免疫组化抗原修复技术新进展_姚梅宏
免疫组化中抗原修复方法及修复液的比较

免疫组化中抗原修复方法及修复液的比较邹亮【摘要】目的本实验通过比较几种常用的抗原修复技术在免疫组化中的效果,寻求一种简洁、方便、实用的抗原修复方法.方法分别选取10种细胞核及细胞浆或膜标记的抗体,对理论上阳性的组织进行标记,对每种抗体均分别采用不修复,PH6.0柠檬酸煮沸,PH6.0柠檬酸高温高压修复,PH9.0EDTA煮沸,PH9.0EDTA高温高压修复.结果本实验的20种抗体均标记理论上为阳性的组织,不修复的有16种抗体阴性,水煮热修复与高压热修复的修复效果并无明显差别.抗原修复液中高PH值(9.0)时的染色结果明显好于相同修复方式的低PH值(6.0).结论免疫组化质量与是否进行抗原有关,但与抗原修复方法无关;抗原修复液PH值影响免疫组化质量,掌握抗体最佳的修复液能提高免疫组化结果的阳性率、染色强度,稳定性及准确性.【期刊名称】《健康研究》【年(卷),期】2013(033)003【总页数】3页(P176-178)【关键词】免疫组化;抗原修复;PH【作者】邹亮【作者单位】浙江大学医学院附属第一医院,病理科,浙江,杭州,310003【正文语种】中文【中图分类】R365免疫组织化学技术具有特异性、灵敏性、简洁性等优点,还能够将形态和功能结合,定性、定位和定量相结合,因此,在半个多世纪以来免疫组织化学技术广泛应用于病理诊断,尤其是在肿瘤诊断中不可缺少。
其原理是用已知抗体去检测未知抗原,而抗原在组织固定过程中因蛋白质的氨基与醛基交联成羧基,使部分蛋白抗原决定族被封闭,因此,在免疫组化染色前,必须进行抗原修复,打开其封闭状态使其充分暴露,才能与抗体充分结合,故在免疫组织化学技术中抗原的暴露修复是至关重要的[1]。
自1991年加热抗原修复报道后,免疫组化工作者对抗原修复方法及修复液进行了不断的探索,并对其效果进行比较研究,归纳起来影响抗原修复的因素主要有两种,一是抗原修复的温度,二是抗原修复的PH值。
本文对常用的两种修复液及最常用的两种修复方式进行比较分析。
冰冻切片抗原修复方法

冰冻切片抗原修复方法介绍冰冻切片抗原修复方法是一种在免疫组织化学中常用的技术,用来修复冰冻切片中可能被冷冻处理损坏的抗原。
通过修复抗原,我们可以提高抗体的结合效率和信号强度,从而增加实验的准确性和可靠性。
本文将全面、详细、完整且深入地探讨冰冻切片抗原修复方法,介绍不同的修复方法和其适用范围,以及操作步骤和注意事项。
抗原修复方法热解修复方法热解修复方法是最常用的抗原修复方法之一。
它通过在高温下破坏组织结构中的交联和蛋白质构象,使抗原从固态转变为水溶性形式,增加抗体的结合能力。
热解修复方法适用于大多数组织和抗原,特别适用于染色体蛋白、细胞膜蛋白和细胞质蛋白。
酶解修复方法酶解修复方法利用酶的活性来修复冰冻切片中的抗原。
常用的酶包括蛋白酶K和胰蛋白酶。
酶解修复方法适用于一些膜蛋白、细胞核蛋白和少量胞浆蛋白。
但需要注意的是,酶解修复方法可能对组织结构产生一定的破坏,因此在选择使用时需要谨慎考虑。
化学修复方法化学修复方法利用一些化学试剂来修复冰冻切片中的抗原。
常用的化学修复方法包括甲醛处理和酸性条件下的修复。
甲醛处理可以使蛋白质交联,增加抗体的结合能力;酸性条件下的修复可以改变抗原的电荷性质,提高抗体的亲和力。
化学修复方法适用于一些细胞内和细胞外蛋白。
操作步骤1.制备冰冻切片:将组织样本冷冻至-80摄氏度,然后使用切片机将样本切片,厚度通常为5-10微米。
2.抗原修复:根据实验需要选择合适的修复方法,如热解、酶解或化学修复。
将切片放置在修复试剂中,按照试剂的要求和操作手册进行修复处理。
3.洗涤:用PBS或其他合适的缓冲液洗涤修复后的切片,去除修复试剂。
4.透明化:将切片放置在透明剂中,使其变为透明,然后放入显微镜片上。
5.封片:将显微镜片上的切片用封片胶或其他材料进行封盖,保护切片并增加显微观察的清晰度。
注意事项1.不同的修复方法适用于不同的抗原和组织类型,需要根据实验需求选择合适的修复方法。
2.修复时间和温度需要根据试剂供应商的要求进行调整,避免过度修复或修复不足。
sabc免疫组化法

sabc免疫组化法SABC免疫组织化学法(Streptavidin-Biotin Complex Immunohistochemistry)是一种常用的免疫组织化学技术,于1980年由Hsu等人首次提出,其基本原理是利用亲合素-生物素结合系统来增强免疫反应的信号和灵敏性。
该技术广泛应用于组织病理学和细胞生物学领域,用于检测和定位各种细胞和组织中的抗原或分子标记物,具有高灵敏度和高特异性的特点。
SABC免疫组织化学法的基本步骤如下:1. 样本固定:将待检测的细胞或组织固定在载玻片上。
常用的固定方法包括冰乙酸法、乙醇法和甲醛法等。
2. 抗原修复:由于组织样本在固定过程中可能导致抗原受损或掩盖,所以需要进行抗原修复。
抗原修复的方法有热处理、酶消化和酸碱处理等。
3. 阻断非特异性结合:添加合适的蛋白质阻断液,防止非特异性结合。
4. 一抗孵育:将第一抗体孵育在样本上,第一抗体可以是多种来源,如小鼠单克隆抗体、兔多克隆抗体等,与目标抗原结合。
5. 二抗孵育:将牛、羊或马等动物来源的生物素化的二抗孵育在样本上,二抗的特异性是由于其与人样本中免疫球蛋白的Fc区域结合而实现。
6. ABC复合物孵育:加入经过某种方式标记的ABC复合物,ABC复合物是指由Streptavidin(链霉亲和素A)和生物素化的过氧化物酶(HRP)构成的复合物,通过亲合素与生物素之间的高亲和力实现复合。
7. 标色显色:通过添加染色剂(如DAB)和过氧化氢等试剂,使得过氧化物酶催化反应产生沉积的有色产物。
8. 反应停止:用蒸馏水冲洗玻片,停止显色反应。
9. 后处理及封片:将玻片脱水,用透明剂固定标本,然后盖上封片剂,最后用显微镜观察和分析结果。
SABC免疫组织化学法的优点是具有高灵敏度和高特异性,对于目标抗原的检测和定位有较好的效果。
通过使用链霉亲和素A和生物素结合系统,可以增强免疫反应的信号,提高检测和定位的灵敏性。
此外,该方法简单易行,结果易于解释和分析,广泛应用于组织病理学和细胞生物学领域。
免疫组织化学中抗原修复的研究进展

wae v ,M W )辐 射 辅 助 生理 盐 水 等 固定 ,则 可 获 得 良好 的 免 疫 组 化 染 色 效 果 。 2 制 片 过 程 中脱 水 、 透 明 、 浸 蜡 、 烤 片 对 抗 . 原 性 的 影 响 :阻 断 内 源 酶 用 的 Hz z 甲 醇 ,抗 原 0, 暴 露 及 修 复 过 程 中用 的蛋 白酶 、 酸 、缓 冲 液 等 各 种 理 化 因 素 都 会 不 同程 度 使 抗 原 受 到 影 响 ,导 致 抗 原 决定 簇 ( 其 构像 决 定 簇 )不 同程 度甚 至 完全 破 尤 坏 ,而 丧 失 原 有 的抗 原 性 。 因 此 ,免 疫 组 化 染 色 材 料 ,从 取 材 、制 片 到 染 色 全 过 程 都 应 尽 量 减 少 对 组 织 抗 原 性 不 良影 响 的人 为 因 素 。
组 织 中抗 原性 的 妥 善 保 存 和抗 原 修 复 技 术 与 免 疫 组 织 化 学 染 色 的 成 败 有 着 十分 密 切 的 关 系 , 因此 如 何 妥 善 保 存 抗 原 以达 到 最 大 限 度保 留组 织 的 抗 原
性 及 如 何 对 抗 原加 以修 复 成 为做 好 免疫 组 化染 色 的 重要步骤 。 免疫 组 织 化 学 (mmu ohso h mity ,简 i n - itc e sr )
相结合 的一门学科 ,是用 已知抗 体 ( 或抗原)检测 组 织 细 胞 中 的 未 知 抗 原 ( 抗 体 ) 的 技 术 ,具 有 操 或 作 简单 、敏 感 性高 、特 异 性 强 等 优 点 , 已广 泛 用 于 病 理 诊 断 、鉴 别 诊 断 及 胚 胎 发育 、神 经 解 剖 等 相 关 学 科 的研 究 。大量 实 践 证 明 组织 中 抗 原 性 的 妥 善 保 存 和抗原修 复程度与免疫 组织化 学染 色 的成败有着 十 分 密 切 的关 系 ,根 据 我 室 近 年 在 这 方 面 的工 作 体 会 ,现 将 当前 抗 原 修 复 技 术 的研 究 综 述 如 下 。 抗 原 性 与 抗 原 修 复 抗 原 是 指 能 刺 激 机 体 产 生抗 体 ,并 能 与 抗 体 发 生 特 异 性 结 合 的 物 质 。物 质 所 具 有 的 这 种 特 性 即为 抗 原 性 ,它 主要 由分 布 在 抗 原表 面 的 抗 原 决 定 簇 所 决 定 。抗 原 修 复是 指 染 色 前 使 用 酶 、表 面 活 性 剂 或 微 波 金 属 盐 等对 石 蜡 切 片 被 掩 盖 的 抗 原 决 定 簇 或 变 性 的抗 原 实 施 暴露 或 修 复 ,使 抗 原 性 得 到 一定 程 度 恢 复 的过 程 。 二 、影 响 石蜡 切 片 抗 原 性 的 主 要 因素 1 组织 固 定 对 抗 原 性 的 影 响 :为 了 防 止 组 织 . 自溶 ,保 存 良好 的 组 织 结 构 形 态 、阻 止 细 胞 内 分 解 酶 活 性 和 保 存 某 些 特 殊 抗 原 ,需 要 用 福 尔 马林 、戊 二 醛 、丙 酮 及 乙 醇 等 固定 剂 对 组 织 进 行 及 时 固定 。 固 定对 抗 原 性 的影 响 主 要 有 以下 3个 方 面 :① 固定 不 够 致 使 组 织 中心 部 位 的 一 些 抗 原 溶 解 、弥 散 或 丢
微波加热抗原修复法

微波加热抗原修复法⼀、引⾔微波加热抗原修复法是⼀种在免疫组织化学染⾊中常⽤的预处理⽅法,其⽬的是暴露抗原并使其能够被抗体识别。
该⽅法通过使⽤微波能量快速加热组织,从⽽促使抗原从组织中释放并暴露出来。
本⽂将对微波加热抗原修复法的原理、操作步骤、优点和注意事项进⾏详细介绍。
⼆、微波加热抗原修复法的原理微波加热抗原修复法的原理是利⽤微波的快速加热特性,促使组织中的蛋⽩质发⽣变性,打破其原有的空间构象,使隐藏的抗原得以暴露。
在微波辐射的作⽤下,组织中的⽔分⼦迅速运动,产⽣摩擦热,从⽽使组织温度升⾼。
当温度达到⼀定阈值时,蛋⽩质变性,抗原得以释放并暴露。
这种加热⽅式能够均匀地作⽤于整个组织,避免了因传统加热⽅式导致的温度不均和组织损伤的问题。
三、微波加热抗原修复法的操作步骤1.准备试剂:准备抗原修复液(如柠檬酸盐缓冲液、EDTA缓冲液等)和抗体。
2.取材:选取适当的组织样本,⽤⽣理盐⽔清洗⼲净。
3.固定:将组织样本置于适量的中性福尔⻢林中进⾏固定。
4.脱⽔:将固定好的组织样本进⾏脱⽔处理。
5.微波加热:将脱⽔后的组织样本放⼊抗原修复液中,置于微波炉内进⾏加热。
6.冷却:将加热后的组织样本取出,⽤冷⾃来⽔冲洗,冷却⾄室温。
7.清洗:⽤⽣理盐⽔清洗组织样本,去除残留的抗原修复液。
8.抗体孵育:将清洗后的组织样本与抗体⼀同孵育。
9.显⾊:加⼊显⾊剂,观察并记录结果。
四、微波加热抗原修复法的优点1.操作简便:微波加热抗原修复法操作简单,易于掌握。
2.加热均匀:微波加热能够均匀地作⽤于整个组织样本,避免了因传统加热⽅式导致的温度不均和组织损伤的问题。
3.省时⾼效:微波加热能够快速地提⾼组织温度,缩短抗原修复时间,提⾼了实验效率。
4.提⾼染⾊效果:微波加热能够充分暴露抗原,提⾼抗体与抗原的结合率,从⽽获得更好的染⾊效果。
5.适⽤范围⼴:微波加热抗原修复法适⽤于各种类型的免疫组织化学染⾊实验,尤其适⽤于⽯蜡切⽚和冷冻切⽚等不同来源的组织样本。
免疫组化原理步骤及试剂

免疫组化原理步骤及试剂免疫组化(Immunohistochemistry,IHC)是一种广泛应用于生物医学领域的实验技术,用于检测组织切片中特定抗原的分布和表达水平。
它结合了免疫学和组织学的原理,能够在组织切片上定位和检测抗原,并通过染色方法将抗原可视化,从而实现对抗原的定性和定量分析。
免疫组化实验的步骤通常包括固定、脱脂、抗原修复、抗体和检测步骤。
下面将详细介绍每个步骤的操作和常用试剂。
1.组织固定:组织固定的目的是保持组织结构完整并固定细胞的抗原。
常用的固定试剂包括10%中性缓冲福尔马林(10% neutral buffered formalin,NBF)和乙醇等。
2.脱脂:脱脂是将组织切片中的脂质去除,以提高抗体对抗原的结合效率。
常用的脱脂试剂包括二甲苯、甲醛和乙醚等。
3.抗原修复:抗原修复是为了使被固定的组织恢复原样,增强抗原的可检测性。
抗原修复的方法包括热处理、酶解法和pH调整等。
常用的抗原修复试剂包括热解剂例如EDTA缓冲液、Tris-EDTA缓冲液,酶解剂例如胰蛋白酶和蛋白酶K,以及甲酸、盐酸等酸性溶液。
4.抗体:5.检测:检测步骤用于将抗原-抗体复合物可视化。
这通常通过染色方法完成。
常用的染色方法包括免疫酶标记、免疫荧光和免疫金标记等。
免疫组化实验所需的试剂种类繁多,下面列举一些常用的试剂:1. NBF(10% neutral buffered formalin):用于组织固定,保持组织形态完整。
2.二甲苯:用于脱脂步骤,去除组织中的脂质。
3.甲醛:用于脱脂步骤。
4.乙醚:用于脱脂步骤。
5.EDTA缓冲液:用于抗原修复的热解剂。
6. Tris-EDTA缓冲液:用于抗原修复的热解剂。
7.胰蛋白酶:用于抗原修复的酶解剂。
8.蛋白酶K:用于抗原修复的酶解剂。
9.盐酸:用于抗原修复的酸性溶液。
10.一抗:选择特异性良好的一抗抗体,常用的有多克隆和单克隆抗体。
11.二抗:用于检测一抗结合的抗体,常用的二抗有反兔、反小鼠或反人的多克隆抗体。
免疫组化原理及流程介绍
免疫组化原理及流程介绍免疫组化(Immunohistochemistry,IHC)是一种利用免疫反应来检测组织内特定抗原的技术。
它通过将特定的抗体与要检测的组织染色连接,从而实现对该抗原的可视化检测和定位。
免疫组化广泛应用于病理学领域,可以用于诊断和鉴定疾病,研究疾病发生机制以及评估治疗效果。
下面将介绍免疫组化的工作原理和流程。
免疫组化的工作原理可以分为两个步骤:抗原-抗体反应和可视化。
抗原-抗体反应是指将固定的组织样本与特异性抗体结合,形成抗原-抗体复合物。
这种特异性的结合是由于抗原与抗体之间具有互补的结构,类似于锁与钥的关系。
一旦抗原-抗体结合发生,可以通过一系列的化学反应来可视化这种结合,从而观察到抗原的位置和表达水平。
免疫组化的流程一般可以分为样本制备、抗原修复、抗体染色和结果分析四个主要步骤。
样本制备:首先,需要取得要检测的组织样本。
这些组织样本可以是切片、细胞涂片或者细胞悬液。
然后,将样本固定在载玻片上,以保持组织结构的完整性。
抗原修复:组织样本的形态学上常常被固定剂和时间的影响而改变,导致抗原的结构发生损坏。
为了修复抗原使其可被抗体识别,需要进行抗原修复步骤。
常用的抗原修复方法包括高压蒸汽处理(例如蒸气胶片锅或蒸箱)和化学处理(例如酶解或化学溶解)。
抗体染色:通过将特异性抗体与要检测的抗原结合,可实现抗原-抗体复合物的形成。
抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体,可以使用直接染色或间接染色技术。
直接染色是将抗原和抗体直接连接,通过抗原-抗体复合物可视化抗原的表达水平。
间接染色是先与一种包含特异性抗体的二抗结合,再利用第二抗体与标记物(通常是酶或荧光标记)结合,从而放大信号。
结果分析:通过显微镜观察染色结果,评估抗原的表达情况和分布。
常用的评估方法包括定性评估和定量评估。
定性评估是通过观察染色强度和细胞定位来判断抗原的表达水平和细胞类型。
定量评估则是通过计算染色阳性的细胞数量或染色强度来定量化抗原的表达水平。
免疫组化抗原修复简介PPT参考幻灯片共25页文档
免疫组化抗原修复简介PPT参考幻灯 片
51、没有哪个社会可以制订一部永远 适用的 宪法, 甚至一 条永远 适用的 法律。 ——杰 斐逊 52、法律源于人的自卫本能。——英 格索尔
53、人们通常会发现,法律就是这样 一种的 网,触 犯法律 的人, 小的可 以穿网 而过, 大的可 以破网 而出, 只有中 等的才 会坠入 网中。 ——申 斯通 54、法律就是法律它是一座雄伟的大 夏,庇 护着我 们大家 ;它的 每一块 砖石都 垒在另 一块砖 石上。 ——高 尔斯华 绥 55、今天的法律未必明天仍是法律。 ——罗·伯顿
EBER原位杂交和免疫组化双染中酶消化和抗原修复的优化
・1116-临床与实验病理学杂志J CUn Exp Pathol2220Sep;36(9)网络出版时间:2220-9-639:/2网络出版地址:https://d/dh/et/dcms/demil/34.1275.R.04200926.2925.229.htoi EBER原位杂交和免疫组化双染中酶消化和抗原修复的优化何娇,罗陆侨,廖集琴迈新二□技术交流关键词:原位杂交;免疫组织化学;双染中图分类号:R369-38文献标志码:B文章编号:1021-7860(2222)00-1119-29doi:12.18315/j.eodb cjcep.0220.29.229原位杂交和免疫组化双染技术是在不同层次来检测同一细胞上某些物质的表达是否有相关性的一种实验方法。
由于操作步骤复杂,实验不易取得理想效果。
我科结合本实验室实际情况,经过反复摸索,获得满意效果,现将我科经验 总结如下。
1材料与方法12标本来源收集广东省人民医院病理科2019年1~5月EBER阳性病例19例,其中NKT淋巴瘤8例,Burkitt淋巴瘤2例,血管免疫母细胞性淋巴瘤4例,浆母细胞性淋巴瘤1例,淋巴结外周T细胞淋巴瘤1例。
所有标本均及时固定及规范化取材,经-%中性福尔马林固定。
1.2试剂EBER原位杂交试剂盒购自北京中杉金桥公司,AP免疫组化试剂盒购自徕卡公司,CD3、CD22—抗购自上海基因公司。
126方法1.0.3预实验1将组织连续4pn厚切片4张,95C烤片1h,根据酶消化时间不同分为4个实验组(表-,先进行EBER原位杂交单染。
1.0.2预实验6根据预实验、结果,选取胃酶消化19mR 和19min,再将实验分为8组(表6),进行第二步免疫组化染色。
表1预实验1方法及结果实验组原位杂交胃酶消化时间(min)结果第、组8EBER染色信号偏弱,背景干净,结构完整第2组-EBER染色信号强,背景干净,结构完整第3组19EBER染色信号强,背景干净,结构完整第/组20EBER染色信号强,背景干净,结构完整接受日期:2026-06-28作者单位:广东省人民医院广东省医学科学院病理科,广州319080作者简介:何娇,女,技师。
罗氏免疫组化方法
罗氏免疫组化方法
罗氏免疫组化方法是一种常用的免疫组化技术,用于检测细胞或组织
中特定蛋白质的表达情况。
该方法基于抗体与特定抗原的特异性结合,通过染色反应来显示抗原的位置和数量。
罗氏免疫组化方法的步骤包括抗原修复、膜通透、抗体结合、染色和
显微镜观察。
首先,需要对组织样本进行抗原修复,以恢复抗原的原
始结构和形态。
然后,使用膜通透剂使抗体能够穿过细胞膜和细胞壁,与抗原结合。
接下来,使用特异性抗体与目标抗原结合,形成抗原-抗体复合物。
然后,使用染色剂将抗原-抗体复合物染色,以显示抗原的位置和数量。
最后,使用显微镜观察样本,确定抗原的位置和数量。
罗氏免疫组化方法具有高度的特异性和灵敏度,可以检测低浓度的抗原。
此外,该方法可以同时检测多个抗原,因此在研究细胞和组织中
多个蛋白质的表达和相互作用方面具有广泛的应用价值。
例如,在癌
症研究中,罗氏免疫组化方法可以用于检测癌细胞中的肿瘤标志物,
以帮助诊断和治疗。
总之,罗氏免疫组化方法是一种重要的免疫组化技术,具有高度的特
异性和灵敏度,可以用于检测细胞和组织中特定蛋白质的表达情况。
在生命科学研究中具有广泛的应用价值,特别是在癌症研究中。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
临床与实验病理学杂志 J Clin Exp Pathol 2013 May; 29( 5)
免疫组化抗原修复技术新进展
·综 述·
姚梅宏,郑智勇
摘要: 抗原修复是影响免疫组化染色结果的重要因素,现已 广泛应用于病理学和形态学研究领域。基于抗原修复的蛋 白质组学研究,有助于从福尔马林固定石蜡包埋组织中提取 蛋白质,为个性化医疗中相关分子生物标记物的应用建立实 用而先进的平台。该文现对抗原修复的机制与其在细胞或 组织样品的制备、免疫组化的标准化以及蛋白质组学等方面 的应用进行综述。 关键词: 抗原修复; 免疫组织化学; 组织病理学; 细胞病理学; 蛋白质组学; 文献综述 中图分类号: R 365 文献标志码: A 文章编号: 1001 - 7399( 2013) 05 - 0544 - 04
多数情况下经福尔马林固定和 AR 处理后得到的 IHC 信号更强、背景更少、形态更佳。在冷冻组织切片的 IF 和 IHC 染色过程中经常发生的非特异性背景染色,经 AR 处理 后也明显减少。现今 AR-IHC 染色结果作为“金标准”的事 实已逐渐被接受,但在使用 FFPET 切片时应尽可能采用独 立客观的生化方法,如蛋白质印迹( Western blot) 分析,来验 证不同样品制备条件下的抗体性能。 2. 3 IF 染色 随着新染料的开发及 IF 在图像分析定量测 量和光谱成像显微镜的多重标记上的优势,近日掀起了 IF 法在 FFPET 中 的 应 用 高 潮。经 证 实 AR 作 为 增 强 FFPET IHC 抗原性 的 程 序,具 有 减 少 非 特 异 性 自 体 荧 光 的 优 势。 Long 等[17]运用配伍试验法检测 3 种缓冲溶液( 100 mmol / L Tris,pH 10; 0. 05% 柠康酸酐; 含 2 mmol / L EDTA 的 10 mmol / L 柠檬酸和 0. 05% 吐温 20,pH 6. 2) 经微波炉加热 AR,均得 到令人满意的 IF 染色结果。
酸的组成及顺序是决定 AR 是否成功的重要因素。此外, Kakimoto 等[5]在新鲜未固定的大鼠子宫组织切片的 IHC 染 色和大鼠蛋白质提取物点杂交的研究基础上,提出 AR 的补 充机制。他们推测蛋白质抗原自身的天然空间障碍使抗体 与相应抗原表位的接触受限,新鲜蛋白质也不例外。Fowler 等[6]在此基础上提出线性表位模型,指出一些蛋白质经福尔 马林固定后,三级结构发生改变并形成熔球蛋白; 经热诱导 AR 处理后,蛋白质发生不可逆的变性,从而获得线性表位。
收稿日期: 2012 - 12 - 17 作者单位: 南京军区福州总医院病理科,福州 350025 作者简介: 姚梅 宏,女,硕士研 究生。Tel: ( 0591 ) 24937095,E-mail:
ymeih0925@ sina. cn 郑智勇,男,教授,主任医师,硕士生导师,通讯作者。 Tel: ( 0591) 24. com
临床与实验病理学杂志 J Clin Exp Pathol 2013 May; 29( 5)
·545·
色结果。这些实验结果表明 AR-ICC 染色程序的标准化势 在必行,应根据各种重要抗体检测的配伍试验,建立最佳 AR 方案,而非使用单一 AR 方案。 2. 1. 2 AR 在风干细胞涂片中的应用 研究证实 AR 在存 档细胞学涂片 ICC 染色中的重要价值。Fulciniti 等[14]比较 乙醇湿固定和福尔马林后固定的风干细胞涂片,发现后者经 AR 处理可提供可靠的 ICC 染色结果和更好的细胞形态。 2. 1. 3 细胞样本的扩大利用 随着 ICC 的应用与发展,细 胞块和细胞移植技术逐渐被应用于细胞病理学的标准化进 程中。根据 ICC 的目的,石蜡包埋细胞块被认为是最理想的 样本。细胞块模 拟 手 术 病 理 标 本,按 相 似 的 方 式 处 理 和 存 储,使用类似的抗原修复、IHC 方案和抗体组合进行染色,提 供优于大多数细胞涂片的 ICC 染色结果[11]。因此,建议当 细胞样本足够时首选该技术进行 ICC 分析。研究者还提出 在细胞块材料不足的情况下,可运用以刮除涂片上深染的组 织片段为特点的细胞刮除( Cytoscrape) 法[15],其允许在有限 的涂片上进行多重免疫染色。细胞移植技术提供另一个在 有限涂片上进行多重细胞 IHC 检测方法。近年来出现的多 重免疫染色芯片( MI 芯片) 能够在 1 张组织切片上检测多达 50 个标记物,但其实用价值仍有待评估。随着 AR 技术在 ICC 中的不断应用,FFPET 的 IHC 染色结果更具可比性,也 提高了细胞病理学诊断的实用性。这两个领域的改进,尤其 是控制和标准化方面,仍有很大空间。 2. 2 冷冻切片 最近,热诱导 AR 技术已成功应用于冷冻 细胞 / 组织切片。Shi 等[16]比较丙酮固定和甲醛固定的冷冻 组织切片上 26 种抗体的检测结果,其中 16 种抗体经丙酮固 定和甲醛固定的 IHC 染色结果相近,8 种抗体经甲醛固定及 AR 处理后呈现更佳的 IHC 信号,只有 2 种抗体经丙酮固定 得到的 IHC 染色结果更好。他们发现大多数胞质蛋白经丙 酮固定和甲醛固定的 IHC 信号相似,但核蛋白经甲醛固定 和 AR 处理后得到更强的 IHC 信号。
1 AR 的机制
目前对 AR 技术的对其作用机制仍缺乏全面了解。多 数研究者认为,通过加热打开甲醛诱导的交联可能是 AR 的 核心机制,最新的研究对此展开进一步阐述。Mason 等[3]实 验证明牛胰核糖核酸酶 A( RNase A) 样本经福尔马林固定所 导致的化学效应在加热处理后得到逆转,从而恢复免疫反应 性。他们认为蛋白质甲醛加合物及其交联的逆转是 AR 技 术成功的基础。Bogen 等[4]也进行类似的实验,发现组织经 福尔马林处理后,大多数的独立多肽抗原表位并未失去免疫 反应性; 若加入不相干的蛋白质,其免疫反应性则消失,但经 热诱导 AR 处理后,其免疫反应性可恢复。由此得出结论, 甲醛诱导的蛋白质交联阻断多肽抗原表位,而抗原表位氨基
加热抗原修复( heat-induced-antigen retrieval,AR) 技术 是免疫组化( immunohistochemistry,IHC) 发展史上的重要里 程碑[1],其既能保留福尔马林固定石蜡包埋组织 ( formalinfixed paraffin-embedded tissue,FFPET) 良好的组 织 学 形 态, 又明显提高 抗 原 的 检 出 率,提 供 良 好 的 IHC 染 色 结 果[2]。 AR 技术在 FFPET 分子提取方面的应用,使蛋白质组学与 IHC 在分子形态学方法上相结合,这很可能成为 AR-IHC 进 一步研究的重点。本文主要归纳近 5 年 AR 技术在 IHC 中 应用的新进展,并对当前面临的挑战和今后研究的主要方向 进行探讨。
2 AR-IHC 的扩展应用
以下对近年来 AR 技术在细胞病理学、冷冻切片和免疫 荧光( immunofluorescence,IF) 中的应用进行回顾。 2. 1 细胞病理学 Fowler 等[11] 强调免疫细胞化学( immunocytochemistry,ICC) 在细胞病理学中的应用面临着两大挑 战: ( 1) 缺乏适当的控制样本; ( 2) 造成不适当抗体浓度的频 繁使用。为了准确比较,ICC 的控制必须从相同的细胞学标 本制备方法开始,但是大多数病理实验室缺乏建立合适的细 胞控制体系的资源和能力,这成为解决该问题的重大实际障 碍。 2. 1. 1 AR 在细胞学涂片 ICC 中的应用 虽然 AR 技术越 来越多地应用于细胞病理学,大幅提高细胞学涂片 ICC 的灵 敏度,但标准化仍是急需解决的问题。Fetsch 等[12] 运用单 一的热诱导 AR 方案,对 54 例转移性乳腺癌 FFPET 细胞块 切片上 3 种 主 要 的 HER2 抗 体 进 行 修 复,获 得 不 同 结 果。 Denda 等[13]证实经乙醇固定的细胞涂片的大部分抗体未经 AR 处理或经轻度热诱导 AR 处理,均可获得良好的 IHC 染
影响 AR 的因素主要包括修复的温度、加热的时间、热 源、抗原修复液的 pH 值和性质等。Yamashita 等[7]比较不同 pH 值的 SDS-PAGE 蛋白凝胶和抗原修复液,证实修复液的 pH 值和离子强度是影响 AR 的关键因素。Leong 等[8]的实 验结果表明: 对于石蜡包埋组织切片中无法表达或者染色弱 的抗体,可使 用 0. 05% 柠 康 酸 酐 作 为 抗 原 修 复 液。此 外, Syrbu 等[9]开发新型 FFPET IHC 染色的 AR 方法,主要特点 是将切片置于恒热( 97 ℃ ) 的 Tris-EDTA-SDS 缓冲液 40 min 行脱蜡处理,同时能够更有效地扭转福尔马林固定造成的各 种抗原改变,还可减少初级抗体的用量。O’Leary 等[10]提出 AR 技术未来的研究方向,着眼于两个要点: ( 1) FFPET 蛋白 质天然空间构象的恢复; ( 2) 恢复的蛋白质数量及功能状态 评估的新技术。AR 技术的进一步发展需建立在对其分子机 制科学认知的基础上,应致力于改进细胞或组织样品制备、 AR-IHC 标准化和蛋白质组学中核酸或蛋白质提取的主要途 径。
3 FFPET 块中提取核酸和蛋白质
近年来,特别是热诱导 AR 方法被接受以后,已成功从 FFPET 块中提取出核酸和蛋白质。 3. 1 DNA 虽然从新鲜的冷冻组织切片中提取 DNA 比从 FFPET 切片中提取 DNA 易获得更好的结果,但在基于阵列 的比较基因组杂交的研究中[21],运用热诱导 AR 方案从 FFPET 切片中提取 DNA,所获得的 DNA 质量和数量却与传统 提取方法接近,甚至更佳。在未来的研究中,我们应致力改 进基于 AR 的提取方案,尽可能消除因 FFPET 产生的 DNA 序列改变所造成的错误。 3. 2 RNA 研究证明,大多数 RNA 可从正确处理的档案组 织样本中提取获得,经缓冲液加热修复后,可用于合成 cDNA 和 RT-PCR 等。其中,RT-PCR 技术不仅可用于扩增提取 的小片段 RNA,还可用于比较不同实验组的结果。最近,Shi 等[21]分别从冷冻和 FFPET 处理、固定时间从 6 h ~ 30 天的 细胞模型中成功提取出 mRNA。运用加热或酶消化 AR 方 案,从固定长达 7 天的 FFPET 中提取获得的 RNA 具备足够 数量和质量用于 RT-PCR 试验,经扩增得到 461 bp 片段。 3. 3 蛋白质 以 AR 原则为基础,FFPET 切片高温加热提 取蛋白质的方案现已被广泛采用,而且大部分蛋白质提取的 商业试剂的设计也源于热诱导 AR 技术。 3. 3. 1 FFPET 蛋白质提取的重要因素 大多数研究者强调 高温加热是蛋白质提取的关键因素。Jiang 等[22] 分别采用 加热和非加热方案从 FFPET 中提取蛋白质,经对比证实加 热样品提取获得的蛋白质浓度明显高于非加热样品。目前, 应用于 AR 加热过程的化学物质种类繁多,SDS 已被证实是 FFPET 蛋白质有效提取的关键化学物质。Fowler 等[23]模拟 FFPET,设计“组织代用品”检测蛋白质的提取效率,发现最 有效的蛋白质提取液为含 2% SDS 的 20 mmol / L Tris-HCl。 此外,Hatakeyama 等[24]提出新型蛋白质的提取方法,使用微 型室进行 AR,再利用质谱鉴别从 FFPET 中提取所得的蛋白 质。实验结果表明热诱导 AR 不仅能提高蛋白质的鉴定,也 有利于在合适的抗原修复液中洗脱蛋白质。 3. 3. 2 FFPET 蛋白质提取的关键问题 除加热以外,FFPET 切片在加热过程中溶解的有效性也是提高蛋白质提取 效率的关键问题之一。Fowler 等[25]在 45 000 Pa 高压条件 下,证实静水压力的增加能够增强热处理效果,明显提高蛋 白质的提取效率和甲醛诱导的蛋白质修饰的逆转。同理,一 些机械程序,如马达驱动的杵和超声均有助于 FFPET 切片 的同质化,获得较高的蛋白质产量。