07 实验七 聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳法

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非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳实验原理,步骤和结果分析

非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳实验原理,步骤和结果分析

非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳实验原理,步骤
和结果分析
一、实验原理
非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳是一种常用的蛋白质分离和纯化技术,其原理基于蛋白质在凝胶电泳过程中受到凝胶孔隙大小及电场力的影响而发生迁移分离。

在非变性条件下,蛋白质保持其原有的构象,通过电泳进行分离。

二、实验步骤
1. 制备凝胶:首先准备非变性聚丙烯酰胺凝胶,通常是通过聚丙烯酰胺单体聚合成凝胶板。

2. 样品加载:将待分离的蛋白样品混合添加载体缓冲液,并加热变性处理,然后加载到凝胶槽中。

3. 电泳分离:将已加载样品的凝胶槽浸入电泳缓冲液中,施加电场进行电泳分离,蛋白质根据其分子大小及电荷迁移至不同的位置,最终形成条带。

4. 凝胶染色:分离完成后,应用染色方法将蛋白质条带可视化。

5. 结果分析:根据蛋白质条带的迁移位置以及染色效果,分析样品中含有的蛋白种类及相对含量。

三、实验结果分析
通过非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳实验,我们可以获得样品中蛋白质的分子量信息,并进一步分析样品中可能存在的杂质及纯度。

在电泳过程中,蛋白质根据其分子大小在凝胶中迁移的速度不同,从而实现了蛋白质的分离。

根据蛋白质在凝胶上的位置,我们可以对样品进行定性和定量分析,从而获得关于样品组成和含量的重要信息。

综上所述,非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳是一种简单有效的蛋白质分离技术,广泛应用于生物学和生物化学研究中。

通过实验结果的分析和解读,可以更好地了解样品中蛋白质的组成及结构,为进一步的实验研究提供重要参考。

IEF-PAGE聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳法

IEF-PAGE聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳法

【实验目的】1.掌握聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦的基本原理2.学习用等电聚焦电泳测定蛋白质等电点的操作和方法【实验原理】等电聚焦法是一种特殊的聚丙烯酰胺凝胶电泳法。

它的特点是在凝胶柱中加入两性电解质载体-Ampholine,从而使凝胶柱上产生pH梯度。

当向两性载体凝胶施加电场时,即可形成pH梯度,pH梯度的顺序是从阳极到阴极pH值逐渐增大。

蛋白质为两性电解质,其所带电荷的性质和数量随所处环境的pH而变化。

当蛋白质在等电聚焦凝胶柱中进行电泳时,带电荷的蛋白质离子即在凝胶柱上泳动:带负电荷的蛋白质分子向阳极移动,带正电荷的蛋白质分子向阴极移动。

当蛋白质样品泳动到凝胶的某一部位,这一部位的pH值正好相当于该蛋白质的等电点时,蛋白质的净电荷为零不再移动,则聚焦形成一条蛋白质区带。

这种按等电点的大小在pH梯度某一相应位置进行聚焦的方法称为等电聚焦。

利用这种方法,在蛋白质聚焦的相应位置测定凝胶的pH值,就可得知该蛋白质的等电点。

【实验材料】1.实验器材小玻璃管:内径0.5cm,长10cm 2支;小玻管架;圆盘电泳槽;注射器和长针头;移液管;pH计2.实验试剂(1) 两性电解质载体凝胶:丙烯酰胺3.5g,N-甲叉双丙烯酰胺0.1g,pH3~10的Ampholine 2.5ml,核黄素溶液(4mg/100ml)12.5ml,加水至50ml。

(2) 蛋白质溶液:纯牛血清白蛋白7mg,溶于1ml蒸馏水。

此蛋白溶液应无盐离子。

(3) 5%磷酸溶液(4) 2%氢氧化钠溶液(5) 考马斯亮蓝R-250染色液:称取考马斯亮蓝R-250 0.25g,加入50%甲醇91ml和冰醋酸9ml。

(6) 40%蔗糖溶液(7) 12%三氯醋酸溶液(8) 脱色液乙醇:冰醋酸:蒸馏水=25:10:65(v/v)。

【实验操作】1. 取4ml两性电解质载体凝胶,置于抽气瓶中,加入0.07ml蛋白质溶液,轻轻摇动混匀,抽去气泡。

2. 取干净的小玻璃管2支,垂直放置,底端塞以橡皮塞,加入40%蔗糖溶液3~4滴,然后吸取抽气瓶中的两性电解质载体-蛋白质混合液1.8ml缓缓放入玻璃管中,加入胶液后立即用注射器加上一薄层水(3~5 mm高),使混合液表面与空气隔绝。

聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳法分离血清蛋白质.

聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳法分离血清蛋白质.

实验七聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳法分离血清蛋白质一实验目的掌握聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳法分离血清蛋白质。

二实验原理聚丙烯酰胺凝胶电泳是以聚丙烯酰化胺凝胶作支持物的一种区带电泳,由于此种凝胶具有分子筛的性质,所以本法对样品的分离作用,不全决定于样品各组分所带净电荷的多少,即在电泳开始阶段,由于不连续pH梯度的作用,将样品压缩成一条狭窄区带,从而提高了分离效果。

聚丙烯酰胺凝胶具有网状立体结构,很少带有离子的侧基,惰性好,电泳时,电渗作用小,几乎无吸附作用,对热稳定,呈透明状,易于观察结果。

聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺(简称Acr)和交联剂亚甲基双丙烯酰胺(简称Bis)在催化剂的作用下,聚合交联而成的含有酰化胺基侧链的脂肪族大分子化合物。

三实验器材1、血清及其他蛋白质样品。

2、移液器。

3、稳压直流电源(500V)。

4、玻璃管0 .5cm×7-10cm(×10)。

5、灯泡瓶。

6、注射器10ml(×1)。

7、滴管。

8、培养皿10cm(×5)。

9、圆盘电泳槽。

10、量瓶25ml(×1)、10ml(×1)。

四实验试剂1、1mol/LHCL。

2、丙烯酰胺(Acr):3、N,N,N’,N’-四甲基乙二胺(TEMED):密封避光保存.可用N-二甲氨基丙腈或三乙醇胺代替,但效果较差.4、N,N’-亚甲基双丙烯酰胺(Bis):5、三羧甲基氨基甲烷(简称Tris).6、过硫酸铵(A.R)(聚合用催化剂)7、0.05%氨基黑10B溶液:称取50mg溶于100ml水中.8、冰醋酸.9、0.05%溴酚蓝溶液:称取50mg溴酚蓝加水溶解并定容到100ml10、40%蔗糖。

11、20%蔗糖-溴酚蓝溶液:100ml20%蔗糖溶液加50mg溴酚蓝12、甘氨酸-Tris 缓冲液:称取甘氨酸28.8mg,Tris 0.6g加水定容至1000ml (pH8.3)13、1%考马斯亮蓝G250。

聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳

聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳

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(6)剪取加样纸:
按坐标纸的尺寸,剪成0.5 x 0.5cm大小的加样纸,拨去上
下覆盖的保护纸,取出8层擦镜纸作为加样纸,根据样液浓度
调节加样纸的层数(标准样4层,其它样液均为8层).
(7)加样:
将加样纸分别吸取样液,成一字形排放在两电极之间的
凝胶中央.
(8)连接电极:
将电极线的插头插入电极板的插孔内,盖上电极板,使铂
带。
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2.3.两性电解质 (1) Ampholine(瑞典LKB) 它是由许多脂肪族的多氨基,多羧基的异构体和同系物组 成的, pH范围2.5-4.5,4-6.5,5-8,3.5-9.5.
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(2) Servalyte(德国Serva公司) 它是在由丙烯基乙胺与乙烯基亚胺缩合并蒸馏得到的多胺 混合物中,再引入磺酸基团或磷酸基团合成的. pH范围:2-4, 3-5、4-6、5-7、6-8、7-9、9-11、2-11、3-10.
金丝压在电极条上.盖上安全可编罩辑p,p接t 通冷凝水.
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(9)电泳:
将电泳仪正极输出端与磷酸电极条相连, 负极输出端与
NaOH电极条相连,接通电源,60V恒压15min, 8mA恒流至
电压上升到 550V,关闭电源,揭去加样纸, 然后在550V恒
压3小时左右,等电流降至接近于零,停止电泳.
(10)固定:
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3.2pH梯度的形成过程 pH梯度形成的时间,视正负电极之间的距离和凝胶的厚度 而定.一般一块长12cm的玻璃,电极间的有效距离为10cm, 凝胶的厚度为1mm,使用Ampholine为载体两性电解质, 电泳1小时后pH梯度基本形成,2小时后无多大变化,如图

sds-聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告.

sds-聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告.

sds-聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告.
实验目的:通过SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳技术,分离蛋白质并测定分子量。

实验原理:SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳是一种分离蛋白质的标准方法,可对不同来源和大小的蛋白质进行分离和鉴定。

在本实验中,通过将蛋白质溶解于含有SDS和2-巯基乙醇等条件下的试样缓冲液中,以使蛋白质带有几乎相同的负电荷,通过电泳使蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中以大小不同的分子量在电场作用下移动,最终被染色,进行分离鉴定。

实验步骤:
1.准备实验材料:SDS-PAGE电泳装置、试样缓冲液、聚丙烯酰胺凝胶、蛋白质样品、电泳缓冲液等。

2.制备SDS-PAGE电泳凝胶:按照说明书,将聚丙烯酰胺凝胶拆封并放置在实验室温度下一段时间,使其柔软。

3.制备电泳缓冲液:按照说明书,取适量的Tris、glycine和SDS等物质,配制电泳缓冲液,使其达到所需浓度。

4.制备试样缓冲液:按照说明书,取适量的Tris、SDS和2-巯基乙醇等物质,配制试样缓冲液。

5.制备样品:取适量的蛋白质样品,在试样缓冲液中煮沸一段时间,使蛋白质分子展开。

6.装样:将制备好的样品加入聚丙烯酰胺凝胶电泳装置样品槽中。

7.电泳:按照说明书,调整电泳缓冲液pH值和电泳电压等条件,开启电泳装置,进行电泳操作。

8.染色:将电泳板取出,进行荧光染色或银染色法。

9.图像处理:使用图像分析系统或其他软件,进行蛋白质条带的分析和图像处理。

实验结果:经过SDS-PAGE电泳后,样品中的蛋白质在凝胶中呈现出大小不同的分子量条带,通过荧光染色或银染色可以清晰地看到分离的蛋白质条带。

根据蛋白质的分子量大小,可以判断样品中含有哪些蛋白质。

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)测定蛋白质分子量

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)测定蛋白质分子量

实验七SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)测定蛋白质分子量实验数据:标准蛋白质条带第一条第二条第三条第四条第五条溴酚蓝前沿距离/cm 4.70距离/cm 0.50 0.95 1.60 2.10 3.95 相对迁移率mr 0.11 0.20 0.34 0.45 0.84 分子量Mr 97400 66200 43000 31000 14400LgMr 4.99 4.82 4.63 4.49 4.16样品 1 2 3溴酚蓝前沿/cm 4.90 4.80 4.60样品迁移距离/cm 4.20 1.20 1.70相对迁移率mr 0.86 0.25 0.37标准曲线:y=5.05-1.10x结果:样品 1 2 3Mr 12706 59566 43954mr 4.104 4.775 4.643一. 实验目的和要求1 学习SDS-PAGE测定蛋白质分子量的原理。

2 掌握垂直板电泳的操作方法。

3 运用SDS-PAGE测定蛋白质分子量及染色鉴定。

二 .实验原理带电质点在电场中向带有异相电荷的电极移动,这种现象称为电泳。

区带电泳是在半固相或胶状介质上加一个点或一薄层样品溶液,然后加电场,分子在支持介质上或支持介质中迁移。

支持介质的作用主要是为了防止机械干扰和由于温度变化以及大分子溶液的高密度而产生的对流。

区带电泳使用不同的支持介质,早期有滤纸、玻璃珠、淀粉粒、纤维素粉、海砂、海绵、聚氯乙烯树脂;以后有淀粉凝胶、琼脂凝胶、醋酸纤维素膜,现在则多用聚丙烯酰胺(PAGE)和琼脂糖凝胶。

PAGE根据其有无浓缩效应,分为连续系统和不连续系统两大类,连续系统电泳体系中缓冲液pH值及凝胶浓度相同,带电颗粒在电场作用下,主要靠电荷和分子筛效应。

不连续系统中由于缓冲液离子成分,pH,凝胶浓度及电位梯度的不连续性,带电颗粒在电场中泳动不仅有电荷效应,分子筛效应,还具有浓缩效应,因而其分离条带清晰度及分辨率均较前者佳。

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,是在聚丙烯酰胺凝胶系统中引进SDS(十二烷基磺酸钠), SDS能断裂分子内和分子间氢键,破坏蛋白质的二级和三级结构,强还原剂能使半胱氨酸之间的二硫键断裂,蛋白质在一定浓度的含有强还原剂的SDS溶液中,与SDS分子按比例结合,形成带负电荷的SDS-蛋白质复合物,这种复合物由于结合大量的SDS,使蛋白质丧失了原有的电荷状态形成仅保持原有分子大小为特征的负离子团块,从而降低或消除了各种蛋白质分子之间天然的电荷差异,由于SDS与蛋白质的结合是按重量成比例的,因此在进行电泳时,蛋白质分子的迁移速度取决于分子大小。

等电聚焦电泳的两种方法

等电聚焦电泳的两种方法

等电聚焦电泳(IEF)分离蛋白及测定蛋白质等电点等电点聚焦(IEF )是在电场中分离蛋白质技术的一个重要发展,等电聚焦是在稳定的pH 梯度中按等电点的不同分离两性大分子的平衡电泳方法。

在电场中充有两性载体和抗对流介质,当加上电场后,由于两性载体移动的结果,在两极间逐步建立稳定的pH 梯度,当蛋白质分子或其他两性分子存在于这样的pH 梯度中时,这种分子便会由于其表面电荷在此电场中运动,并最终达到一个使其表面静电荷为0 的区带,这时的pH 则是该分子的pI ,聚焦在等电点的分子也会不断扩散,一旦偏离其等电点后,由于pH 环境的改变,分子又立即得到正电荷或负电荷,从而又向pI 迁移。

因此,这些分子总会是处于不断扩散和抗扩散的平衡中,在pI 处得以“聚焦”.二、仪器与试剂1.材料:蛋白样品2.试剂:聚丙烯酰胺、甲乙聚丙烯酰胺、两性电解质、尿素、NP-40、teiton-100电极液:1M 磷酸(阳极液)、1M 氢氧化钠(阴极液)固定液:100g三氯乙酸、10g磺基水杨酸溶于500ml,定容为1000ml染色液:0.35g考马斯亮蓝R—150溶于300ml脱色液中,加热到60 - 70C,加入0.3g硫酸铜。

脱色液:25%乙醇、8%冰乙酸溶于水样品缓冲液:1%Ampholine 、2%Triton X-100 、9M 尿素三、操作步骤:1, 样品制备:用IEF 样品缓冲液提取待分析样品,如其他缓冲液提取的样品则应透析后,冷冻干燥、再复溶于IEF 样品缓冲液。

充分溶解后,离心去除不溶杂质。

2, 制模具:洗干净两块IEF 专用玻璃板,进行硅化和反硅化处理,两块玻璃板的硅化和反硅化面相对,放上夹条,夹子夹好。

3, 配胶:胶液组成:6ml 胶母液(10%,19/1)6—8 %尿素1ml Ampholine (pH3.5-10)60-80ul 10%AP5 ul TEMED4, 灌胶:配好的胶迅速灌入模具5, 电泳:等胶凝固后,小心揭去上下玻璃板,将塑料垫片底部擦干,小心放于电泳槽上。

(完整版)SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告

(完整版)SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告

分子生物学实验报告实验名称:SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳班级:生工xxx姓名:xxx同组人:xxx学号:xxxx日期:xxxxSDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳1 引言SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)是目前分离蛋白质亚基并测定其分子量的常用方法,为检测电泳后凝胶中的蛋白质,一般使用考马斯亮蓝(CBB)染色[1]。

本次实验的目的在于学习聚丙烯酰胺凝胶电泳的原理,并掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离蛋白质的操作技术。

2 材料和方法2.1实验原理2.1.1 聚丙烯酰胺凝胶的性能及制备原理2.1.1.1 性能聚丙烯酰胺凝胶的机械性能好,有弹性,透明,相对地化学稳定,对pH和温度变化比较稳定,在很多溶剂中不溶,是非离子型的,没有吸附和电渗作用。

通过改变浓度和交联度,可以控制孔径在广泛的范围内变动,并且制备凝胶的重复性好。

由于纯度高和不溶性,因此还适于少量样品的制备,不致污染样品。

2.1.1.2 制备原理聚丙烯酰胺凝胶是用丙烯酰胺(Acr)和交联剂甲叉双丙烯酰胺(Bis)在催化剂的作用下聚合而成。

聚丙烯酰胺凝胶聚合的催化系统有化学聚合和光聚合两种。

本实验是用化学聚合。

化学聚合的催化剂通常多采用过硫酸铵(AP)或过硫酸钾,此外还需要一种脂肪族叔胺作加速剂,最有效的加速剂是N,N,N’,N’-四甲基乙二胺(TEMED)。

在叔胺的催化下,由过硫酸铵形成氧的自由基,后者又使单体形成自由基,从而引发聚合反应。

叔胺要处于自由碱基状态下才有效,所以在低pH时,常会延长聚合时间;分子氧阻止链的延长,妨碍聚合作用;一些金属也能抑制聚合;冷却可以使聚合速度变慢。

通常控制这些因素使聚合在1小时内完成,以便使凝胶的性质稳定。

聚丙烯酰胺凝胶电泳和SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳有两种系统,即只有分离胶的连续系统和有浓缩胶与分离胶的不连续系统,不连续系统中最典型、国内外均广泛使用的是著名的Ornstein-Davis高pH碱性不连续系统,其浓缩胶丙烯酰胺浓度为4%,pH = 6.8,分离胶的丙烯酰胺浓度为12.5%,pH = 8.8。

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实验七. 聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳法【实验目的】1.掌握聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦的基本原理2.学习用等电聚焦电泳测定蛋白质等电点的操作和方法【实验原理】等电聚焦法是一种特殊的聚丙烯酰胺凝胶电泳法。

它的特点是在凝胶柱中加入两性电解质载体-Ampholine,从而使凝胶柱上产生pH梯度。

当向两性载体凝胶施加电场时,即可形成pH梯度,pH梯度的顺序是从阳极到阴极pH值逐渐增大。

蛋白质为两性电解质,其所带电荷的性质和数量随所处环境的pH而变化。

当蛋白质在等电聚焦凝胶柱中进行电泳时,带电荷的蛋白质离子即在凝胶柱上泳动:带负电荷的蛋白质分子向阳极移动,带正电荷的蛋白质分子向阴极移动。

当蛋白质样品泳动到凝胶的某一部位,这一部位的pH值正好相当于该蛋白质的等电点时,蛋白质的净电荷为零不再移动,则聚焦形成一条蛋白质区带。

这种按等电点的大小在pH梯度某一相应位置进行聚焦的方法称为等电聚焦。

利用这种方法,在蛋白质聚焦的相应位置测定凝胶的pH值,就可得知该蛋白质的等电点。

【实验材料】1.实验器材小玻璃管:内径0.5cm,长10cm 2支;小玻管架;圆盘电泳槽;注射器和长针头;移液管;pH计2.实验试剂(1) 两性电解质载体凝胶:丙烯酰胺3.5g,N-甲叉双丙烯酰胺0.1g,pH3一10的Ampholine2.5ml,核黄素溶液(4mg/100ml)12.5ml,加水至50ml。

(2) 蛋白质溶液:纯牛血清白蛋白7mg,溶于1ml蒸馏水。

此蛋白溶液应无盐离子。

(3) 5%磷酸溶液(4) 2%氢氧化钠溶液(5) 考马斯亮蓝R-250染色液:称取考马斯亮蓝R-2500.25g,加入50%甲醇91ml和冰醋酸9ml。

(6) 40%蔗糖溶液(7) 12%三氯醋酸溶液(8) 脱色液:乙醇:冰醋酸:蒸馏水= 25:10:65(v/v)。

【实验操作】1. 取4ml两性电解质载体凝胶,置于抽气瓶中,加入0.07ml蛋白质溶液,轻轻摇动混匀,抽去气泡。

2. 取干净的小玻璃管2支,垂直放置,底端塞以橡皮塞,加入40%蔗糖溶液3—4滴,然后吸取抽气瓶中的两性电解质载体-蛋白质混合液1.8ml缓缓放入玻璃管中,加入胶液后立即用注射器加上一薄层水(3-5mm高),使混合液表面与空气隔绝。

放置约0.5-1小时,观察凝胶的凝聚情况。

3. 管内凝胶凝聚后,用滤纸将顶端水吸去,小心拔去管底橡皮塞,让蔗糖溶液流出,并用少量蒸馏水清洗,然后将小玻璃管垂直放入圆盘电泳槽中。

上槽加入5%磷酸溶液,接正极,下槽加入2% NaOH溶液,接负极,于150V条件下进行聚焦,过一段时间后(约2-3小时),电流稳定不变时(基本为零),说明聚焦完毕。

4. 聚焦结束后取出小玻璃管,迅速用蒸馏水将两端洗净。

用一带长针头的注射器灌满蒸馏水,并将针头紧贴玻璃管内壁插至凝胶和管壁之间,转动玻璃管,同时推动注射器,并使针头在管壁与凝胶间前进,注入蒸馏水,使凝胶胶条从玻璃管中脱出。

5. 将其中一根凝胶胶条浸于12%三氯醋酸溶液中固定2小时,白色蛋白区带即出现。

再浸于考马斯亮蓝染色液中染色5小时。

取出后,转移至脱色液中脱去背景颜色。

6. 将另一根凝胶胶条按顺序切成0.5cm长的小段,分别浸泡于1.0ml蒸馏水中过夜,用pH计测定pH值。

【实验结果】以凝胶胶条长度为横座标,pH值为纵座标,作图。

量出染色的各蛋白区带的距离,对照曲线查出其等电点。

【思考题】1.聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳法测定蛋白质等电点的原理?2. 聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳法操作时应注意的问题?Experiment 7. Polyacrylamide Gel Isoelectro Focusing【Purpose】1. Master the basic principle and operation of isoelectric focusing (IEF).2. Learn how to determine the isoelectric point of protein with IEF【Principle】Isoeletric focusing is a special kind of polyacylamide gel electrophoresis. Its character lies in the support of amphotericelectrolyte Ampholine and its addition into the gel column so that there is pH grade of the gel column. When the amphoteric support solution is imposed in the electric field, the pH gradient can be formed. And in pH gradient the pH increases gradually from the anode to the cathode.Protein molecule is a kind of amphoteric electrolyte. Its ion character and amount can change with the surrounding pH. When it migrates in the direct current electric field, the protein molecule with negative charge will migrate towards the anode, and the protein molecule with positive charge will migrate towards the cathode. The migration will stop at the pH correspondded with the PI of a protein and at this point, the protein has no charge and forms a band. Thus isoelectric focusing is a kind of electrophoresis action that according to isoelectric point, focuses at the corresponded position in the pH gradient.Thus the pI of a protein can be known by measuring the pH of the region, where the protein is focused.【Materials】1. Apparatus2 glass tubes (0.5×10), Rack for glass tube, Disc electrophoretic chamber, Injection syringe and long needle, Pipettes, pH meter.2. Reagents(1)Amphoteric electrolyte vector gel: 3g poluacylamide, 0.1g bisacrylamide, 2.5mlAmpholine(pH3-10), 12.5ml Hepatoflavin solution(4mg/100ml), add water to 50ml(2)Protein solution: 7mg pure bovine serum albumin, dissolved in 1ml distilled water. Thereshould be no ion in this solution.(3)5%phosphate solution(4)2% NaOH solution: 10g NaOH dissolved in little water, then dilute to 500ml(5)Commasie bright blue R250 solution: weigh 0.25g commasie bright blue, add 91ml 50%methanol and 9ml acetate.(6)40% sugar solution: weigh 4g sugar, dissolved in little water, then dilute to 10ml(7)12% trichloroacetic acid solution: weigh 12g trichloroacetic acid, dissolved in 100mldistilled water.(8)Decoloring solution: ethanol: acetate: distilled water = 25:10:65 (v/v) 【Procedures】1. Take 4ml Amphoteric electrolyte vector gel, add 0.07ml protein solution, shake gently to mix them and remove bubble with vacuum pump.2. Take 2 clean small glass tubes, place them vertically, and add rubber plugs on the bottoms.Add 3 to 4 drops of 40% sugar solution, then load 1.8ml Amphoteric electrolyte vector gel-protein mixture slowly into the glass tube. Immediately add a sheet of water on the gel with injection syringe to isolate the air from the mixture liquid after adding the gel solution. Then place for 30 to 60 minutes. The interface occurs first, then disappears, but occurs again, which indicates that the gel has been aggregated.3. After the gel has been fully aggregated, absorb the surface water with filtration paper. Draw out the rubber plug to let the sugar solution flow out, then wash it with little distilled water, and then place small glass tube in the disc electrophoretic chamber. Add 5% phosphate buffer to the upper chamber and this part is connected to the anode of power. Add 2% NaOH solution to the bottom chamber, and this part is connected to the cathode. Regulate the voltage to 150V. After 2 to3 hours, the current does not change (almost zero), which indicates the focusing is over.4. After focusing, take out the small glass tube and wash with distilled water immediately. Inject distilled water by injection syringe with long needle, and plug the needle in the inner wall of glass tube and the outer surface of gel, turn the glass tube around while pushing the syringe to make the needle forward between the inner surface of glass tube and outer surface of gel. Inject distilled water to make the gel column being expelled out of the small glass tube.5. Soak one of those gel columns into 12% trichloroacetic acid. About 2 hours later white protein zone appears. Then soak in commasie bright blue for 5 hours. Take the gel out and wash it.6. Cut every 0.5 cm of another gel column with sequence, soak in 1.0ml distilled water overnight, then measure the pH value with pH meter.【Results】The gel column length is x-axis, and the pH value is y-axis. Draw the curve. Measure the distance of every two protein band, check out the pI from the curve.【Questions】1. What is the principle of Polyacrylamide Gel Isoelectro focusing to measure the pI of protein?2. What are the attentions of Polyacrylamide Gel Isoelectro focusing?。

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