糖尿病大鼠指标
大鼠糖尿病造模成功的标准
大鼠糖尿病造模成功的标准大鼠糖尿病造模成功的标准糖尿病是一种常见的代谢性疾病，其特点是血糖水平异常升高。
为了更好地研究糖尿病的发病机制和寻找新的治疗方法，科学家们常常使用动物模型进行实验研究。
而大鼠作为一种常用的实验动物，其糖尿病模型的建立和评价就显得尤为重要。
大鼠糖尿病模型的建立主要有两种方法：化学诱导和基因突变。
化学诱导法是通过给予大鼠某些化学物质，如链脲佐菌素（STZ）或高脂饮食，来诱导其发生糖尿病。
而基因突变法则是通过基因工程技术改变大鼠体内某些基因的表达，使其模拟人类糖尿病的发生过程。
无论是哪种方法，大鼠糖尿病模型的建立都需要满足一定的标准才能被认为是成功的。
下面将介绍大鼠糖尿病模型成功的标准。
1. 血糖水平异常升高：大鼠糖尿病模型的核心特征就是血糖水平异常升高。
正常情况下，大鼠的空腹血糖水平应该在3.9-6.1 mmol/L之间，而糖尿病模型大鼠的空腹血糖水平应该明显高于正常范围。
2. 葡萄糖耐量异常：正常情况下，大鼠在葡萄糖负荷后，血糖水平会在一定时间内迅速上升，然后逐渐恢复到正常范围。
而糖尿病模型大鼠在葡萄糖负荷后，血糖水平上升明显较高，并且恢复较慢。
3. 胰岛功能异常：胰岛是调节血糖水平的重要脏器，而胰岛功能异常是导致糖尿病发生的主要原因之一。
在大鼠糖尿病模型中，胰岛功能异常表现为胰岛细胞数量减少、胰岛素分泌减少或胰岛素抵抗增加等。
4. 病理学变化：糖尿病是一种慢性代谢性疾病，其发展过程中会引起一系列的组织和器官损伤。
在大鼠糖尿病模型中，可以观察到胰岛组织结构异常、肝脏脂肪变性、肾小球硬化等病理学变化。
5. 症状表现：大鼠在发生糖尿病后会出现一系列的临床表现，如多饮、多尿、消瘦等。
这些临床表现也是评价大鼠糖尿病模型是否成功的重要指标之一。
综上所述，大鼠糖尿病模型成功的标准主要包括血糖水平异常升高、葡萄糖耐量异常、胰岛功能异常、病理学变化和临床表现。
只有同时满足这些标准，才能认定大鼠糖尿病模型的建立是成功的。
有氧运动对糖尿病大鼠血糖等生化指标的影响
Ｗ ＢＣ、 Ｐ Ｔ ｂ ｔ ｅ ｎ ｔ ｅ ｅ ｐ ｒ ｎ ｌ ｏ ｐ ａ ｄ ｃ ｎ ｒ ｌ ｒ ｕ ． Ｌ ｅ ｗ ｅ ｘ ｉ ｈ ｅ ｍｅ ｔ ｕ ｏ ｔｏ ｏ ｐ ａ ｇ ｒ ｎ ｇ Ｋｅ ｗｏ ｄ ： ｙ ｅ ｐ ｒｓ Ｂｌｏ ｌ ｃ ｓ ； Ｂｉ ｃ ｅ ｃ ｌ ｎ ｅ ； Ｄｉｂ ｔ ｓｒ ｔ ｙ ｒ ｓ Ｏｘ ｇ ｎ ｓ ｏ ｔ； ｏ ｄｇｕ ｏ ｅ ｏ ｈ ｍｉａ ｄ ｘ ｉ ａ ｅｅ ｓ ａ
ＢＵ Ｎ、ＭＣ Ｖ、ＭＣ Ｈ、ＭＣ ＨＣ无显著性 （ ＞ ．５ ｐ ００ ）影响；但与对照组相 比，血糖 、ＧＰ 、Ｒ Ｃ、 Ｔ Ｂ Ｈ Ｔ Ｃ 、ＨＧＢ、ＲＤ 、Ｐ ｌ Ｗ Ｌ 、ＷＢ Ｔ Ｃ却发 生 了显 著性 （ ＜ ．５）变化 。 ｐ ００
关键 词 ：有氧运动 ；血糖 ；生化指 标；糖尿病大 鼠
中图分类号 ：Ｇ８ ４７ ０．
文献标识码 ：Ａ
当今 ，糖尿病 已成为我 国的重大社 会 问题 ，如何有 效
防治 ，减低 并发症和提 高社会生产力 水平 ，是全社会都 十
分 关 注 的 问题 。 早 在 １３ ９ ５年 ， 著 名 糖 尿 病 学 家 Ｊ ｓｎ就 总 ｏｌ ｉ
１ 材 料 与方 法
龚 云
ＧＯＮＧ ｎ Ｙｕ
摘
要 ： 察有 氧运动对糖尿病模型 大鼠血糖 等生化 指标的影响。四氧嘧 啶诱 导的糖尿病大 鼠 观
２ ０只 ，随机分为 实验组 （ ０只 ）和对照组 （ ０只 ） 实验组动物进行 ４ ｄ连续跑 台运动 ，第 １ １ 。 ５ ４ ｄ断 头取血 测血糖 、转氨酶 、尿素氮和血 常规指标 。结果发现 ：有氧运 动对糖尿 病大 鼠的 ６
高脂高糖饲养下的SD大鼠糖尿病 相关指标研究
高脂高糖饲养下的SD大鼠糖尿病相关指标研究摘要：目的：通过膳食诱导的方式，观察高脂高糖饲养的SD 大鼠血糖、血脂等变化情况，探讨2 型糖尿病IR 模型建立的简便方法。
方法：20 只体重140~210g的普通级成年SD 雄性大鼠，随机分普通饲料组、高脂高糖饲料组，每组10 只，经30 天的分组饲养，检测实验前后SD 大鼠体重、血糖、血胆固醇、血胰岛素水平，统计分析。
结果：高脂高糖饲料组SD 大鼠体重、血清总胆固醇、餐后2.0h胰岛素水平显著高于对照组,(P<0•05)。
提示高脂高糖饲养的SD 大鼠易发生肥胖、糖耐量减低和血脂代谢紊乱,是成功的IR 动物模型建立方法。
关键词：糖尿病胰岛素抵抗代谢综合征胰岛素抵抗(Insulin Resistance，IR)是指胰岛素作用的靶器官对胰岛素作用的敏感性下降，即正常剂量的胰岛素产生低于正常生物学效应的一种状态。
目前认为，IR 不仅是2 型糖尿病的发病基础，更是贯穿多种代谢相关疾病的主线，是连结它们的纽带，为这些疾病的共同病理生理基础。
【1】本研究旨在通过膳食诱导的方式，观察高脂高糖饲养的SD 大鼠血糖、血脂、胰岛素等变化情况，以期为2 型糖尿病IR模型建立提供依据。
1 材料与方法1.1 动物：20 只体重140~210g 的普通级成年SD 雄性大鼠由广州中医药大学实验动物中心(粤检证号 D2001 A009号)提供，由专人单笼喂养，自由进食和饮水，动物房温度保持在20±3℃，湿度 50%~70%，光照时间12h，实验周期30d。
1.2 高糖高脂饲料的制备：10.0%猪油、20.0%蔗糖、胆固醇1.0%、 10.0%蛋黄粉、0.5%胆酸钠、58.5%常规饲料组成。
1.3 造模方法：在动物房适应喂养3 天后，根据体重和空腹血糖值随机分为两组，即正常普通饲料组(对照组)和高糖高脂饲料组(实验组)，每组10 只SD 大鼠。
1.4 指标测定：①体重：实验前、实验第15 天、实验第30 天各测量一次SD 大鼠体重(禁食16 小时后)；②血糖、血脂、胰岛素水平：实验前、饲养30 天后各测量一次，其中空腹血糖（FPG）、空腹胰岛素（INS）、胆固醇（TC）指标均需禁食16小时后测定，餐后2.0h血糖（2hPG）、餐后2.0h胰岛素（2hINS）指标需做糖耐量负荷实验，方法为以2.0g/kg 给各组大鼠灌服蔗糖溶液，于空腹及糖负荷后2.0h 取尾血标本测定。
糖尿病大鼠模型
［13］郑里翔.STZ和alloxan联合使用复制实验性糖尿病大鼠模型［J］.中国病理生理杂志,1999,15(8)：758
2.2.1 链脲佐菌素（streptoxolocin,STZ）
STZ是一种广谱抗菌素，具有抗菌、抗肿瘤的性能和致糖尿病的副作用，对实验动物的胰岛β细胞具有高度选择性的毒性作用【5】。STZ诱导的糖尿病因给药方式不同，其成模效果也有所差别，如采用小剂量分次给药的方法，则建立与人类1型糖尿病表现相似的大鼠模型，如采用较大剂量一次性注射的给药方法，则建立与人类2型糖尿病表现相似的大鼠模型，其原理可能与胰岛的损伤程度有关【6】。
1型糖尿病模型（IDDM模型）：静脉或腹腔一次大剂量注射STZ所制得的速发型糖尿病系胰岛β细胞直接受损害所致：按55mg/kg给大鼠腹腔内注射STZ，由于STZ对胰岛β细胞的直接损害，胰岛的分泌减少而致血糖升高，出现糖尿病的各种表现【6】。多次小剂量注射所制得的迟发型糖尿病模型则与T淋巴细胞介导的β细胞不断破坏有关：应用30mg/kg多次注射STZ诱导大鼠DM，逐渐加重胰岛功能损伤，终达失代偿，可有效模拟糖尿病病程及发病机理，并降低动物模型的死亡率【7】。这样建立的动物模型与人类IDDM更接近。
［6］黄 波,刘学政,庞东渤.不同途径注射链脲佐菌素致大鼠糖尿病模型的研究［J］.锦州医学院学报,2003,24(1):19.
［8］司晓晨，尚文斌，卞慧敏，等.链脲佐菌素加高脂膳食诱导2型糖尿病大鼠模型［J］.安徽中医临床杂志,2003,15(5)：383.
［9］郭啸华，刘志红，李 恒，等高糖高脂饮食诱导的2型糖尿病大鼠模型及其肾病特点［J］.中国糖尿病杂志,2002,10(5)：290.
糖尿病大鼠HDL-C和LDL-C的变化及丝胶的调节作用
糖尿病大鼠HDL-C和LDL-C的变化及丝胶的调节作用杨振军;张艳;侯丽娜;刘东慧;陈志宏【摘要】目的：探讨丝胶对2型糖尿病大鼠低密度脂蛋白胆固醇(low density lipoprotein cholesterol，LDL-C)和高密度脂蛋白胆固醇(high density lipoprotein cholesterol，HDL-C)的调节作用。
方法：48只雄性SD大鼠随机分为正常对照组、糖尿病模型组、丝胶治疗组和阳性对照组，每组12只大鼠。
25mg/kg链脲佐菌素腹腔注射3d(1次/d)建立2型糖尿病大鼠模型；模型成功建立后，糖尿病模型组大鼠不再做任何处理，丝胶治疗组大鼠给予丝胶(2.4g/kg/d)灌胃35d，阳性对照组大鼠给予二甲双胍(55.3mg/kg/d)灌胃35d。
分别检测各组大鼠的血糖以及血清HLD-C和LDL-C的水平。
结果：与正常对照组大鼠比较，模型组大鼠的血糖、LDL-C明显升高，HDL-C明显降低(P＜0.01，P＜0.05)；与模型组大鼠比较，丝胶治疗组、阳性对照组大鼠的血糖、LDL-C明显降低，HDL-C明显升高(P＜0.01)。
结论：丝胶可通过提高HDL-C水平、降低LDL-C水平改善糖尿病时血脂代谢紊乱。
%Objective:To investigate the regulatory effectsof sericin on low density lipoprotein cholesterol (LDL-C) and high density lipoprotein cholesterol (HDL-C) of type 2 diabetic rats.Methods:48 male SD rats were randomly divided into normal control group, diabetes model group, sericin treatment group and positive control group (n=12). Streptozotocin (25mg/kg) was injected into the peritoneal cavity for 3 days (one time a day) to establish type 2 diabetes rats model. Then the rats in model group received no more treatments;the rats in sericin treatment group were lavaged sericin (2.4g/kg/d) for 35-day;the rats in positive control group were lavaged metformin (55.3mg/kg/d) for 35-day. Theblood glucose, HDL-C and LDL-C of rats in each group were respectively detected.Results:Compared with rats in normal control group, the blood glucose and LDL-C of rats in model group increased obviously, while HDL-C decreased obviously (P<0.01,P<0.05). Compared with rats in model group, the blood glucose and LDL-C of rats in sericin treatment group and positive control group decreased significantly, while HDL-C increased significantly (P<0.01). Conclusions:Sericin can obviously improve lipiddisorder ofdiabetes mellitus byincreasingHDL-C and decreasing LDL-C.【期刊名称】《承德医学院学报》【年(卷),期】2013(000)005【总页数】3页(P372-374)【关键词】2型糖尿病;血脂;HDL-C;LDL-C;丝胶【作者】杨振军;张艳;侯丽娜;刘东慧;陈志宏【作者单位】承德医学院人体解剖学教研室，河北承德 067000;承德医学院人体解剖学教研室，河北承德 067000;承德医学院人体解剖学教研室，河北承德067000;承德医学院人体解剖学教研室，河北承德 067000;承德医学院人体解剖学教研室，河北承德 067000【正文语种】中文【中图分类】R587.1目前，治疗糖尿病多采用控制饮食、运动、口服降糖药物、注射胰岛素等方法。
糖尿病的大鼠模型研究
糖尿病的大鼠模型研究糖尿病是一种以高血糖为主要特征的代谢性疾病，在全球范围内已成为一个公共卫生问题。
研究糖尿病的机制和策略对于预防和治疗该疾病具有重要意义。
大鼠模型是糖尿病研究中常用的实验动物模型之一，其具有与人类糖尿病相似的临床表现和生理特征。
本文将介绍糖尿病的大鼠模型以及其在糖尿病研究中的应用。
1. 糖尿病的定义和类型糖尿病是一种代谢性疾病，其特征是血糖水平持续升高，主要由于胰岛素分泌不足或胰岛素作用异常引起。
根据病因和临床特点，糖尿病可分为1型糖尿病、2型糖尿病和其他类型的糖尿病。
2. 大鼠模型的建立和特点大鼠模型是研究糖尿病的重要工具之一，其建立主要通过基因改变、药物诱导或环境因素等方式来模拟糖尿病的发生和发展过程。
在大鼠模型中，常用的糖尿病模型有高脂饮食诱导糖尿病模型、低剂量链脲低毒素诱导糖尿病模型等。
3. 糖尿病大鼠模型在病理机制研究中的应用糖尿病大鼠模型在糖尿病的病理机制研究中起着重要的作用。
通过研究模型大鼠的胰岛素分泌功能、胰岛素信号通路和胰岛素抵抗等方面的变化，可以深入了解糖尿病的发生机制，并为糖尿病的治疗提供理论依据。
4. 糖尿病大鼠模型在药物筛选和治疗策略研究中的应用糖尿病大鼠模型在药物筛选和治疗策略研究中也发挥着重要作用。
通过给大鼠模型注射不同的药物或制定特定的治疗策略，可以评估其对糖尿病的治疗效果，并为临床治疗提供借鉴。
5. 糖尿病大鼠模型的优缺点及未来展望糖尿病大鼠模型具有较高的可重复性和可操作性，可以模拟人类糖尿病的发生和发展过程。
然而，由于大鼠与人类在遗传和生理上的差异，糖尿病大鼠模型仍存在一些局限性。
未来研究应继续改进模型的建立方法，提高其可靠性和可预测性。
总结：糖尿病大鼠模型在糖尿病研究中具有重要的地位和作用。
通过研究模型大鼠的病理变化和应用药物治疗等方法，可深入了解糖尿病的发生机制，并为糖尿病的治疗提供理论依据。
随着研究的不断深入，糖尿病大鼠模型的应用将得到进一步发展，为糖尿病的防治提供更多的支持和帮助。
大鼠血糖测定方法
大鼠血糖测定方法引言：血糖是人体能量代谢的重要指标之一，血糖水平的变化与多种疾病的发展密切相关。
因此，准确测定大鼠血糖水平对于研究人类疾病模型以及药物研发具有重要意义。
本文将介绍几种常用的大鼠血糖测定方法。
一、口服葡萄糖耐量试验（OGTT）口服葡萄糖耐量试验是一种常用的测定大鼠胰岛功能和糖代谢的方法。
实验操作步骤如下：1. 饲养大鼠至试验前12小时内禁食，但可以饮水。
2. 在试验开始前，取大鼠空腹血样测定胰岛素和葡萄糖基线水平。
3. 给予大鼠口服葡萄糖溶液（2g/kg），记录给药时间点为0分钟。
4. 在给药后的30、60、90和120分钟，分别采集大鼠血样，测定血糖水平。
5. 同时测定各时点的胰岛素水平。
6. 通过分析血糖曲线和胰岛素水平变化，评估大鼠胰岛功能和糖代谢状态。
二、静脉注射葡萄糖耐量试验（IVGTT）静脉注射葡萄糖耐量试验是一种常用的测定大鼠胰岛素敏感性和胰岛功能的方法。
实验操作步骤如下：1. 饲养大鼠至试验前12小时内禁食，但可以饮水。
2. 在试验开始前，取大鼠空腹血样测定胰岛素和葡萄糖基线水平。
3. 通过尾静脉注射葡萄糖溶液（1g/kg），记录给药时间点为0分钟。
4. 在给药后的1、3、5、7和10分钟，分别采集大鼠血样，测定血糖水平。
5. 同时测定各时点的胰岛素水平。
6. 通过分析血糖曲线和胰岛素水平变化，评估大鼠胰岛素敏感性和胰岛功能状态。
三、糖化血红蛋白测定法（HbA1c）糖化血红蛋白测定法是一种常用的长期血糖控制指标的测定方法。
实验操作步骤如下：1. 取大鼠全血样本。
2. 提取血红蛋白，去除干扰物质。
3. 通过高效液相色谱法（HPLC）或离子交换色谱法分离和测定糖化血红蛋白（HbA1c）的百分比。
4. 根据HbA1c的百分比，评估大鼠长期血糖控制状态。
四、血糖仪法血糖仪法是一种常用的快速测定大鼠血糖水平的方法。
实验操作步骤如下：1. 取大鼠尾静脉血样或耳朵尖血样。
2. 使用血糖仪将血样放入试纸上，等待血糖仪读数。
实验大鼠血糖正常范围的估算
实验大鼠血糖正常范围的估算血糖是影响机体健康的重要生理指标之一，对糖尿病、糖代谢异常和某些疾病的诊断和治疗都有重要意义。
尽管血糖的正常范围在不同的实验动物（人类、犬类、猫类、小鼠等）中不同，但大多数研究表明，实验大鼠血糖的正常范围在4mmol/L-7mmol/L之间。
尽管血糖的正常范围在实验动物中不同，但大多数研究发现，大鼠的血糖值在4mmol/L-7mmol/L之间。
同时，血糖受多种因素的影响，包括个体状况、营养、睡眠、运动等，它们都有可能影响血糖水平。
因此，评估实验大鼠血糖正常范围的最佳方法是将实验条件和实验大鼠进行评估，以测定实验大鼠血糖正常范围的估算值。
第一步是选择大鼠样本。
一般情况下，根据研究的目的，应选择同年龄，性别，体重，种族等的健康大鼠样本。
另外，除了关注这些个体基础之外，为了确保样本的可靠性，同一个研究中所有大鼠应来自同一来源。
第二步是检查样本健康状况。
检查大鼠健康状况是估算血糖正常范围的重要环节，对于每只大鼠，应检查体温，体重，营养状况，精神状态，眼球状态，胃肠系统健康状况，皮肤状况，口腔状况等。
第三步，收集大鼠血液样本。
进行血糖测量前，首先应取血。
一般情况下，取血量以每只大鼠0.5ml为宜，应从大鼠腕部取血，并用血液采集系统进行收集。
第四步，进行血糖测量。
取得血样后，应立即进行血糖测量，使用血糖测量仪将血糖浓度进行测量，并将血糖值在大鼠测量的记录表中记录下来。
第五步，分析大鼠血糖测量结果。
血糖测量结果的分析是估算大鼠血糖正常范围的关键，通常情况下，应使用统计学方法，进行总体数据分析，以确定血糖正常范围估算值。
以上描述了如何估算实验大鼠血糖正常范围的步骤和方法，但是，仅根据血糖测量结果确定大鼠血糖正常范围是不够的，应考虑到大鼠的个体状况，环境因素等，以更准确准确地评估大鼠血糖正常范围的估算值。
实验大鼠血糖正常范围的估算是一项复杂的工作，要根据实验大鼠的个人状况，实验条件，以及血糖测量结果，合理进行估算，以获得更准确的估计值。
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实验流程
1、末次灌胃后，大鼠禁食不禁水12h，与麻醉前进行称重，行腹腔注射3%戊巴
比妥钠，0.3ml/100g
2、腹主动脉取血，留取全血标本。
3、取肝、脾、肾、胃、心脏及脑。
4、称肝、脾、肾、胃、心脏及脑组织，并分装各个组织，放入-80℃冻存。
其中
肝组织剪取1g肝脏，送至肝均浆；肝10%甲醛固定做HE染色，每组5只；
肝4%戊二醛固定做电镜，每组一只；
5、小肠10%甲醛固定做HE染色，每组5只；小肠4%戊二醛固定做粪便电镜，每
组1只；其余肠组织-80℃冻存。
6、肝；制成肝均浆，1g肝脏加入9ml冰生理盐水，制成肝均浆液，离心后，取
上清液，于-80℃冻存。
7、全血标本静置30min后，进行离心，分离血清，血清和血浆均放入-80℃冻存。
检测指标：
1、肝脏组织
1.1HE染色观察肝脏组织的病理学改变。
1.2透射电镜观察肝脏超微结构变化
1.3电感耦合等离子体质谱（ICP-MS）
1.4试剂盒测肝均浆超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛（MDA）、谷胱甘肽过氧化酶
（GSH-Px）、ROS活性氧水平
1.5检测肝脏组织中Western blot、NF-kB、COX-2表达情况，计算其阳性表达
率
2、血清（血浆）
2.1全自动化分析仪测谷草转氨酶（AST）、谷丙转氨酶（ALT）、谷氨转肽酶(GGT)、碱性磷酸酶TG
2.2酶联免疫吸附法检测血浆中肠结合脂肪酸蛋白（FABp2）、D-乳酸（D-LA）及二胺氧化酶（DAO）水平评价大鼠大肠粘膜损伤
2.3试剂盒测血浆超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛（MDA）、4-HNE（羟基壬烯醛）、
谷胱甘肽过氧化酶（GSH-Px）、过氧化氢酶（CAT）评价大鼠氧化应激水平
2.4酶联免疫吸附试验（ELISA）检测大鼠血浆中α肿瘤坏死因子（TNF α）、肿瘤坏死因子β（TNF-β）、白细胞介素-1β(IL-1β)、白细胞介素-6(IL-6)、白细胞介素-10(IL-10)、单核细胞趋化因子-1(MCP-1)、细胞间粘附因子-1(ICAM-1)浓度
3、肠道菌群
采用实时荧光定量PCR技术对粪便大肠杆菌、粪肠球菌、双歧杆菌和嗜酸乳杆菌、脆弱拟杆菌和柔嫩梭菌16SrDNA V3 可变区进行定量分析
4肾脏组织
4.1超氧化物歧化酶（SOD）、丙二醛（MDA）、还原型谷胱甘肽（ GSH）、过氧化氢酶（ CAT）及内皮素（ ET-1）和肿瘤坏死因子（ TNF-α）的影响。