纳米材料体外细胞毒性研究现状与展望

合集下载

碳纳米管毒性与安全研究

碳纳米管毒性与安全研究

碳纳米管毒性与安全研究近年来,碳纳米管作为一种新型材料,因其特殊的物理、化学、电学和机械性能,广受科学家们的关注。

碳纳米管具有优异的机械强度、导电性和导热性等优良特性,广泛被应用于材料、生物、能源等领域。

然而,碳纳米管毒性和安全问题一直备受关注。

例如,在药物输送和生物医学领域,随着越来越多的研究表明,碳纳米管具有潜在的毒性和发展可能。

碳纳米管内在的毒性与生物学效应的机制一直是科学家们难以解决的问题。

与其他纳米材料不同,碳纳米管的特殊结构和表面性质导致其与生物系统的相互作用非常复杂。

因此,需要深入研究其毒性和安全性,以促进其应用的可持续和安全发展。

一、碳纳米管的种类及其应用碳纳米管是由碳原子组成的纳米管状结构体,分为单壁碳纳米管(SWCNTs)和多壁碳纳米管(MWCNTs)两种,其直径分别约为1~2 nm和5~30 nm,而长度可达数百微米至数厘米。

碳纳米管具有优良的电、热、机械性能和表面化学反应活性,是一种非常有应用前景的材料。

碳纳米管在材料科学和纳米科技方面具有潜在的应用。

其使用领域包括电子、机械、生物、医学、环境、能源等多个方面。

例如,碳纳米管可以用于高强度、高刚度、低密度的复合材料中,这些复合材料可用于航空、运载和微型机器人等领域。

此外,碳纳米管还可以进行化学修饰,并与药物分子或生物分子结合,以用于药物输送和生物医学应用。

二、碳纳米管毒性的评价方法毒性评价是研究碳纳米管毒性和安全性的基础。

毒性评价是在低浓度下测试的方法,该方法可以通过实验、建模或聚合方法确定材料和生物体之间的相互作用。

特别是在生物医学领域,毒性评价非常重要,因为健康风险可能存在于短期或长期的曝露中。

现有的毒性评价方法可以分为体内和体外方法。

体外方法可以帮助了解材料与细胞和生物分子的相互作用,但缺乏对整个机体反应的理解。

体内评价方法可以模拟整个机体中的生物作用和代谢途径,包括动物模型、体育试验和临床研究。

然而,由于其局限性,没有一种单一的方法可以完全解决毒性评价的问题。

纳米材料的毒性评估方法与防护措施

纳米材料的毒性评估方法与防护措施

纳米材料的毒性评估方法与防护措施随着纳米技术的发展和应用,纳米材料的毒性评估与防护成为了一个重要的研究领域。

纳米材料的特殊性质使其与传统材料相比具有更强的毒性潜力,需要进行全面的评估和防护措施。

本文将介绍纳米材料毒性评估的常用方法和相应的防护措施。

首先,纳米材料的毒性评估需要准确地了解其对人体健康的潜在危害和影响。

常用的评估方法包括体内和体外的实验室研究。

体内评估方法主要通过动物试验来评估纳米材料对生物组织和器官的毒性效应。

这些试验可以研究毒性的剂量依赖性、毒性机制和潜在的致病机制等。

然而,动物试验的成本高昂,且存在伦理和可行性的问题。

因此,体外评估方法逐渐成为纳米材料毒性研究的重要手段。

体外评估方法可以使用细胞毒性实验、基因毒性实验和细菌毒性实验等,以评估纳米材料的细胞和基因毒性。

这些实验能够提供可靠的毒性数据,并且具有较低的成本和高效的执行速度。

在毒性评估的基础上,科研人员还需要制定相应的防护措施来降低纳米材料的潜在危害。

首先,纳米材料的安全生产和使用是防护的基础。

科研单位和生产企业应该遵循相关规定,建立完善的纳米材料管理制度,确保纳米材料的安全来源、储存和处理。

安全操作规范和操作员培训也是防护的重要环节,员工应该了解纳米材料的特殊性质和操作注意事项,避免不必要的暴露和风险。

其次,纳米材料在环境中的扩散和释放需要得到控制。

纳米材料的颗粒大小和表面性质使其具有较高的活性和可扩散性。

因此,科研人员应该采取措施来减少纳米材料的扩散和释放。

这可以通过相关的工程控制措施来实现,例如使用封闭系统、局部排风等。

此外,纳米材料的废弃物处理和环境监测也是防护的重要环节。

废弃物应该按照相关规定进行分类和处理,避免对环境造成污染。

同时,科研人员还需要进行环境监测,及时发现和评估纳米材料在环境中的存在和潜在危害,为防护措施的制定提供依据。

此外,纳米材料的个体防护也非常重要。

对于从事纳米材料研究和生产的工作者,个体防护装备是必不可少的。

碳纳米管对生物体的毒性研究

碳纳米管对生物体的毒性研究

碳纳米管对生物体的毒性研究碳纳米管是一种重要的纳米材料,因其在电子、光学、机械等各个领域的独特性质而备受关注,具有广泛的应用前景。

然而,随着碳纳米管的全面应用,越来越多的研究表明,碳纳米管存在一定的生物毒性。

因此,研究碳纳米管对生物体的毒性,具有非常重要的现实意义和科学价值。

1. 碳纳米管的毒性来源碳纳米管的毒性主要来源于其微纳米级别的生物相互作用效应,如与生物分子、细胞、组织等发生的物理、化学相互作用过程。

对于碳纳米管的毒性来源,目前学术界尚没有统一的认识,但据研究发现,碳纳米管毒性的主要来源包括以下几个方面:(1)碳纳米管的化学成分。

研究表明,碳纳米管可能存在纯度不高、杂质、缺陷和表面官能团等因素,这些因素可能会影响其对生物体的毒性。

(2)碳纳米管的物理特性。

碳纳米管具有独特的结构和形态,可能会影响其对生物体的相互作用效应。

比如说,碳纳米管的长度、直径、形状、表面结构等因素都可能会影响其对生物体的毒性。

(3)生物相互作用效应。

碳纳米管在与生物分子、细胞、组织等发生相互作用时,可能会产生化学反应,形成过氧化物、自由基等有害物质,从而导致生物毒性。

2. 碳纳米管的生物毒性实验为了研究碳纳米管对生物体的毒性,科研人员采用了多种实验方法,包括体外实验和体内实验。

(1)体外实验。

体外实验是指在离体条件下,将碳纳米管与细胞、细胞培养基、血清等生物学材料进行相互作用,通过观察细胞形态、细胞毒性指标、膜通透性等参数来评价碳纳米管的生物毒性。

体外实验的好处是实验操作简便、结果可重复性好,但缺点是与真实生理环境有差异。

(2)体内实验。

体内实验是指在动物体内,注射或灌胃碳纳米管,通过观察动物行为、血液指标、组织病理学等参数来评价碳纳米管的生物毒性。

体内实验的好处是与真实生理环境更接近,但缺点是操作难度较大、实验结果受到动物本身生理差异的影响。

3. 碳纳米管的生物毒性研究成果目前,有很多的研究表明,碳纳米管具有一定的生物毒性。

纳米塑料毒效应及机制研究

纳米塑料毒效应及机制研究

纳米塑料毒效应及机制研究纳米塑料毒效应及机制研究随着纳米技术的发展,纳米材料的应用越来越广泛。

然而,纳米材料的毒性问题也越来越引起人们的关注。

纳米塑料作为一种新型的纳米材料,其毒性效应及机制研究也备受关注。

纳米塑料的毒性效应主要表现在以下几个方面:1. 细胞毒性:纳米塑料可以进入细胞内部,影响细胞的生长和分裂,导致细胞死亡。

2. 免疫毒性:纳米塑料可以影响免疫系统的功能,导致免疫系统的异常反应。

3. 神经毒性:纳米塑料可以影响神经系统的功能,导致神经系统的异常反应。

4. 生殖毒性:纳米塑料可以影响生殖系统的功能,导致生殖系统的异常反应。

纳米塑料的毒性机制主要包括以下几个方面:1. 氧化应激:纳米塑料可以引起氧化应激反应,导致细胞内部的氧化应激反应增加,从而导致细胞死亡。

2. 炎症反应:纳米塑料可以引起炎症反应,导致免疫系统的异常反应。

3. 线粒体损伤:纳米塑料可以引起线粒体损伤,导致细胞的能量代谢异常,从而导致细胞死亡。

4. DNA损伤:纳米塑料可以引起DNA损伤,导致细胞的遗传信息发生改变,从而导致细胞死亡。

为了更好地研究纳米塑料的毒性效应及机制,需要从以下几个方面入手:1. 研究纳米塑料的生物分布和代谢途径,了解其在生物体内的行为和作用。

2. 研究纳米塑料的毒性效应和机制,探究其对生物体的影响和作用机制。

3. 研究纳米塑料的安全性评价方法,建立科学的评价体系,为纳米塑料的应用提供科学依据。

总之,纳米塑料的毒性效应及机制研究是一个复杂而重要的课题。

只有深入研究其毒性效应及机制,才能更好地保障人类健康和环境安全。

新型纳米材料在食品包装方面的应用及未来展望

新型纳米材料在食品包装方面的应用及未来展望

纳米材料在食品包装方面的应用现状及展望一.概述随着人们对食品药品卫生与安全性要求的提高,及绿色环保意识的增强,食品包装领域面临的竞争和挑战也越来越激烈。

(文献[1])纳米技术是20世纪80年代末、90年代初逐步发展起来的前沿性、交叉性科学领域,并被认为是21世纪科技战略制高点。

(文献[4])纳米包装材料具有更多优良性能,且成本合理、绿色环保,其在食品包装领域的研究正步入一个新的发展阶段(文献[2]),包装行业已经进入纳米时代。

纳米包装材料是今年来比较热的研究方向,是一种新兴的包装材料。

(文献[5])纵观整个食品产业链,纳米技术在包装上的应用要快于食品本身,其原因就在于没有强有力的实验数据证NMs是相对安全的前提下,人们对直接添加在食中的NPs的安全性仍然是心存疑虑的;而且,从术角度来看,NMs与塑料薄膜、玻璃、陶瓷、纸张包装材料的复合要比食品中营养成分的纳米化,营养成分传输工具的纳米化以及纳米传感器的生产制造工艺成熟,且易于工业化。

(文献[1],文献[3])参考文献:[1]彭珊珊,丘讯安;食品包装新材料[J];包装工程;2004年02期[2]丹尼森•爱德华,广裕仁.包装设计[M].上海:上海人民美术出版社,2004[3]白春礼.纳米科技及其发展前景[J].新材料产业,2001,4(4):8-11.[4]陈希荣.新型包装材料中应用的纳米技术[J].包装工程,2003,24(6):4-8.[5]黄晓英,刘天模.纳米包装材料及其应用[J].包装工程,2006,27(5):304-305 二.纳米材料在食品包装方面的应用现状纳米技术的迅速发展使得许多基于纳米材料(NMs)的产品走进了普通人们的消费行列之中。

在食品包装行业,纳米材料以其抗菌效果好、机械强度高、阻隔能力强的特点在现代食品包装市场上取得了快速发展。

从目前研究方向和市场应用来看,食品包装材料出现了以纳米复合增强型食品包装材料,纳米保鲜包装材料,“智能”和“活性”包装材料以及纳米复合可降解包装材料为基础的新型包装材料。

纳米材料在生物医学中的应用研究进展

纳米材料在生物医学中的应用研究进展

纳米材料在生物医学中的应用研究进展在当今的科技领域,纳米材料因其独特的性质和巨大的应用潜力,在生物医学领域引起了广泛的关注和深入的研究。

纳米材料的尺寸通常在1 到100 纳米之间,这个微小的尺度赋予了它们与众不同的物理、化学和生物学特性,从而为生物医学带来了一系列创新的应用和突破。

一、纳米材料在药物输送中的应用药物输送是纳米材料在生物医学中最重要的应用之一。

传统的药物治疗常常面临着药物溶解性差、生物利用度低、毒副作用大等问题。

纳米材料的出现为解决这些问题提供了新的思路和方法。

纳米粒子作为药物载体,可以有效地提高药物的溶解性和稳定性。

例如,脂质体纳米粒子可以将水溶性差的药物包裹在内部的水相中,从而增加药物的溶解度。

同时,纳米粒子还可以通过表面修饰来延长药物在体内的循环时间,减少药物被免疫系统清除的概率。

靶向药物输送是纳米材料在药物输送中的另一个重要应用。

通过在纳米粒子表面修饰特定的靶向分子,如抗体、多肽等,可以使纳米粒子特异性地识别和结合病变细胞或组织,从而实现药物的精准输送。

这种靶向输送不仅可以提高药物的治疗效果,还可以降低药物对正常组织的毒副作用。

智能响应型纳米药物输送系统也是当前研究的热点之一。

这类系统可以根据体内的生理环境变化,如 pH 值、温度、酶浓度等,实现药物的控制释放。

例如,pH 响应型纳米粒子可以在肿瘤组织的酸性环境中释放药物,从而提高药物在肿瘤部位的浓度,增强治疗效果。

二、纳米材料在医学成像中的应用医学成像在疾病的诊断和治疗监测中起着至关重要的作用。

纳米材料的引入为医学成像技术带来了显著的改进和创新。

纳米粒子作为造影剂,可以显著提高成像的对比度和灵敏度。

例如,金纳米粒子具有强烈的表面等离子体共振效应,可以用于 X 射线计算机断层扫描(CT)成像,提高成像的分辨率和清晰度。

量子点纳米粒子具有优异的荧光性能,可以用于荧光成像,实现对细胞和组织的高分辨率、高灵敏度检测。

磁性纳米粒子在磁共振成像(MRI)中也有广泛的应用。

纳米粒子在生物医学中的应用现状与挑战

纳米粒子在生物医学中的应用现状与挑战随着科技的快速发展,纳米材料已经成为了现代科技的重要组成部分,其中纳米粒子是最为常见的一种纳米材料。

纳米粒子在生物医学中的应用也日趋广泛,其广泛的应用范围使得其在这个领域中具有着不可替代的地位。

然而,与其广泛的应用相较而言,纳米粒子在生物医学中的挑战也不容忽视,这些挑战包括其毒性和可持续性等问题。

一、纳米粒子在生物医学中的应用现状生物医学中的纳米粒子是指粒径大小在1到100纳米之间的颗粒,其应用范围十分广泛,包括用于生物成像、药物递送、癌症治疗、敏感检测等。

由于其特殊的物理和化学性质,纳米粒子在这些应用中表现出了极大的优势。

1. 生物成像纳米粒子在生物成像方面的应用是很典型的,其可以用于医学诊断、生物分析等方法中。

例如,磁性纳米粒子具有良好的MRI成像性能,可以在医学诊断中发挥重要作用。

近年来,随着磁共振技术的发展和医学成像中的应用,磁性纳米粒子的应用范围不断扩大。

2. 药物递送纳米粒子在药物递送中的应用也十分广泛。

适当的表面修饰和药物包裹使得纳米粒子能够在体内更加稳定,并且可以针对性地到达目标部位释放药物,从而提高治疗效果并降低副作用。

这样的应用在癌症治疗中更为突出,纳米粒子可以在体内帮助药物到达肿瘤位置并释放药物,从而提高治疗效果。

3. 癌症治疗在癌症治疗中,纳米粒子的应用被广泛研究。

纳米粒子可以通过磁性、光学、声学等方法精确地定位肿瘤,并释放药物或进行放射治疗,从而有效地杀死癌细胞。

4. 生物传感纳米粒子在生物传感领域中也有很多的应用。

例如,表面修饰程度不同的金属纳米粒子可以对阴离子的吸附产生不同程度的变化,这种现象可以用于敏感检测。

此外,纳米粒子还可以用于检测生物大分子的浓度、识别和测量微生物等。

二、纳米粒子在生物医学中的挑战1. 纳米粒子毒性纳米粒子的毒性是其应用中面临的最大挑战之一。

纳米粒子的特定表面积或表面结构使得其与生物体接触后容易引发免疫反应和细胞毒性。

纳米医学的发展趋势与前景展望

纳米医学的发展趋势与前景展望随着科技的不断发展和创新,纳米技术在各个领域都有了广泛的应用。

而在医学领域,纳米医学已经展现出了巨大的潜力和前景。

纳米医学是将纳米技术应用于医学,通过纳米材料、纳米器件和纳米系统等手段,为临床医学提供更精准、更高效、更个性化的解决方案。

本文将从纳米医学的发展趋势以及它的前景展望两个方面进行探讨。

首先,从纳米医学的发展趋势来看,它呈现出以下几个方面的特点。

首先是纳米药物传递系统的发展。

纳米材料具有较大的比表面积和可调控的理化特性,可以用来制备纳米药物载体,将药物精确送达至病灶部位,提高疗效并降低副作用。

此外,纳米材料还能在体内进行药物释放的控制,实现定向释放和时间调控,进一步提高治疗效果。

纳米药物传递系统已经在抗癌、抗菌等领域取得了显著成果,未来还有很大的发展空间。

其次是纳米诊断技术的突破。

纳米技术能够制备出具有特殊理化性质的纳米探针,可以用于肿瘤或其他疾病的早期检测、精确诊断和疾病分子机制研究。

例如,通过在纳米材料表面修饰特定的抗体和荧光染料,可以实现对癌细胞的定位和鉴别,提高肿瘤的早期诊断率和治疗效果。

随着纳米技术的不断成熟和进步,纳米诊断技术将会为医学诊断提供更加敏感和准确的手段。

此外,纳米材料在组织工程和再生医学领域也发挥着重要的作用。

通过制备纳米支架、纳米材料基质和纳米生物打印技术等手段,可以实现对组织、器官的修复和再生。

纳米材料的引导作用和材料特性可以促进干细胞的增殖和定向分化,实现组织的自我修复和再生。

这对于器官移植、伤口愈合等方面具有重要意义。

纳米医学的前景展望也是十分乐观的。

首先,纳米医学有望推动医学的个性化治疗进程。

由于每个个体的基因组和生理特点都有所差异,传统的通用药物治疗效果并不理想。

而纳米医学可以根据每个患者的特征和需求,制备具有特定功能的纳米材料,实现个性化治疗。

通过纳米材料的精确控制和调控,可以提供更加高效和精准的疗法,最大程度地减少治疗过程中的副作用。

纳米材料对生物体的毒性机制

纳米材料对生物体的毒性机制随着纳米科技的不断发展,纳米材料的应用范围越来越广泛。

然而,随之而来的是对纳米材料对生物体安全性的担忧。

研究发现,纳米材料对生物体有毒性,可以对生物体造成损害,甚至导致癌症等疾病。

那么,纳米材料到底如何对生物体造成毒性?本文将探讨纳米材料对生物体的毒性机制。

第一部分:纳米材料的种类纳米材料包括金属纳米材料、非金属纳米材料、纳米碳管以及纳米复合材料等。

金属纳米材料主要有金、银、铜、铁等;非金属纳米材料主要有氧化物、硫化物、氮化物等;纳米碳管主要是碳原子构成的管状结构;纳米复合材料是由两种或更多的纳米材料组成的材料。

第二部分:纳米材料的毒性纳米材料具有比其它材料更强的活性,更容易进入生物体内部。

因此,对生物体的影响也更加显著。

纳米材料通过以下途径进入生物体:1.皮肤吸收2.口腔吸入3.胃肠道吸收4.注射对于不同种类的纳米材料,它们的毒性也存在差异。

例如,银纳米材料可以引起肺部损伤和脑部细胞死亡;纳米碳管可以激活肝细胞和肾细胞,进而影响人体的正常功能;纳米复合材料则容易引起喉结肿胀、呼吸困难等症状。

第三部分:纳米材料的影响纳米材料进入生物体后,会引起生物体的生化反应和氧化反应,导致细胞死亡或损伤。

使用合适的生物学方法,可以检测到纳米材料在人体内部的分布情况和毒性。

1.纳米材料的体内分布情况纳米材料可以通过血液循环分布到全身各个器官,在合适的条件下,可以在肝脏、脾脏、肺部和骨髓等处积累。

这种积累可能导致器官的功能受损。

2.纳米材料引起的细胞毒性纳米材料对细胞的毒性机制一方面是因为纳米材料产生的氧化应激,另一方面是因为纳米材料对细胞膜、细胞器以及细胞基因的直接作用。

3.纳米材料引起的免疫毒性纳米材料对免疫系统产生的影响是长期的。

一方面,纳米材料会影响免疫细胞的生物学功能;另一方面,纳米材料也会影响免疫介质的合成和释放,从而影响免疫反应。

结论:未来纳米材料的应用需要注意纳米材料是一项前沿技术,其应用领域也会越来越广泛。

纳米二氧化硅生物毒性的研究进展

综㊀㊀述纳米二氧化硅生物毒性的研究进展刘亚琴综述ꎬ曹济民审校㊀㊀[摘要]㊀纳米二氧化硅因为其独特的理化性质而被广泛应用于抗菌剂㊁分子探针㊁药物载体等多个领域中ꎮ由于纳米材料自身结构和功能的活跃性ꎬ其生物安全性近年来也成为毒理学研究的热点ꎮ文章综合国内外现有研究报道ꎬ从纳米二氧化硅在细胞水平和动物水平的毒性作用㊁影响毒性作用的因素和毒性作用机制进行综述ꎬ为纳米二氧化硅的研发㊁应用和生物安全性提供参考ꎮ[关键词]㊀纳米二氧化硅ꎻ毒性ꎻ生物安全性㊀㊀[中图分类号]㊀Q7㊀㊀[文献标志码]㊀A㊀㊀㊀[文章编号]㊀1008 ̄8199(2020)02 ̄0220 ̄05㊀㊀[DOI]㊀10.16571/j.cnki.1008 ̄8199.2020.02.023作者单位:646000泸州ꎬ西南医科大学心血管医学研究所[刘亚琴(医学硕士)㊁曹济民]通信作者:曹济民ꎬE-mail:caojimin@126.comRecentadvancesinthebiotoxicityofsilicananoparticlesLIUYa ̄qinreviewingꎬCAOJi ̄minchecking(KeyLaboratoryofMedicalElectrophysiologyofMinistryofEducationꎬInstituteofCardiovascularResearchꎬSouth ̄westMedicalUniversityꎬLuzhou646000ꎬSichuanꎬChina)㊀㊀[Abstract]㊀SilicaNanoparticles(SiNPs)iswidelyusedinmanyfieldsincludingantibacterialagentꎬmolecularprobeanddrugdeliveryforitsspecialphysicochemicalproperties.Recentlyꎬthebiosecurityofnano ̄materialshasbecomeahotspotofresearchintoxi ̄cologyduetospecialstructureandfunctionalactivenessofnano ̄materials.ThispaperbrieflysummarizedrecentresearchreportsathomeandabroadtoreviewthetoxicityofSiNPsoncellsandanimalsꎬthefactorsforinfluencingthetoxicityofSiNPsandthemechanismsun ̄derlyingSiNPsbiotoxicityꎬaimingtoprovidereferencesforthedevelopmentꎬapplicationandbiosecurityofSiNPs.㊀㊀[Keywords]㊀silicananoparticlesꎻtoxicityꎻbiosafety0㊀引㊀㊀言随着纳米技术的飞速发展ꎬ纳米材料已广泛应用于各个领域中[1]ꎮ纳米二氧化硅(silicananopar ̄ticlesꎬSiNPs)作为目前生产应用最多的纳米材料ꎬ其本身具有热稳定性㊁化学惰性㊁高亲水性和弱渗透性等独特的理化性质ꎬ被广泛应用于抗微生物制剂的开发㊁食品安全检查㊁寄生虫诊断㊁分子探针㊁生物成像诊断和肿瘤治疗等生物医学领域中[2-10]ꎮ人工合成的SiNPs可通过皮肤直接接触㊁呼吸道吸入㊁消化道摄入等途径进入相关职业人群和接触人群体内ꎬ也可通过生物实验或医疗途径进入动物或人体体内ꎮ由于纳米材料(包括SiNPs)本身结构功能的活跃性ꎬ纳米材料的生物安全性及纳米毒理学研究对纳米科技的发展和应用显得尤为重要ꎮ充分认识SiNPs具体的毒性作用和机制可为将来纳米颗粒的安全性研发提供理论依据ꎮ本文从SiNPs在细胞水平和动物整体水平的毒性作用㊁影响毒性作用的因素和作用机制等方面作一综述ꎬ籍以为SiNPs的临床药物的研发及其应用生物安全性提供参考ꎮ1㊀SiNPs的毒性作用细胞是机体结构和功能的基本单位ꎮSiNPs对多种细胞都有较明显的毒性作用ꎮ在细胞结构方面ꎬSiNPs破坏大鼠心肌细胞系(H9C2细胞)的细胞间隙连接ꎬ并通过线粒体途径诱导细胞凋亡ꎬ这种毒性作用呈现出剂量和时间依赖性[11]ꎮ在细胞功能方面ꎬGuerrero等[12]通过观察SiNPs与急性分离的成年大鼠心肌细胞共培养24h后发现ꎬSiNPs能降低心肌细胞收缩频率和肌浆网Ca2+ ̄ATP酶的活性ꎬ并抑制线粒体膜电位ꎬ从而使细胞ATP供应障碍ꎮKundu等[13]发现SiNPs可诱导HaCaT细胞中的COX ̄2表达ꎮSiNPs通过作用于肺动脉平滑肌细胞的瞬时感受器电位通道使细胞内游离钙水平明显增高[14]ꎮSiNPs可通过皮肤㊁呼吸道和消化道等多个途径进入生物机体ꎬ并在多个器官中蓄积ꎬ引起相应的生物学效应ꎮNemmer等[15]通过小鼠腹腔内注射粒径50nm的SiNPsꎬ发现可诱导心脏㊁肝㊁肺等多种器官内超氧自由基(reactiveoxygenspeciesꎬROS)升高㊁炎症发生及DNA损伤ꎬ尤其是引起心脏中TNF ̄α的升高ꎮChen等[16]观察了SiNPs对不同年龄段大鼠心血管的影响ꎬ发现SiNPs可致心肌缺血性损伤㊁房室传导阻滞㊁纤维蛋白原浓度和血液黏度增加ꎬ且老龄鼠对SiNPs的敏感性比年轻和成年大鼠更高ꎮDuan等[17-19]通过静脉内显微注射ꎬ发现SiNPs对斑马鱼胚胎发育过程中的多种器官均有毒性作用ꎬ并使斑马鱼器官发育异常ꎬ如出现心脏畸形ꎮ以上研究说明SiNPs在细胞和整体动物水平均有毒性作用ꎬ并且其毒性作用与SiNPs的粒径大小㊁表面修饰方式及暴露剂量密切相关ꎬ也与作用的细胞或生物种类相关ꎮ因此明确SiNPs对不同细胞和生物的作用特点和机制ꎬ对深入了解SiNPs的生物安全性差异以及如何合理生物利用SiNPs至关重要ꎮ2㊀SiNPs的毒性作用机制2.1㊀氧化应激㊀氧化应激是纳米材料常见的毒性作用机制ꎬ也是较为关键的作用路径ꎮSiNPs本身具有高反应性和高生物活性ꎬ其通过内吞作用进入细胞后可诱导细胞内ROS升高ꎬ导致氧化应激反应和细胞损伤ꎮ细胞水平研究表明ꎬSiNPs作用于HaCaT细胞系㊁神经母细胞瘤细胞系和内皮细胞等多种细胞ꎬ使细胞内ROS升高ꎬ进一步导致DNA损伤ꎬ这种效应并与SiNPs粒径和剂量相关[13ꎬ20-22]ꎻ其中在HaCaT细胞中SiNPs作用于ROS介导的上游激酶ꎬ使Akt/Src和JAK2的磷酸化激活STAT3信号途径ꎬ从而诱导HaCaT细胞中COX ̄2的表达ꎬ并呈现剂量 ̄时间效应ꎮGuo等[23]通过将人脐静脉内皮细胞(humanumbilicalveinendothelialcellsꎬHU ̄VECs)系与SiNPs共孵育24h后发现ꎬSiNPs使丙二醛(malondialdehydeꎬMDA)㊁超氧化物羟化酶(superoxidedismutaseꎬSOD)和谷胱甘肽(glutathi ̄oneꎬGSH)含量明显增加ꎬ使谷胱甘肽过氧化物酶含量下降ꎻSiNPs可激活核因子E2相关因子2(nu ̄clearfactor ̄E2relatedfactor2ꎬNrf2)介导的抗氧化系统ꎬ使Nrf2及其关键下游基因的mRNA表达上调ꎮSiNP在氧化型低密度脂蛋白刺激后可增强其本身的细胞毒性ꎬ促进RAW264.7巨噬细胞脂质聚集ꎬ从而表现出更明显的细胞毒性[24]ꎮHozayen等[25]报道ꎬ介孔纳米二氧化硅(mesoporoussilicananoparticlesꎬMSN)通过过量产生ROSꎬ抑制抗氧化剂的作用ꎬ促进炎症和组织损伤ꎬ从而诱导心脏毒性和肺毒性ꎮYu等[26]报道ꎬ将径粒65nm的SiNPs通过鼠尾静脉注射于小鼠体内ꎬ发现SiNPs通过氧化应激途径激活了TGF ̄β1/Smad3信号通路使肝脏纤维化ꎬ并使肝脏组织进一步出现凋亡坏死ꎬ这种效应呈现时间依赖性ꎮWu等[27]通过给大鼠气管滴注径粒15nm的SiNPsꎬ发现SiNPs可时间和剂量依赖性地致大脑纹状体和海马中ROS明显蓄积ꎬ脑组织中H2O2㊁GSH㊁SOD和MDA的含量明显增加并出现炎症反应ꎮ研究发现ꎬSiNPs通过不同途径进入生物体均可引起多个脏器发生氧化应激反应ꎮ2.2㊀炎性反应㊀进入生物体的SiNPs可引起炎症反应ꎬ炎症可使部分细胞变性㊁坏死ꎬ从而引起生物机体机能发生改变ꎮGuo等[28]通过将SiNPs与Ca ̄co ̄2细胞和HT29 ̄MTX细胞共培养ꎬ发现SiNPs可改变这些细胞的营养转运蛋白的表达水平ꎬ并引发炎症反应ꎬIL ̄8和TNFα表达上调ꎻ活性氧物质的增加说明炎症的发生与氧化应激有关ꎮ吸入性SiNPs使海马神经元炎性因子IL ̄1β㊁IL ̄6和COX ̄2明显增加ꎬ并呈现出系统性炎症[29]ꎮSiNPs诱导斑马鱼产生中性粒细胞介导的心脏炎性改变ꎬ同时使心脏收缩标记蛋白肌钙蛋白T表达明显下调ꎬ说明SiNPs通过中性粒细胞介导的心脏炎症和收缩蛋白下调ꎬ从而使心功能下降[19]ꎮ㊀㊀Guo等[23]通过将HUVECs与SiNPs共孵育24h后发现ꎬSiNPs使细胞炎症因子IL ̄1β㊁IL ̄6㊁IL ̄8㊁TNF ̄α㊁ICAM ̄1㊁VCAM ̄1和MCP ̄1上调ꎮUemura等[30]将SiNPs与RAW264.7细胞系共孵育时ꎬ仅表现为TNF ̄α㊁IL ̄6和IL ̄1β表达增加ꎬ细胞内ROS无明显改变ꎬ说明SiNPs所引起的炎症反应不仅仅是氧化应激所致ꎬ也与信号转导通路的改变有关[31]ꎮYang等[19]将SiNPs与RAW264.7细胞共孵育后ꎬ显示SiNPs通过激活NLRP3炎性小体使细胞分泌炎性因子ꎻ同时SiNPs被吞噬进入细胞后进一步促使炎症的发生ꎮ以上研究均显示SiNPs可使生物体炎症反应发生的危险性增加ꎬ炎症反应是其引发生物毒性的机制之一ꎮ2.3㊀线粒体损伤㊀线粒体是大多数细胞产生能量的主要场所ꎬ也是细胞中活性氧的主要来源ꎬ所以线粒体损伤可引起细胞或机体发生功能性障碍ꎮSiNPs可使心肌细胞线粒体膜电位改变ꎬ使细胞ATP供应障碍ꎬ从而引起心肌细胞功能障碍ꎮZhang等[32]发现SiNPs与小鼠精母细胞系共孵育后发现ꎬSiNPs使线粒体肿胀ꎬ线粒体结构损伤ꎬ线粒体嵴出现断裂并逐渐消失ꎬ从而使ATP生成障碍ꎬ这种效应呈现剂量依赖性ꎮDu等[33]通过气管灌注粒径60nm的SiNPsꎬ发现心肌细胞形态和超微结构均发生明显异常ꎬ并通过线粒体途径激活caspase ̄3蛋白ꎬ导致心肌细胞凋亡ꎮ2.4㊀DNA损伤㊀作为细胞遗传信息的携带者ꎬDNA损伤必然会引起细胞功能障碍ꎬ从而呈现相应的表型ꎮSiNPs通过使细胞骨架紊乱ꎬ可直接破坏DNA双链结构ꎬ使组蛋白磷酸化ꎬ从而使DNA无法正常发挥功能ꎮSiNPs可直接使细胞核结构破坏ꎬ从而使细胞发生凋亡[34]ꎮ人肠Caco ̄2细胞系暴露于SiNPs后ꎬ虽在细胞核中无明显SiNPs颗粒聚集ꎬ但细胞内DNA明显损伤ꎬ并呈现出浓度依赖性[35]ꎮSiNPs可通过激活PKC信号通路使细胞停留在G0 ̄G1期ꎬ出现异常有丝分裂ꎬ并最终发生细胞凋亡ꎮ2.5㊀其他机制㊀SiNPs可使多种细胞发生内质网应激ꎬ从而使细胞发生凋亡ꎮWu等[36]发现SiNPs能进入肺泡上皮细胞并在其内质网中蓄积ꎬ导致细胞形态异常和细胞器损伤ꎻSiNPs暴露增加了两种ER应激标记物BiP和CHOP的表达水平ꎬ并使细胞凋亡ꎮSiNPs使LN229细胞内质网应激标记物GRP78㊁GRP94和DDIT3的水平增加ꎬ以及IL1B和COX2基因表达显著上调ꎬ说明内质网应激是SiNPs的毒性机制之一[37]ꎬSiNPs也可通过内质网应激途径引起细胞凋亡ꎮYang等[38]发现ꎬSiNPs可通过影响钾通道而抑制HUVECs活性ꎬ但SiNPs影响钾通道的机制尚未完全明确ꎮSiNPs还激活内皮和周皮细胞的自噬活动ꎬ减弱细胞黏附分子的表达ꎬ干扰内皮细胞稳态ꎬ最终抑制血管生成ꎮSiNPs导致年轻成年小鼠的情绪功能障碍和认知功能障碍ꎬ并通过ERK激活引起神经退行性病变和突触改变[29]ꎮ低剂量SiNPs能使肝出现肉芽肿ꎬ并逐渐出现纤维化ꎬ并在多个器官(肝㊁心脏㊁肺)均出现肥大细胞聚集[39]ꎮ总之ꎬSiNPs的毒性作用机制呈现多样化形式ꎬ这在评价SiNPs的毒性作用时需特别注意ꎬ以免遗漏有关作用ꎬ造成判断失误ꎮ3㊀影响SiNPs毒性作用的因素3.1㊀粒径㊀纳米颗粒粒径是影响其毒性作用的重要因素ꎮZhou等[40]将4种粒径(15㊁25㊁50㊁100nm)的SiNPs与HUVECs共孵育后发现ꎬSiNPs引起细胞内ROS升高ꎬ粒径越小ꎬROS升高越明显ꎮ将SiNPs通过鼠尾静脉注射入小鼠体内发现ꎬ粒径(10㊁30㊁50㊁70㊁100㊁300㊁1000nm)大小与血小板减少㊁肝损伤和致死毒性之间呈负相关ꎻ但50nmSiNPs诱导低体温效应最为明显[41]ꎮLee等[42]发现ꎬ20nm和50nm两种粒径的SiNPs诱导人内皮细胞发生凋亡途径截然不同ꎬ粒径20nm的SiNPs通过ER应激途径导致细胞凋亡ꎬ而50nmSiNPs通过P13K/AKT/eNOS信号轴诱导细胞自噬从而发生凋亡ꎮ此外ꎬSiNPs的粒径影响其是否被皮肤吸收ꎬ从而发挥其生物学效应[43]ꎮ3.2㊀表面修饰㊀SiNPs因为化学性质稳定使得表面易修饰ꎬ从而被广泛应用于多个领域中ꎮ有研究发现ꎬ表面修饰无孔和有孔SiNPs作为载体进行靶向药物转运治疗中具有重要作用[44]ꎮGiovannini等[45]通过稳定性更好的水凝胶SiNPs和普通SiNPs分别作用于人胶质母细胞瘤和小鸡体循环发现ꎬ水凝胶SiNPs具有更好的生物相容性ꎬ同时并无明显血栓形成或致死情况的发生ꎮ非致死颗粒的表面修饰可以在暴露的生物体内的多个器官中产生不同的毒性结果ꎮ甘氨酸功能化SiNPs以类似于可溶性甘氨酸的方式影响斑马鱼胚胎死亡率ꎬ发现两种SiNPs均可使胚胎大脑㊁心脏和肝等器官损伤ꎬ使得斑马鱼胚胎发育缺陷[46]ꎮ3.3㊀其他因素㊀SiNPs毒性作用受纳米颗粒结构形态㊁暴露方式㊁暴露剂量等多种因素影响ꎮ而SiNPs本身有晶体和不定形两种结构ꎬ可根据用途经过不同的合成方法合成多种结构ꎮ而暴露途径的不同主要作用的器官也略有不同ꎮ呼吸道途径主要作用于肺[47]ꎬ而通过消化道和静脉注射进入机体主要的靶器官是心脏㊁肝和脾[26]ꎮSiNPs毒性作用影响因素繁多ꎬ合理设计SiNPs的粒径及表面修饰是安全应用SiNPs的基础ꎬ同时应提高生物利用率从而减少暴露剂量ꎮ4㊀展㊀㊀望综合以上毒性作用和作用机制分析发现ꎬSiNPs虽因其结构和效应的特殊性而被广泛应用ꎬMSN甚至被应用于药物载体的研究ꎬ但对其生物安全性的评价目前仍不充分ꎬ因而不容被忽视ꎮ目前针对SiNPs的毒性作用研究ꎬ均证实SiNPs可以使生物体的多个系统ꎬ如免疫系统㊁心血管系统㊁呼吸系统等发生功能紊乱ꎻ部分作用机制及影响毒性效应的因素已得到较好的阐释ꎬ如SiNPs的粒径大小㊁所带电荷以及修饰方式均可影响毒性作用ꎮ进一步探讨SiNPs毒性作用的靶点ꎬ以便为后期更好地防治SiNPs毒性事件的发生提供理论依据ꎮSiNPs通过内吞作用进入细胞的复杂路径及被溶酶体降解的过程还需进一步研究ꎬ这可为SiNPs作为纳米药物载体提供详细的药物转运路径ꎬ为后期临床应用提供更为精准的方案ꎬ同时为是否通过改变纳米颗粒的粒径及修饰方式来找到一个低毒性甚至无毒性的纳米颗粒提供参考ꎬ以便更好应用到医疗和日常生活中ꎮ参考文献[1]㊀VanceMEꎬKuikenTꎬVejeranoEPꎬetal.Nanotechnologyintherealworld:Redevelopingthenanomaterialconsumerproductsinventory[J].BeilsteinJNanotechnolꎬ2015ꎬ6:1769 ̄1780. [2]㊀ShevchenkoSNꎬBurkhardtMꎬShevalEVꎬetal.AntimicrobialEffectofBiocompatibleSiliconNanoparticlesActivatedUsingTherapeuticUltrasound[J].Langmuirꎬ2017ꎬ33(10):2603 ̄2609.[3]㊀AlyIꎬTaherEEꎬnainGELꎬetal.Advantagesofbioconjugatedsilica ̄coatednanoparticlesasaninnovativediagnosisforhumantoxoplasmosis[J].ActaTropicaꎬ2018ꎬ177:19 ̄24. [4]㊀ChenFꎬZhangXꎬMaKꎬetal.Melanocortin ̄1Receptor ̄Targe ̄tingUltrasmallSilicaNanoparticlesforDual ̄ModalityHumanMelanomaImaging[J].ACSApplMaterInterfacesꎬ2018ꎬ10(5):4379 ̄4393.[5]㊀ParkSMꎬAalipourAꎬVermeshOꎬetal.Towardsclinicallytranslatableinvivonanodiagnostics[J].NatRevMaterꎬ2017ꎬ2(5):17014.[6]㊀CuiHꎬLiSꎬDengSꎬetal.FlexibleꎬTransparentꎬandFree ̄StandingSiliconNanowireSERSPlatformforinSituFoodIn ̄spection[J].ACSSensorsꎬ2017ꎬ2(3):386 ̄393. [7]㊀ShiMꎬXiaLꎬChenZꎬetal.Europium ̄dopedmesoporoussilicananosphereasanimmune ̄modulatingosteogenesis/angiogenesisagent[J].Biomaterialsꎬ2017ꎬ144:176 ̄187.[8]㊀LimEKꎬKimTꎬPaikSꎬetal.Nanomaterialsfortheranostics:recentadvancesandfuturechallenges[J].ChemRevꎬ2015ꎬ115(1):327 ̄394.[9]㊀MebertAMꎬBagloleCJꎬDesimoneMFꎬetal.Nanoengineeredsilica:Propertiesꎬapplicationsandtoxicity[J].FoodChemTox ̄icolꎬ2017ꎬ109(Pt1):753 ̄770.[10]㊀Tzur ̄BalterAꎬShatsbergZꎬBeckermanMꎬetal.Mechanismoferosionofnanostructuredporoussilicondrugcarriersinneoplas ̄tictissues[J].NatCommunꎬ2015ꎬ6(1):6208.[11]㊀DuZꎬCuiGꎬZhangJꎬetal.Inhibitionofgapjunctionintercel ̄lularcommunicationisinvolvedinsilicananoparticles ̄inducedH9c2cardiomyocytesapoptosisviathemitochondrialpathway[J].IntJNanomedicineꎬ2017ꎬ12:2179 ̄2188.[12]㊀Guerrero ̄BeltranCEꎬBernal ̄RamirezJꎬLozanoOꎬetal.Silicananoparticlesinducecardiotoxicityinterferingwithenergeticsta ̄tusandCa(2+)handlinginadultratcardiomyocytes[J].AmJPhysiolHeartCircPhysiolꎬ2017ꎬ312(4):H645 ̄H661. [13]㊀KunduJꎬKimDHꎬChaeIGꎬetal.SilicondioxidenanoparticlesinduceCOX ̄2expressionthroughactivationofSTAT3signalingpathwayinHaCaTcells[J].ToxicolInVitroꎬ2018ꎬ52:235 ̄242.[14]㊀DubesVꎬParpaiteTꎬDucretTꎬetal.Calciumsignallingin ̄ducedbyinvitroexposuretosiliciumdioxidenanoparticlesinratpulmonaryarterysmoothmusclecells[J].Toxicologyꎬ2017ꎬ375:37 ̄47.[15]㊀NemmarAꎬYuvarajuPꎬBeegamSꎬetal.Oxidativestressꎬin ̄flammationꎬandDNAdamageinmultipleorgansofmiceacutelyexposedtoamorphoussilicananoparticles[J].IntJNanomedi ̄cineꎬ2016ꎬ11:919 ̄928.[16]㊀ChenZꎬMengHꎬXingGꎬetal.Age ̄RelatedDifferencesinPul ̄monaryandCardiovascularResponsestoSiO2NanoparticleInha ̄lation:NanotoxicityHasSusceptiblePopulation[J].EnvironSciTechnolꎬ2008ꎬ42(23):8985 ̄8992.[17]㊀DuanJꎬHuHꎬFengLꎬetal.Silicananoparticlesinhibitmacro ̄phageactivityandangiogenesisviaVEGFR2 ̄mediatedMAPKsignalingpathwayinzebrafishembryos[J].Chemosphereꎬ2017ꎬ183:483 ̄490.[18]㊀DuanJꎬYuYꎬLiYꎬetal.Cardiovasculartoxicityevaluationofsilicananoparticlesinendothelialcellsandzebrafishmodel[J].Biomaterialsꎬ2013ꎬ34(23):5853 ̄5862.[19]㊀DuanJꎬYuYꎬLiYꎬetal.Low ̄doseexposureofsilicananopar ̄ticlesinducescardiacdysfunctionvianeutrophil ̄mediatedinflam ̄mationandcardiaccontractioninzebrafishembryos[J].Nano ̄toxicologyꎬ2016ꎬ10(5):575 ̄585.[20]㊀GongCꎬTaoGꎬYangLꎬetal.Theroleofreactiveoxygenspe ̄ciesinsilicondioxidenanoparticle ̄inducedcytotoxicityandDNAdamageinHaCaTcells[J].MolBiolRepꎬ2012ꎬ39(4):4915 ̄4925.[21]㊀RoshanfekrnahzomiZꎬBadpaPꎬEsfandiariBꎬetal.Silicanano ̄particlesinduceconformationalchangesoftauproteinandoxida ̄tivestressandapoptosisinneuroblastomacellline[J].IntJBiolMacromolꎬ2019ꎬ124:1312 ̄1320.[22]㊀GuoCꎬMaRꎬLiuXꎬetal.Silicananoparticlesinducedendo ̄thelialapoptosisviaendoplasmicreticulumstress ̄mitochondrialapoptoticsignalingpathway[J].Chemosphereꎬ2018ꎬ210:183 ̄192.[23]㊀GuoCꎬXiaYꎬNiuPꎬetal.Silicananoparticlesinduceoxida ̄tivestressꎬinflammationꎬandendothelialdysfunctioninvitroviaactivationoftheMAPK/Nrf2pathwayandnuclearfactor ̄kappaBsignaling[J].IntJNanomedicineꎬ2015ꎬ10:1463 ̄1477. [24]㊀GuoCꎬMaRꎬLiuXꎬetal.SilicananoparticlespromoteoxLDL ̄inducedmacrophagelipidaccumulationandapoptosisviaendo ̄plasmicreticulumstresssignaling[J].SciTotalEnvironꎬ2018ꎬ631 ̄632:570 ̄579.[25]㊀HozayenWGꎬMahmoudAMꎬDesoukyEMꎬetal.CardiacandpulmonarytoxicityofmesoporoussilicananoparticlesisassociatedwithexcessiveROSproductionandredoximbalanceinWistarrats[J].BiomedPharmacotherꎬ2019ꎬ109:2527 ̄2538. [26]㊀YuYꎬDuanJꎬLiYꎬetal.Silicananoparticlesinduceliverfi ̄brosisviaTGF ̄beta1/Smad3pathwayinICRmice[J].IntJNanomedicineꎬ2017ꎬ12:6045 ̄6057.[27]㊀WuJꎬWangCꎬSunJꎬetal.NeurotoxicityofSilicaNanoparti ̄clesBrainLocalizationandDopaminergicNeuronsDamagePath ̄ways[J].ACSNanoꎬ2011ꎬ5(6):4476 ̄4489.[28]㊀GuoZꎬMartucciNJꎬLiuYꎬetal.Silicondioxidenanoparticleexposureaffectssmallintestinefunctioninaninvitromodel[J].Nanotoxicologyꎬ2018ꎬ12(5):485 ̄508.[29]㊀YouRꎬHoYSꎬHungCHꎬetal.Silicananoparticlesinduceneurodegeneration ̄likechangesinbehaviorꎬneuropathologyꎬandaffectsynapsethroughMAPKactivation[J].PartFibreToxicolꎬ2018ꎬ15(1):28.[30]㊀UemuraEꎬYoshiokaYꎬHiraiTꎬetal.Relationshipbetweensizeandsurfacemodificationofsilicaparticlesandenhancementandsuppressionofinflammatorycytokineproductionbylipopo ̄lysaccharide ̄orpeptidoglycan ̄stimulatedRAW264.7macropha ̄ges[J].JNanopartResꎬ2016ꎬ18(6):165.[31]㊀MossmanBTꎬBormPJꎬCastranovaVꎬetal.Mechanismsofac ̄tionofinhaledfibersꎬparticlesandnanoparticlesinlungandcardiovasculardiseases[J].PartFibreToxicolꎬ2007ꎬ4:4. [32]㊀ZhangJꎬRenLꎬWeiJꎬetal.Silicananoparticlesinduceabnor ̄malmitosisandapoptosisviaPKC ̄δmediatednegativesignalingpathwayinGC ̄2?cellsofmice[J].Chemosphereꎬ2018ꎬ208:942 ̄950.[33]㊀DuZꎬChenSꎬCuiGꎬetal.Silicananoparticlesinducecardio ̄myocyteapoptosisviathemitochondrialpathwayinratsfollowingintratrachealinstillation[J].IntJMolMedꎬ2019ꎬ43(3):1229 ̄1240.[34]㊀HariniLꎬSrivaatavaSꎬGnanakumarGPꎬetal.Aningeniousnon ̄sphericalmesoporoussilicananoparticlecargowithcurcumininducesmitochondria ̄mediatedapoptosisinbreastcancer(MCF ̄7)cells[J].Oncotargetꎬ2019ꎬ10(11):1193 ̄1208. [35]㊀TarantiniAꎬLanceleurRꎬMourotAꎬetal.Toxicityꎬgenotoxici ̄tyandproinflammatoryeffectsofamorphousnanosilicainthehu ̄manintestinalCaco ̄2cellline[J].ToxicolInVitroꎬ2015ꎬ29(2):398 ̄407.[36]㊀WuTꎬZhangSꎬLiangXꎬetal.Theapoptosisinducedbysilicananoparticlethroughendoplasmicreticulumstressresponseinhu ̄manpulmonaryalveolarepithelialcells[J].ToxicolInVitroꎬ2019ꎬ56:126 ̄132.[37]㊀KusaczukMꎬKretowskiRꎬNaumowiczMꎬetal.Silicananopar ̄ticle ̄inducedoxidativestressandmitochondrialdamageisfol ̄lowedbyactivationofintrinsicapoptosispathwayinglioblastomacells[J].IntJNanomedicineꎬ2018ꎬ13:2279 ̄2294. [38]㊀YangL.ꎬYanQꎬZhaoJꎬetal.Theroleofpotassiumchannelinsilicananoparticle ̄inducedinflammatoryeffectinhumanvascularendothelialcellsinvitro[J].ToxicolLettꎬ2013ꎬ223(1):16 ̄24. [39]㊀ZhuravskiiSꎬYukinaGꎬKulikovaOꎬetal.Mastcellaccumula ̄tionprecedestissuefibrosisinducedbyintravenouslyadminis ̄teredamorphoussilicananoparticles[J].ToxicolMechMethodsꎬ2016ꎬ26(4):260 ̄269.[40]㊀ZhouFꎬLiaoFꎬChenLꎬetal.Thesize ̄dependentgenotoxicityandoxidativestressofsilicananoparticlesonendothelialcells[J].EnvironSciPollutResIntꎬ2019ꎬ26(2):1911 ̄1920. [41]㊀HandaTꎬHiraiTꎬIzumiNꎬetal.Identifyingasize ̄specifichaz ̄ardofsilicananoparticlesafterintravenousadministrationanditsrelationshiptotheotherhazardsthathavenegativecorrelationswiththeparticlesizeinmice[J].Nanotechnologyꎬ2017ꎬ28(13):135101.[42]㊀LeeKꎬLeeJꎬKwakMꎬetal.Twodistinctcellularpathwaysleadingtoendothelialcellcytotoxicitybysilicananoparticlesize[J].JNanobiotechnologyꎬ2019ꎬ17(1):24.[43]㊀RancanFꎬGaoQꎬGrafCꎬetal.Skinpenetrationandcellularuptakeofamorphoussilicananoparticleswithvariablesizeꎬsur ̄facefunctionalizationꎬandcolloidalstability[J].ACSNanoꎬ2012ꎬ6(8):6829 ̄6842.[44]㊀BrezaniovaIꎬZarubaKꎬKralovaJꎬetal.Silica ̄basednanoparti ̄clesareefficientdeliverysystemsfortemoporfin[J].Photodiag ̄nosisPhotodynTherꎬ2018ꎬ21:275 ̄284.[45]㊀GiovanniniGꎬWarnckePꎬFischerDꎬetal.Improvingcolloidalstabilityofsilicananoparticleswhenstoredinresponsivegel:ap ̄plicationandtoxicitystudy[J].Nanotoxicologyꎬ2018ꎬ12(5):407 ̄422.[46]㊀DumitrescuEꎬKarunaratneDPꎬProchaskaMKꎬetal.Develop ̄mentaltoxicityofglycine ̄coatedsilicananoparticlesinembryoniczebrafish[J].EnvironmentalPollutionꎬ2017ꎬ229:439 ̄447. [47]㊀SmuldersSꎬLuytsKꎬBrabantsGꎬetal.Toxicityofnanoparticlesembeddedinpaintscomparedwithpristinenanoparticlesinmice[J].ToxicolSciꎬ2014ꎬ141(1):132 ̄140.(收稿日期:2019 ̄06 ̄27ꎻ㊀修回日期:2019 ̄08 ̄05)(责任编辑:缪㊀琴ꎻ㊀英文编辑:邵荣青)。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

纳米材料体外细胞毒性研究现状与展望作者:汪保林邱慧来源:《世界中医药》2017年第02期摘要纳米科学是上个世纪80年代末发展起来的新兴学科,是21世纪最有前途的新科学技术之一。

随着纳米材料应用的日益广泛,其所带来的健康风险也越来越大,对其生物安全性的研究也刻不容缓。

文章就纳米材料的毒性影响因素,对细胞造成的毒性效应机制及其体外细胞毒性的评价方法进行详细阐述,并综述了近几年来关于纳米材料毒性研究的最新进展及对纳米技术安全性评估进行了系统的讨论。

关键词纳米材料;细胞毒性;影响因素;评价方法Abstract Nanoscience emerged in the last 1980 s and is developed as one of the most promising new science and technology in the 21st century. With the increasing widespread application of nanomaterials,their health risk has been greatly increased and researches on its biological safety are imperatively needed. In this paper,the toxic influential factors,the cytotoxicity mechanism of nanomaterials and the evaluation methods on cytotoxicity of nanomaterials in vitro were elucidated in detail. Simultaneously,the latest developments on the toxicity of nanomaterials and the security assessment of nano technologies were also systematically discussed.Key Words Nanomaterials;Cytotoxicity;Influential factors;Evaluative methods中图分类号:R-331;R319文献标识码:Adoi:10.3969/j.issn.1673-7202.2017.02.052从“纳米牙膏”到“纳米防晒霜”,全球目前已有300多种运用纳米技术上市的产品。

纳米技术开始走进人们的生活圈,它们在环境和人群中的暴露率大大增加。

目前对纳米材料可能的、潜在的安全性问题报道甚少。

因此,对纳米颗粒生态安全性的评估也刻不容缓。

虽然纳米材料的应用在一般情况下都不会造成严重的直接暴露,但纳米材料一旦进入机体就会在体内蓄积,最终导致严重的生物毒性。

大量研究表明:正常无害的大分子物质一旦做成纳米级可能会具有潜在毒性。

与此同时,工程化纳米材料在医学诊断和治疗上的有效利用,造成机体对纳米颗粒的细胞摄取,循环系统和神经系统的转运与分布的特殊动力学行为,也成为了纳米材料致生物毒性的主要原因[1]。

综上所述,只有全面了解纳米材料的毒性行为,才能更好地应用纳米材料并发展纳米技术。

1 纳米材料的毒性影响因素纳米材料的毒性取决于多种因素,除了与材料的纯度,尺寸大小,化学结构,团聚状态,剂量大小及所带电荷相关外,还与曝露时间,曝露途径以及纳米材料的表面修饰、表面活性密切相关[2]。

不同纳米材料的毒性效应存在差异,一般情况下,纳米颗粒粒径越小,其潜在毒性越大[3]。

而这种差异与颗粒本身的其他特殊性质如表面特征,聚合状态以及化学组成等有密切关系[4]。

在体外毒性实验中,纳米颗粒会被分散于细胞培养基中,此时,颗粒处于水溶液环境,包括粒径等其他特征会发生相应变化,而这些变化很可能会影响到颗粒与生物体的作用方式及强度大小。

动物实验发现:经体外灌注产生的纳米毒性效应与颗粒的粒径和表面积息息相关,即随着纳米颗粒减小,其表面积会增大,随后会产生更强的炎性反应[1]。

与此同时,剂量大小也是影响纳米颗粒细胞毒性的重要关键因素。

在0~15 ppm的研究范围内,纳米SiO2对鼠胚胎成纤维细胞和人体皮瘤细胞无明显毒性作用,但当纳米SiO2颗粒剂量高于138 μg/mL时,会导致细胞膜的严重损伤[5]。

多数纳米金属及其金属氧化物颗粒在水溶液中易发生团聚效应,团聚后的颗粒其粒径大小决定了颗粒是通过细胞内吞作用,ROS诱导的吞噬作用还是其他机制进入细胞内部[6]。

暴露途径决定了生物屏障和纳米材料间的作用关系。

就目前的研究来看,肺部是纳米颗粒主要的摄入器官,呼吸途径毒性是明确的,纳米材料可引起机体呼吸系统的炎性反应,但口服、皮肤接触,正常机体非疾病状态时,纳米材料其实无法突破生物屏障。

据报道,细胞膜表面带负电荷,因此细胞易与表面带正电荷的颗粒、离子以及小分子物质发生相互作用,从而进入细胞内部[7],在细胞内蓄积并产生严重的生物毒性。

Richards,D等研究表明,无机材料包覆的纳米颗粒的表面电荷及表面疏水性是细胞毒性的可控因素,表面带正电荷的纳米材料相对其他带负电荷或中性的纳米材料而言具有更强的毒性效应,且纳米颗粒的细胞毒性效应也会随着表面疏水性的增强而增强[8]。

目前,对于多数纳米材料的毒性评价都只停留在简单的表面毒性方面,对于其毒性机制的研究尚不深入,急需广泛关注。

2 纳米颗粒细胞毒性发生机制研究细胞毒性效应产生主要包括以下3个方面:线粒体活性的抑制,细胞膜完整性、通透性的改变,其次是氧化应激诱导细胞凋亡或坏死。

具有不同理化性质的纳米材料可通过不同的毒性机制产生不同的炎性反应及毒性反应。

Lai等将纳米颗粒与细胞相互作用后诱导产生细胞毒性及其他反应机制归纳为如下几点[9]:1)与细胞膜发生相互作用,引起离子转运及信号转导的不稳定性甚至导致细胞死亡;2)与线粒体发生相互作用,改变新城代谢途径或者干预抗氧化防护体系和ROS的产生;3)与DNA发生作用,破坏DNA片段结构,抑制细胞周期的分裂和蛋白质的合成;4)与细胞骨架发生相互作用,阻碍囊泡的运转,产生机械性损伤并导致细胞死亡;5)与磷脂、蛋白质或者其他生物大分子作用,造成不同程度的细胞损伤。

线粒体是对各种细胞损伤最为敏感的细胞器之一,在细胞损伤时最常见的病理改变主要包括线粒体大小,数量以及结构的改变,凋亡或受损的线粒体最终可由细胞的自噬过程加以处理并被溶酶体降解消化。

Chou cc[21]等指出,小鼠经灌注SWCNT后,肺组织病理切片中发现肺巨噬细胞可经内吞作用摄入SWCNT,并随着时间和剂量的增加肺巨噬细胞内沉积的SWCNT 颗粒越多,甚至能产生肉芽肿病变。

上述研究充分证明了碳纳米管确实可以与细胞膜表面发生相互作用,并在细胞内沉积,继而产生细胞毒性。

但是,目前关于CNT进入细胞的途径研究尚处于探索阶段,需要进一步深入证实。

纳米颗粒诱导氧化应激的机制主要是当金属型纳米颗粒分散在适当试剂当中会催化ROS 的生成,发生Fenton反应,从H2O2氧化得到OOH-和OH-等氧化离子。

此外,一些惰性纳米材料虽然不具备自发生成ROS的能力,但是当纳米离子能够靶向聚集在线粒体时,在一些生物条件下能够诱导ROS的生成。

低水平的氧化应激会促使机体保护性反应的发生,而高水平的氧化应激则会导致机体的过氧化损伤[10]。

细胞组织在受到自由基的氧化胁迫时,构成细胞组织的各种物质如糖类、蛋白质、脂质以及DNA等大分子物质会发生各种氧化反应,导致交联、变性、断裂等氧化损伤以及细胞结构和功能的破坏,产生机体组织和器官的病变,最终导致毒性反应。

Nel等[10]也提出ROS的生成和机体的氧化应激反应是纳米材料诱导多种生物毒性效应的重要机制。

纳米SWCNTs,SiO2,ZnO对小鼠胚胎成纤维的毒性研究结果表明,纳米ZnO的细胞毒性高于其他非金属纳米颗粒,可引起细胞内ROS水平的显著上升,谷胱甘肽的大量耗竭,丙二醛以及超氧化物歧化酶含量的明显降低,在此证明氧化应激可能是纳米材料细胞毒性的一个主要途径[4]。

An等[11]发现,碳纳米管可结合于DNA上,导致DNA的损伤,造成机体遗传毒性。

综上可知,纳米材料会造成细胞内结构损伤,存活率下降,细胞内氧化自由基水平升高以及DNA断链等毒性反应,致使细胞在一定条件下发生凋亡。

3 体外细胞毒性实验研究现状体外毒性检测主要包括2个方面:纳米颗粒在无细胞体系中的活性和纳米颗粒与细胞的相互作用。

纳米颗粒在细胞体系中的活性包括蛋白质的反应,补体激活以及氧化自由基的产生等。

检测纳米材料与细胞的作用首先是要区别是什么细胞毒性,而一般药物的毒性作用不是诱导细胞凋亡就是细胞坏死。

3.1 氧化应激检测方法纳米颗粒致细胞毒性的一个重要途径就是诱导发生氧化应激。

氧化应激反应主要的检测方法有:通过DCFH-DA[12]荧光标记法,黄嘌呤氧化酶法、二硫代二硝基苯甲酸法,罗丹明123荧光染色,硫代巴比妥酸法等检测细胞内ROS含量;Amplex Red荧光染色可检测细胞内脂质氢过氧化物;C11-BODIPY荧光染色,GSH试验方法[13]等检测细胞内脂质过氧化;免疫印迹法检测SOD的表达,氯化硝基四氮唑兰(NBT)可检测细胞内SOD的活性,DTNB可检测机体抗氧化系统的损伤。

3.2 细胞凋亡检测方法细胞凋亡是指机体在一定的生理或病理条件下,遵循一定程序自身结束生命的过程。

细胞核浓缩、染色体凝聚、DNA片段化、细胞缩小、分解,凋亡小体的形成等是细胞凋亡的主要形态变化特征,但对周围细胞无明显影响。

可用于检测细胞凋亡的试验主要包括如下几种方法:形态学观察:普通光学显微镜(Ordinary Optical Microscopy),荧光显微镜(Fluorescence Microscope)和透射电子显微镜(Transmission Electron microscopy,TEM)可对染毒细胞的形态进行分析。

凋亡细胞形态依据为:细胞染色质浓集,靠近核膜,产生核边集现象;染色质断裂、核膜裂解,凋亡小体形成等典型的细胞凋亡形态。

DNA损伤所引起的细胞毒性效应检测方法主要有彗星试验,TUNEL法,流式细胞仪法[14]等检测手段,流式细胞术检测凋亡的常用方法包括:1)DNA荧光检测;2)抗荧光抗体染色荧光检测;3)末端标记法检测;4)线粒体膜电位检测。

彗星试验是将少量分散的细胞与低熔点琼脂糖液混合后铺在预冷的琼脂板上制成的,经细胞裂解和碱性解旋,并在碱性环境下进行电泳;当DNA存在断裂损伤时,细胞核会形成一个类似彗星的图像,根据彗星的头部和尾部的含量比率,进而确定细胞DNA损伤的程度。

相关文档
最新文档