浓硫酸不同处理时间对梧桐种子萌发率及根系生长的影响

江苏农业科学２０１３年第４１卷第３期　一１６１一　龚维红，王月森．浓硫酸不同处理时间对梧桐种子萌发率及根系生长的影响［Ｊ］．江苏农业科学，２０１３，４１（３）：１６１—１６２，２０９　

浓硫酸不同处理时间对梧桐种子萌发率　及根系生长的影响　

龚维红，王月森　（苏州农业职业技术学院，江苏苏州２１５００８）　

摘要：对梧桐种子进行浓硫酸浸种处理，设置０、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０　ｍｉｎ　９个浸种时间。通过测定种子发　芽势、发芽率以及侧根数与根重，研究浓硫酸不同处理时间对梧桐种子的萌发率、根系生长的影响。研究结果显示，浓　硫酸处理对梧桐种子的萌发及根系生长有显著促进作用，不同处理时间对梧桐种子发芽率及根系生长均有较明显的　差异，其中浓硫酸处理时间为２０　ｍｉｎ时发芽势和发芽率最高，分别为６６％和８９％；而浓硫酸处理时间为４０　ｍｉｎ时根　系生长效果最好，侧根数和根重分别为１０．６５条和０．０６　ｇ。　关键词：梧桐；浓硫酸浸种；发芽率；发芽势；根系生长　中图分类号：ｓ７２３．１　３１．１　文献标志码：Ａ　文章编号：１００２—１３０２（２０１３）０３—０１６１—０２　

梧桐，别称青桐，落叶乔木，原生于中国，喜生于温暖湿润　的环境，耐严寒、干旱及瘠薄。梧桐干形端直，树皮光绿，叶大　阴浓，清爽宜人，自古以来即为著名的行道树和庭阴树…，栽　植于道路两侧、庭前、屋后、草、池畔等极显幽雅清静，中国古　代传说凤凰“非梧桐不栖”。在育苗实践中发现，梧桐种子外　层裹有坚硬种皮，不易吸水，严重阻碍种子萌发，采用常规的　育苗方法其种子的发芽率极低　，仅为２％左右，严重制约了　该树种的苗木生产和推广种植。目前，针对梧桐种子发芽率　处理的研究报道较少，为此本试验采取浓硫酸处理梧桐的种　子，以期筛选出打破硬实种子的最佳处理方式和时间，为梧桐　的规模化栽培和田间大量快速育苗提供理论依据。　２４　ｈ以洗净附着的处理液；然后将种子均匀地放入置了３—４　层吸水纸为发芽床的培养皿中，放入２５℃恒温生化培养箱中　进行发芽试验。在发芽期间，每天注意保持培养皿内吸水纸　湿润，培养皿内水分以不滴水为宜。每天检查种子发芽情况，　如发现霉变，及时清洗　。　１．２．３常温处理将种子用清水浸泡２４　ｈ后，均匀放入置　了３—４层吸水纸为发芽床的培养皿中，然后放入２５℃恒温　生化培养箱中进行发芽试验。发芽期间管理与用浓硫酸处理　过的种子方法相同，此组种子用于对照。　１．２．４数据处理应用Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ　Ｅｘｃｅ１分析方差法和ＳＳＲ　法多重比较法分析差异显著性。　

１材料与方法　２结果分析　１．１材料　供试梧桐种子于２０１　１年１２月在苏州农业职业技术学院　校园内采集，种子千粒重为１２０．３　ｇ，母树为实生苗移栽，３０　年生，生长良好。　１．２方法　１．２．１　发芽势与发芽率的测定将种子充分混匀之后，随机　取５Ｏ粒种子，２次重复，放人２５℃恒温生化培养箱中进行发　芽试验。进行统计时以胚根、胚芽突破种皮为发芽标准，种子　发芽第５天初次计数，第ｌ０天再次计数，最后统计正常发芽　苗数，计算种子发芽势和发芽率　。发芽势＝［发芽数　（５　ｄ）／供试种子数］×１００％；发芽率＝［发芽数（１０　ｄ）／供试　种子数］×１００％。　１．２．２浓硫酸处理将种子放入１００　ｍＬ烧杯中，加入浓度　为９８％的分析纯浓硫酸２５　ｍＬ，用玻璃棒不断搅拌，分别浸泡　１０、２０、３０、４Ｏ、５Ｏ、６ｏ、７Ｏ、８０　ｍｉｎ。种子处理后，用清水冲洗　收稿１３期：２０１２—０７—２４　作者简介：龚维红（１９６６一），女，江苏无锡人，副教授，高级农艺师，从　事园林苗木繁殖与培育教育教学工作。Ｔｅｌ：（０５１２）６６０９８５７３；　Ｅ—ｍａｉｌ：ｇｏｎｇｗｅｉｈ２００３＠ｙａｈｏｏ．ｔｏｍ．１３１１。　２．１　浓硫酸不同处理时间对梧桐种子萌发率的影响　综合表１、表２不难看出，浓硫酸不同处理时间对种子萌　发的影响有较明显的差异，随着处理时间的延长，种子发芽的　速度较快，但达到一定时间后种子发芽速度降低。从方差分　析结果（表３、表４）可以看出不同处理时间对梧桐种子的发　芽势、发芽率有显著差异。采用浓硫酸浸种２０　ｍｉｎ的处理方　法效果最好，其发芽势、发芽率分别比对照高２ｌ、２１．２５倍。　多重比较结果，与对照发芽势、发芽率差异最显著的是浓硫酸　浸种２０　ｍｉｎ。浓硫酸浸种２０　ｍｉｎ处理后的最大发芽势与发　芽率比其他时间处理都高。由此可见，采用相同浓硫酸浸种　不同的时间，以浸种２０　ｍｉｎ对梧桐种子发芽的促进作用最　大。究其原因，可能与浓硫酸对梧桐种子表面坚硬种皮的腐　蚀时间有关，时问过长可能会对种子内部组织结构造成一定　的伤害，浓硫酸浸种２０　ｍｉｎ的处理增强了种皮的通透性，从　而使种子能够充分吸水，有利于种胚顶破种皮向外伸长。　２．２浓硫酸不同处理时间对梧桐种子根系生长的影响　根系生长试验得出的数据是从每个重复中的每组中抽取　１０粒种子的结果测算的（表５、表６）。从方差分析结果（表　７、表８）可以看出不同处理时间对梧桐种子根系的生长有着　显著差异，多重比较结果，９组试验以浓硫酸浸种４０　ｍｉｎ梧桐　－－——１６２．－——　江苏农业科学２０１３年第４ｌ卷第３期　表１浓硫酸处理时间对发芽势的影响　处理时间　垄茎塑　些）各品种内发芽势　薹星里董　（ｒａｉｎ）　重复１重复２平均平方和　（％）ａ＝０．０５　＝０．０１　表５浓硫酸处理时间对侧根数的影响　

注：表中字母为多重比较结果，字母相同表示差异不显著，字母　不同表示差异显著显著性水平。表２、表５、表６处理同表１。　表６浓硫酸处理时间对根重的影响　

表２浓硫酸处理时间对发芽率的影响　处理时间　垄茎墼　些）各品种内发芽势　薹墨星董丝　（ｍｉｎ）重复１重复２平均平方和（％）ａ＝０．０５　＝０．Ｏ１　

注：　表示方差分析在０．０５水平差异显著，　表示在０．Ｏ１水　平差异显著。表４、表７、表８同。　

表４发芽率的方差分析表　

种子根系生长最为显著，此时的侧根数量最多并且根重最大。　从表５不难看出浓硫酸浸种６０、７０、８０　ｍｉｎ根系生长不明显，　基本上无侧根存在，这可能是因为浸种时间过长，浓硫酸损伤　了胚根。　

３讨论　种皮是种子外面的覆盖部分，具有保护种子不受外力机　械损伤和防止病虫害入侵的作用；同时，它也是引起种子休眠　的主要原因之一。通过不同的处理，可以除去抑制种子发芽　的物质或破坏种皮结构，打破种子的休眠，增强种子吸水性　能，从而达到提高种子发芽率的目的。用浓硫酸处理种子，可　处理问２８９１３．４４　８　３６１４．１８　４３．４ｏ”３．２３　５．４７　处理内　７４９．５０　９　８３．２８　总变异２９６６２．９４　１７　使种皮变薄、种脐脐缝开口变大，增强种子的透水性，打破种　子的休眠，从而促进种子萌发，提高发芽率　］。在一定时间　内发芽率与处理时间呈正相关，这是由于浓硫酸对种皮的腐　蚀需要一定的时间，只有以酸腐蚀打破种皮的栅栏层屏障后，　才可打破休眠，提高发芽率。而当浸泡时间延长至整个种皮　崩溃，伤及胚时，发芽率下降，随时间增加，胚的受损伤程度加　大，此时发芽率与处理时间呈负相关。　根系的生长是种子萌发的一个重要标志，当浸泡时间在　３０、４０、５０　ｒａｉｎ时根系生长较好，在发芽率和发芽势最高的　２０　ｍｉｎ浸种时根系的生长却相对比较弱。浓硫酸处理６０、　７０、８０　ｍｉｎ　３组试验中侧根数几乎没有，并且主根发现有干枯　的现象，说明处理时间过长会对根系的生长有一定的抑制　作用。　（下转第２０９页）　贺晓龙等：平菇液体培养检测指标变化的研究　．．——２０９－－——　５．８　５．６　５．４　

智　４．８　４．６　４．４　４．２　

时间（ｄ）　图２　平菇液体培养液ｐＨ值的变化　

２．３培养液还原糖含量的变化　从图３可以看出，培养初期，培养液中还原糖含量较低，　随着培养时间的延长，还原糖含量迅速增长，培养中期还原糖　含量变化平缓，后期又下降，第５天降至７００　ｒａｇ／５０　ｍＬ，培养　初期，虽然菌丝生物量不大，但分解碳源物质的能力很强，还　原糖的生成量大于利用量，所以此期间还原糖含量呈上升趋　势。随着培养基中碳源物质的消耗和菌丝球数量的增长，培　养后期还原糖含量迅速下降。　

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时间（ｄ）　图３平菇液体培养液还原糖含量的变化　

２．４茵丝球形态的变化　平菇液体菌种培养过程中，对菌丝球的形态观察结果表　明，第１～３天定植期，培养液颜色浑浊，菌丝片段增多，出现　分枝；第４—５天菌块沉没，培养液中菌丝球由小变大，边缘呈　绒毛状，数量明显增多，依稀可见。第６～７天，菌丝球密度减　小，颜色泛黄；此后，菌丝球边缘变得光滑，密度渐减，菌丝球　自溶加快，培养液又变得浑浊。此观察结果与平菇液体菌种　

培养液中的菌丝球数量、ｐＨ值、还原糖含量的变化情况基本　一致。　

３结论　综合以上研究结果可以看出，在平菇液体菌种培养过程　中，菌丝球数量在第５天达到峰值，而还原糖含量在第４～５　天开始下降，溶液本身的ｐＨ值总体成上升的趋势。由此可　以推断出菌丝球在第４天活性达到最强，继续培养，则菌丝球　活性下降，说明培养终点应控制在第５天。本试验结果为平　菇液体菌种培养过程的控制提供了３个基本的技术指标，而　在实际生产过程中还有其他方面的测定，如氨态氮含量，酶活　性等　“　，都需要进一步探索。　

参考文献：　［１］卜庆梅，王淑芳，王瑜，等．四个平菇菌种液体培养选育研究　［Ｊ］．安徽农业科学２００６，３４（３）：４５８—４５９．　［２］张坤贞，薛辉．平菇的营养价值及食用方法［Ｊ］．农业知识，　２００４（５）：３５．　［３］张玉林，谭永忠．平菇液体菌种栽培菌株筛选试验［Ｊ］．中国食　用菌，２００７，２６（５）：３２—３３．　［４］黄清荣，辛晓林，杨立红．白平菇液体培养碳、氮源及无机盐的优　选［Ｊ］．吉林农业大学学报，２００３，２５（４）：３８２—３８４．　［５］郭连福，李莉，周建树，等．孟庆国平菇液体菌种的保存时间受　ｐＨ值影响初探［Ｊ］．食用菌，２００９，３１（３）：２８—２９．　［６］王芳，张玉萍，孟丽君．平菇液体菌种培养条件的研究［Ｊ］．食　用菌，２００８，（６）：２１—２２．　［７］王芳，张玉萍，孟丽君．平菇液体菌种的制备条件及应用研究　［Ｊ］．中国食用菌，２００７，２６（５）：４８—５０．　［８］林维宣，张水华，董文宾，等．食品分析［Ｍ］．北京：中国轻工业　出版社，１９９４：４７—７５．　［９］于兰兰，李维焕，甄世梅，等．平菇液体菌种发酵终点的简便检测　方法［Ｊ］．安徽农业科学，２０１０，３８（１８）：９７８６—９８３３．　［１０］秦俊哲．金针菇液体菌种培养过程检测指标的研究［Ｊ］．食用　菌学报，２００３，１０（１）：１２一ｌ６．　［１１］梁建光，董洪新，朱德盼．香菇液体培养过程检测指标的研究　［Ｊ］．湖北农业科学，２００５（６）：７６—７８．