衣霉素抑制细胞周期蛋白D1表达而强化TRAIL诱发凋亡的实验研究

合集下载

顺铂诱导肝癌细胞凋亡的实验研究

顺铂诱导肝癌细胞凋亡的实验研究

顺铂诱导肝癌细胞凋亡的实验研究细胞凋亡作为生物细胞对内外信号刺激的一种反应,在正常细胞的发育过程中精确调控细胞的死亡过程。

肿瘤的发生与正常的细胞凋亡过程被抑制,破坏了细胞增殖与凋亡之间的平衡有一定关系。

顺铂因其可抑制癌细胞的DNA复制过程,抑制癌细胞分裂,而被广泛应用于临床治疗肿瘤。

我们观察了顺铂对肝癌细胞株HepG2凋亡的诱导作用,从而探讨其作用机制。

1 材料与方法1.1、药品和试剂:RPMI-1640培养基(购自Gibco公司),胎牛血清(coring公司),顺铂(Gibco公司),Annexin-V/PI试剂(Invitrogen公司)。

倒置显微镜(尼康TS100F)流式细胞仪(Beckman Coulter公司)。

1.2 方法1.2.1 细胞系及培养:人肝癌HepG2细胞株引自大连医科大学中心实验室。

用含10%胎牛牛血清、100 u/mL 青霉素、100 mg/L 链霉素的RPMI-1640 培养液, 在37 ℃、5% CO2 条件下作常规悬浮培养,每2-3天换液传代培养。

1.2.2 细胞培养及药物处理:取对数生长期细胞,细胞用0.25%胰蛋白酶消化后,配成5×105/L的细胞悬液分别接种于24孔板中培养,24 h细胞贴壁后,弃上清。

实验组分别加入浓度为200μg/mL,100μg/mL,50μg/mL,25μg/mL,12.5μg/mL的顺铂处理细胞,对照组不加药,另设空白对照组(只有培养基,无细胞),每组设置复孔,全湿条件下,37℃、5% CO2 培养箱中培养。

1.2.3 细胞形态学观察:取对数生长期细胞, 以每孔5×105个接种于6孔板中,24 h细胞贴壁后,弃上清。

分别加入不同浓度顺铂处理细胞,每6 h于倒置显微镜下观察活体细胞形态。

1.2.4 流式细胞仪分析细胞凋亡:实验组,对照组和空白对照组细胞培养24h,48h后用0.25%胰蛋白酶消化,PBS漂洗两次,调整细胞浓度至106/mL,取100μl细胞悬液,加入5μl Annexin-V/FITC 10μl及浓度为50μg/mL的PI液10μl,室温避光孵育15分钟后,加入PBS液400μl,用流式细胞仪进行流式细胞术定量检测。

pd-1原理机制的研究实验

pd-1原理机制的研究实验

pd-1原理机制的研究实验PD-1是一种膜表面免疫共受体,其在免疫调节过程中起着重要的作用。

PD-1主要通过与其配体PD-L1相互作用,调节T细胞活化状态和非典型T细胞的功能。

PD-L1生物学分布广泛,可以被T细胞、B细胞、巨噬细胞、树突状细胞等多种免疫细胞表达。

研究表明PD-1与PD-L1之间的相互作用能够抑制T细胞的活化和增殖,从而减弱免疫应答。

因此,PD-1抑制剂已成为治疗多种癌症的重要手段之一。

PD-1与PD-L1在参与免疫调节过程中的作用机制目前还不清楚,但研究表明,PD-1与PD-L1在细胞膜表面相互结合后,通过调节一系列下游信号途径来实现免疫调节的作用。

为研究PD-1与PD-L1的作用机制,目前主要采用以下实验方法:1. PD-1或PD-L1单克隆抗体中和实验该实验方法是通过使用PD-1或PD-L1单克隆抗体,将PD-1或PD-L1与其配体相互作用被中和,从而探究其对T细胞活化和增殖的影响。

该方法的优点是操作简便,但不仅仅能够研究PD-1与PD-L1相互作用的机制,同时也包括其他免疫共受体相互作用的影响。

2. 免疫同沉淀实验免疫同沉淀实验是通过将目标蛋白与对应的抗体结合,然后用其它蛋白对待反应体系进行反应,在相互作用的蛋白沉淀出来后进行识别,用于探究PD-1与PD-L1相互作用的蛋白质结构和作用机制等方面。

3. 细胞培养实验细胞培养实验是将人类T淋巴细胞与微生物、肿瘤细胞等免疫活性细胞培养在一起,使用PD-1单抗、PD-L1单抗进行免疫治疗,然后检测细胞活性和增殖状态,从而探究PD-1与PD-L1的相互作用对T细胞免疫活性的影响。

该实验可模拟生物体内的免疫反应,而且可以用于研究PD-1抑制剂的作用机制。

总之,各种实验方法的发展,为研究PD-1抑制剂的作用机制提供了充分的手段和途径。

未来,通过逐步深入细胞水平的研究,我们可以更好地理解PD-1与PD-L1的作用机制,以及相关疾病的发病机制,在药物创新和开发中发挥重要作用。

p53蛋白在细胞凋亡中的作用机制研究共3篇

p53蛋白在细胞凋亡中的作用机制研究共3篇

p53蛋白在细胞凋亡中的作用机制研究共3篇p53蛋白在细胞凋亡中的作用机制研究1p53蛋白在细胞凋亡中的作用机制研究细胞凋亡是一种基本的生物学过程,它对细胞分化、组织发育、免疫防御等生理功能具有十分重要的作用。

p53蛋白作为细胞凋亡的重要调节因子,被广泛研究,其作用机制在细胞凋亡过程中起着关键性的调控作用。

本文从p53的基本结构及功能出发,介绍了其在细胞凋亡调控中的作用机制。

p53是一个非常重要的转录因子,在细胞的增殖、分化和凋亡过程中发挥着关键作用。

它主要由四个域组成,即N末端域、可变域、核心域和C末端域。

其中,核心域由序列比较保守的DNA结合域和与DNA结合有关的顺式作用区块(SEQ)构成。

p53基因突变与肿瘤的形成和发展密切相关,它拥有对DNA的破坏性修复和转录调控作用,因此在维持细胞基本稳态的过程中起着重要的调控作用。

在细胞凋亡过程中,p53通过不同的途径,参与调控DNA损伤、细胞周期及细胞凋亡等基本生理活动。

(一)p53在细胞凋亡调控中的作用机制1. p53与DNA双链断裂的修复机制p53在细胞凋亡中通过激活DNA损伤响应基因,参与DNA修复和损伤监测,从而达到细胞自我修复的目的。

p53修复DNA双链断裂的方式主要有三种:通过启动核苷酸切割酶1(NUC1)活化于Deoxycytidine kinase(DCK)的损失,从而激活合成能力低下的核酸合成酶、通过诱导Noxa,调控细胞周期检查点G1阶段,抑制细胞的有性复制。

2. p53的调节作用p53可以通过上调或下调细胞自身的分泌刺激分子来参与细胞凋亡调控,如上调自身表达,强化p53的转录调控作用;下调瘤基因BNP,增强细胞凋亡。

此外,p53还通过增强ATM的磷酸化活性及ATM介导的细胞周期调控突触家族和抑制性分子p21的表达,达到了诱导细胞凋亡的目的。

3. p53在细胞凋亡中的负反馈调控作用p53表达上调会引起DNA损伤,同时还可能起到细胞凋亡的抑制作用。

人类结肠癌细胞的抗增殖活性及其相关分子机理的探讨

人类结肠癌细胞的抗增殖活性及其相关分子机理的探讨

小鼠与摘取下来的肿瘤
小鼠体重的变化
肿瘤体积的变化
与 对 照 相 比 的 肿 瘤 抑 制 率
对肿瘤组织进行免疫组化分析
用抗Ki-67抗体对肿瘤组织进行免疫组化分析以检 测癌细胞的增殖情况。Ki-67是一种与细胞周期相 关的增殖细胞核抗原(PCNA)。 Ki-67是目前 多种恶性肿瘤尤其是乳腺癌研究中的热门生物标 志物,可以通过对Ki-67的检测了解恶性肿瘤的细 胞增殖活性。
3.将癌细胞移植到无胸腺小鼠身 上使其长成肿瘤,分析8e和阿 霉素对肿瘤生长的抑制效果,并 对肿瘤组织进行免疫组化分析
4.提取第2步得到的癌细胞中与细胞 周期和信号转导相关的蛋白,并用 Western blot技术分析这些蛋白质 的表达水平,以推测8e的抑癌机理
1.Introduction
• 背景:结肠癌是世界范围内的头号癌症杀手之一,每年有大约一百万 的新增病例。尽管全球结肠癌的发病率在逐步下降,但近年来由于饮 食习惯的西化,亚洲国家结肠癌患者数目显着上升。因此仍有必要开 发新型的抗结肠癌药物。 • 阿霉素(Doxorubicin) ,一种蒽环类化合物,是临床上用来作为治疗 癌症的药物。
2.Methods and results
• 2.1化学试剂(Chemicals)(略)
• 2.2合成8e (Synthesis of compound 8e):按已发 表的文献提供的化学合成方法人工合成。 • 2.3癌细胞的培养(Cell culture):人结肠癌细胞 HCL116由美国模式培养物保藏所(ATCC)提供,用加 富的RPMI1640培养基培养,该培养基另外加入了10%热 灭活的胎牛血清(FBS),100单位/mL青霉素(盘尼西 林),100ug/mL链霉素,250ng/mL两性霉素B。置于 含5% CO2的控湿氛围中培养。

沉默FSTL1减少衣霉素诱导软骨细胞内质网应激及细胞凋亡

沉默FSTL1减少衣霉素诱导软骨细胞内质网应激及细胞凋亡
Abstract:0bjective To investigate the effects of specific silencing of follistatin-like protein 1(FSTL1)on tunica-
mycin—induced endoplasmic reticulum stress and apoptosis in chondrocytes. M ethods Rabbit knee articular cartilage was collected.Chondrocytes were harvested and cultured.The ceils were divided into control group,tuni— camycin group,tunicamycin+siRNA —FSTL1 group and tunicamycin+siRNA —NC group.The cell proliferation was detected by MTI"assay.Cell apoptosis was detected by flow cytom etry.The expression of FSTLI, Bcl一2 and Bax genes was detected by real·time fluorescence quantitative polym erase chain reaction.The expression of PERK , p-PERK, GRP78, ATF4, CHOP, Cal, elF2oL and p-eIF2ot protein was detected by W estern blot.Results Compared with the tunicamycin group and tunicam ycin+siRNA—NC group,the cell proliferation abilities in tunica—

阿霉素诱导Tca8113细胞凋亡及其分子机制的研究

阿霉素诱导Tca8113细胞凋亡及其分子机制的研究

阿霉素诱导Tca8113细胞凋亡及其分子机制的研究胡晓文;黄洪章【期刊名称】《中山大学学报:医学科学版》【年(卷),期】2008(0)S2【摘要】【目的】观察阿霉素诱导Tca8113细胞凋亡及其过程中某些凋亡相关分子表达的变化,探讨其诱导凋亡作用的分子机制。

【方法】采用MTT法检测阿霉素对Tca8113细胞的增殖作用;以光镜、荧光纤维镜、流式细胞仪和Annexin V-FITC标记法检测细胞凋亡;以蛋白印迹法分析阿霉素对Bcl-2、Bax和Survivin蛋白表达的影响。

【结果】阿霉素以剂量依赖方式抑制Tca8113细胞增殖;光镜及荧光显微镜下可见明显凋亡细胞;流式细胞仪检测显示细胞停滞于G1或S期,有明显凋亡峰出现;Annexin V-FITC标记法定量检测证实阿霉素可诱导细胞凋亡发生;蛋白印迹检测表明阿霉素可使Bax表达升高,Bcl-2和Survivin表达下降。

【结论】阿霉素可显著抑制Tca8113细胞增殖,可通过调节Bcl-2、Bax和Survivin蛋白表达来实现致凋亡作用。

【总页数】3页(P15-17)【关键词】阿霉素;人舌癌Tca8113细胞;凋亡;凋亡基因【作者】胡晓文;黄洪章【作者单位】中山大学光华口腔医学院∥附属口腔医院种植科;中山大学光华口腔医学院∥附属口腔医院口腔颌面外科【正文语种】中文【中图分类】R96【相关文献】1.阿霉素增强TRAIL诱导的人骨髓瘤细胞系KM3细胞凋亡的分子机制研究 [J], 王华芳;陈朝晖;孙春艳;胡豫2.Raji细胞抵抗阿霉素诱导细胞凋亡分子机制的实验研究 [J], 田方;李春海3.芍药苷对阿霉素诱导心肌细胞凋亡的保护作用及机制研究 [J], 谭娜;范旰;邵庆瑞;陈清洁;李健哲4.尖吻蝮蛇毒抑瘤组分I通过PERK/eIF2α通路诱导Tca8113细胞凋亡的机制研究 [J], 王振杰;柴琳;徐冉;张根葆5.下调miR-199a-5p对阿霉素诱导的心肌细胞凋亡的影响和机制研究 [J], 李念;阳霞;李琼;孝俊因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

克霉唑诱导人结肠癌细胞


, 收集细胞样品, IJK
洗 ; 次, ; => 6-. 冷乙醇 ?7 固定 ;? @, ;-- !H < => (G9K4%& 1 J+4P5& $34T3&U5&V SOG 酶 "67 作用 "- =3&, 激发波长 W3+XV 9GV YKG , 流式细胞仪测定荧光强度, 每次测定至少 #-! 个细胞。采用 9+>>Z[+UP 分 ?EE&=, 析软件处理分析,细胞周期分析时,低于 2# 期二倍 体 $OG 含量的细胞为凋亡细胞。
细胞器不发达。 ??@##A 细胞经 "H 比大, 约为 #T U, 随药物作用时间的推移, 可观 !804 L @ ?@7 处理后, 察到一系列凋亡的特征性形态改变。 ?@7 作用 #N C, 核内染色质边集, 沿核膜内侧分布, 核膜皱摺内陷。 核染色 细胞核质比降低, 约为 HT H!。 ?@7 作用 NP C, 质更加致密, 浓缩分块, 或呈新月形聚集于核膜下, 胞质中有空泡形成。至 R# C,可见凋亡细胞表面出 泡, 最终脱落形成膜包裹的凋亡小体。 E 图 # I !" # 扫描电镜下凋亡细胞超微结构改变 对照组 ??@##A 细胞呈长梭形, 表面不光滑, 有 丰富的微绒毛,并伸出许多形态各异的伪足。 "H 微绒毛 !804 L @ ?@7 诱导后 ??@##A 细胞收缩变圆, 显著减少, 伪足消失, 细胞表面突起出泡, 逐渐与正
8
经 ;C 8. 戊二醛固定, 脱水, #. 锇酸后固定 "- =3&, 乙酸异戊酯置换, 离子溅射仪喷金 9:; 临界点干燥, 后, 日立 K’?8- 扫描电镜下观察并拍照。 !" & 脱氧核苷酸末端转移酶原位标记 ’ ()*+, 法检测凋亡细胞 用 "- !=5> < A 9AB 作用于盖片培养的 99A ;;F 细胞不同时间 1 ;?、 用华美公司原位细胞 ?E、 6; @ , , 凋亡检测试剂盒处理后, 显微镜下观察并拍照。 !" . 流式细胞术检测 /*0 含量 采用 O345>+PP3 等的方法

药物对细胞增殖的影响

药物对细胞增殖的影响细胞增殖是维持生物体正常发育和组织修复的重要过程。

药物作为干预生物体的重要手段之一,对细胞增殖也具有显著的影响。

本文将探讨药物对细胞增殖的影响机制和应用前景。

一、药物对细胞周期的调控细胞周期是细胞增殖的重要环节,药物可以通过不同机制调控细胞周期,从而影响细胞增殖。

首先,一些药物可以干扰细胞周期的调控蛋白,如细胞周期蛋白依赖性激酶(Cyclin-dependent kinase,CDK)及其配体。

通过抑制或激活这些蛋白的活性,药物可以调节细胞周期过程中的不同阶段,从而影响细胞增殖速度。

其次,药物还可以通过调节细胞周期的相关信号通路,如PI3K/AKT、MAPK等信号通路,进一步改变细胞增殖的速度和幅度。

二、药物对DNA合成的影响DNA合成是细胞增殖不可或缺的过程,药物可以通过多种方式影响DNA的合成,从而抑制或促进细胞增殖。

一些抗肿瘤药物,如紫杉醇(Paclitaxel)和顺铂(Cisplatin)等,可以与DNA结合,形成可交联物或损伤DNA结构,从而导致DNA合成的阻断和损伤。

而一些促进细胞增殖的药物,如生长因子和激素类药物,则可以通过增加DNA 合成的速率和效率,进而促进细胞增殖。

三、药物对细胞凋亡的调节细胞凋亡是调节细胞增殖和维持组织稳态的重要途径。

药物可以通过直接调节凋亡相关信号通路,如调控Bcl-2家族蛋白的表达和活性,从而诱导或抑制细胞凋亡。

一些抗肿瘤药物通过促进细胞的凋亡而发挥治疗作用,而一些细胞增殖因子的拮抗物则通过抑制细胞凋亡来促进细胞增殖。

四、药物在肿瘤治疗中的应用肿瘤治疗是药物对细胞增殖影响最为广泛和深入的领域之一。

目前,肿瘤治疗药物主要包括化疗药物、靶向药物和免疫治疗药物等。

这些药物通过不同的机制作用于癌细胞,抑制其增殖和扩散。

化疗药物多通过干扰DNA合成和细胞周期,诱导癌细胞凋亡来发挥治疗作用。

靶向药物则通过特异性抑制肿瘤细胞增殖和信号传导通路来选择性杀伤癌细胞。

常见的细胞凋亡诱导剂和抑制剂

常见的细胞凋亡诱导剂和抑制剂关键信息1、细胞凋亡诱导剂的种类化学药物类生物分子类物理因素类2、细胞凋亡抑制剂的种类蛋白质抑制剂小分子抑制剂3、诱导剂和抑制剂的作用机制对细胞信号通路的影响对基因表达的调控4、应用领域癌症治疗神经退行性疾病研究免疫学研究11 细胞凋亡诱导剂的种类111 化学药物类许多化学药物已被证实具有诱导细胞凋亡的作用。

其中,化疗药物如顺铂、阿霉素等,通过损伤 DNA 或干扰细胞的代谢过程,触发细胞凋亡程序。

此外,一些生物碱类化合物,如长春新碱、紫杉醇等,通过干扰微管的聚合和解聚,影响细胞的有丝分裂,从而诱导细胞凋亡。

112 生物分子类细胞因子如肿瘤坏死因子(TNF)及其相关配体,能够与细胞表面的受体结合,启动细胞内的凋亡信号传导。

此外,一些生长因子的缺乏或抑制,如胰岛素样生长因子 1(IGF-1)的剥夺,也可导致细胞凋亡。

113 物理因素类紫外线辐射、γ 射线等电离辐射能够直接损伤细胞的 DNA,激活细胞内的 DNA 损伤应答机制,诱导细胞凋亡。

高温、低温等极端温度条件也可能对细胞造成不可逆的损伤,引发细胞凋亡。

12 细胞凋亡抑制剂的种类121 蛋白质抑制剂Bcl-2 家族中的抗凋亡成员,如 Bcl-2 和 BclxL,通过抑制线粒体外膜的通透性,阻止细胞色素 C 的释放,从而抑制细胞凋亡的发生。

此外,凋亡抑制蛋白(IAPs)家族成员,如 XIAP 和 survivin,能够直接抑制凋亡蛋白酶(caspases)的活性,发挥抗凋亡作用。

122 小分子抑制剂一些小分子化合物,如 FLIP 类似物、SMAC 模拟物等,通过干扰细胞内的凋亡调控蛋白的功能,发挥抑制细胞凋亡的作用。

13 诱导剂和抑制剂的作用机制131 对细胞信号通路的影响细胞凋亡诱导剂通常激活细胞内的死亡受体通路或线粒体通路。

死亡受体通路中,TNF 受体等与相应配体结合后,通过募集死亡结构域相关蛋白,激活下游的 caspase 级联反应。

地塞米松诱导结肠癌细胞凋亡的实验研究


培养基 ,加入含 01 2 mg/ mL M T T 的 DM EM 培养基
200μL ,在培养箱内继续孵育 4 h ,用 DMSO 150 μL
置换含 M T T 的细胞培养基 ,室温下震荡 15 min ,待紫
色结晶完全溶解后 ,用酶标仪测定 490 nm 波长吸光
度值 (A 值) 。重复 3 次 。
·580 ·
周进明 ,等 地塞米松诱导结肠癌细胞凋亡的实验研究
地塞米松诱导结肠癌细胞凋亡的实验研究
实验研究¬
周进明1 , 梁后杰1 , 彭秋平1 , 钟大平1 , 边志衡1 , 何颖2
1. 重庆第三军医大学西南医院肿瘤科 ,重庆 400038 2. 解放军第 521 医院 ,吉林 白城 137001
中华肿瘤防治杂志 2007 年 4 月第 14 卷第 8 期 C HIN J CANCER PREV TREA T ,Ap ril 2007 ,Vol . 14 No . 8
·581 ·
1 材料与方法
1. 1 材料
逆转录酶、TRIzol 试剂和 DEPC 购自 Invitrogen ,
M TT 和地塞米松购自 Sigma 公司 ,SP29000 试剂盒购自
导肿瘤细胞凋亡则是治疗肿瘤的新思路 。糖皮质激素 (glucocorticoid , GC) 通过与其特异性受体2糖皮质激 素受体 ( glucocorticoid receptor , GR) 结合 ,不仅对未 成熟胸腺细胞 ,而且对急性白血病细胞 、淋巴瘤细胞和 骨髓瘤细胞等均有促凋亡作用 ,诱发凋亡正是应用糖 皮质激素治疗白血病的分子生物学基础 。我们通过研 究 GR 在 结 肠 癌 细 胞 株 中 的 表 达 , 观 察 地 塞 米 松 (Dex) 在体外对结肠癌细胞株的增殖抑制和凋亡诱导 作用 ,探讨激素在结肠癌化疗中应用的可行性 。
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

衣霉素抑制细胞周期蛋白D1表达而强化TRAIL诱发凋亡的实验研究

解继胜;张海燕;都镇先;邓娓娓;王华芹 【摘 要】目的 探讨肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TRAlL)联合衣霉素促甲状腺未分化癌细胞株凋亡的作用机制.方法 通过单用TRAIL(TRAIL组)、衣霉素(衣霉素组)、联合用药组(TRAIL+衣霉素组)对多种甲状腺未分化癌细胞株进行作用,并以正常甲状腺上皮细胞株HTori-3作对照,利用流式细胞仪分析各组细胞周期变化及各组细胞凋亡状态;采用蛋白印迹杂交法检测衣霉素处理前后各组细胞细胞周期蛋白D1蛋白表达水平;利用微小RNA干扰技术及质粒转染技术探讨细胞周期蛋白D1对依霉素增敏TRAIL效应的影响.结果 TRAIL与衣霉素单用对甲状腺癌细胞均无明显杀伤作用,最高细胞凋亡率分别为10.68%、10.14%;联合用药组细胞凋亡率最大达54.77%,与TRAIL组和衣霉素组相比,具有统计学差异(P<0.05).与对照组相比,衣霉素组和联合用药组细胞周期蛋白D1水平明显降低.微小RNA干扰可以特异性下调细胞周期蛋白D1进而增加ARO细胞对TRAIL的敏感性;而细胞周期蛋白D1过表达ARO细胞中细胞凋亡率降低22.7%.结论 在体外单用TRAIL对甲状腺癌细胞增殖无明显抑制作用,衣霉素明显增加肿瘤细胞对TRAIL敏感性,其增敏机制至少部分与下调细胞周期蛋白D1水平有关.

【期刊名称】《中国医科大学学报》 【年(卷),期】2010(039)007 【总页数】4页(P521-524) 【关键词】肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体;衣霉素;甲状腺肿瘤;细胞周期蛋白D1 【作 者】解继胜;张海燕;都镇先;邓娓娓;王华芹 【作者单位】右江民族医学院,组织胚胎学教研室,广西,百色,533000;中国医科大学,附属第一医院老年病干诊科;中国医科大学,附属第一医院内分泌科,沈阳,110001;中国医科大学,附属第一医院老年病干诊科;中国医科大学,基础医学院生化与分子生物学教研室,沈阳,110001

【正文语种】中 文 【中图分类】R736.1

近来研究显示[1]肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand,TRAIL)能诱导许多肿瘤细胞凋亡,而对正常细胞基本没有影响,因而可能成为很有前景的抗癌药。但甲状腺恶性肿瘤细胞对TRAIL的敏感性具有相当的异质性[2,3]。因此,TRAIL 凋亡诱导增敏剂的发现将能有效扩展TRAIL的肿瘤治疗效应。衣霉素是一种天然抗生素,阻止细胞内N端连接寡糖类生物合成的第一步,曾用于TRAIL自发性耐药前列腺癌和获得性耐药大肠癌治疗[4],但其增加TRAIL抗肿瘤作用分子机制尚未阐明。为此,本研究以人甲状腺未分化癌细胞为对象,通过TRAIL单用及联用衣霉素,探讨衣霉素对TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡的增敏效应及其机制。 1 材料与方法 1.1 细胞株和主要试剂 甲状腺未分化癌ARO细胞株和正常甲状腺上皮细胞株HTori-3分别由美国标准生物品收藏中心和欧洲标准生物品收藏中心提供。衣霉素和可溶性TRAIL分别购于Sigma公司和R&D公司。以下抗体用于蛋白印记分析:γ-tubulin(Sigma公司),phospho S249 Rb(Abcam 公司),cyclin D1(Santa Cruz生物工程公司)。ECL试剂盒(英国Amersham生命科学公司);脂质体2000转染试剂(Invitrogen公司)。 1.2 细胞培养及分组 2种细胞均于含10%胎牛血清1640(sigma公司)培养基中、37℃、5%CO2、饱和湿度下培养,2~3 d传代1次,均选用对数生长期细胞进行实验。按干预因素将甲状腺未分化癌细胞ARO分为TRAIL组、衣霉素组、TRAIL+衣霉素组(联合用药组);同时以正常甲状腺上皮细胞株HTori-3为对照(对照组)。单药组为向细胞中分别加入 0,0.25,0.5,1.0,1.5,2.0 μg/ml TRAIL 和 0,1,2.5,5,10,20 μg/mL 衣霉素作用24或48 h;联合用药组为用5 μg/mL衣霉素预处理 24 h 后,应用 0,0.25,0.5,1.0,1.5,2.0 μg/ml TRAIL处理细胞24 h。 1.3 细胞凋亡检测 按照厂商说明利用膜联蛋白-PE凋亡检试剂盒I(BD Bioscience)检测细胞死亡,然后经荧光活性细胞扫描(FACScan)流式细胞仪分析(Becton Dickinson,Franklin Lakes,NJ)。每次试验至少计数 500 个细胞核,所有试验均进行3次。 1.4 流式细胞计数法 细胞经70%乙醇固定,PBS再水化,碘化丙锭(Sigma)染色,然后利用流式细胞计数法(FACScan,Becton Dickinson)分析DNA容量。细胞周期分布通过ModFit软件(Verity Software House)分析。流式细胞仪对各组细胞DNA含量进行分析,2N峰代表G0/G1期,交叉峰代表S期,4N峰代表G2/M期。 1.5 Western blot检测多种蛋白表达 收集各组细胞,裂解破碎离心后,测上清蛋白浓度,用12%SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳和电转移法转至硝酸纤维素(PVDF)膜上,以5%脱脂奶粉TBST封闭后,依次加入一抗phospho S249 Rb,cyclin D1;以γ-tubulin为内对照,4℃孵育过夜,辣根过氧化物酶标记的二抗室温孵育1 h,然后参照ECL试剂盒说明进行化学发光显像。 1.6 微小RNA干扰(siRNA) 本实验应用的微小干扰RNA序列如下:抗细胞周期蛋白D1 的 siRNA(sicycD1),GUUCAUUUCCAAUCCGCCC;乱序的无意义 siRNA(scramble,与任何已知基因无同源性,作为对照),CCGUAUCGUAAGCAGUACU;抗细胞周期蛋白D1的位点错配(下划线序列)siRNA(simutcycD1,用于确认 sicycD1的特异性),GUUCAUUUGGAAUCCGCCC。按照试剂盒说明利用阳离子脂质体2000转染试剂将siRNA转染至细胞中。 1.7 构建细胞周期蛋白D1稳定过表达ARO细胞系 编码细胞周期蛋白D1的互补DNA(complementary DNA,cDNA)是利用PCR方法源于人脑cDNA 文库(Invitrogen,Carlsbad,CA),然后亚克隆至真核表达质粒pcDNA3。该构建物经DNA测序核实无误,按照试剂盒说明利用阳离子脂质体2000转染试剂转染至细胞中。对照细胞用pcDNA3-Flag转染。转染细胞用G418(800 mg/mL)培养基进行筛选培养,得到阳性克隆后,进一步扩增培养,利用细胞周期蛋白D1或Flag抗体通过免疫印迹分析鉴定相关阳性蛋白表达细胞。 2 结果 2.1 衣霉素作用ARO对TRAIL的敏感性的影响 结果发现即使大剂量TRAIL(2 mg/ml)作用48 h,ARO细胞凋亡率仅为12%(图1A),表明ARO细胞抵抗TRAIL的抗肿瘤作用。20 mg/ml的衣霉素单独用药,ARO细胞凋亡率为11.5%(图1B)。然而,5 mg/ml衣霉素预处理24 h后,明显增加TRAIL诱导的ARO细胞凋亡,浓度为2 mg/ml时,ARO细胞凋亡率可高达56.5%,与TRAIL组、衣霉素组相比具有统计学差异(P<0.01)(图 1C)。TRAIL、衣霉素单药及两者联合用药对HTori-3的生存均无明显影响,细胞凋亡率<5%(图1D)。 2.2 衣霉素对ARO细胞G1向S期的进展影响 流式细胞仪检测显示对照组中G0/G1期细胞比率为31%,而TRAIL单药组G0/G1期细胞比率为34%,两组间没有统计学差异(P>0.05);衣霉素组与联合用药组中G0/G1期细胞比率分别为51%和58%,两组间亦没有统计学差异,但与对照组和TRAIL组相比具有统计学差异(P<0.01)。这提示衣霉素可明显增加G0/G1期细胞,诱导G1/S期细胞阻滞。 2.3 衣霉素对ARO细胞中细胞周期蛋白D1和磷酸化Rb蛋白表达的影响 结果显示衣霉素作用于甲状腺癌ARO细胞,减少细胞周期蛋白D1蛋白表达的水平。与细胞周期蛋白D1促进细胞周期从G1期向S期进展的功能相一致,衣霉素导致细胞周期蛋白D1减少后也引起磷酸化蛋白Rb的显著下调(图2)。

2.4 CyclinD1微小RNA干扰细胞对TRAIL敏感性的影响 sicycD1有效封闭了细胞周期蛋白D1的表达,与衣霉素处理结果相似;而对照组及抗细胞周期蛋白D1的位点错配,即simutcycD1组中cyclinD1的表达无明显变化(图3)。与对照组及simutcycD1组(约50%)相比,sicycD1及衣霉素组中的细胞生存率显著下降,可达20%左右。

2.5 细胞周期蛋白D1过表达对衣霉素增敏TRAIL作用的影响 我们首先建立了细胞周期蛋白D1稳定过表达ARO细胞系(图4A)。细胞周期蛋白D1过表达明显降低衣霉素的增敏作用(图4B)。 3 讨论 本研究检测TRAIL单独用药对ARO细胞的毒性作用,与先前报道相似[5],ARO细胞显示了对TRAIL治疗的抵抗作用。TRAIL诱导甲状腺癌凋亡的效应各异和许多肿瘤本身或通过治疗而获得的对TRAIL诱导凋亡的抵抗,限制了TRAIL治疗肿瘤的疗效。衣霉素已被用于增敏前列腺癌的自发TRAIL抵抗和结肠癌获得性的TRAIL抵抗。先前报道[4]证实衣霉素通过上调CHOP及其随后的DR5表达而增敏前列腺癌的TRAIL效应,但我们先前用衣霉素处理的甲状腺癌ARO中未见到上调的DR5表达[6]。本研究结果证实衣霉素通过下调细胞周期蛋白D1表达而增敏了甲状腺癌细胞ARO对TRAIL的效应。

有报道证实衣霉素可阻断G1/S细胞周期进程[7,8],这与本实验结果相一致,并且先前研究[9~11]提示能够阻滞细胞停留在细胞周期G1期的药物能够提高TRAIL诱导的细胞毒性。细胞周期蛋白D1是一种细胞周期调节因子,据报道[12]其通常过度表达于甲状腺癌,更常见于未分化甲状腺癌。细胞周期蛋白D1表达受抑使细胞停滞于G1期,不能进入细胞有丝分裂的S期,进而导致肿瘤细胞增殖受抑,细胞凋亡。本研究发现衣霉素处理癌细胞后出现细胞周期蛋白D1的表达下调。细胞周期蛋白D1表达下调在衣霉素增敏TRAIL诱导细胞凋亡中的重要作用,亦被我们通过沉默细胞周期蛋白D1可增敏TRAIL的凋亡效应的观察所证实;反之,强制细胞周期蛋白D1过表达可降低衣霉素介导的TRAIL增敏效应。因此,认为细胞周期蛋白D1可能是甲状腺癌TRAIL抵抗的关键调节者之一,衣霉素的TRAIL增敏效应可能至少部分源于通过衣霉素介导的细胞周期蛋白D1表达受抑。鉴于许多甲状腺癌中细胞周期蛋白D1均被扩增和过表达,因此这些肿瘤可能更适于衣霉素和TRAIL的联合治疗。 我们的研究显示衣霉素和TRAIL联合处理对甲状腺未分化癌ARO细胞产生显著的细胞毒作用,而对分化的甲状腺上皮细胞HTori-3无显著影响。因此,对于

相关文档
最新文档