尿道口周围及包皮彻底消毒。
【结果标准】1．患者／家属对所做的护理操作和解释表示理解和满意。
2．标本留取方法准确。
3．送检及时。
尿培养标本采集操作流程及要点说明操作流程要点说明尿动力学检查流程尿动力学检查是研究排尿状况、分析排尿异常的重要检查，其检查流程如下：一、简要询问病史及必要查体，明确检查目的及检查项目；二、检查尿动力学检测仪的工作状况，必要时对尿流率仪；压力传感器；泵；UPP拉杆进行标定、校准；连接压力传感器（3个）、连接管（3个）泵管及灌注管三、向患者简要介绍检查情况，减少患者焦虑、恐惧的心理，取得患者的配合；四、一般先行尿流率检查，客观评价排尿状况；五、检查前准备工作：1.体位检查体位可选择半卧位、座位或立位。
如果需要排尿期的检测，尽可能选择患者所习惯的排尿体位。
检查中如变换体位，会引起膀胱压力零点的变化，分析结果时应予以注意。
2.嘱患者去除外裤、内裤，截石位躺在检查床上；准备一次性导尿包一个及各种测压管3. 碘伏常规消毒，2％利多卡因凝胶（1支）表面麻醉尿道置入膀胱测压导管；测定残余尿量；4.直肠测压管外套阴茎套经直肠置入；导管置入直肠10~15cm，球囊可用适量生理盐水充盈。
球囊内无气泡，如直肠已切除，可将测压管置入阴道、回肠或结肠造瘘内。
粪便标本采集的标准操作程序
粪便标本采集的标准操作程序【目的】指导粪便标本的正确采集。
【该SOP文件变动程序】本标准操作程序的变动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，请专业组长及科主任签字后生效。
【适用范围】1、了解消化道有无炎症、出血、寄生虫感染、恶性肿瘤等情况。
2、根据粪便的性状、组成、间接地判断胃肠、胰腺、肝胆系统的功能状况。
3、了解肠道正常菌群分布是否合理，检查粪便中有无致病菌以协助诊断肠道传染病。
【标本采集要求】1、容器收集和运送粪便标本的容器应洁净、无吸水、防漏渗，一次性使用；做细菌培养的容器应用无菌有盖的专用容器。
2、标本收集2.1常规检查标本：应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有粘液、脓、血等病变成分的标本。
外观无异常的粪便须从表面、深处及粪便多处取材，取3-5g粪便送检。
灌肠或服油类泻剂的粪便常因过稀且混有油滴等，而不适于做检查标本。
不能采集便盆或坐厕的粪便送检标本。
粪便标本应避免混有尿液、消毒剂及污水等杂物，以免破坏有形成分，使病原虫死亡和污染腐生性原虫。
2.2寄生虫检查标本血吸虫孵化毛蝴：标本应不少于30g，必要取时整份送检；如作检查寄生虫虫体及作虫卵计数时应采集24h粪便。
连续送检：避免肠道寄生虫和某些蠕虫有周期性排卵现象，未查到寄生虫和虫卵时，应连续送检3天，以免漏检。
检查蛲虫卵：须用透明薄膜拭子或玻璃纸拭子于深夜12时或清晨排便前，自肛门周围皱襞处拭取粪便，并立即送检。
检查痢疾阿米巴滋养体从脓血和稀软部分取材，立即送检；转送及检查时均需保温，以免滋养体因失去活动力而难以检出。
2.3无粪便排出而又必须检查时，可经直肠指诊或肠拭子取标本。
2.4粪便培养标本，用消毒棉签采取粪便的异常部分于无菌杯，也可用肠拭子蘸等渗盐水，由肛门插入直肠4-5cm处，轻轻转动，取出粪便少许，放入无菌培养试管中，盖好送验。
用肠拭子直接采取标本进行培养，可提高阳性率。
3、标本的标记标本容器必须有标记，包括：病人姓名特定编码（住院病人的病区床号），标本收集时间。
检验标本的采集
检验标本的采集检验标本的采集⼀、标本的正确采集标本采集必须符合2个条件，即必须满⾜检测结果正确性的各项要求和检测结果必须能真实地反映检验对象当前病情，避免⼲扰因素的存在。
⼆、标本的贮存标本采集后尽快送⾄实验室，若不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条件，如室温、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直⽴置于稳定、⼲燥、避光、密闭的环境中，避免振摇，以免标本遗洒或溶⾎影响检测结果。
三、标本的运送必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果⼀致。
四、标本的签收临床⼯作⼈员从⼝才采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室⼈员接收临床标本，均应按标准化要求进⾏，做到认真核对，包括标本来源、标本属性、检查项⽬、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出⼈员和标本接收⼈员都要做认真的记录并签字存档。
五、标本的处理1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。
2、如果取⾎后未尽快转送或分离⾎清、⾎浆，⾎清与⾎块簪时间接触可发⽣变化。
3、实验室接收标本后处理应注意事项：（1）、时间：实验室接收标本后应尽快予以分类和离⼼。
①、促凝标本应尽早处理，可在采⾎5-15分钟后离⼼；②抗凝标本可采⾎后⽴即离⼼；③⾮抗凝（⽆促凝）标本采⾎30-60分钟后离⼼；④抗凝全⾎标本（全⾎细胞分析、ESR等）不需要离⼼。
（2）、温度：⼀般标本为室温（最好是22-25℃）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持在2-8℃直到温度控制离⼼。
（3）、采⾎管放置：应管⼝（盖管塞）向上，保持垂直⽴位放置。
（4）、采⾎管必须封⼝：管塞移去后会使⾎PH改变，影响检测结果，封⼝可以减少污染、蒸发、喷洒和溢出等。
六、分析前的可变因素1、⽣物因素：可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测⽅法⽆关，分为可变的和固定的⽣物因素。
2、⼲扰因素：在收集和分析标本过程中，⼲扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。
七、标本采集的基本原则遵照医嘱采集各种标本均应按医嘱执⾏。
PCR实验室临床标本的采集、运送、接收程序
PCR实验室临床标本的采集、运送、接收程序1．目的：规范临床待检标本的正确采集、送检和处理。
2．适用范围：分子诊断室的所有临床检测标本。
3．负责人：操作人：4．程序：4．1 标本的采集4．1．1 标本由临床各科室接受过临床基因扩增检测有关标本采集、保存、运输知识培训的医护人员采集并送至实验室。
4．1．2标本采集要求a）血液标本：用2ml真空采集管或1.5ml高压灭菌离心管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送达实验室（HCV采用EDTA 抗凝的血浆）。
离心（检验单与标本一道）后用一次性吸管吸取血清或血浆加入经消毒的1.5ml的离心管中，编号。
b）痰标本：用带盖的无菌一次性塑料瓶收集清晨第一口痰标本送检。
（对于无痰或少痰的患者，可用45℃加温的100g/L NaCl 水溶液雾化吸入或改变体位以使痰液易于咳出；对于小儿可以轻压胸骨柄上方以诱导咳痰，用消毒棉拭子刺激喉部引起咳嗽反射，用棉拭子采集标本。
）标本在室温下保存不能超过24小时。
c）生殖道拭子：尿道或阴道分泌物由医生用专用取样拭子（灭菌，一次性）采集样本，及时送检。
采集生殖道拭子标本，要求男性病人在采样前2小时内不能排尿，采样时，将棉拭子伸入男性尿道及女性宫颈口2～3cm，转动一周以获得上皮细胞。
d）尿液：由病人自留尿液于无菌封闭的杯中送检。
e）脑脊液和胸腹水：由临床医生采集后放入消毒的试管中及时送检。
注意：所有上述用于临床标本采集的容器如试管或离心管，均应使用前高压灭菌和密封。
4．2 标本的运送标本采集后，密闭、标（贴）姓名，应尽可能快的送至检测实验室，如运送时间需2小时以上，必须用冰盒送至实验室。
标本中如加入了适当的稳定剂，如用于RNA测定加入4mol/L异硫氰酸胍盐（GITC）的血清（浆）标本和用于DNA测定的EDTA抗凝血等，则可在室温下运送或邮寄。
4．5 接收4．5．1严格对各类样本的查对和双签制度，对病房各样本及时进行验收，查对，不符合要求的样本一律退回，并有书面记录。
咽拭子标本采集操作流程及评分标准
咽拭子标本采集操作流程及评分标准咽拭子标本采集操作流程在进行咽拭子标本采集前，需要进行操作前准备。
护士需要穿戴整洁，洗手，并执行二级防护。
所需物品包括手消毒剂、防护服或一次性隔离衣、医用防护口罩（N95口罩）、帽子、面屏、一次性乳胶手套2副、靴套或鞋套、标本采集管2个、拭子2个、压舌板1个、黄色医疗垃圾桶。
在操作前需要进行评估。
护士需要核对患者的信息并询问患者是否进食。
然后解释采集的目的并取得患者的合作。
在操作步骤中，护士需要备齐用物并向患者解释采集的目的。
护士需要环视采集室并核对标本条形码。
然后执行手卫生并采集样本，最后再次核对患者与条码信息并完善标本送检单。
在操作过程中，护士需要注意环境整洁、安静、安全，光线明亮，患者卧位舒适、安全，适于操作。
采集时，需要嘱患者头向后仰，张口并发“啊”的声音，然后将拭子越过舌根，在被采集者两侧扁桃体稍微用力来回擦拭至少3次，然后再在咽后壁上下擦拭至少3次。
最后将拭子头浸入病毒保存液，并旋紧管帽。
以上是咽拭子标本采集的操作流程，需要护士认真执行每个步骤，确保采集的标本质量和患者的安全。
1.将采集管放入标本密封袋中，拉紧密封条，再放入4℃标本转运箱内。
2.询问患者感受并交代注意事项。
例如：“XXX，标本已经为您采完了，结果出来以后，我会马上通知您，谢谢您的配合，您现在可以返回病室了。
”患者回答：“好的，谢谢您！”3.使用75%酒精均匀喷洒标本密封袋外表面，盖好转运箱盖子，再用75%酒精均匀喷洒转运箱外表面。
4.执行手卫生，并规范脱卸防护用品。
报告：操作完毕。
5.标本转运时执行一级防护（穿工作服、医用外科口罩、戴手套、帽子），携带标本送检单将标本送至发热门诊标本收集室，核对无误在交接单上双签字。
6.交接后，用75%酒精均匀喷洒转运箱内、外表面，待干备用。
7.在指定区域执行手卫生，并规范脱卸防护用品。
咽拭子标本采集评分标准：姓名：科室：得分：程序规范项目：1.手消毒剂2.防护服或隔离衣3.医用防护口罩（N95口罩）4.帽子5.面屏6.一次性乳胶手套7.靴套或鞋套8.标本采集管2个9.拭子2个10.压舌板1个11.黄色医疗垃圾桶检查用物均在有效期内。
临床输血标本采集标准操作程序
临床输血标本采集标准操作程序1.目的明确临床输血标本采集操作规范，便于临床医护人员掌握临床输血标本采集的步骤及关键要求，正确采集输血标本，避免发生输血标本错误所导致的错误输血。
2.范围本文件的执行部门/科室为临床科室；执行人员主要包括临床医师、护士。
适用于我院临床输血标本的采集工作。
【注：由于《输血科标本采集手册》是输血医学实验室必备的SOP，为避免重复，本范文不提供标本采集手册的详细内容。
本文件仅规定标本采集的流程。
】3.术语、缩略语和定义无。
4.目标无输血标本采集错误发生。
5.职责、权限和相互关系5.1临床医师负责开具采集输血标本医嘱；与护士共同完成患者信息核对和血液标本采集。
5.2护士负责与医师共同完成患者信息核对和血液标本采集。
6.工作程序6.1临床医师提交输血标本采集的相关医嘱（1）在信息系统开具申请单，保存后提交医嘱，打印申请单。
（2）打印条码标签2份，1份竖贴于EDTA-2K抗凝的真空采血试管（5mL，深紫色管），1份贴于申请单对应位置。
6.2护士与医师共同确认试管条码标签信息正确，准备采集血液标本（1）查对医嘱，核对申请单、试管标签的患者信息（患者姓名、科室、床号、住院号），确认试管条码标签信息正确。
（2）持申请单、贴好标签的试管、采血物品至患者床旁。
（3）2人用2种及以上方式核对患者姓名，确认与申请单、试管标签的患者姓名一致，确认患者为申请输血的患者：①请患者自己说出名字（婴幼儿、昏迷、失语等特殊患者由其家属说出名字，无家属者除外）；②核对患者腕带信息。
（4）当面核对患者姓名、性别、年龄、住院号、科室、床号、血型及诊断，无误后方可采血。
6.3血液标本采集（1）协助患者取舒适卧位，置小垫枕，选择合适的静脉穿刺点，在穿刺点上方6cm处系止血带，消毒皮肤，嘱握拳。
（2）戴手套，按静脉穿刺法穿刺血管，见回血后用胶布固定针翼，接真空采血试管，按标准抽取血量。
（3）当针头出血速度变慢，由线装变为点滴状，即松开止血带，嘱松拳，迅速拔出针头，用干棉签按压穿刺点5min。
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：一、前言临床试验是评价药物安全性和有效性的重要手段，而标本采集及运输是临床试验的重要环节之一。
合理的标本采集和运输操作规程对于保证临床试验数据的准确性和可靠性至关重要。
为了规范标本采集及运输工作，提高临床试验的质量，特制定本标准操作规程。
二、术语定义1. 临床试验：指对人体进行的药物安全性和有效性评价的研究。
2. 标本：指用于生化检测、药物浓度测定等分析的生物组织或体液。
3. 采集者：指从受试者身上采集标本的人员。
4. 运输者：指将标本从采集点送至检验点的人员。
三、采集操作规程1. 采集前准备（1）采集者应接受相关培训，了解采集标本的目的、方法和注意事项。
（2）采集器具应事先消毒，并准备好采集所需的标本管、采血针等工具。
（3）标本采集应在合适的环境中进行，保证采集者和受试者的安全和舒适。
2. 采集过程（1）根据临床试验方案要求，确保采集正确的标本类型和数量。
（2）遵循标本采集的标准流程，依次进行手部消毒、标本采集、采集管标记等操作。
（3）采血时应注意选择适当的采血部位和针头，避免造成受试者不必要的疼痛和伤害。
3. 采集后处理（1）采集完毕后，采集者应及时将标本管密封并标记好受试者信息。
（2）遵守标本储存和运输的规定，确保标本的稳定性和完整性。
1. 运输前准备（1）运输者应对标本进行分类和包装，确保标本的准确性和完整性。
（2）运输前应检查标本信息是否完整，并与采样者信息进行核对。
2. 运输过程（1）运输标本应选择符合要求的运输工具和容器，避免标本泄漏和污染。
（2）在运输途中应避免标本受到振动和温度变化，保证标本的稳定性和质量。
（3）运输者应妥善保管标本，避免与其他物品混杂，并遵守相关安全规定。
3. 运输后处理（1）标本送达检验点后，应立即进行登记和接收，确保标本信息准确无误。
（2）对标本进行处理时应遵守相关规程，确保标本能够及时送检并得到准确分析。
标本采集查对制度流程
标本采集查对制度流程一、准备工作1.确定标本采集的目的和范围，明确需要采集的标本种类以及检测项目。
2.根据标本种类和检测项目，制定相应的标本采集操作指南，明确操作要点和注意事项。
3.配备必要的标本采集工具和耗材，确保采集过程中的卫生和安全。
二、标本采集1.标本采集前的准备：-根据需要采集的标本种类，提供相应的采集容器，如采血管、尿采集容器等。
-根据标本种类以及患者特殊情况，选择采集位置和采集方法，如静脉采血、动脉采血、尿液采集等。
2.标本采集操作过程：-核查患者身份信息，确认患者身份，并告知采集目的。
-与患者进行沟通和解释，让患者了解采集过程，并获得其同意。
-根据采集指南的要求，采集标本，确保操作标准化和规范化。
-操作完成后，做好采集容器的标识，填写相关信息，确保标本与患者信息一一对应。
-询问患者是否有不适和异常情况，并记录相关信息。
三、标本查对1.将采集的标本送往实验室，并在送检时告知实验室相关信息，如标本种类、采集时间等。
2.实验室收到标本后，进行查对操作：-核对标本与送检信息是否一致，确认标本是否符合要求。
-核对标本容器的标识和记录的信息，确保标本与患者信息一一对应。
-核对标本的数量和质量，确保标本数量和质量符合要求。
-若标本不符合要求，则及时通知采集人员重新采集或补采。
3.实验室对标本进行相关检测或分析，并记录结果和相关信息。
4.实验室将检测结果及时反馈给医生或相关人员。
四、质控措施1.建立标本采集查对制度，制定相应的操作规范和流程。
2.培训医务人员，提高采集操作的标准化和规范化水平。
3.定期进行标本采集查对的质量监控，及时发现和解决问题。
4.分析和总结标本采集过程中的问题和失误，制定改进措施，确保标本采集质量的持续改进。
以上是一份标本采集查对制度流程的简要描述，实际的流程和具体操作应根据医疗机构的实际情况和需求进行调整和完善。
标本采集查对制度的实施对于确保标本采集质量、准确性和可靠性非常重要，有助于提高临床诊断和治疗的准确性，提高医疗质量和安全。
尿标本采集的操作流程
尿标本采集的操作流程英文回答：Urine Specimen Collection Procedure.1. Patient preparation:The patient should be informed of the procedure and any special instructions, such as fasting or avoiding certain medications.The patient should be given a clean container and instructed to collect a midstream sample.2. Collection:The patient should wash their hands with soap and water.The patient should start urinating into the toilet.After the initial stream, the patient should collect the midstream urine into the container.The patient should stop urinating and place the lid on the container.3. Labeling:The container should be labeled with the patient's name, date of birth, and time of collection.Any special instructions, such as "clean catch" or "timed collection," should also be noted on the label.4. Storage and transportation:The urine specimen should be stored in arefrigerator or on ice until it can be transported to the laboratory.The specimen should be transported to the laboratorywithin 24 hours of collection.中文回答：尿液标本采集操作流程。
病原微生物标本的采集运送标准操作程序
SOP_15-5 病原微生物标本的采集运送标准操作程序一、病原微生物标本采集和运送基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。
2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。
3.在感染的急性期、使用抗生素前或伤口局部治疗前收集样本。
4.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
5.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。
7.采样后立即送检，最好在2h内。
为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。
8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）二、血培养标本采集和运送1.采集指征：临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效地抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。
2.采集方法：1.采血时机:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。
2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。
对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。
对发热原因不明者两次抽血间隔60min;必要时于24～48h后再抽血2次。
因为1次血培养不足以说明问题,且会遗漏阳性结果。
国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%,2次检出90%,3次检出99%。
国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。
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[目的]规范标本采集保证实验室检测前标本质量。
[范围]微生物实验室所有标本. [职责]采集、运送微生物标本的临床各科室工作人员. [标准操作程序]1.血液、骨髓标本 1.1采集指征对可疑血流感染患者未进行抗菌药物治疗前应及时进行血液培养可疑血流感染的患者出现以下一项或几项体征时应及时采集血培养： 1)发热(≥38℃)或低温(≤36℃)。
2)寒战。
3)白细胞增多(计数大于10,000X1 O9/L 特别有“核左移’‘未成熟的或带状的白细胞)。
4)粒细胞减少(成熟的多核白细胞小于1000X109/L)。
5)血小板减少。
6)皮肤粘膜出血。
7)昏迷。
8)多器官衰竭。
9)血压降低。
10)呼吸加快11)降钙素原升高(PCT) 12) C 反应蛋白升高(CRP)在评估可疑新生儿败血症时除发热或低烧夕卜很少培养出细菌应该补充尿液和脑脊液培养肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿(特别是2岁或以下的幼儿)一般出现于门诊,常伴有明显发热(>38.5 C)和白细胞增多(总数互20,OOOx 1 O 9/L )。
老年菌血症患者,可能不发热或低体温，如伴有身体不适肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要信号。
1.2血培养次数和采血时间采血应该尽量在使用抗菌药之前进行推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养以助于提高阳性检出率，区别病原菌与污染菌。
(一套血培养为一瓶需氧培养加一瓶厌氧培养。
一次静脉采血只能注入到1套培养瓶中)。
尽可能选用可中和或吸附抗菌药物的培养基。
临床对可疑菌血症患者应立即采集血培养标本，对间歇性寒战或发热可在寒战时或体温高峰到来之前0.5-1 h 进行采血。
除特殊情况之外（如怀疑细菌性心内膜炎），采集血培养后的2至5天内，无需重复采血培养。
1.3特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议: 1.3.1急性心内膜炎:对于可能的心内膜炎患者必须在经验使用抗菌药物前30min 之内抽取血培养起始采集3套血培养，如果在24h 内仍报告为阴性则继续采集2套血培养，全部培养一共为5套。
1.3.2亚急性心内膜炎:需在24h 之内连续从不同部位抽取3套血培养，间隔30-60min 。
如24h 内为阴性，则继续采集2套血培养，全部培养一共为5套。
1.3.3对于亚急性心内膜炎的评估皮肤消毒尤为重要，因为其主要的病原菌为皮肤定植菌如凝固酶阴性葡萄球菌。
因此，血培养必须取自外周静脉而非留置的静脉导管。
取自导管的血培养会伴有很高的污染风险从而导致错误的心内膜炎的结论。
建议采用正确的皮肤消毒，从不同的外周静脉部位分别采集血培养不能从留置的导管采血。
1.3.4急性脓毒症:10min 内从不同的部位采集2-3套血培养。
1.3.5可疑菌血症但血培养持续阴性，应改变血培养方法如延长培养时间或增加特殊培养基以获得罕见的或苛养的微生物(真菌、结核菌等)。
1.3.6不明原因发热，如隐性脓肿、伤寒热和波浪热从不同体位先采集2一3套血标本24-36h 后估计体温升高之前(通常下午)再采集2套以上 4皮肤消毒剂:1.4.1推荐使用碘酊、次氯酸和洗必太或碘伏。
1.4.2碘酊、次氯酸和洗必太的消毒效果要优于碘伏。
1.4.3消毒剂需要有足够的作用时间以保证消毒效果 (碘酊作用30s;碘伏作用1.5--2 min)。
1.4.4洗必泰的作用时间和碘酊一样但是没有过敏反应，因此不必擦去，但不能用于小于2个月的婴儿。
1.5静脉穿刺点皮肤消毒程序:1.5.1 70%酒精消毒皮肤(以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)，作用60秒;1.5.2用碘伏消毒皮肤(以采血点为中心螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)作用1.5-2min 或用碘酊消毒皮肤作用30秒；1.5.3再用70%酒精脱碘(以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)； 1.5.4静脉穿刺采血。
注:血液培养须特别注意消毒因许多微生物，尤其葡萄球菌属通常存在皮肤表面或近表层处，易污染血培养标本。
1.6培养瓶消毒程序:用70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞(不能用含碘消毒剂)作用60s。
用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面残余液体然后注入血液1.7采血量:成年患者推荐的采血量为每套不少于10ml每瓶不少于5m10婴幼儿患者推荐的采血量，每瓶不少于2m1。
1.8培养瓶推荐使用商品化的培养基。
使用添加抗菌药物吸附剂(如树脂或活性碳)的血培养瓶有助于提高已接受抗菌药物治疗患者血培养的检出率但同时也会增加污染菌的检出率。
9静脉穿刺和培养瓶接种程序:●穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动可戴乳胶手套固定静脉，不可接触刺点。
●骨髓标本侧的准备同外科切口。
●用注射器无菌穿刺取血或骨髓后直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺，应换针头)或严格按厂商推荐的方法采血。
●血标本接种到血培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固立即送检。
1.10血培养瓶标识标识内容应包括病人姓名、病员号、标本种类、采集时间注病人标识不可覆盖在血液培养瓶的条形码上。
1.11标本的运送血培养标本应按要求尽快送往实验室，不得超过2h如无法及时送检，血培养标本需室温(20-25度)保存，切勿冷藏1.12生物安全防护参见《H S-J丫一G L-XJ-302生物防护的安全程序》。
2.尿液标本2.1采集指征1)有典型的尿道刺激症状2)肉眼脓尿或血尿3)尿常规检查表现为白细胞或亚硝酸盐阳性(几个+号)4)不明原因的发热无其他局部症状5)留置导尿管时间超过48小时的患者出现发热6)膀胱排空功能受损7)泌尿系统疾病手术前。
2.2采集方法标本采集应力争在未使用抗菌药物之前，注意避免消毒剂污染标本。
●清洁中段尿:最好留取早晨清洁中段尿标本嘱咐患者睡前少饮水，清晨起床后到医院由专业人员指导下采集中段尿标本。
尿标本消毒采集程序:◆女性中段尿的采集方法:1)用肥皂水完全清洗尿道区域，用湿纱布垫漂洗。
2)分开阴唇，开始排泄3)排除前段尿后，不停止尿流，采集中段尿。
◆男性中段尿的采集方法:1)用肥皂水清洗阴茎头，用湿纱布垫漂洗。
2)回缩包皮开始排泄。
3)排除前段尿后.不停止尿流，采集中段尿●耻骨上膀肤穿刺:使用无菌注射器直接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀肤吸取尿液。
●直接导尿:按导尿消毒程序消毒后用导尿管直接经尿道插入膀肤获取尿液。
●留置导尿管收集尿液:利用留置管采集标本时应先夹住导尿管1-2}J、时后以75%酒精消毒导尿管外部，按无菌操作方法用注射器穿刺。
导尿管吸取尿液注意不能从尿液收集袋中采集尿液。
2.3采集量5~10m12.4容器无菌、带螺旋盖、透明塑料容器。
2.5标本容器标识标识内容应包括病人姓名、病员号、标本种类。
2.6标本运送标本采集后应立即盖紧，防止泄漏或容器外部留有残留物。
及时送检室温保存下不得超过2h否则应置于40C冰箱保存保存时间不得超过24h02.7注直接导尿可能导致尿道细菌进入膀肤.增加医源性感染的危险。
2.8生物安全防护参见《HS-JY一G L-XJ-302生物防护的安全程序》。
3.脑脊液标本3.1采集指征不明原因引起的头痛、脑膜刺激征象、颈部僵直、脑神经病理征象、发热、体温过低、易受刺激等临床症状此外，其他实验室检查有发现:脑脊液白细胞增加、蛋白质增加且葡萄糖减少等。
3.2采集时间怀疑中枢神经系统感染时应立即采集标本最好在抗菌药物使用之前3.3采集方法按腰椎穿刺操作规程，采集约3-5 m I脑脊液于3支无菌试管中，每支试管至少1-2m1，立即将第2管(或第1管)送至实验室(建议床边直接接种血培养瓶包括需氧血培养瓶和厌氧血培养瓶，增菌培养)。
做脑脊液培养时，建议同时做血培养。
3.4采集量至少1-2m1。
如进行抗酸染色，至少2ml。
3.5运送容器无菌加盖螺口试管。
3.6标本容器标识应包括病人姓名、病员号、标本种类、检验项目、采集时间。
3.7标本运送采集后立即加盖防止泄漏或容器外部留有残留物。
常温立即送检实验室收到标本后应立即接种。
脑脊液标本送检的最佳时间为15min内;如果送检时间超过1h，则会影响结果须向主任或医疗主管汇报由医疗主管或主任向临床医生联系并说明由于标本延时结果可能受到影响。
在结果报告时在备注处注明此情况。
3.8注某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡因此，标本应立即送检并且保温(禁止放冰箱因脑膜炎奈瑟菌遇冷易死亡)。
3.9生物安全防护参见《H S-JY-G L-XJ-302生物防护的安全程序》。
4.穿刺液标本4.1培养采集指征4.1.1胆汁:急性胆囊炎、急性重症胆管炎、伴有腹痛、黄疽、墨菲征阳性、伴有恶心、呕吐和发热尿少色黄，伴有中毒或休克等症状。
4.1.2胸水:结核性胸膜炎、细菌性肺炎引起的胸膜炎伴有胸痛、发热胸腔积液外观混浊、乳糜性、血性或脓性。
4.1.3腹水:原发性或继发性腹膜炎伴有腹痛、呕吐、腹肌紧张、肠鸣音减弱或消失。
4.1.4心包积液:结核性、风湿性、化脓性、细菌性心包炎。
4.1.5关节腔积液:化脓性关节炎、关节肿胀、关节周围肌肉发生保护性痉挛4.2采集时间:怀疑感染存在应尽早采集标本一般在患者使用抗菌药物之前或停用药物后1-2日采集。
4.3采集方法:4.3.1胆汁:胆汁的采集方法有十二指肠引流法(以“B”管—来自胆囊做细菌培养意义较大)、胆囊穿刺法及手术采取三种方法。
由临床医生采取，约2m1左右放入无菌密封容器立即送检。
4.3.2其它穿刺液:按穿刺消毒规范，消毒皮肤后.由临床医生穿刺采集标本(2m1左右)，装入无菌密封容器立即送检。
4.4采集容器无菌加盖螺口试管。
4.5采集量:1一5m1（慢性非卧床腹膜透析有关的腹膜炎时，采集至少50m1的量可以提高检出率)。
4.6标本容器标识应包括病人姓名、病员号、标本种类、检验项目、采集时间。
4.7标本运送采集后立即加盖，防止泄漏或容器外部留有残留物。
保温立即送检保证在≤1h内送至实验室，实验室收到标本后应立即接种。
4.8生物安全防护参见《HS-JY-G L-XJ-302生物防护的安全程序》。
5.粪便样本5.1采集指征:当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本进行细菌培养●粪便涂片镜检白细胞>5个//HP●体温>38.5 C●重症腹泻●血便或便中有脓液●未经杭菌药物治疗的持续性腹泻病人●来自肠道传染病疫区的患者5.2采集时间尽可能在发病早期和使用抗菌药物之前采集。
在不同的时间采集2-3个标本可以提高致病菌的分离率。
5.3采集方法:●自然排便采集标本时取有脓血、粘液、组织碎片部份的粪便1-3g水样便则取絮状物一般取1 -3ml直接装入运送培养基中送检。
●直肠拭子采集粪便标本:先以肥皂和水将肛门周围洗净然后用经无菌盐水湿润的棉拭子插入肛门超越肛门括约肌约2-3 c m与直肠粘膜表面接触轻轻旋转必须将棉拭子置于运送。