免疫荧光双标实验操作方法与注意事项
细胞免疫荧光操作要点
细胞免疫荧光操作要点细胞免疫荧光操作是生命科学中常用的实验技术之一，用于研究细胞的免疫反应和细胞代谢。
本文将介绍细胞免疫荧光操作的要点，包括实验材料准备、样本处理、荧光染色、显微镜观察等方面。
一、实验材料准备在进行细胞免疫荧光操作前，需要准备以下实验材料：1. 细胞培养物：根据实验需要选择合适的细胞系，并进行培养和传代。
2. 细胞培养基：根据细胞系的要求选择合适的培养基，添加适量的培养液，维持细胞的正常生长。
3. 抗体：选择与目标蛋白质相应的特异性抗体。
4. 荧光染料：选择合适的荧光染料，如荧光素二硫苏葡萄糖（DAB）或二苯基氨基苯硫酰氯酸盐（DAP）。
二、样本处理样本处理是细胞免疫荧光操作的关键步骤之一，包括细胞固定、渗透处理和抗原检测等过程。
1. 细胞固定：用适当的固定剂（如4%的乙醛或甲醛）处理细胞，使其保持原有形态。
2. 渗透处理：使用适当的渗透剂（如0.5%的Triton X-100）破坏细胞膜，以增加抗体和荧光染料的渗透性。
3. 抗原检测：将抗体与样本中的抗原结合，形成抗原-抗体复合物。
三、荧光染色荧光染色是细胞免疫荧光操作的重要环节，用于标记和检测抗原-抗体复合物。
1. 加入初级抗体：将稀释后的初级抗体加入样品中，与目标蛋白质发生特异性反应。
2. 清洗：用缓冲液洗涤样品，去除未结合的抗体。
3. 加入荧光标记的二抗：将与荧光物质标记的二抗加入样品中，与初级抗体发生特异性反应。
4. 清洗：再次用缓冲液洗涤样品，去除未结合的二抗。
5. 定性：使用荧光显微镜观察样品，并捕捉荧光信号。
四、显微镜观察显微镜观察是细胞免疫荧光操作的最后一步，用于分析和记录荧光染色的结果。
1. 调节显微镜：根据荧光染色的需要，选择合适的荧光通道和激发波长。
2. 观察：将样品放置在显微镜台上，以适当的放大倍数观察荧光信号的强度和分布。
3. 拍照：使用相机或图像系统拍摄显微镜下的荧光图像，记录实验结果并备份数据。
细胞免疫荧光操作是一项技术性较强的实验技术，要求实验者具备一定的实验操作经验和相关知识。
免疫荧光双染
免疫荧光双染 Revised by Hanlin on 10 January 2021免疫荧光双染在同一组织细胞标本上需要同时检测两种抗原时，需进行双重荧光染色。
双重免疫荧光标记法(doubleimmunofluorescencelabelingmethod)也分为直接法和间接法。
冰冻切片荧光tunel+免疫荧光双标实验步骤1、冰冻切片固定：冰冻切片从冰箱拿出来复温，晾干水分，冷丙酮固定10min，待丙酮完全干后于PBS（PH7.4）中在脱色摇床上晃动洗涤3次，每次5min。
2、修复：切片稍甩干后用组化笔在组织周围画圈（防止液体流走），在圈内滴加蛋白酶K工作液（蛋白酶K储存液用PBS?1:9稀释）覆盖组织，37度温箱孵育30min。
将玻片置于PBS（PH7.4）中在脱色摇床上晃动洗涤3次，每次5min。
3、破膜：切片稍甩干后在圈内滴加破膜工作液覆盖组织，常温下孵育20min，将玻片置于PBS（PH7.4）中在脱色摇床上晃动洗涤3次，每次5min。
4、加试剂1,2：按片子数量和组织大小取tunel试剂盒内适量试剂1(TdT)和试剂2(dUTP)按2:29混合（试剂1,2为现配现用），加到圈内覆盖组织，切片平放于湿盒内，37℃恒温孵育2小时，湿盒内加少量水保持湿度。
5、BSA封闭:将玻片置于PBS（PH7.4）中在脱色摇床上晃动洗涤3次，每次5min，在圈内滴加用3%BSA均匀覆盖组织，室温封闭30min。
6、加一抗：轻轻甩掉封闭液，在切片上滴加PBS按一定比例配好的一抗，切片平放于湿盒内4°C孵育过夜。
（湿盒内加少量水防止抗体蒸发）7、加二抗：玻片置于PBS（PH7.4）中在脱色摇床上晃动洗涤3次，每次5min。
切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的二抗覆盖组织，避光室温孵育50min。
8、DAPI复染细胞核：切片用PBS（PH7.4）洗涤3次，每次5min。
去除PBS后在圈内滴加DAPI染液，避光室温孵育10min。
免疫荧光的原理与操作方法
免疫荧光的原理与操作方法
免疫荧光是一种常用的生物学实验技术，其原理是利用特异性抗体与被检测目标结合，并通过荧光标记的二抗或标记的荧光染料来标记抗原或抗体，从而实现对目标物的定量或定位分析。
免疫荧光的操作方法如下：
1. 样品制备：根据需要检测的目标物选择相应的样品，如细胞、组织或酶解物等，然后进行固定和包埋处理，以保持目标物的完整性和稳定性。
2. 抗体处理：将特异性的抗体加入到样品中与目标物结合，通常先经过一定的预处理步骤，如洗涤样品等。
3. 溶液处理：将样品置于含有稀释的荧光标记物（如荧光染料或荧光素等）的缓冲液中，使标记物与样品中的抗原或抗体结合。
4. 洗涤：为去除非特异性结合的无标记物质，需要进行多次洗涤步骤。
洗涤步骤有助于提高免疫荧光实验的特异性和背景噪声的消除。
5. 扫描与图像分析：用荧光显微镜观察标记物质的荧光信号，并通过相应的图像采集与分析软件进行图像记录和荧光信号的定量分析。
需要注意以下几点：
- 对于不透明的组织，需要进行切片和脱水处理，以便抗体和标记物能够渗透到组织中。
- 抗体的选择应根据被检测目标物的性质和特异性来决定。
- 操作过程需注意无菌条件，避免污染样品。
- 实验中的洗涤步骤要彻底，以避免非特异性结合和背景噪声。
免疫荧光实验步骤大全
免疫荧光实验步骤大全免疫荧光实验是一种常见的实验技术，用于检测特定抗原和抗体的相互作用。
本文将介绍免疫荧光实验的详细步骤，以供参考。
实验材料准备：- 试验样本（包括细胞或组织）- 抗原或抗体- 包含荧光素的二抗- PBS缓冲液- 荧光显微镜- 封片胶实验步骤：1. 样本制备- 如果是细胞样本，在培养皿中培养并观察细胞的形态和生长状态。
- 如果是组织样本，将组织切片并进行固定，然后反复用PBS缓冲液进行洗涤。
2. 抗原或抗体的固定- 将样本固定在载玻片上，可以使用正硫酸盐和乙醇来进行固定。
- 固定后用PBS缓冲液进行洗涤，以去除多余的固定试剂。
3. 孵育抗原或抗体- 在固定后的样本上加入适量的抗原、抗体或荧光素标记的二抗。
- 在室温下或4摄氏度下孵育一定的时间，以实现抗原和抗体的特异结合。
4. 洗涤- 使用PBS缓冲液洗涤固定后的样本，可多次洗涤以去除非特异性结合。
5. 荧光显微镜观察- 将载玻片放置在荧光显微镜上，调整荧光滤镜组合以观察荧光信号。
- 使用合适的放大倍率观察细胞或组织中特定的抗原或抗体信号。
6. 影像采集与分析- 使用相机或图像采集系统记录荧光显微镜观察到的图像。
- 使用图像分析软件对图像进行处理和分析，如测量荧光强度、定量特定抗原或抗体的表达水平等。
7. 结果和讨论- 分析实验结果，比较不同样本之间的差异。
- 讨论实验结果与研究假设的一致性，并可进行进一步的实验验证。
8. 结论- 总结实验结果，并得出相应的结论。
- 可以进一步讨论实验结果在相关领域的应用和意义。
9. 实验清理- 定期清洗和消毒实验室工作区域和仪器设备，以确保实验环境的卫生和安全。
以上是免疫荧光实验的基本步骤，每一步都需要仔细操作和控制实验条件。
在实验过程中，要注意遵守实验室安全操作规范，确保自己和他人的安全。
希望本文对您的科研工作有所帮助！。
免疫荧光染色(多标)步骤
免疫荧光染色(多标)步骤一、免疫荧光染色的多标技术简介免疫荧光染色的多标技术是通过同时使用多个荧光染料，标记不同的抗体，从而实现对多个目标分子的检测。
该技术广泛应用于生物医学研究、免疫组化和细胞生物学等领域，可以提供更全面的信息和更准确的结果。
二、免疫荧光染色的多标步骤免疫荧光染色的多标步骤主要包括标本处理、抗原修复、非特异性结合阻断、一级抗体处理、荧光二抗处理和显微镜观察等。
1. 标本处理将待检样品制备成组织切片或细胞涂片，并固定在载玻片上。
可以使用多种组织固定剂，如乙醛、甲醛等。
固定后，需进行脱水、透明化处理，以便后续步骤的进行。
2. 抗原修复组织样本经过固定处理后，可能导致抗原的空间结构发生改变，影响后续的抗原-抗体结合。
因此，需要进行抗原修复处理，如热解、酶解等方法，以恢复抗原的免疫原性。
3. 非特异性结合阻断为减少假阳性结果的产生，需要对标本进行非特异性结合阻断。
可使用一些蛋白质，如牛血清蛋白、鱼胶蛋白等，与标本中的非特异性结合位点结合，阻断后续试剂的非特异性结合。
4. 一级抗体处理将标本与一级抗体一起孵育，使一级抗体与目标抗原结合。
一级抗体通常是由小鼠、兔子等动物制备的，可以识别与特定抗原结合的抗体。
一级抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体。
5. 荧光二抗处理将与一级抗体不同动物来源的荧光标记的二级抗体与标本一起孵育。
荧光二抗能与一级抗体特异性结合，从而实现对目标抗原的荧光标记。
不同荧光染料的荧光二抗可以同时使用，以实现多标的目的。
6. 显微镜观察将处理好的标本放置在显微镜下观察，可使用荧光显微镜或共聚焦显微镜等设备进行观察。
通过不同的荧光染料，可以同时检测多个目标分子的位置和表达水平。
三、免疫荧光染色的多标技术应用免疫荧光染色的多标技术广泛应用于生物医学研究中，如疾病诊断、蛋白质定位和分析、细胞信号通路研究等。
通过同时检测多个目标分子，可以提供更全面的信息，有助于深入了解生物过程的机制。
免疫荧光实验细节总结
免疫荧光实验细节总结7⽉中旬本公众号发表了⼩六⼉总结免疫荧光新⼿攻略（新⼿细胞免疫荧光实验常见问题解答），从细胞密度（铺板密度、⽅式、种板时间）及⼀抗选择及处理，DAPI及封⽚过程总结了新⼿掌握免疫荧光实验的基本准则。
其核⼼注意事项总结如下：1、明确蛋⽩定位，了解及预测蛋⽩表达；2、细胞爬⽚时的密度及种板⽅法；3、⼀抗建议选择中间浓度，特异性⾼低很重要；4、双标染⾊：应当将种属来源区分开，⼆抗的颜⾊也要区分开；5、DAPI复染时间不宜过长；6、细胞免疫荧光最好不封⽚，新⼿很容易在最后⼀步功亏⼀篑；7、如果要观察时间梯度的变化，尽量不⽤⼀次性观察好⼏个时间组，⼀次只观察1-2组，不会影响荧光效果。
就如上新⼿进阶要点总结之后，笔者总结了⼀下免疫荧光需要特别关注的细节，以期作出更完美的图⽚效果。
1、了解及预测蛋⽩的定位例如：下图使⽤肺动脉内⽪细胞（ BPAE ）观察线粒体的显⾊，采⽤405nm，488nm，561nm 的激光，100x NA 1.49 的物镜对细胞内线粒体的分布进⾏简单的观察，此图可见，单纯的mito-tracker并不能清晰看见线粒体内部的结构和蛋⽩相关关系，因此，明确蛋⽩定位，根据所需分辨率选择显微镜、相应的荧光蛋⽩和探针⾮常重要。
⽐如研究者应⼤致预测观察⽬标是存在于线粒体外膜表⾯，或者线粒体嵴上，或者仅需观察经处理后线粒体的形态及分布以选择不同的荧光蛋⽩/荧光有机⼩分⼦探针/纳⽶荧光探针等（⼀般来说荧光蛋⽩⽐⼩分⼦荧光探针体积更⼤，在超微显像过程中较⼤⼩分⼦荧光探针等更有利于显微结构的染⾊）。
（图由作者提供）2、减少背景噪声⼀张清晰的研究图⽚应当避免过多的⼲扰光点出现。
在免疫荧光实验中，应尽量保证每次PBS 清洗次数和时间，减少杂质。
细胞免疫荧光相⽐较于组织免疫荧光略有区别，⼀抗应在孔板内完成孵育步骤，载玻⽚上孵⼀抗时免疫组化笔⼲燥结块脱落会引起再爬⽚杂光。
此外尽量保证盖玻⽚的洁净⾮常重要。
双标记免疫荧光染色
双标记免疫荧光染色一、实验目的：1.检测MT, IGF-1/FGF5与两个目的基因所表达的蛋白的共表达。
2.检测目的基因所表达的蛋白定位。
3.检测褪黑激素或细胞因子对目的基因高表达的影响以及表达规律。
二、实验材料：1.试剂：多聚甲醛，目的基因一抗，自带荧光的二抗（地高辛－地高辛抗体，生物素－链霉亲和素）细胞核染料DAPI2. 器材：激光共聚焦显微镜显微镜专用玻片，共聚焦专用培养皿。
三、实验步骤：1.细胞培养：取对数期细胞于6孔板培养24小时，放入共聚焦专用玻片，贴壁细胞爬片需要24小时，细胞数目达到4×104个细胞，设置两个以上六孔板分别为对照组和实验组；2.实验组加药处理：加入MT或IGF-1或FGF5处理24小时或48小时，72小时。
3.上镜前处理：将玻片取出，PBS洗3次，4%多聚甲醛固定15min；PBS洗多次，加0.1%Triton-X100透化10min；PBS洗3次，5%FBS室温封闭一到数小时；PBS洗3次，将MT、FGF-5、IGF-1抗体(1：200)和目的基因(工作液)两两组合，共六组，按体积比1：1混匀，一起加到切片上，4℃过夜；第二天，PBS洗3次，加入荧光二抗[加入TRITC(罗丹明)标记羊抗兔IgG(1：100)；37℃孵育30 min；加人FITC标记山羊抗鼠IgG(1：100)]，室温避光45min；（之后均为避光操作）PBS洗3次，加入核染料，n分钟；PBS洗3次，灭菌水洗2次；取处理好的载玻片，写好组别，在正中央滴约30ul防猝灭剂，小心将盖玻片夹起，缓慢放下，不要产生气泡，避光晾干。
以PBs代替一抗作为阴性对照，省略一抗作空白对照。
4.镜检四、结果预测：1.共表达：两个基因分别为阳性红色，绿色。
共表达出现红绿重叠而呈现黄色荧光，显示蛋白定位。
2.正负表达：看荧光强弱。
细胞免疫荧光标记实验步骤
细胞免疫荧光标记实验步骤细胞免疫荧光标记实验是用来观察和分析细胞中的特定分子或结构的一种常用方法。
下面是一些常见的细胞免疫荧光标记实验步骤：1. 细胞培养准备:- 在无菌条件下准备所需培养基和培养器具。
- 将待标记细胞接种在培养皿中，以适当的细胞密度使其在培养基中生长。
2. 固定细胞:- 将细胞培养皿中的培养基倒掉。
- 用生理盐水或磷酸缓冲液轻轻洗涤细胞，以去除未附着的细胞和培养基残留。
- 加入适当的固定液，例如4%的乙醛，固定细胞并封存其内部结构。
3. 渗透化处理:- 使用适当的渗透剂，如0.1%的Triton X-100，以打破细胞膜，使抗体能够渗透到细胞内部。
- 进行渗透化处理的时间应根据实验要求而定。
4. 抗体标记:- 制备适当的抗体和荧光染料稀释液。
- 将抗体稀释液加入到细胞上，使其与目标分子结合。
- 按照实验要求，在适当的温度和时长下孵育细胞，促使抗体与目标分子充分结合。
5. 洗涤和染色:- 用洗涤缓冲液充分洗涤细胞，以去除未结合的抗体和荧光染料。
- 使用适当的荧光染料对细胞进行染色。
如需防褪色，可以添加适当的抑制剂。
6. 显微镜观察和图像捕获:- 用适当的显微镜观察细胞，并捕获荧光图像。
- 根据需要，使用图像处理软件对图像进行分析和量化。
注意事项：- 实验前确保实验室和设备都是清洁的，并遵守实验安全操作规范。
- 涉及有害物质时，戴好个人防护用品，如实验手套和护目镜。
- 每个实验步骤的时间和条件可能因实验要求而异，需根据具体实验方案进行调整。
这些步骤提供了一般的细胞免疫荧光标记实验的大致流程，但具体实验方法还需根据实验目的和材料的特性进行优化和调整。
参考资料：[1] Smith, C. et al. ___. Cold Spring Harb. Protoc. 7, 1052–1055 (2013).[2] Manders, E. M. M. et al. FISH: ___. Cold Spring Harb. Protoc. 2006, db.rot4111 (2006).。
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免疫荧光双标实验操作方法与注意事项
在同一组织细胞标本上需要同时检测两种抗原时，需进行双重荧光染色。
双重免疫荧光标记法(double immunofluorescence labeling method)也分为直接法和间接法。
(1)直接法双重免疫荧光标记：将标记有两种不同荧光素的抗体(如抗A和抗B)以适当比例混合，滴加在标本上孵育，然后洗去未结合的荧光抗体，在荧光显微镜下分别选择两种相应的激发滤片观察，即可对两种抗原进行定位和定量。
直接法简便可靠，但灵敏度较低。
(2)间接法双重免疫荧光标记：用未标记的两种特异性第一抗体孵育组织或细胞，洗去多余的第一抗体后，再用两种不同的荧光素分别标记的第二抗体孵育组织或细胞，洗去多余的第二抗体，后在荧光显微镜下分别选择两种相应的激发滤片观察，从而对两种抗原进行定位和定量。
使用此法应注意两种特异性第一抗体必须来源于不同种属，且荧光标记第二抗体的种属必须与第一抗体的种属相匹配。
免疫荧光双标技术中操作要点和注意事项
一、免疫荧光技术中标本制作的基本程序近似于酶免疫组化，不同点如下：
1、免疫荧光不需要使用双氧水处理，封闭和一抗孵育与其相同。
2、免疫荧光的二抗使用不同荧光标记的二抗孵育，孵育时间根据抗体的工作浓度确定。
3、二抗孵育之后充分洗片后即可贴片、封片和观察。
4、免疫荧光在封片时常使用专用封片剂或甘油：0.01M PBS (1：1)。
条件许可，建议购买抗淬灭的封片液，使标本可以保存更久。
5、荧光抗体的孵育以及后续处理需要避光。
6、荧光抗体染色假阳性可能会多，需要分别设定阳性和阴性对照。
二、注意事项
1、荧光染色后一般在1h内完成观察，或于4℃保存4h，时间过长，可能会使荧光提前衰退。
2、每次试验均需设置以下三种对照：
(1) 阳性对照：阳性血清+荧光标记物;
(2) 阴性对照：阴性血清+荧光标记物;
(3) 荧光标记物对照：PBS+荧光标记物。
三、免疫荧光双标的经验之谈
1、选取一抗时，要求来源于两种不同的动物，我用的是来源于家兔和大鼠的抗体，二抗则是不同荧光信号标记的，我用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。
2、我的做法是两种一抗同时孵育，然后两种二抗同时孵育。
抗体浓度、孵育时间要自我摸索，我感觉一抗4℃孵育过夜比较好，背景比较清晰。
3、我的阳性对照采用的是阳性组织切片，阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG，荧光标记物对照是PBS+荧光标记物。
4、封闭血清是二抗来源动物的正常血清，我用的是10%正常donkey血清。
5、其余事项同免疫荧光单标操作。
免疫组化双重染色方法和步骤
在生物医学和临床研究实践中，经常需要检测两种不同物质是否在同一样品中共存或同一种细胞中共存，因此出现了免疫组织化学双重染色。
此方法有几种类型，包括免疫酶组织化学和免疫荧光细胞化学法结合;同一切片的再度染色法(先对第一种抗原染色，阳性部位拍照，再用酸处理使抗原抗体解离，继之，对第二种抗原染色、拍照);两种酶标抗体3又重染色(分别用辣根过氧化物酶和碱性磷酸酶标记第二抗体.用间接法分别显示A和B抗原，如两种一抗来自同一种属，常有重叠染色);不同种属来源的抗体双重染色。
目前，最常用的是最后一种方法。
不同种属来源的抗体双重染色，两种抗体间无交又反应.特异性较高，即使细胞内抗原量很少也能检测。
但是，当两种抗原存在于同一部位而其中之一浓度较高，占绝对优势时将妨碍另一种抗原染色，此种情况应分别染色，首先染色含量较少的抗原，再显示含量丰富的抗原。
在该方法中应用最多的是把SABC法或SP法的实验流程重复两次，其中两种不同特异性抗体(可以是小鼠或大鼠单克隆抗体和兔多克隆抗体的任何两个组合)，与一抗对应的不同种属生物素化二抗和两种不同显色系统。
即可将不同部位或相同部位的两种抗原显示出来。
该方法用于石蜡切片时应考虑所选择的两个抗体的修复方法应该一致或一个抗体的修复对另一个抗体的染色结果没有影响。
SP法双重染色步骤
1～6步骤与SABC法相同，但无需使用生物素阻断剂：
7.切片加入A特异性抗体(如兔抗A抗体)，4=C过夜孵育后，PBS 冲洗3次，每次5分钟
8.滴加生物素化二抗(如抗兔二抗)，室温孵育切片10分钟，继而PBS冲洗3次，每次5分钟;
9.滴加链霉菌抗生物素蛋白—碱性磷酸酶，室温孵育10分钟，PBS冲洗3次，每次5分钟
10.碱性磷酸酶显色液(BCIP/NBT)显色(紫蓝色).PBS冲洗3次，每次5分钟;
11.滴加0.05%盐酸，室温10分钟(可避免已显色的抗原褪色);
12.滴加抗小鼠二抗同种属的非免疫血清，37~C孵育10分钟;
13.滴加B特异性抗体(如小鼠抗B抗体)，4~C过夜孵育。
PBS冲洗3次，每次5分钟;
14.滴加生物素化抗小鼠二抗，室温孵育切片10分钟。
PBS冲洗3次，每次5分钟：
15.滴加链霉菌抗生物素蛋白—过氧化物酶，室温孵育10分钟，PBS冲洗3次，每次5分钟
16.过氧化物酶显色液(AEC)显色(鲜红色).PBS冲洗3次，每次5分
钟
17.苏木精复染细胞核;
18.水溶性封片剂封片。
在使用SP法双重染色之前需要对待测抗原的性质、二抗的种属类型和显色系统进行详细设计。
购买免疫组化双染试剂盒时;应选择与设计方案相同的配套试剂。
在选择一抗时应避免定位在细胞的同一部位(如胞核、胞浆和胞膜)的两种抗原，如果不可避免，最好选择免疫荧光组织细胞化学双重染色方法，因为两种不同颜色的荧光重叠后呈现另一种颜色的荧光(如红色荧光与绿色荧光重叠呈现黄色荧光)，它比SP 法的显色系统更容易区别和辨认阳性结果。
在进行双重染色之前，必须对所选择的一抗分别进行单独染色预实验，预实验条件必须与双染条件相同，在观察预实验结果和抗体定位正确后，再进行双染实验。