植物组织培养课程论文
植物组织培养管理论文

植物组织培养管理论文植物组织培养是一项重要的现代技术,它为植物繁殖和研究提供了有力的工具。
由于植物组织培养需要精密的操作和复杂的培养环境,因此,对于植物组织培养的管理不仅是一项必要的工作,更是保证培养质量的关键。
本文将讨论植物组织培养管理的重要性,以及如何实现高质量的组织培养。
一、植物组织培养管理的重要性植物组织培养管理对于保证培养品质和提高培养产量具有不可忽视的作用。
以下是植物组织培养管理的重要性:1. 保证培养质量植物组织培养中,培养基的成分和植物材料的来源、处理等诸多方面都会影响培养结果。
因此,对于培养环境的控制和维护非常重要。
包括消毒、环境温度和湿度等因素的调节,这些都是对培养质量的保障。
2. 提高培养产量植物组织培养超过单个细胞、组织或器官的生长和再生,目的是获得大量生产植株。
因此,对于培养条件的调控、管理以及后续的营养和生长阶段的管理,都至关重要。
3. 减少质量差异植物体细胞都是由相同的DNA贡献。
但在培养过程中,对于成分的变化和环境变化容易对植物细胞产生影响,这就导致培养品质差异的出现,包括营养、生长速度、形态等。
因此,对于培养条件、营养供应、组织均匀性等方面进行管理,减少培养品质差异非常必要。
二、植物组织培养管理的方式植物组织培养管理可以通过以下三个方面实现:1. 管理培养环境关于培养环境管理,保持适宜的温度、湿度以及灯光条件都非常重要。
对于培养室、培养器具等设备一定要保持清洁,并且防止因人员操作不当造成外界细菌侵入。
2. 管理培养营养对于营养的供应,最好是根据培养需要,在营养物浓度和种类的选择等方面进行一定的优化,以达到最佳外界环境与获得良好的成长和营养条件的肥料。
3. 管理培养过程关于培养过程管理,包括时间,以及培养物种类、数量、容器管理,以及后期的一些细节管理方面,保证培养物的生长平稳和高效率。
另外,定期更换营养液、检查培养物表面、观察生长情况等措施也是为了试验的成功实验,保证试验结果的准确性。
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天津师范大学生命科学学院《植物组织培养》课程论文——百合的组织培养研究摘要:百合是百合科百合属,多年生草本球根植物。
是著名的观赏花卉,可食用,有很高的利用价值。
利用组织培养进行繁育是百合无毒化和商品化的必要途径。
由于百合的常规繁殖率低,易感染病毒,所以对繁殖技术提出了更高的要求,人工繁殖技术对百合具有重要的意义。
本实验主要通过植物组织培养手段,以MS为基本培养基,以百合鳞茎为外植体,对其进行灭菌消毒,并置于温度为25摄氏度,湿度为80%的温箱中,8小时睡眠16小时光照的情况下进行培养。
随后观察其生长情况,并拍照记录。
本次实验外植体成功发育成愈伤组织,并长出芽。
此实验主要在于掌握植物组织培养技术,了解其方法过程。
关键词:组织培养;百合;无菌操作百合的组织培养目录摘要 (I)一、文献综述 (1)1.1百合组织培养技术进展 (1)1.2植物组织培养概述 (1)参考文献: (2)二、百合植物组织培养 (3)2.1实验试剂 (3)2.2仪器 (3)2.3生物材料 (3)三、实验步骤 (3)3.1培养基的配制 (3)3.1.1配制培养基母液的配制方法 (3)3.1.2 完全培养基的制备 (4)3.2兰州百合外植体灭菌处理和初代培养 (4)四、实验结果及讨论 (5)4.1实验结果 (5)4.2讨论 (10)一、文献综述1.1百合组织培养技术进展百合植物资源丰富,栽培历史悠久,花色多样,它不仅适用于庭院栽培,布置花境,也可盆栽观赏,并早已成为花卉研究领域的佼佼者。
百合虽然观赏性很高,但大多抗性很弱,尤其抗寒性。
一般在东北地区种植商品百合时,每年秋季必须起球,窖藏或者冷库存放,这大大增加了百合的生产成本,限制了东北地区花卉业的发展。
随着百合在国内外鲜切花市场的走俏,百合花生产和消费逐年增加,但由于百合种球繁殖率低,病毒侵染造成退化,难于满足切花生产需要。
目前主要采用组织培养进行百合脱毒和快速繁殖,以促进百合商品种球的生产。
植物组织培养 论文

植物组织培养技术【摘要】植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论,近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。
我分別从植物组织的培养方法、植物组织培养步骤、植物组织培养的优点来学习植物组织培养技术。
【关键词】植物组织培养、离体培养、试管苗、培养基植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论,近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。
植物的组织培养广义又叫离体培养,指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞,原生质体等,通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。
一、植物组织的培养方法1、非试管微组织快繁非试管微组织快繁技术是将外植体(一般要求带一叶一芽)放置在室内外普通沙子培养基上进行培养,利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。
一般植物7~15天可以生长出根系。
此技术投资低,操作环节少。
2、试管组织培养试管组织培养是将外植体(即离体组织、器官或细胞)放置在试管等器皿中在无菌的条件下进行组织培养获得试管苗。
二、植物组织培养步骤1、培养材料的采集要根据培养目的适当选取材料,选择原则:易于诱导、带菌少。
要选取植物组织内部无菌的材料。
这一方面要从健壮的植株上取材料,不要取有伤口的或有病虫的材料。
另一方面要在晴天,最好是中午或下午取材料,决不要在雨天、阴天或露水未干时取材料。
因为健壮的植株和晴天光合呼吸旺盛的组织,有自身消毒作用,这种组织一般是无菌的。
培养材料的消毒从外界或室内选取的植物材料,都不同程度地带有各种微生物。
这些污染源一旦带人培养基,便会造成培养基污染。
因此,植物材料必须经严格的表面灭菌处理,再经无菌操作手续接到培养基上。
(一)试剂:乙醇、吲哚乙酸( IAA)或 2 ,4 – D (生长素类似物)、氯化汞(升汞)或次氯酸钠、6- 苄基氨基腺嘌呤( 6-BA )MS 培养基、0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl(二)配制培养基( 1 )愈伤组织诱导培养基: MS 培养基(蔗糖含量为 10 g/L , 2,4 – D 含量为 2 mg/L ,琼脂 10 g/L )。
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植物组织培养的发展及其应用刘兆书、王梦瑶、王瑞雄、尹树明、左通通(石河子大学,生命科学学院,新疆石河子,832000)摘要:植物组织培养作为一种有效的技术手段已被广泛应用于生产实践的各个领域。
本文从植物组织培养技术的发展,总结了植物组织培养的发展历史及发展现状,重点介绍了组织培养技术在育种和脱毒快繁方面的应用,为今后植物组织培养的进一步发展和应用打下基础。
关键词:植物组织培养;发展;快繁;脱毒;育种德国的植物生理学家Haberlandt提出细胞全能性理论以后,在无数科学家的努力下,植物组织培养经过近百年的发展历程后,该技术日趋完善和成熟,得到了广泛的应用。
随着科学技术的不断发展,研究领域的不断拓展与深入,植物组织培养技术的应用也越发的广泛。
育种方面的应用非常广泛,已经形成了一门理论和技术;在工厂化育苗方面,产生巨大的经济及社会价值;同时植物组织培养技术的发展也促进设施农业、食品、工业、医药业等领域发展,现就植物组织培养技术的发展和应用作简单总结。
1、植物组织培养的发展1.1植物组织培养的发展历史1838-1839年,德国的植物学家T. Schleidon和动物学家T. Schwann提出细胞学说。
1902年德国的植物学家Haberlandt提出:高等植物的器官和组织,具有植物细胞全能性。
1904年Harming在无机盐和蔗糖溶液中对萝卜和辣根菜的胚进行培养,发现离体胚可以发育成熟,并提前萌发成小苗。
1937年White 发现了B族维生素,建立了第一个由已知化合物组成的培养基,该培养基被定名为White培养基。
同时法国的Gautherer和Nobecourt也发现了B族维生素的重要性,三个人被誉为植物组织培养学科的奠基人。
1952年Morel和Martin通过茎尖分生组织的离体培养,从已受病毒侵染的大丽花中首次获得脱毒植株。
1953-1954年Muir利用震荡培养和机械方法获得了万寿菊和烟草的单细胞,实施了看护培养,使单细胞培养获得了成功。
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植物组织培养题目:烟草的再生姓名:专业班级:学号:指导老师:烟草的再生前言:植物组织培养是指用无菌方法使植物体的离体器官、组织和细胞在人为提供的条件下生长和发育的所有培养技术的总称,也称之为离体培养或试管培养。
植物体的每一个具有完整细胞核的细胞都具有该物种全部遗传的物质,在一定条件下具有发育成完整植物体的潜在能力,这就是植物细胞的全能性,这也是植物组织培养的理论基础。
组织培养材料可分为①器官:根、茎尖、叶、花、果实等;②组织:形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等;③细胞:大孢子、小孢子、体细胞;④原生质体。
因此按照组织培养的材料可将植物组织培养分为(1)组织、器官或细胞培养:指利用生物体各部分组织、器官或细胞进行离体培养,使之形成愈伤组织或完整有机体的技术。
(2)原生质体培样:指将微生物或植物细胞游离成原生质体,在适宜培养条件下,依据细胞全能性使其再生细胞壁,并进行细胞分裂分化,形成完整个体的技术。
一个细胞一旦沿着某一条特定的途径分化发育后,一般不会再回复到未分化状态,但在组织培养条件下,可能发生脱分化和再分化。
脱分化是将已分化的不分裂的静止细胞,放在培养基上培养后,细胞重新进入分裂状态。
一个成熟的细胞转变为分生状态的过程。
再分化是脱分化的组织或细胞在一定的培养条件下可转变为各种不同的细胞类型,形成完整植株的过程。
植物组织培养具有①培养条件可以人为控制;②生长周期短,繁殖率高;③管理方便,利于工厂化生产和自动化控制等特点。
植物组织培养过程为:一、实验目的:1.了解学习组织培养的基本操作过程。
2.实践母液的配制、培养基的配制。
二、实验材料试剂和实验仪器1.实验材料:烟草的叶片2.实验试剂:MS培养基母液所需的各类药品,蔗糖,琼脂,1mol/L的NaOH,70%酒精,升汞溶液,蒸馏水,无菌水3.实验仪器:无菌操作台,锥形瓶,镊子,解剖刀,酒精灯,电子天平,烧杯,高压蒸汽灭菌锅,刀片,培养皿,量筒,培养箱,牛皮纸,玻璃棒,漏斗,灭菌后的滤纸,棉线,电炉,PH试纸,冰箱,塑料瓶,移液管,洗耳球三、实验步骤(一)MS培养基的配制1.大量元素母液的配制(1)大量元素母液配制的方法无机盐中大量元素母液按照培养基配方的用量,用感量为0.01g的天平,分别用50mL烧杯称量,用蒸馏水溶解。
菊花组织培养论文

菊花组织培养论文引言在植物组织培养领域,菊花(Chrysanthemum morifolium)是一个重要的研究对象。
菊花具有丰富的花色和形态的变异性,广泛用作观赏植物。
然而,菊花的繁殖方式繁琐且时间较长,限制了大规模繁衍菊花。
组织培养技术的引入为菊花的快速繁殖和改良提供了解决方案。
本论文旨在研究菊花的组织培养方法,以及组织培养对菊花生长和形态的影响。
材料与方法1. 实验材料•菊花离体组织:从菊花茎、根和叶中分离获得。
•培养基:含有适当激素和营养元素的MS培养基。
2. 组织培养方法1.材料消毒:将菊花组织浸泡在含有0.1%次氯酸钠的消毒液中,连续搅拌10分钟。
2.组织分离:使用无菌工具将经消毒的菊花茎、根和叶切割成小块。
3.转接至培养基:将切割好的菊花组织转移到含有MS培养基的培养皿中。
4.培养条件:在光照强度为2500 lux、温度为25℃的无菌培养室中培养。
3. 观察和测量指标•菊花组织是否存活:观察培养基中组织的颜色和形态的变化。
•菊花组织生长指标:测量组织的增长速度和鲜重。
结果1. 组织存活情况经过观察,菊花茎和叶的存活率高,颜色鲜绿,软硬适中;而菊花根的存活率较低,颜色较暗,质地较硬。
根据这些观察结果,我们选择茎和叶作为菊花组织培养的优选材料。
2. 菊花组织生长情况菊花组织在MS培养基中呈现良好的生长趋势。
初始培养后的菊花茎和叶组织在第4周开始发芽,生长速度逐渐加快,到第8周达到最大鲜重。
然后,鲜重稳定,在第12周后稍有下降。
菊花根组织的生长速度较慢,到第8周才开始发芽,但鲜重相对稳定,在第12周后也有轻微下降。
讨论通过本研究,我们成功地建立了菊花的组织培养方法,为菊花的快速繁殖提供了解决方案。
从实验结果可以看出,菊花茎和叶组织在培养基中的生长情况较好,适合用于大规模繁衍菊花。
而菊花根组织的生长速度较慢,不适合用于菊花的组织培养。
这些结果对于菊花的组织培养技术的进一步优化和应用具有重要的参考价值。
植物组织培养论文

植物组织培养论文第一篇论文植物组织培养班级:生物技术112组别:第六组姓名:蔡静波摘要:近些年来玉米组织培养技术发展十分迅速,玉米组织培养技术作为一种新型的科研技术,越来越受到人们的重视。
浅谈植物组织培养技术的基本原理、意义及面临的一些问题,综述了玉米子房和幼胚系统的组织培养研究、玉米茎尖和根尖离体培养研究和玉米花粉和花药培养研究。
关键词:组织培养;原理;玉米1 植物组织培养1.1 植物组织培养的意义植物组织培养首先不仅可以生产大量的优良无性系,而且可以获得人类需要的多种代谢物质;其次,细胞融合可打破种属间的界限,克服远缘杂交不亲和性障碍,在植物新品种的培育和种性的改良中发挥着巨大的作用;再次,还可获得单倍体、三倍体及其它多倍体、非整倍体;最后,组织培养的植物细胞也成为在细胞水平上分析研究的理想材料。
1.2 植物组织培养的基本原理植物组织细胞培养的依据是植物细胞的全能性和再生作用。
1902 年,德国著名植物学家G Haberlanclt 根据细胞学理论,大胆地提出了高等植物的器官和组织可以不断分割,直到单个细胞,即植物体细胞,在适当的条件下,具有不断分裂和繁殖,发育成完整植株的潜力的观点。
织培养选用的基础培养基有MT 、MS 、SH 、White 、N6等,由于不同种类植物所需要的生长条件有所不同,有的培养基要作一些改良,有的要选择专用培养基,但是一般采用较多的是MS 。
组织培养采用固体培养基的比较多,但固体培养基只有在植物的周围的营养物和激素被吸收,而大多数的物质还残留在培养基里,如果这些培养基还能被利用,对工厂化生产的减少成本方面有很大的帮助。
杜勤仁等在无外源激素条件下,研究液体和固体培养基对黄瓜子叶培养器官分化的影响,结果用液体培养基直接诱导花芽率更高,分化高峰期出现的时间也更早。
这也说明了液体培养基对外植体的生长更有利,只是固体培养基在操作上更方便,被较广泛应用。
胚性愈伤组织比非胚性愈伤组织具有更强的生长能力、胚胎发生能力和相对较高的同工酶活性,而形成胚状体再分化出植株比形成愈伤组织再形成植株要更容易。
植物组织培养论文-植物学论文-生物学论文

植物组织培养论文-植物学论文-生物学论文——文章均为WORD文档,下载后可直接编辑使用亦可打印——植物组织培养是指用植物各部分组织,如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株,本篇文章就向大家介绍几篇植物组织培养论文,希望对大家探讨植物组织培养时有所帮助。
植物组织培养论文参考阅读10篇之第一篇:浅谈林木植物组织培养技术中存在的问题及对策摘要:该文从褐化、玻璃化、生根困难、组培成本较高等方面分析了林木植物组织培养技术存在的主要问题,介绍了植物无糖组培技术,以期提升林木植物组织培养技术水平,为该领域的研究提供参考。
关键词:林木植物;组织培养技术;问题;对策;自细胞全能性理论于1902年被提出以来,人们对植物组织培养技术的研究已有100多年的历史,并且研究成果在不断增加,对细胞全能性理论的利用也越来越广泛。
长期以来,对于植物组织培养主要是从外植体方面进行相关的研究,同时也对完善培养基和提高增殖率方面加强了研究。
我国在研究植物组织培养的方面较早,最初在组培技术方面的利用是对欧洲赤松进行胚胎培养,20世纪70年代以后,一些研究成果已处于世界领先水平。
近年来,我国开始利用小型化的培养材料和试管苗,为在小空间培育出大量植物幼苗提供了条件。
组织培养最显著的特点是快,以1个茎尖或少量的叶片为基数,可以在组织培养下增殖10000~100000株/年。
目前,相较于花卉、草本植物,移植存活率更低、生长周期更长的林木植物在组培研究中受到褐化、玻璃化、生根困难、组培成本较高等因素的影响,需要通过相关研究解决这些难题。
1 林木植物组织培养存在的主要问题1.1 褐化褐化又被称为酚污染,出现这一情况不仅会影响培养组织的再分化,也会影响外植体脱分化,对林木植物的组织培养具有重要的影响。
褐化包括酶促褐化和非酶促褐化2个方面,通常酶促褐化是常见的病变。
在正常生长发育的植物组织细胞中,多酚类物质不会与多酚氧化酶接触,所以不存在褐化的问题。
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植物组织培养技术论文—月季组织培养技术系别:生命科学学院专业:生物技术及应用姓名:曹胜华学号:200930771015[摘要]月季为蔷薇科蔷薇属木本植物, 其花姿优美,花型丰富,花色齐备, 树型易修剪,栽培难度小;其花型大,美丽,幽雅,高贵。
月季通常采用扦插、嫁接和压条繁殖,但是一些名贵品种扦插不易生根,主要靠芽接繁殖,而芽接速度慢,因而造成优良品种的月季苗供不应求。
[关键词] 月季组培随着生物技术的迅猛发展,植物组织培养和细胞培养等现代生物技术得到普遍重视和应用,为月季的快繁和新品种的选育提供了新的途径,在月季的改良上显示了很大的应用潜力。
以月季为试材进行组培试验,综述了月季组织培养、快繁的研究技术及进展,并对月季组培的最优条件进行了总结。
本研究探索出的月季组培快速繁殖技术,在试管苗单芽诱导丛生苗、利用代用品培养降低组培成本、试管苗管外扦插生根、试管苗微型化长途运输等方面,较前人有所改进。
一.月季组织培养的研究进展月季是世界栽培种类较多的多年生木本花卉之一。
别名长春花、月月红、斗雪红、瘦客等,蔷薇科蔷薇属植物,其花姿优美,花型丰富,花色齐备, 树型易修剪,栽培难度小。
其花型大,美丽,幽雅,高贵。
在鲜花应用中,月季花的地位和比重与日俱增,是世界上著名的四大切花之一[1]。
月季的花色可编制成完美的连续色谱。
月季是重要的花卉,世界的销售额多年来稳居各类花)卉的第一或第二。
月季的一大优点是分布极广,适应性良好,栽培容易。
月季是四季常青花卉,花期长,花色多,芳香馥郁,由于其特殊的情感内涵和商品价值[2],被广泛应用于园林、庭院装饰,并可制成月季盆景,作切花、花篮、花束等。
此外,月季花可提取香料,根、叶、花均可人药,具有活血消肿、消炎解毒等功效。
当前,月季育种是花卉育种中最活跃的领域之一。
月季通常采用扦插、嫁接和压条繁殖,但是一些名贵品种扦插不易生根,主要靠芽接繁殖,而芽接速度慢,因而造成优良品种的月季苗供不应求[3]。
随着生物技术的迅猛发展,植物组织培养和细胞培养等现代生物技术得到普遍重视和应用,为月季的快繁和新品种的选育提供了新的途径,在月季的改良上显示了很大的应用潜力。
同时,月季组培和遗传转化系统的建立也是体细胞克隆变异育种和基因工程育种的重要前期工作[4]。
月季原产我国,早在汉代就有历史记载。
2 0 0年前,月季植入西方和各国的蔷薇结缘,繁育出成千上万新月季品种,现代月季( 分为茶香月季 HT、聚花月季 F、壮花月季 Gr|、攀缘月季 CI、微型月季 Mi n、以及中国月季 Ch等 9大系。
) 也随之推广到除热带和寒带外的世界各地。
目前世界各地广为栽培的月季,是以中国月季为主要亲本,经以长期杂交育种而选育成功的。
月季在观赏植物中的地位是很高的,全世界各国人民都普遍喜爱月季,月季的销售额多年来稳居各类花木的前茅。
月季的用途很广( 如用藤本月季布置长廊、拱门;树状月季装饰主干道等)。
国外月季花卉工厂化育苗开展较早,在某些国家和地区已成为获得巨额外汇的支柱产业。
我们国家的组织培养技术与国外相比差距不大,但是产业化起步较晚。
在加快科学技术转化为生产力的今天,植物组培技术广泛应用于月季花卉的繁殖育种.必将取得巨大的经济效益、社会效益和生态效益。
月季生长繁殖速度较慢,应用组织培养技术可大大缩短它的增殖周期,快速繁殖优良品种。
在短期内繁殖出数以万计的苗木,这些苗木的遗传特性和表型特性与母株完全相同,完全保持了母株的优良特性。
月季花组培繁殖可以周年生产,不受季节限制,并且耐贮藏不易烂苗,可脱离培养基长途运输,实现了苗木运输“微型化”。
二.月季组织培养技术(一).外殖体的选择、消毒及接种外殖体一般选取生长健壮的当年生枝条的饱满而未萌发的侧芽。
取回枝条用自来水冲洗干净,无菌条件下用7 0 %酒精表面消毒3 0 ~ 4 0 S,再用0.1 %H g C 1 溶液灭菌5 ~ 1 0min,最后用无菌水冲洗3 ~ 5 次。
芽的快速繁殖与供试材料的基因型有关,同时还与外殖体的取材部位有关,来源于枝条中部的侧芽的繁殖速率最快[5]。
李青等分别选取一年生枝条的冬芽和当年生枝条的腋芽作为外殖体,相同条件下培养发现越冬芽的成活率较高,且从接种到萌动时间较短,生长快,在后代繁殖中植株健壮。
于冰沁在外殖体的接种中采用了垂直接种,斜向上4 5 度接种,水平接种和反转接种4种方式,发现垂直接种和斜向上 45 度接种是最佳的接种方式,腋芽再生芽数多,且生长健壮,这可能与植物的生长极性有关。
诱导培养基以MS为基本培养基,附加适量的细胞分裂素 6 一苄氨基嘌呤( 6 - BA) 和生长素萘乙 D 6 7 B 0 2) 酸 ( NAA) 。
NAA增加至 0.1 m g / L时, 6 一 BA浓度的高与低已对增殖系数不产生明显影响。
最适的侧芽诱导培养基为 MS + 6 一 B A 0.5 ~ 3.0 m g / L + N AA 0.0 l ~ 1.0 mg / L [6-9],且培养基中添加蔗糖有增加丛生芽数量的作用。
(二).继代培养将诱导培养基上已经萌发的嫩芽转入附加 6一B A 、NAA等激素的MS培养基中,进行增殖继代。
K T, I A A等激素作用效果较差,协同作用不明显[6]。
低浓度的6 一BA 有利于不定芽的增殖,浓度过高则抑制不定芽增殖,适量 NAA有利于芽和叶生长[7],但浓度过高诱导产生大量愈伤组织,不利于侧芽的直接分化和生长[8]。
在 NAA浓度相同而B A浓度不同的培养基中,随B A浓度的升高,芽苗的增殖系数也相应提高。
在 B A浓度相同而 NAA浓度不同的培养基中,随NAA浓度升高,小芽生长速度加快,继代所需时问对增殖系数也有一定的影响[9]。
此外,增殖系数还与品种有关。
从增殖倍数、叶片数、再生芽长势等综合因子来看, MS + B A 0.5 ~ 2.0 mg / L + NAA 0.O1 ~ 0.05 mg / L是最适的不定芽增殖培养基( 表 1 ) 。
表 1增殖培养基( MS ) 中不同激素对芽的影响 ( m g / L )激素组成增殖苗生长情况NAA 0.01 + B A 0.5 增殖系数较高,健壮NAA 0.l + B A 1.0 增殖系数较高,健壮NAA 0.01 + B A 2.0 增殖系数较高,健壮NAA 0.05 + B A 1.0 增殖系数较高,健壮NAA 0.05 + B A 2.0 增殖系数较高,健壮NAA 0.05 + B A 3.0 增殖系数高,苗发黄,细弱NAA 0.1 + B A( 0.5 , 1.0 , 2.0,3.0) 增殖系数低,苗细弱,玻璃化NAA 0.2 + B A( 1.0 , 2.0 ) 芽基部长有愈伤组织(三).生根培养无菌芽苗在继代培养基中只诱导地上部分生长。
待培养一段时间后,转入生根培养基中,诱导生根。
多数试验采用的培养基为 1 / 2 MS [6-9]( 大量元素减半)。
Skirvin 等”在用“ Frever yours ”月季做生根试验时发现,采用 1 / 4 MS培养基,不加生长素即可以促进生根。
在无菌苗的生根诱导过程中,生长素的种类和浓度起决定性作用。
李青等[6]分浓度NAA、 I B A、 I A A对藤本月季进行生根培养,发现 3 种生长素的生根效果不同,且浓度的影响较大。
李海燕等[8]发现低浓度的生长素有利于根的形成,适当浓度的I B A、 NAA 对生根率有显著影响,浓度过高会抑制根的形成,NAA浓度为0.50mg / L时效果最佳( 表2 ) 。
生根阶段加人活性炭( AC) 后,有助于提高生根率和生根质量[11]。
李青等[6]利用 1 / 2 MS + I B A 0.2 mg /L+ 活性炭诱导生根,生根率最高为9 0 %,且随着活性炭百分比的加大,生根率逐渐下降。
活性炭的加入能显著促进生根量和根的长势,但仅含活性碳的培养基只见较少发根,且根细弱,说明植物激素对于生根是必不可少的[9]Hyndm an等”用改良烟火月季品种进行研究发现,MS 培养基中盐浓度过高,特别是氮素含量过高会导致生根不适应,所以需减少无机盐用量。
(表2)表2生根培养基( 1 / 2 MS ) 组成对生根的影响 ( m g / L )激素组成生根情况NAA 0.1 生根多,健壮NAA 0.1 + 活性炭 O.3 生根多,生根快NAA 0.5 生根较多,健壮IBA 0.1 生根率低IBA 0.2 生根完全,生根快IBA 0.5 生根数多,生根快(四).驯化与移栽小苗接到生根培养基上后, 1 4 d 可见基部分化出根点, 2 0 d则长出许多白根。
此时组培阶段结束,进入试管苗移栽成活阶段。
所有试管苗移栽前都应先将生根苗移至室温进行移栽前的锻炼。
锻炼时问与移栽成活率有关,练苗 7 d以上,成活率达到9 5 %[6]。
影响移栽成活率的主要因素有3个:湿度、温度以及基质种类和带菌量[15-16]。
考虑到这3个因素,移栽时应保持9 0 %以上湿度,1 8 ~ 2 5℃的环境温度,基质用 0.2 %的高锰酸钾或其他灭菌剂进行消毒灭菌[15]。
而基质的选择上,以蛭石和珍珠岩的栽培效果较好。
移栽成活后喷极稀的营养液,使小苗得到营养补充。
l 0 ~ 15 d即长出新叶,且根系快速生长,可适时进行大田移栽。
三、影响月季增殖的因素1.BA用量及侧芽在茎段上的位置对侧芽发育的影响。
用“和平”品种月季的枝条,均等分为6段,取每段的一个侧芽培养在无激素的MS基本培养基上,23天后可见接近枝条最顶端和紧挨着枝条基部的芽发育最慢,而枝条中部的芽发育比较快。
在不同浓度BA的MS培养基上,BA含量为0.03~0.3毫克/升的培养基,促进“皇冠”“彩云”侧芽的发育,如果BA超过O.3mg/L,则延迟芽的发育,但对于茎段中部的芽影响较小。
2.摘心对茎增殖的影响。
在继代培养的接种操作时,切去嫩芽的顶芽后,再转接到新的培养基上,对嫩芽增殖有很大的促进作用。
3.赤霉素的影响。
试用了赤霉素,其浓度为0.1、0.3、1、3、10、30和100毫克/升,试验发现所有浓度都抑制茎增殖,随着其浓度增高,茎增殖数下降,赤霉素浓度增加,还出现细长的嫩茎和发育不全的叶子,畸型植株等。
4.嫩芽长度对形成多芽苗的影响。
茎尖在1~10毫米长短时,对形成多芽苗最有效,不但百分率高,而且每个茎段的侧枝数也比较多,切割过短或过长都对茎的增殖不利,芽苗形成较少。
切割过长会表现出叶子衰老等不利的现象,最适宜的茎尖长度为6~10毫米。
5.每次继代培养所需时间对嫩茎增殖的影响。
在MS+BA3+IAA0.3的培养基上,“红双喜”月季的培养时间为28天,继代一次较好,超过28天,茎的数目已不再增加。
6.MS配方和无机盐浓度。