猪瘟和猪蓝耳病病毒多重RT_PCR检测方法的建立及初步应用
常见猪病PCR检测操作步骤及试剂配制(精)

常见猪病PCR检测操作步骤及试剂配制一、RNA病毒(蓝耳病、猪瘟、乙脑、猪传染性胃肠炎病毒、猪流行性腹泻病毒、轮状病毒等包括病料的处理、RNA的提取、反转录、和PCR扩增、凝胶电泳四个步骤。
1、病料的处理取组织病料约2克,加入4-5毫升灭菌的PBS或者生理盐水,置研磨器(灭菌中研磨或者用剪刀细心剪碎,置-20℃中反复冻融三次,即可用于检测。
2、RNA的提取1取上述冻融三次的病料约200微升置1.5毫升的离心管中,加入500-600微升TRIzol剧烈振摇30秒后,静置5分钟后,再次剧烈振摇30秒后,静置5分钟。
2在加入200微升的氯仿,上下颠倒混匀30s,静置5分钟,4℃ 12000g 离心15 min。
离心完毕后,取上清约400-500微升(注意不要吸到中间层白色物质置新的灭菌好的离心管中,加入等体积的异丙醇,颠倒数次后(不可剧烈震动静置10分钟,4℃12000g离心10 min.可见管底部有少量白色沉淀,倒掉异丙醇,加入1毫升75%的乙醇(DEPC水配制,振摇,将白色沉淀悬浮,4℃7500g离心5 min。
弃去上清,干燥沉淀物(将离心管倒置于卫生纸或者其它吸水纸上,室温约5 min即可加入20μLDEPC 水溶解用于RT-PCR,或于-20℃保存备用。
两步法:1、反转录在10μL的反转录体系中加入:上述步骤中提取的RNA7μL、5×Buffer 2μL、0.5μL或者下游引物0.5μL;65℃10分钟, 10 mM dNTP 0.25μL、Oligo (dT18迅速放置-20摄氏度冰箱中2分钟,加入M-MLV 100U/μL 0.25μL(反转录酶37℃水浴1h,即可做为PCR扩增的模板,立即用于PCR扩增或置于- 20 ℃保存备用。
2、PCR扩增设立阳性和阴性对照,阳性对照一般为病毒液,阴性对照用灭菌的双蒸水做为PCR反应模板。
反应总体系为25μLcDNA 2μL,(模板25mmol/L Mg2+ 1.5μL,2.5mmol/L dNTPs 2.0μL,10× Mg2+ free PCR Buffer 2.5μL,20mmol/ L上下游引物各1μL,Taq DNA聚合酶(5U/μL0.2μL无菌双蒸水补至25.0μL。
RT—PCR检测高致病性猪蓝耳病方法的探讨

2 0分钟 。弃上清 液, 沿管壁缓缓滴入 1 毫升 7 %乙醇 , 5 轻轻旋
转一周后倒掉 ,将离心管倒扣于吸水纸 上 1分钟 ,自然风干
( 以无 乙醇味为准 ) 。将 D P E C处理 的灭菌去 离子水与 R N A 酶抑制剂混合 ( 9: 按 1比例配制 ) 成混合液 , 1 制 取 0微升将 病毒 R N溶解 , 2微升用于 R - C A 取 T P R反应模板 。 分步法 R - C 。R T P R T体系的组成 建立 。反转录反应液 1 6
微升 , N酶抑制剂 1 A R 微升 , 录酶 1 反转 微升 , 已溶解 的病毒
R A2微升 , N 总体积 2 0微升。 混匀放入 P R扩增管中 , P R C 在 C 扩增仪上进行 以下循环 ,2U6 4 ' 0分钟 ,8C : 9  ̄5分钟 ,扩增完 毕 后备用 。 P R体系的组成建立 。C C P R反应液 1 6微升 ,a D A聚合 Tp N
养殖技术顾 问 2O. O98
研 究 与 综 述
酶 2微升 , 反转录产物 2微升 , 总体积 2 0微升。混匀 , 加入 并 2 O微升矿物 油覆 盖 , 于 P R扩增仪上 , 如下扩增 程序 扩 放 C 按 增 ,4 0 ,5 O秒 ×3 9 ℃3 秒 5 ℃3 5循环 ,2C 0 ,2 7  ̄3 秒 7 ℃5分钟 。 扩 有 的是不 同的细 菌混合 感染 ,本实验在 细菌学的检测 中发现 没有其他 细菌所引起的并发症状 。 操作过程 中的影 响。在 R - C T P R的操作过程 中。 键环 节 关 是 R A的提取 。通 过变性剂破碎 细胞 或者组织 , N 然后经过 氯
高致病性猪蓝耳病与经典猪蓝耳病二重RT—PCR检测方法的建立及应用

关键词:高致病性猪蓝耳病 ;猪蓝耳病;二重 RT-PCR
Establishment And Apply of du‘ plex RT -PCR Assay for Detecting Highly P ̄hogenic Porcine Reproduc。 tive and Respiratory Syndrome Virus And Porcine Reproductive and Res。 peratory Syndrome Virus
猪 繁 殖 与 呼 吸 综 合 征 (Porcine Re—
productive and Respirator y Syndrome,
猪瘟病毒TaqMan实时荧光定量PCR检测方法的建立及初步应用

猪瘟病毒TaqMan实时荧光定量PCR检测方法的建立及初步应用岳锋;朱艳平;银梅;王选年【摘要】根据GenBank中猪瘟病毒(classical swine fever virus,CSFV)5' NTR的保守序列,设计1对特异性引物和TaqMan探针,以CSFV全长基因重组质粒pGEM-CSFV为标准品,建立TaqMan实时荧光定量PCR标准曲线,进行特异性、敏感性和重复性试验,并检测人工感染CSFV后不同时期猪血浆中CSFV的载量.结果表明,标准曲线循环阈值与模板浓度具有良好的线性关系,R2=0.999;敏感性高,最低检测限为1×101拷贝/μL;特异性强,与猪圆环病毒2型、猪细小病毒、猪伪狂犬病病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒无交叉反应性;重复性好,组内和组间变异系数均小于2%.人工感染CSFV后第7天猪血浆中CSFV载量达到峰值,之后逐渐降低.结果表明,建立的TaqMan实时荧光定量PCR方法具有特异、敏感、重复性好等优点,为CSFV的定量分析及临床诊断奠定基础.【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2014(041)006【总页数】5页(P18-22)【关键词】猪瘟病毒;实时荧光定量PCR;TaqMan探针【作者】岳锋;朱艳平;银梅;王选年【作者单位】新乡学院生命科学与技术系,河南新乡453003;新乡学院生物技术研究所,河南新乡 453003;新乡学院生命科学与技术系,河南新乡453003;新乡学院生物技术研究所,河南新乡 453003;河南科技学院动物科学学院,河南新乡 453003;新乡学院生命科学与技术系,河南新乡453003;新乡学院生物技术研究所,河南新乡453003【正文语种】中文【中图分类】S858.28猪瘟(classical swine fever,CSF)是由猪瘟病毒(classical swine fever virus,CSFV)引起猪的一种热性、出血性传染病,是严重威胁养猪业的重要传染病之一,被世界动物卫生组织(office international des epizooties,OJE)列入OJE疫病名目,也是中国农业部规定的一类传染病(殷震等,1997)。
BVDV荧光RT-PCR检测方法的建立和初步应用

吉林农业大学硕士学位论文BVDV荧光RT-PCR检测方法的建立和初步应用姓名:李天松申请学位级别:硕士专业:预防兽医学指导教师:胡桂学20050601吉林农业大学碗士学位论文BVDV时实定量荧光RT--PCR检测方法的建立和初步应用2结果2.1病毒培养正常MDBK细胞呈梭形、均匀铺在细胞培养瓶的底部,中心部较亮,边缘明显,有的地方呈现细胞集落。
接毒后72h开始出现细胞病变(CPE),细胞开始变圆、细胞核圆缩边缘、胞浆内出现大量空泡,细胞逐渐脱落,细胞单层呈网状,最后大部分或全部从瓶壁脱落下来,如图l、2。
图1正常MDBK细胞Fig.1TheMDBKconlrolcell2.2TCID50测定结果图2接毒MDBK细胞Fig.2TheinfectedMDBKcell细胞病变观察结果见表3。
表3OregonC24VTGID50测定结果!垫里苎堡!!婪!!竺缎丝!∑婴12熊稀释度细胞孔观察结果累计细胞孔数细胞CPE出现CPE孔不出现CPE孔出现CPE孔不出现CPE孔孔数孔的%10"1803103110010一712312495.810—711621888.91044496156010~355111631.310417218201010‘717t2526410‘808033330根据Re酣.Muench法计算提供的方法:.19.高于50%的百分数.50一”。
”ou。
1¨’~”¨)TC甄o=i磊赢磊孬丽i赢鬲i再F“m5%m31。
3 ̄0‘31uu50-高于50%的百分数.低于50%的百分数所以传代的OregonC24V病毒的TOlD50为O.1mL1043。
经查反对数约得19952.6即将O.1mL病毒进行19952.6倍稀释后的O.1mL病毒液为1个TCIDs0。
2.3MgCl2用量优化结果用预先设定的PCR反应体系和条件扩增RNA,计算机绘制样品曲线如图3:图3MgCl2优化结果Fig.3The代sultofMgCholrdmization由上至下3条线分别是5耻L、4pL、3uLMgCh用量的结果曲线,由图3可见,当MgCl2用量为5uL时,曲线里典型的“S”形。
猪瘟病毒、猪繁殖与呼吸障碍综合征病毒和乙型脑炎病毒多重RT-PCR检测方法的建立

病毒 , 因此 , 过 特 异 性 引 物建 立 多重 RT P R 方 rs TG V) 猪 细 小 病 毒 ( oc e pro i s 通 -C u, E , p ri av vr , n u 法 , 疑似病 猪 的组织样 品进行检测 , 对 仅需 1次反应 P V)伪狂犬病毒 ( su oa i i sP V) P , pe drb sv u , r 和猪 e r 即可诊 断 C F P R V 和 J V 的 单 独 或 混 合 感 圆环病毒 2型 ( ocn i o iu y e2 P V-) S V、 R S E p riec c vr stp , C 2 均 r
维普资讯
第2卷 第 1 7 期
猪非典型性瘟病毒RT-PCR检测方法的建立及初步应用
猪非典型性瘟病毒RT-PCR检测方法的建立及初步应用作者:郭佳琪杨晓宇冯宇杨钒徐志文朱玲来源:《江苏农业学报》2019年第02期摘要:为建立一种快速、准确检测猪非典型性瘟病毒(APV)的方法,根据Genbank发布的APPVNS2基因序列,设计合成1对扩增后目的基因片段大小为500bp的特异性引物。
建立的R’T-PCR方法对猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、伪狂犬病毒(PRV)和猪瘟病毒(CSFV)的检测结果均为阴性,该方法对APPV的最低检岀量为1μl4.95×10拷贝,重复性试验中组间、组内试验结果均与预期相符。
应用该方法对68份疑似患病的仔猪样品进行检测,阳性病料检出率为7.35%。
利用Mega7.0绘制APⅤ系统进化树,对APPⅤ进行遗传进化分析,结果显示本试验检出的APPⅤ(SC株)与中国报道的APPV的亲缘关系较近。
建立的APPV RT-PCR检测方法可用于APPV的临床诊断及流行病学检测。
关键词:猪非典型性瘟病毒;RT-PCR;检测中图分类号:S858281.34+7文献标识码:A文章编号:1000-4440(2019)02-0357-06仔猪先天性震颤(Congenital tremors,CT)会导致仔猪出生后数小时内出现骨骼肌双侧痉挛性收缩,妨碍仔猪站立、步行和寻找乳头3,致使仔猪饥饿和初乳摄入不足,严重的可导致仔猪死亡。
一般根据神经系统是否发生病变,将CT分为A型和B型,A型有明显的大脑和脊柱的组织学损伤,B型无损伤45。
A型又可分为A~A-V5种亚型,其中只有A-I型与AⅡ型具有传染性。
A-型一般认为是由猪瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起,以小脑发育不全为特征67。
AⅡ型的病因存在一定争议,直到2015年,Hause等通过宏基因组测序发现了猪非典型性瘟病毒(Atypical porcine pestivirus virus,APPV)2016年,Arruda9确定APPV是A的病因。
猪蓝耳病RT-PCR检测方法的建立
DoI : 1 0 . 3 9 6 9 / J . I SSN. 1 6 71 — 6 0 2 7 . 2 0 1 7 . 0 6. 0 1 1
国 内外诸 多学者 已对高致病 性猪蓝耳 病开展 了深入研
究, 并建立 了间接免疫荧光试 验 、 免疫过 氧化物酶单层试验 、
1 材 料
2 . 1 引物的设 计与合成
经查 阅国内外大量文献后发现 , 高 致病性 猪繁殖 与呼 吸综合征病 毒 ( P R R s V ) 的开放 阅读框 7
( o f f 7 ) 序列相 对保守 , 依据 G e n B a n k数据 库 中公 布 P R R S V
1 . 1 参考序 列 高致病性蓝 耳病病毒标 准株 、蓝耳病 标准
株、 蓝耳病北美 株 、 蓝耳病 欧洲株 等设 计引 物时所参考 的序
列 均查 询 自 G e n B a n k 。
的o r f 7 基 因序 列 和 高致 病 性 蓝耳 病 标 准株 基 因序 列 , 用
P r i m e r 5 . 0软件设 计引物 , 扩增 o r f 7 至近基 因组尾端 , 产 物片
要: 本研 究针 对 高致病 性猪繁 殖 与呼吸 综合征 病毒 ( P RRS V) 的开放 阅读框 7 ( o r  ̄ 7 ) 序 列设 计扩增 引物 , 建立
RT — P C R 检测方法 , 既 可检测 出高致病性蓝耳病 , 也 可检 测出蓝耳病经典毒株 , 提 高了蓝耳病 的检 出率。
1 0 × On e S t e p RNA PCR Bu fr e 5 L
作者简 介 : 纪爱英 ( 1 9 6 2  ̄ ) , 女, 河北省魏 县人 , 本科 , 农 业技
用RT—PCR方法检测猪瘟与猪蓝耳病混合感染
小为 4 0b 。 0 p
弓 物 P : ’一 C C T G Y G A C C G一 l 15 G T C G T G T AG T G 3; ’ 引物 P : ’ T A G T T A A A G G A一 ’ 25 一 G T C G C C C G T A 3 ; 弓 物 P : ’ A G C AG C G C A C 3 ;引物 l 3 5 一 T G C C A T A T A一 ’
21 年 02
7
l 墨 兰兰垫
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周 伦江 ’ 修 金生 z 吴学 敏 陈如 敬 ’ 严 山 ’
用R—C T P R方法检测猪瘟 与猪蓝耳病 混合感 染
王 隆柏
(. 省农 业科 学 院畜牧 兽医研 究所 1 福建
摘
福建 省畜 禽疫病 防 治工程 技术 研 究中心
福州 3 00 ) 5 0 2
福 州 30 1: 50 3
2福建 农林 大 学动物 科学 学 院 .
要 福建省某规模化猪场暴发一种 以保育猪精神沉郁 、 体温升 高、 腹泻、 消瘦等为主要特征 的传 染性 疾病。利用 R — C TPR
和 P R分别对采集的病料进行猪瘟病毒 、 C 猪蓝耳病病毒、 猪伪狂犬病毒、 猪圆环病毒和猪细小病毒检测, 结果猪瘟病毒和猪蓝
以上 引物均 由大连 T K R A A A公 司合成 。 1 R A和 D A提取 . 4 N N 取 患 猪 的肺 、淋 巴结 、 肾 等 组织 , 菌 条件 下 剪 取 约 2 g的 组 织 病 料 , 入 无 加
猪瘟兔化弱毒疫苗中病毒含量实时荧光定量RT_PCR检测方法的建立及初步应用
猪 瘟 (classical swine fever,CSF)是 由 猪 瘟 病 毒 (classical swine fever virus,CSFV)引 起 猪 的 一 种 高度接触性传染 病。 目 前,中 国 猪 瘟 的 流 行 以 温 和 型猪瘟和母猪持续 感 染 引 起 的 流 产、死 胎 和 新 生 仔 猪死亡为主;同时,猪 瘟 疫 情 表 现 复 杂,区 域 性 流 行 和 零 星 散 发 并 存 ;猪 瘟 免 疫 猪 群 频 繁 发 病 ,往 往 还 伴 随有多种原因引起 的 免 疫 失 败,严 重 威 胁 养 猪 业 的 健康发展(王 琴,2012)。 疫 苗 免 疫 接 种 仍 是 预 防 和 控制猪 瘟 的 重 要 手 段,中 国 的 猪 瘟 兔 化 弱 毒 (hog cholera lapinized virus,HCLV)是 国 内 制 备 猪 瘟 弱 毒疫苗种毒,用于生 产 猪 瘟 兔 化 弱 毒 疫 苗 细 胞 苗 和 脾淋苗(仇 华 吉 等,2005;宁 宜 宝 等,2011)。 国 内 有 些猪瘟兔化弱毒疫苗生产厂家生产的疫苗效价达不 到免疫预防需求。目前测定猪瘟弱毒疫苗的抗原效 价或疫苗效力主要 采 用 兔 体 定 型 热 反 应,对 于 规 模 化猪场猪瘟的防 疫,该 方 法 费 事、费 力,不 太 适 合 猪 场 对 猪 瘟 疫 苗 选 择 的 需 求 ,因 此 建 立 一 种 敏 感 性 高 、 特异性强的猪瘟兔化弱毒疫苗中病毒含量检测方法 有实际意 义。 鉴 于 实 时 荧 光 定 量 RT-PCR 技 术 具
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中国生物制品学杂志 2013 年 3 月第 26 卷第 3 期 Chin J Biologicals March 2013,Vol. 26 No. 3
98. 2%,while those of amplified PRRSV to ten representative PRRSV strains were 94. 1% ~ 97. 9%. Conclusion A multi- plex RT-PCR method for detection of CSFV and PRRSV was successfully developed,which laid a foundation of early diag- nosis and epidemiological investigation of classical swine fever and porcine respiratory and reproductive syndrome. Key words: Classical swine fever virus(CSFV); Porcine respiratory and reproductive syndrome virus(PRRSV); Multiplex reverse transcription-polymerase chain reaction
中国生物制品学杂志 2013 年 3 月第 26 卷第 3 期 Chin J Biologicals March 2013,Vol. 26 No. 3
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· 技术方法 ·
猪瘟和猪蓝耳病病毒多重 RT-PCR 检测方法的 建立及初步应用宝来利来生物工程股份有限公司,山东 泰安 271000
摘要: 目的 建立猪瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)和猪蓝耳病病毒(Porcine respiratory and reproductive syndrome virus,PRRSV)多重 RT-PCR 检测方法,并进行验证及初步应用。方法 根据 GenBank 中登录的 CSFV 和 PRRSV 疫苗株基因组序列,分别设计针对 CSFV 和 PRRSV 的两对引物,建立多重 RT-PCR 检测方法,并进行敏感性 及特异性验证。用建立的多重 RT-PCR 法检测 20 份疑似猪瘟、猪蓝耳病或混合感染病料,并与市售 RT-PCR 试剂盒 的检测结果进行比较;检测病料的部分 PCR 产物测序后,与 9 株具有代表性的 CSFV 毒株和 10 株具有代表性的 PRRSV 毒株进行核苷酸序列同源性比对。结果 以 CSFV 和 PRRSV 混合引物扩增,分别可扩增出 286 和 664 bp 的特异性条带。建立的多重 RT-PCR 检测方法可检出 100 倍稀释的病毒 RNA;该方法可检出 CSFV、PRRSV 及 CSFV 与 PRRSV 混合病毒,而猪流行性腹泻病毒(Porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)、猪传染性胃肠炎病毒(Transmissible gastro-enteritis virus,TGEV)、猪圆环病毒(Porcine circovirus,PCV)、猪细小病毒(Porcine parvovirus,PPV)和猪 伪狂犬病病毒(Porcine pseudorabies virus,PRV)的检测结果均为阴性;该方法检测 20 份疑似猪瘟、猪蓝耳病或混合 感染病料的结果与市售 RT-PCR 试剂盒比较,灵敏度达 100%;选取的两份 CSFV 扩增片段与 9 株具有代表性的 CSFV 毒株的核苷酸序列同源性在 92. 3% ~ 98. 2%之间,扩增的 PRRSV 与 10 株具有代表性的 PRRSV 毒株的核苷 酸序列同源性在 94. 1% ~ 97. 9%之间。结论 成功建立了 CSFV 和 PRRSV 多重 RT-PCR 检测方法,为猪瘟和猪蓝 耳病的早期诊断及流行病学调查奠定了基础。 关键词: 猪瘟病毒;猪蓝耳病病毒;多重逆转录聚合酶链反应
猪瘟是由黄病毒科(Flaviviridae)瘟病毒属(Pesti virus)的猪瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)[1] 引起的猪高致死性烈性传染病,该病以高热稽留、全 身广泛性出血、败血症、母猪繁殖障碍为主要特征[2]。 猪繁殖与呼吸综合征(Porcine respiratory and reproductive syndrome,PRRS)又称猪蓝耳病,是由动脉炎 病 毒 科(Arteriviridae)动 脉 炎 病 毒 属(Arterivirus)猪 繁殖与呼吸综合征病毒(PRRS virus,PRRSV)[3]引 起的一种猪高度接触性传染病,该病以母猪发生流 产、产死胎、弱胎、木乃伊胎以及仔猪呼吸困难、高死 亡率等为特征[4]。目前很多猪场均同时存在这两种 疾病,严重影响猪的生产[ 。 5-6]
中图分类号: S852. 65 + 1 S851. 34 + 7. 1 / . 7-1 文献标识码: A 文章编号:1004-5503(2013)03-0425-05
Development and preliminary application of multiplex RT-PCR for classical swine fever virus and porcine reproductive and respiratory syndrome virus
1. 2 主 要 试 剂 rTaq DNA 聚 合 酶 、dNTP Mixture (各 10 mmol / L)、DNA marker DL2000、反转录酶 M-MLV(Rnase H-)和 RNA 酶抑制剂 RNase Inhibitor 购自宝生物工程(大连)有限公司;Trizol 试剂购自上 海英骏生物技术有限公司;RNA 吸附柱为北京百泰 克生物技术有限公司产品;其他试剂均为国产试剂。 1. 3 引 物 设 计 及 合 成 根 据 GenBank 中 登 录 的 CSFV(JQ411591)和 PRRSV(EF635006)疫 苗 株 的 基因组序列,应用 Primer 5. 0 软件各设计 1 对引物, 见表 1。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司 合成。
CHEN Tian-tian,CHENG Fu-liang,LIANG Jin,SU Zhi-rui,FAN Qun-ping Shandong Baolai Bioengineering Co. Ltd.,Tai’an 271000,Shandong Province,China
Corresponding author:CHENG Fu-liang,E-mail:cfl_0428@ Abstract: Objective A multiplex RT-PCR method for detection of classical swine fever virus(CSFV)and porcine repro- ductive and respiratory syndrome virus(PRRSV)was developed,verified and preliminarily applied. Methods According to the genomic sequences of CSFV and PRRSV reported in GenBank,two specific pairs of primers were designed,based on which a multiplex RT-PCR method was developed and verified for sensitivity and specificity. Twenty suspected sam- ples with CSFV,PRRSV or mixed infection were detected by the developed method,of which the results were compared with those by commercial RT-PCR kit. The PCR products of partial samples were sequenced,and analyzed for homolo- gies of nucleotides to those of representative nine CSFV strains and ten PRRSV strains. Results Specific gene fragments at lengths of 664 and 286 bp respectively were amplified by RT-PCR using the mixed primers for CSFV and PRRSV. The viral RNA at a dilution of 1 ∶ 100 was detected by the developed method. The detection results of CSFV,PPRSV and mixture of the two viruses were positive,while those of porcine epidemic diarrhea virus (PEDV),transmissible gastro-en- teritis virus(TGEV),porcine circovirus(PCV),porcine parvovirus(PPV) and porcine pseudorabies virus(PRV) were negative. Compared with that of commercial RT-PCR kit,the sensitivity of the developed method for 20 suspected sam- ples was 100%. The homologies of nucleotides amplified CSFV to those of nine representative CSFV strains were 92. 3% ~