5.常见微生物标本的采集、保存与送检
临床微生物标本的选择、采集、运送及保存
临床微生物标本的选择、采集、运送及保存要发挥实验室的有效作用，选择正确生理部位和采集合适的标本及其正确运送等环节最为重要。
标本的采集和处理应该优先考虑，否则，实验室所做的工作几乎没有什么价值。
因此，所有与标本质量的各环节有关的医务工作者必须要了解在整个实验过程中保证标本质量的重要性和必要性。
实验室有责任提供相关信息资料，使之编入各科室的护理手册中。
包括详尽的安全标准，标本的选择、收集、运送、接收和填写及粘贴标签的标准。
在此手册中为您提供了临床微生物实验室的送检标本的正确采集和处理指南。
安全指南对于实验室工作人员最先考虑到的应是实验台的安全。
其他医务人员也许没在意在送往实验室的标本中潜在有病原体。
所以要制定安全规章制度以保护实验室人员和其他可能接触到病原体的人员。
大多数的微生物实验室的手册中都有实验室安全操作章节部分，实验室操作手册中还应该包括有关标本管理的安全操作的内容。
有关生物安全的参考资料对于每个微生物实验室都适用。
适用于实验室的安全参考资料应该包括有‘微生物实验室和生物实验室的生物安全指南，第三版’,以及实验室的生物安全指南：‘谨慎操作和处理传染性材料准则’。
直接有关标本的安全管理方针：1.所有采集标本的操作要戴手套，穿工作外套、口罩、甚至护目镜。
2.所有标本容器必须防漏，运送也应装入密封防漏的塑料袋中，袋上附有一表格用于填写日期、时间、姓名之用。
3.决不能将带有针头的注射器送到实验室。
应将注射器中的标本注入无菌试管中。
或采用防护手段取掉针头，再盖上注射器并放入密封防漏的塑料袋中送检。
4.不得将装有标本的破损容器送往实验室，也不能对其进一步处理。
应该及时向医生通报容器渗漏，解释如果留用标本，会带来的潜在危害性并要求重新送检。
如果新标本送来，则将泄漏的标本高温高压处理后再废弃掉。
标本的选择与采集采集送检标本前，必须有所选择标本的种类和采集部位并要反应有效病程。
如果不选择有效部位，再好的方法采集的标本，没有有效病原体也没多大临床价值。
微生物标本的正确采集
微生物标本的正确采集正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤，因为只有采集到合适的标本，才能够准确、客观地检测出病原菌，为诊断和治疗提供科学依据。
以下是一些采集微生物标本的正确方法：一、注意清洁和消毒在采集标本前，必须对手部进行清洁和消毒，以减少污染的可能性。
使用肥皂和水清洁手部，或者使用酒精消毒剂消毒手部。
同时，还需要对采集标本所使用的器械进行消毒，确保无菌操作。
二、选择正确的标本类型不同的微生物感染会有不同的症状和体征，因此需要根据患者的具体情况选择正确的标本类型。
例如，对于呼吸道感染，可以使用鼻咽拭子、痰液等；对于胃肠道感染，可以使用大便标本等。
三、正确采集标本1.采集前准备：了解患者的病史和症状，确定需要采集的标本类型，准备好采集所需的器械和消毒用品。
2.采集方法：根据不同的标本类型，采用正确的采集方法。
例如，对于痰液标本，需要让患者用力咳嗽，将痰液咳出并放入收集器中；对于大便标本，需要让患者取适量的大便放入收集器中。
3.采集量：采集的标本量应该足够，以便进行实验室检测和分析。
一般来说，采集的标本量应该不少于检测所需量的两倍。
4.采集时间：采集标本的时间也有讲究。
例如，对于呼吸道病毒的检测，最好在患者发病的早期采集标本；对于肠道病毒的检测，最好在患者发病后一周内采集标本。
5.保存方式：采集完标本后，需要妥善保存。
一般来说，应该将标本保存在适当的介质中，如保存液或培养基中，以保持标本的活性和完整性。
同时，还需要注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。
四、避免污染和交叉感染在采集标本的过程中，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染和交叉感染。
例如，在采集痰液标本时，应该让患者先用清水漱口，再用无菌棉签擦拭咽部，以减少口腔和咽部的细菌污染。
同时，还需要注意实验室内的清洁卫生和消毒工作，确保实验室内的空气和环境符合要求。
五、及时送检采集完标本后，需要及时送检。
一般来说，应该将标本尽快送到实验室进行检测和分析。
临床常见微生物标本的采集与运送
临床常见微生物标本的采集与运送临床常见微生物标本的采集与运送唐玉英正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。
一标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。
二标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。
三不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检尽快送检，一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。
对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。
3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。
3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应足量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。
本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。
一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。
在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。
2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。
采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。
3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。
不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。
4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。
5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。
运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。
二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。
不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。
2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。
一般要求在采集后 24 小时内送检。
3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。
包装材料应无毒、无菌、防渗漏。
三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。
正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。
临床微生物标本采集和运送规范
➢ 可疑细菌性心内膜炎,在1～2h内采集3份血标本,如 果24h后阴性,再采集3份以上的血标本。
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脑脊液标本采集送检规范
❖ 采集时间：最好在抗菌药物使用前采集。 ❖ 采集方法：通常用腰穿的方法采集脑脊液，
➢ 采集数量：对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连 续2～3天。不建议24h内多次采集，除非痰液外观性状 出现改变。
➢ 标本运送：标本应尽快送检（1-2h内），如不能及时
送检，室温保存≤2h，4℃冰箱保存≤24h。
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生殖道标本采集送检规范
❖ 应由临床医师采集，用无菌棉拭子采集。淋球菌 检查时，不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入 尿道及子宫颈3cm深取样送检，要避免受阴道分 泌物污染。
离体后回迅速自溶。肺炎链球菌和流感嗜血杆菌 离体后极易死亡。）。延迟送检时一定不能放冰 箱，肺炎链球菌和流感嗜血杆菌等对温度敏感的 细菌在冰箱会很快死亡。 ❖ 各种无菌体液标本，如胸腹水、浆膜腔积液及各 种穿刺液等亦可注入血培养瓶以提高培养的阳性 率。
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尿液标本采集运送规范
❖ 采集时间：尽量在抗菌药物使用前（多数药物从尿道 排泄）。
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痰标本采集运送规范
❖ 采集时间：尽量在使用抗菌药物之前 ❖ 采集方法： ➢ 自然咳痰：以晨痰为佳。咳痰前应清洁口腔如刷牙和
漱口，然后用力咳出呼吸道深部痰，直接吐入于无菌 容器中。痰少或无痰者可用3-5%NaCl水溶液5ml雾化吸 入5min导痰（气道高反应如哮喘病人不宜采用此法）。 对于难于自然咳痰者可用微生物室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。 ➢ 小儿取痰法 最好用微生物实验室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。
临床常见微生物标本的采集和运送 PPT
其他
无菌体液
血液
脑脊液 关节腔积液
胸腹水 其他
微 （D生i物rty实、验D室um常p被、称D为an3gDe实ro验us室）
血液培养标本的采集
采血次数：对于成年患者，应该同时分别不同部位采集 2-3套血标本（一套为一瓶需氧一瓶厌氧），在不同部位 分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的 血流感染非常罕见，一般无需常规做厌氧培养。
引器至适宜负压(成人：40.0—53.3kPa；小儿：<40.0kPa)。
⑤将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，
检查管道是否通畅。
⑥折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深
度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管
注：除婴儿和活动性腹泻患者外不推荐用拭子做常规病原 检查
微生物标本存在问题
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临床常见微生物标本的采集和运送
微生物培养标本采集送检的基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的
临床微生物标本的种类
带菌体液 痰
尿液 粪便
与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前 后需吸入高浓度氧气1—2min)。
⑦将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向
吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、 纸屑灰尘的为不合格标本。
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6
标本标签内容
– – –
最小包装（每个标本） 每个包装箱 每批样本后要附上一个样本清单，详 细列出此批样本的名称、状态和注意 事项。
7
2013-8-1
– – – – – – –
样本编号——唯一性 样本来源——从什么物质、材料中采集的，如病理采集的肝 脏就可标注为某某患者肝脏 样本数量——包装中样本的数量，如：此包装中同时采集了2 块肝脏样本，就要标注为2 采样时间： 采样地点： 采样人： 样本处理情况：抗凝剂 、运送培养基、标本状况（开封食品）
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2013-8-1
要达到有效控制疫情的目的，必须做到
早期发现和报告可疑病例； 快速的流行病学调查； 实验室对病原体的快速确诊； 实施有效的控制措施。
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2013-8-1
实验室诊断的目的意义
识别暴发、确定病因 确定传染来源 确定流行范围 确定传播链 发现特殊的毒株 判断院内交叉感染 疫苗实施项目的考核 仲裁依据
高度的责任心
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2013-8-1
在去现场之前，应考虑到以下的问题
在进行临床和流行病学信息评估时，需考虑
引起暴发的潜在病原体； 地方性疾病谱和流行季节谱可进一步缩小可 能的因素； 同时还必须考虑到多种病原体感染可出现相 似的临床表现，因而需要采集多种类型的标本 用于定义暴发的原因。
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2013-8-1
鼻咽拭子标本
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2013-8-1
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2013-8-1
Stuarts——主要成 分
甘油磷酸钠 硫代硫酸钠 氯化钙 亚甲兰 琼脂 炭粉
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Stuarts运送培养基
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2013-8-1
Cary-Blair运送培养基
克服在运送肠道菌时，因这些菌含有甘 油磷酸脱氢酶，造成低度氧化，使细菌 能代谢而生长。 特别适合于运送含弧菌的标本。研究显 示，在28℃情况下，Cary-Blair可维持弧 菌活力22天，沙门氏、志贺氏菌49天； 70～80℃副溶血弧菌可达35天。
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2013-8-1
血培养瓶含有0.025%SPS（聚茴香脑磺酸钠 sodium polyanethol sulfonate SPS），可以 起到抗凝、抗吞噬、抗鳌合的作用；还含有树 脂、炭颗粒，可吸收血液中的抗生素，提高细 菌培养的阳性率。 血量>3ml时，将血分别放入两个血培养瓶， 若瓶子装血太多将降低降低阳性率。
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2013-8-1
咽拭采集的正确与 否？
wrong
right
44
2013-8-1
鼻拭子的采集
将1根聚丙烯纤维头的塑 料杆拭子轻轻插入鼻道 内鼻腭处，停留片刻后 缓慢转动退出。取另一 根聚丙烯纤维头的塑料 杆拭子以同样的方法采 集另一侧鼻孔。上述两 根拭子浸入同一含3ml 采样液的管中，尾部弃 去，旋紧管盖。
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2013-8-1
Cary-Blair运送培养基
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2013-8-1
Amies运送培养基---Stuarts的改良产品
（含活性炭）用磷酸盐缓冲液代替甘油磷酸钠等
100株菌 Stuart's Amies
时间
24 小时 48小时 72小时
菌株存活数
91 79 56
2013-8-1
菌株存活数
98 87 77
常见微生物标本的采集、保存与送检
茂名市CDC流行病学培训班 麦充志 2011、3
1
2013-8-1
碗与筷子的关系
2
2013-8-1
标本采集
采集时间----何时采 采集种类----采什么
采集方法----怎么采
采集数量----采多少
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怎么采
样品采集程序
采样用物品准备 采样程序方法 采样记录 样品编号 样品保存 样品送检
pH7.0～7.6的Hanks液或MEM/DMEM液
或生理盐水。在采样液中需加入抗菌素，可用
青霉素（终浓度为100U/ml）、庆大霉素 （终浓度为1mg/ml）和抗真菌药物（终浓度 为2µg/ml）
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病毒采样盒
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2013-8-1
咽拭子
出血点渗液
血液
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接种0.5% 葡萄糖增 菌肉汤或 直接接种 含双抗巧 克力平板 和血平板
127C Soft aluminum wire - green cap 软金属，易弯曲.
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143C Regular aluminum wire - orange cap 男性尿道拭子 2013-8-1
195C Flexible twisted wire - blue cap
Designed specifically for nasopharyngeal sampling. Very flexible, will bend and yield when in contact with posterior nasopharyngeal wall. Features a safe loop shaped wire tip covered with soft rayon.
第二份血清应在发病后第3～4周采集
在病愈出院或死亡前采集血标本1份
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2013-8-1
血液标本的采集
目的：血培养、分离血清 血培养：怀疑是细菌性疾病，特别是脑膜炎 或疑似菌血症的病人均要抽血。 在病人高热时可采取静脉血3ml，注入双相血 培养瓶（也可用盛有30ml葡萄糖肉汤的三角 瓶）内增菌培养。 分离血清用于抗体检测。在疾病急性期和恢 复期各采血2-3ml
2013-8-1
咽拭子的采集
对健康人群或病人密切接触者进行带菌 检验时一般采咽拭子。 用无菌棉拭子擦取悬雍垂后之鼻咽部粘 膜数下，应避免接触口腔内其它部分， 直接接种到巧克力双抗平板或0.5%葡萄 糖增菌肉汤中。
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2013-8-1
干采 用2根聚丙烯纤维头 的塑料杆拭子同时擦 拭双侧咽扁桃体及咽 后壁，将拭子头浸入 含3ml采样液的螺口 管中，尾部弃去，旋 紧管盖。
2013-8-1
咽漱液的采集
用10ml不含抗菌素的采样 液漱口。漱口时让患者头部 微后仰，发“噢”声，让洗 液在咽部转动。然后将咽漱 液收集于50ml无菌的螺口 塑料管中。无条件的可用平 皿或烧杯收集咽漱液并转入 10ml螺口采样管中。
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2013-8-1
深咳痰液的采集
要求病人深咳后，将咳出的痰液收集于 50ml含3ml采样液的螺口塑料管中
采样基本原则
尽早采集、根据可疑的病原体，选择不同采集 时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守 无菌操作、正确保存和运送。 容器应密封不易碎，标本不得污染容器的口和 外壁。
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2013-8-1
标本种类和采集时间
血液标本
全血标本采集
血清标本采集 第一份血清应尽早（最好在发病后7天内）采集
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2013-8-1
采多少
所有标本在采集时立即分装，一式
N 份(不同检验项目、重复实验、其
它实验室复核、留样)
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2013-8-1
样本采集的一般需要量 样品种类 检验目的 样品量 饮用水 全分析及致病菌 >5 l 液体食品 致病菌或毒物分析 可疑食物>200ml 固体食品 致病菌或毒物分析 可疑食物>200g 呕吐物 致病菌或毒物分析 >50g(ml) 洗胃液 致病菌或毒物分析 >200ml 腹泻物 致病菌或毒物分析 >50g(ml) 血液 病原分离、抗体分析 >5ml 脑脊液 病原分离 >2ml 皮损分泌物 病原分析 灭菌生理盐水浸泡棉签涂取
2013-8-1
接种培养板的选择
根据所要检测的目的菌而定，一般选择 两种平板：血平板和巧克力平板
链球菌属：新鲜绵羊血（或马血）平板 奈瑟氏菌属：巧克力平板（CAP），不 含抗生素
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2013-8-1
标本的保存、包装、运送
样品的保存—容器、介质、温度
样品的包装—感染性样本
样品的运送—标本应由专业人员专人运送，最好使用 专车
交接手续
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2013-8-1
怎么检
对重大事件的毒物鉴定或样本检测要同时 送数家具有鉴定检验资质的实验室同步开 展工作，避免因实验室管理和技术因素对 结果的影响。
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2013-8-1
呼吸道灌洗液的采集
将收集器头部从鼻孔或气管插口处插入气管 （约30cm深处），注入5ml生理盐水，接通 负压，旋转收集器头部并缓慢退出。收集抽取 的粘液，并用采样液涮洗收集器1次（亦可用 小孩导尿管接在50ml注射器上来替代收集）
49
2013-8-1
常用的病毒采样保存液成分
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2013-8-1
鼻咽抽取物或呼吸道抽取物的采集
用与负压泵相连的收集器从鼻 咽部抽取粘液或从气管抽取呼 吸道分泌物。将收集器头部插 入鼻腔或气管，接通负压，旋 转收集器头部并缓慢退出，收 集抽取的粘液，并用3ml采样 液冲洗收集器1次（亦可用小 孩导尿管接在50ml注射器上来 替代收集器）。
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2013-8-1
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实验室对病原体的快速确诊依靠
技术和试剂储备充分
收集适当的、足够的标本 正确的包装和快速运送到实验室
适 当 的 生 物 安 全 和 消 毒 措 施 ， 以 减 少 疾 病