微生物基因组DNA提取方法的比较与改进

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微生物基因组DNA提取方法的比较与改进

微生物基因组DNA提取方法的比较与改进
2 Istt o ieg er g Z ea gU ie i , aghu hj n 2 ) .ntue f on i ei , hj n nvr t H nzo ,Z e ag 1 7 i B n n i sy i 30
Ab t a t sr c :Hih q ai e o c D 【 u l y g n mi NA o mir o g n s i t e p e o d t n o e ei n p lt n g t f m co r a im s h r c n i o f n t ma i ua i .No n r i 据研究对 象和 目的不 同而 方法各异 。该文就现 有方 法 中应 用最 为广 泛的三 种提取 微 生物基 因组
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嘉兴学 ig U i i Jun lfJa院学报 rt ora ixn nv sy o e
第1卷第3 177. V1 1 . 3 0 5 月 9 期22 年5 0 o . 9 No 3 0
微生物基因组 D A N 提取方法的比较与改进
L U Xio—xa 。L N Ja I a i I in—pn 。 ig ,CE e —l 。 NPi i n
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刘 晓侠 ,林建平 ,岑沛霖

DNA提取方法的研究进展

DNA提取方法的研究进展

DNA提取方法的研究进展
DNA提取是分子生物学和遗传学研究中至关重要的一步,目
前在DNA提取方法方面有一些研究进展,包括以下几个方面:
1. 提取方式改进:研究人员对传统的DNA提取方法进行改进,以提高提取效率和纯度。

例如,使用化学试剂和酶解剂的组合,可以有效地去除细胞质和蛋白质等干扰物质,从而提高DNA
的纯度。

2. 高通量提取方法:随着高通量测序技术的发展,需要提供足够的DNA样本量来进行测序。

因此,研究人员致力于开发高
通量的DNA提取方法,可以同时处理多个样本,并提高提取
效率。

3. 无细菌DNA污染方法:细菌DNA在DNA提取过程中常常
会污染目标DNA,影响后续分析。

现在有研究人员针对这个
问题进行研究,开发了一些方法来去除细菌DNA的污染,例
如使用特定的酶解剂或改良DNA提取试剂。

4. 小样本DNA提取方法:例如从微生物、稀有细胞或胎儿等
低样本量来源提取DNA。

这些样本通常含量较少,提取DNA
的难度相对较大。

研究人员在这方面进行了一些探索,提出了一些针对小样本DNA提取的方法,以尽可能提高提取效率和
纯度。

DNA提取方法的研究一直在不断进展,致力于提高提取效率
和纯度,以满足越来越复杂的分析需求,并应用于新兴的领域和技术。

不同物种的DNA提取方法

不同物种的DNA提取方法

不同物种的DNA提取方法摘要DNA作为遗传微粒,为生物体的遗传信息复制和传递做出了巨大的贡献,而1953年J.Watson和F.Crick提出的双螺旋结构模型不仅解释了有关DNA 的性质,而且也清楚地解释了DNA的各种生物功能,进而使DNA的研究进入到了分子水平。

然而DNA是如何具体在生物体内发挥其作用的,到现在还是一个热门课题,为了研究其作用,就需要从各种物种中提取DNA,由于不同物种结构的复杂性不同,导致提取DNA的方法也是各不相同,为此,我整理了一些物种的DNA提取方法。

关键词:物种、DNA提取1、月季DNA的提取方法:之所以提取高质量的月季DNA有难度,是因为其体内富含多糖及多酚类的物质,在一般的DNA提取方法中,很难被分离,这就严重干扰了提取月季DNA的纯度以及完整性。

为了解决这个问题,北京市园林科学研究所采取五种提取方法,在其最后的实验结果表明:Draper法提取月季DNA的纯度最高,完整性最好。

2、大麦小孢子DNA的提取方法:要想分离提取小孢子的DNA,就需要降解小孢子壁,而小孢子壁由外壁和内壁组成,内壁主要由纤维素和果胶组成,这类物质能够被相应的酶所水解,而外壁的主要成分是类胡萝卜素和类胡萝卜酯的氧化多聚化的衍生物,化学物质非常稳定,到目前为止,还没有相应的酶可以水解。

因此外壁便成为提取高质量的大麦小孢子DNA的一个“拦路虎”。

对此,莱阳农学院展开了研究,他们通过“收集大麦的花药”、“分离小孢子”、“分离小孢子”。

最后“DNA的提取”等一系列的步骤,在最后的统计结果中,发现CTAB法和微量快速提取法取得不错的效果,而且DNA的得率和质量几乎一样。

这也证明了上述两种方法是有效而可行的,当然在这个研究过程,首次采用超声波法进行破壁,收到出乎意料的效果,也为CTAB法和微量快速提取法提供了必要的条件。

所谓的CTAB,其中文名是十六烷基三甲基溴化铵,是一种阳离子去污剂,具有从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特性。

四川泡菜盐卤中微生物总基因组DNA提取方法的比较

四川泡菜盐卤中微生物总基因组DNA提取方法的比较

四川泡菜盐卤中微生物总基因组DNA提取方法的比较蒋云露;杨建涛;王猛;罗军;蒋倩;姜露熙;张琴;饶瑜;马力【摘要】了得到较高质量的基因组脱氧核糖核酸(DNA),本实验采取了5种方法对四川泡菜盐卤总基因组进行提取,对其提取的浓度、纯度进行分析比较,并以此为模版进行聚合酶链反应(PCR)体外扩增.结果表明,F1所得的基因组DNA纯度及浓度最高,F4方法提取的基因组DNA浓度较高,但受到蛋白或酚类物质的污染,F2以及F5两种方法得到的基因组DNA浓度较低,F3所得的基因组DNA浓度低并且含有较多RNA杂质.因此,本研究采用的5种对四川泡菜盐卤进行总基因组提取方法中,方法F1最合理、高效.【期刊名称】《中国酿造》【年(卷),期】2015(034)004【总页数】3页(P90-92)【关键词】四川泡菜;基因组;提取;比较【作者】蒋云露;杨建涛;王猛;罗军;蒋倩;姜露熙;张琴;饶瑜;马力【作者单位】西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039;西华大学生物工程学院,四川成都610039【正文语种】中文【中图分类】TS255.1四川泡菜是一类以新鲜蔬菜为原料,在一定浓度的盐溶液中,经乳酸菌发酵而成的一种传统食品。

以乳酸菌为主的微生物在发酵过程中产生风味物质,赋予四川泡菜色、香、味及健康因子[1-2]。

研究发酵过程中的微生物种类和动态变化有助于了解四川泡菜的发酵及其风味形成规律。

利用传统的实验室微生物分离培养方法,由于环境的复杂性和培养条件的限制,能用现有技术培养的微生物仅占微生物总数的1%左右[3],不能准确及时的反映出某一生态环境中微生物的构成和变化规律。

如何提取高质量的基因组DNA

如何提取高质量的基因组DNA

从动物、植物。

微生物中提取高质量的基因组DNA基因组DNA的提取概述基因组DNA的提取通常用于构建基因组文库、Southern杂交(包括RFLP)及PCR分离基因等。

利用基因组DNA较长的特性,可以将其与细胞器或质粒等小分子DNA分离。

加入一定量的异丙醇或乙醇,基因组的大分子DNA即沉淀形成纤维状絮团飘浮其中, 可用玻棒将其取出,而小分子DNA则只形成颗粒状沉淀附于壁上及底部, 从而达到提取的目的。

在提取过程中,染色体会发生机械断裂,产生大小不同的片段,因此分离基因组DNA时应尽量在温和的条件下操作,如尽量减少酚/氯仿抽提、混匀过程要轻缓, 以保证得到较长的DNA。

一般来说,构建基因组文库, 初始DNA长度必须在100kb以上,否则酶切后两边都带合适末端的有效片段很少。

而进行RFLP和PCR分析, DNA长度可短至50kb, 在该长度以上,可保证酶切后产生RFLP片段(20kb以下),并可保证包含PCR所扩增的片段(一般2kb以下)。

不同生物(植物、动物、微生物)的基因组DNA的提取方法有所不同; 不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及所含的成分不同,分离方法也有差异。

在提取某种特殊组织的DNA时必须参照文献和经验建立相应的提取方法, 以获得可用的DNA大分子。

尤其是组织中的多糖和酶类物质对随后的酶切、PCR反应等有较强的抑制作用,因此用富含这类物质的材料提取基因组DNA时, 应考虑除去多糖和酚类物质。

本实验以水稻幼苗(禾本科)、李(苹果)叶子、动物肌肉组织和大肠杆菌培养物为材料,学习基因组DNA提取的一般方法。

1. 从植物组织提取基因组DNA一、材料水稻幼苗或其它禾本科植物,李(苹果)幼嫩叶子。

二、设备移液器,冷冻高速离心机,台式高速离心机,水浴锅,陶瓷研钵,50ml离心管(有盖)及5ml和1.5ml离心管,弯成钩状的小玻棒。

三、试剂1、提取缓冲液Ⅰ:100mmol/L Tris·Cl, pH8.0, 20mmol/L EDTA, 500mmol/L NaCl, 1.5% SDS。

实验报告DNA提取方法的改进研究

实验报告DNA提取方法的改进研究

实验报告DNA提取方法的改进研究实验报告DNA提取方法的改进研究摘要:DNA提取是遗传学研究中的基础操作之一。

本实验旨在改进传统的DNA提取方法,以提高提取纯度和产量的效率。

我们对已有的DNA提取方法进行了改良,并通过实验验证了新方法的可行性。

新方法在提取纯度和产量方面具有明显的优势,可以应用于广泛的遗传学研究领域。

引言:DNA提取是从生物体中分离和纯化DNA的过程,是遗传学研究中的基础实验操作之一。

传统的DNA提取方法通常包括细胞破碎、蛋白溶解、DNA沉淀等步骤。

然而,传统方法在提取纯度和产量方面存在一些局限性,如受到蛋白质和其他杂质的干扰,使得提取的DNA含量有限。

因此,改进DNA提取方法具有重要意义。

材料与方法:本实验使用改进的DNA提取方法,主要步骤包括细胞破碎、蛋白溶解、酚氯仿提取、酒精沉淀、洗涤和溶解等。

具体步骤如下:1. 收集待提取DNA的生物样本,如人体细胞或细菌培养物。

2. 细胞破碎:使用磷酸盐缓冲液将细胞破碎,使得DNA能够被释放。

3. 蛋白溶解:加入蛋白酶K以去除细胞中的蛋白质。

4. 酚氯仿提取:加入等体积的酚氯仿提取剂,使DNA与其他杂质分离。

5. 酒精沉淀:将DNA溶液与等体积的冷酒精混合,DNA会沉淀到底部形成白色沉淀物。

6. 洗涤:使用70%的乙醇洗涤沉淀的DNA,去除残余的盐和其他杂质。

7. 溶解:用去离子水或低盐缓冲液溶解沉淀的DNA。

结果与讨论:通过改进DNA提取方法,我们得到了相对较高纯度和较高产量的DNA。

与传统方法相比,改进后的方法能够更有效地去除蛋白质和其他杂质,从而提高DNA的纯度。

同时,在酒精沉淀和洗涤步骤中我们对实验条件进行了优化,使得DNA的产量明显增加。

除了比较纯度和产量之外,我们还对提取的DNA进行了质量分析。

通过凝胶电泳方法,我们观察到改进方法得到的DNA条带较为清晰,而传统方法得到的DNA条带模糊不清。

这表明改进后的DNA提取方法能够获得更完整的DNA片段。

细菌DNA提取方法的优化

细菌DNA提取方法的优化

统法 、E 法 有很大 的提高 ,效 果十分 明显 。E U s S 法在
DA N 提取过程 中,溶菌酶 、S S D 和超声波三者联合作 用
使细菌破壁更充分 ,D A N 回收量大 ,纯度 高,E U 在 S法
超声前加入溶菌 酶,溶菌 酶破壁后黏稠 的菌液缓冲 了
表 5 传统 法与 E 提取 的水稻 白叶枯病 菌 s
明显 的提高,而纯度变化不是很大 。E 法在提取D A S N 过
2 N 浓度随着超声时间 的延长而增加 ,而超声 .D A
时 间为3 i 的时候检测 出来 的D A mn N 纯度最好 ,所 以超
声 最佳 时 间 为3 i 。 m n
程 中,使用溶菌酶破 壁后的菌液黏稠 ,不易脱蛋 白, DA N 黏度大,纯度低 ,D A N 被蛋 白质缠绕难 以舒展变性 , 对变性过程中相对吸光度增长幅度 略有阻碍。 ( 超声、 四) 溶菌 酶双 重效 应对 D NA 提取 效果 的
三≤一 毒;


0.25‘ 0
对D A N 的损失及外源DA N 污染机会 。水煮法提取过程 中
不需要酚一 氯仿抽提及乙醇沉淀 ,避免 了对人体 的危
图 1 传 统 法及 不 同超 声 时间提 取 的大肠 杆 茵 DNA 紫外吸 收 图谱
害,且所需 费用低 ,但 水煮法提取 的D A N 纯度较传统 法有小幅下 降,主要是 因为抽提 过程简单 ,D A N 溶液
表 2 传统法与水煮法提取大肠杆 菌 DN A纯度、 浓度的比较
l i 、3 i 、5 i 、7 i 的方法提取D A m n m n m n mn N ,每 种方法 所用大肠杆菌 菌液量均 为3 L m ,利用紫外分光 光度 计 对提取的D A N 测定3 ,结果取平均值 ,实验结果如 图 次

提取桑天牛成虫肠道微生物基因组DNA的2种方法比较

提取桑天牛成虫肠道微生物基因组DNA的2种方法比较

o p in ema ia u tw r o a e . h mo n f i u t n g n mi A b an d w t df d S f r a g r r d l e e c mp r d T e a u to A o mp r y i e o c DN o ti e i mo i e DS i h i meh d w smu h mo e t a h s b an d w t df d C AB me h d, h l h u t ft e D b an d t o a c r n t o e o t ie i mo i e T t o w i t e p r y o h NA o ti e hh i e l
f o n e t a ir b s o ro a g r r u t r m I t si lM c o e fAp i n e ma iAd l n
S N Na , UAN Xi -i L i ig U Y uJe , IHu。 n p
( . hn d o ny F r t ue ui biP oic , h n d 6 4 0, hn J C eg eC u t oe r B ra nHee rvne C e g e0 7 0 C ia; sy
关 键词 : 桑天 牛 ; 道 微 生 物 ; 因 组 D A; 取 方 法 肠 基 N 提
中图分类号 :7 85 ;9 9 1 ¥ 1 .2 Q 3 .
文献标 志码 : A
Co p r tv t d f Two M e h d o n m i m a a ie S u y o t o s f r Ge o c DNA t a to Ex r c i n
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嘉兴学院学报
J ou rna l of J iax ing U n iversity
第 19卷第 3期 Vol. 19 No. 3
2007年 2007.
5月 5
微生物基因组 DNA提取方法的比较源自改进刘晓侠 1 , 林建平 2 , 岑沛霖 2
(11嘉兴学院生物与化学工程学院 , 浙江嘉兴 314001; 21浙江大学生物工程研究所 , 浙江杭州 310027)
主要试剂为 10mg /m l溶菌酶 , 20mg /m l蛋白酶 K, 2 ×CTAB (十六氨基三乙基溴化铵 ) 。引物序 列 为 : 5π - ggaattcggatccatggacttcgaggcattt ( B am H I, EcoR I ) , 3π - ttaagcttcctcacgccaccgcacgcgc (H ind III) , 由上海博亚生物技术有限公司合成 。
关键词 : 微生物 ; DNA提取 ; PCR 中图分类号 : Q933 Com par ison and Im provem en t of Extraction M ethods for Genom ic D NA L IU Xiao - xia 1 , L IN J ian - p ing2 , CEN Pei - lin2
Key words: m icroorganism; DNA extraction; PCR ( Polymerase Chain Reaction) 文献标识码 : A1 文章编号 : 1008 - 6781 (2007) 03 - 0048 - 03
1 材料与方法 111 试验材料
黄色短杆菌 (B revibacterium helvolum ATCC11822, G- ) 从北京微生物所购买 ; 放射形土壤杆菌 (Agrobacterium radiobacter ACCC10056, G- ) 从中国菌种保藏中心购买 ; 金黄色葡萄球菌 ( G+ ) , 枯 草芽孢杆菌 ( G+ ) 为本实验室保藏 。 112 试剂及仪器 [ 2 ]
[ 1 ] L iu X1X1, L in J. P. , Q in G. . , Cen P. L. Exp ression of a new hemA Gene from Agrobacterium radiobacter in Escherichia coli for 5 - am inolevulinate p roduction [ J ]. Chinese J. Chem. Eng. , 2005, 13 ( 4) : 522~528. [ 2 ] J. 萨姆布鲁克 , D. W. 拉塞尔. 分子克隆实验指南 [M ]. 北京 : 科学出版社 , 2002 [ 3 ] 乔建军 , 杜连祥. 一种快速有效的枯草芽孢杆菌染色体的提取方法 [ J ]. 生物技术 , 2001, 11 (2) : 38~40 . [ 4 ] 李德葆 , 周雪平 , 许建平 , 何祖华. 基因工程操作技术 [M ]. 上海 : 上海科学技术出版社 , 1996: 1. [ 5 ] F. 奥斯伯 , R. 布特伦 , R. E. 金斯顿. 精编分子生物学 [M ]. 北京 : 北京科学出版社 , 1998: 7. [ 6 ] 刘小勇 , 田素忠 , 秦国夫 , 沈瑞祥. 提取植物和微生物 DNA 的 SDS - CTAB 改进法 [ J ]. 北京林业大学学报 , 1997, 19 ( 3) : 100~103. [ 7 ] 岑沛霖 , 蔡谨. 工业微生物学 [M ]. 北京 : 化学工业出版社 , 2000: 6~40. [ 8 ] 陈颖 , 刘根齐 , 李文彬 , 孙勇如. 三种小球藻 DNA 提取方法的比较 [ J ]. 植物生理学通讯 : 2001, 37 (3) : 242~244.
将以上三种方法提取的 DNA , 通过紫外分光光度计测定它们在 260nm 处和 280nm 的吸光值 , 并 计算它们的比值和 DNA 含量 , 结果见表 1。
方法 溶菌酶法 CTAB 法 超声破碎法
表 1 三种微生物基因组提取方法的纯度和浓度比较
菌种
A260 / A280
DNA产率 ( ng/mL )
仪器有 Lengguang Tech1 Spectrum lab54型分光光度计 , L ITTLE GEN IUS (Japan) 基因扩增仪 。 113 聚合酶链式反应 ( PCR )
PCR 扩增的反应体系为 : 反应总体积 20μl, 含 10pmole引物 , 50ng基因组 DNA , 2μl 10 ×PfuTaq
PCR 扩增的条件 : 95℃预变性 10m in, 95℃变性 30 s, 58℃复性 30 s, 72℃延伸 2m in, 循环扩增 30次 。 114 微生物基因组 DNA 提取方法 11411 溶菌酶法 [ 3 ] 收集对数生长期的菌液 5m l, 置于 10 000 rpm 离心 5m in; 弃上清 , 用 500μl TE 重悬于 115m l离心管中 , 加 10μl 10mg /m l溶菌酶 , 37℃保温 20m in, 再加 215ul 20mg /m l蛋白酶 K混 匀 , 37℃保温 1h; 再加等体积的酚 、氯仿 、异戊醇 (25∶24∶1) , 置于 10 000 rpm 离心 5m in; 取上清 液加 2倍体积的无水乙醇和 1 /10 体积的 NaAc ( pH = 416) , 于 - 20℃下静置 10m in后于 12 000 rpm 离心 10m in; 所得的 DNA 沉 淀 用 70%的 乙 醇 洗 2 次 , 自 然 风 干 后 溶 于 40μl 的 TE (含 20ug /m l RNase) , 55℃处理 15m in, 于 - 20℃保存备用 。 11412 改良的 CTAB[ 4 - 5 ]法 收集对数生长期的菌液 5m l, 置于 10000 rpm 离心 5m in; 弃上清 , 用 500μl TE重悬于 115m l离心管中 , 加 100μl 10% SDS溶液 , 215μl 20mg /m l蛋白酶 K, 37℃保温 1h, 再加 75μl NaC l和 75μl 2 ×CTAB 混匀 , 65℃保温 30m in, 再加等体积的酚 、氯仿 、异戊醇 ( 25 ∶24 ∶ 1) , 置于 10000 rpm 离心 5m in; 以下步骤同溶菌酶法 。 11413超声破碎提取法 [6 ] 收集对数生长期的菌液 5m l, 置于 10 000 rpm 离心 5m in; 弃上清 , 用 3m l 裂解缓冲液 (110mol/L NaCl, 50mmol/L EDTA , 50mmol/L Tris·Cl) , 加 30μl 10mg /m l溶菌酶冰水浴 30m in后超声处理 , 超声条件 : 250W 每次工作 5 s, 间隙 5 s, 重复 20次 , 再加等体积的酚 、氯仿 、异 戊醇 (25∶24∶1) , 置于 10 000 rpm 离心 5m in; 以下步骤同溶菌酶法 。 2 实验结果 211 分光光度测定
摘 要 : 高质量的微生物基因组 DNA是基因工程的前提 。目前国内外关于微生物基因组 DNA 提取的方 法很多 , 根据研究对象和目的不同而方法各异 。该文就现有方法中应用最为广泛的三种提取微生物基因组 DNA的方法进行了比较 , 并对它们进行一些改进 , 获得了针对不同细胞壁成分的微生物相应的简便 、快速 且高质量基因组 DNA 提取方法 , 并对提取的 DNA进行 PCR特异性扩增检测 , 获得较清晰的谱带 [1 ] , 为基因 克隆表达研究奠定了基础 。
收稿日期 : 2006 - 09 - 041 作者简介 :刘晓侠 (1978 - ) ,女 ,江苏丰县人 ,嘉兴学院生物与化学工程学院教师 ,博士 ,研究方向为基因工程 、发酵工程 。
刘晓侠 ,林建平 ,岑沛霖 :微生物基因组 DNA提取方法的比较与改进
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DNA 聚合酶缓冲液 , 015μl (215 unit) PfuTaq DNA 聚合酶 , 015μl 10 mmol/ l dNTP混合液 , 其余为双 蒸水 。
(11School of B iology and Chem ical Engineering, J iaxing university, J iaxing, Zhejiang 3140001; 21 Institute of B ioengineering, Zhejiang University, Hangzhou, Zhejiang 310027)
213 PCR 特异性扩增的验证 将三种方法提取的放射形土壤杆菌基因组 DNA 为模板进行特异性扩增 , 见图 2。
3 讨论 通过对多种微生物基因组的提取来看 , 溶菌酶法较适合革兰氏阳性菌 , 而不适合提取革兰阴性
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嘉兴学院学报 第 19卷第 3期
改良的 CTAB[8 ]法适合于大多数微生物基因组的提取 , 且提取的 DNA 较其他两种方法纯 , 但由 于有些微生物的经 CTAB /NaCl处理后 , 经高速离心很难吸出上清液 , 在这种情况下 , 需采用改进的 超声破碎法 。
超声破碎法由于具有强烈的机械作用 、空化作用和乳化作用 , 对微生物细胞的细胞壁破碎较为完 全 , 且经酚 : 氯仿 : 异戊醇提取 , 可以较为完全的将 DNA 和蛋白质及其他杂质分开 , 但由于作用条 件剧烈 , 会造成 DNA 部分降解 , 使 DNA 回收率降低 。 参考文献 :
Abstract: H igh quality genom ic DNA from m icroorganism is the p recondition of genetic manipulation. Now many methods for the extraction of genom ic DNA are developed according to different research object and intention. Three kinds of methods w idely app lied are compared and reformed in isolation of genom ic DNA from m icroorganism. And ef2 fective methods for extracting high pure genom ic DNA are established considering different cell wall components. Ge2 nom ic DNA gained by three different methods above is specifically amp lified and clear band is observed by agarose gel electrophoresis, which is convenient to genetic manipulation later.
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