红内期恶性疟原虫转运系统研究进展
疟原虫感染人类红细胞的分子机制研究

疟原虫感染人类红细胞的分子机制研究疟疾是一种由疟原虫引起的疾病,是人类历史上最致命的疾病之一。
据统计,全球每年有超过2亿人感染疟疾,其中约40万人死亡。
疟原虫主要寄生在红血球内,感染红细胞的分子机制一直是研究的热点之一。
疟原虫感染红细胞的分子机制主要包括粘附、入侵和脱离三个过程。
在这三个过程中,粘附是最先发生的。
疟原虫在红细胞表面表现出特殊的粘附性,这种粘附性主要是由疟原虫表面蛋白(PfEMP1)介导的。
PfEMP1是疟原虫表面分子中的一种重要蛋白,它能够与红细胞表面的受体结合,从而促进疟原虫寄生在红细胞内。
入侵是疟原虫感染红细胞的关键步骤。
疟原虫在红细胞表面会形成一个"入侵徽章",这些标志表明疟原虫正在进行入侵过程。
疟原虫入侵红细胞的过程很复杂,其中涉及多个分子和途径。
此外,疟原虫红细胞内寄生的生长环节也涉及多个分子和途径,在这些途径上控制着疟原虫的凋亡和消失。
脱离是疟原虫从已感染的红细胞中离开的过程。
脱离是疟原虫从红细胞中脱离的过程,这是疟原虫进行生命周期中必须遵循的程序。
疟原虫的一个重要的脱离途径称为扇贝模式。
扇贝模式是指疟原虫在离开红细胞时周围形成的一个附加细胞膜结构,该结构与细胞运输途径的几个分子以及疟原虫表面上的蛋白相互作用,形成了一个复杂的传递网络。
为了更深入地了解疟原虫感染红细胞的分子机制,必须对PfEMP1的表达、入侵、扇贝脱离等过程进行深入的研究。
近年来,研究人员在疟原虫感染红细胞的分子机制研究方面取得了重要进展,例如:在分子水平上确认了PfEMP1的功能;发现了影响疟原虫入侵的蛋白;阐明了扇贝脱离途径中相关的分子。
总之,疟疾是一个全球性的问题,疟原虫感染红细胞的分子机制是研究该疾病的重要领域之一。
该领域的研究提供了重要的临床指导,为治疗疟疾、开发新的疟疾预防措施和探索其他疾病治疗提供了新的思路。
我们相信,随着科技的不断进步,我们可以更好地理解疟原虫感染人类红细胞的分子机制,为预防和治疗疟疾做出更加重要的贡献。
疟原虫生物学的研究进展

疟原虫生物学的研究进展疟原虫是寄生于宿主红细胞内的一种单细胞原虫,是全球范围内最重要的寄生虫之一,每年导致数百万人感染,数十万人死亡。
随着技术的不断发展,人们对疟原虫的研究也在不断深入。
本文将介绍疟原虫生物学的研究进展。
1.疟原虫的形态和分类疟原虫是一种单细胞真核生物,呈现出球形、长条形或椭圆形等不同的形态。
根据疟原虫的寄主、症状和细胞形态等特征,可将其分为五种不同的物种,分别为恶性疟原虫、疟原虫、半乳状疟原虫、四叶疟原虫和童年型疟原虫。
2.疟原虫寄生于红细胞的机制疟原虫的生活史分为两个阶段,一是宿主内生殖阶段,二是外部宿主感染阶段。
由于疟原虫没有细胞壁,因此它可以通过感染宿主红细胞来获得养分和能量。
疟原虫通过表面上的纹路和突起结构来与红细胞贴合,从而产生一个内膜结构,促进疟原虫的寄生生长和增殖。
3.疟原虫的基因组研究疟原虫目前已经完整地测序,基因组大小约为22.8兆碱基,包含超过5000个蛋白编码基因。
对比不同物种之间的基因组序列可以发现它们之间存在许多共同点,同时也存在特异性的差异。
疟原虫的基因组研究为疟疾的治疗和预防提供了重要的基础。
4.疟原虫的基因调控机制研究发现,疟原虫内含有多种不同的转录因子和调节因子,它们共同参与疟原虫基因的表达和调节。
此外,研究还发现,疟原虫的DNA甲基化在基因调控中也扮演着重要的角色。
研究疟原虫的基因调控机制有助于深入了解疟原虫的生长、发育和毒性等重要过程。
5.新型疟疾药物的研究疟疾的治疗十分困难,因为疟原虫产生的蚊子传播的疟疾病原体一直在不断变异,导致抗药性逐渐增强。
许多研究人员正在寻找新型疟疾药物,研究它们对疟原虫生长和增殖的影响。
例如,靶向疟原虫的蛋白质合成和蛋白质降解机制的药物已经开始进行临床试验。
6.疟原虫与免疫系统的互动疟原虫引起感染后,机体将启动免疫反应来对抗感染。
研究发现,疟原虫与宿主免疫系统之间的互动对于疟疾的发展和治疗有着重要的影响。
例如,研究发现某些疟疾感染者体内的抗体可以中和疟原虫,从而阻止疟原虫在宿主体内的增殖。
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医学生疟原虫基因转染的研究进展 文字表述:关键词: 恶性疟原虫;Plasmodium falciparum P.f;基因转染;病原生物 随着恶性疟原虫(Plasmodium falciparum,P.f)2号[1]、9号[2]和3号[3]染色体序列的相继明了,关于P.f基因组的研究大大向前迈进了一步,在未来的2~3年内,将有可能对其全部基因组序列分析完毕。
毫无疑问,疟原虫研究即将或已经进入后基因组时代[4]。
对疟原虫各种基因及其基因产物的功能研究是发现有效疫苗和抗疟药物作用靶位的必要前提,但许多基因的功能,尤其是与疟原虫致病力有关的重要基因的功能尚未得以阐明,因而影响了疟疾的防治工作。
以往的基因功能研究局限于与已知功能基因的比较和间接地推测,近年来发展的疟原虫基因转染技术[5]可通过改变基因后观察表型变化在活体研究基因的功能,使疟原虫基因的研究现状大为改观。
不仅如此,该技术也使疟原虫基因表达调控、药物抗性研究、细胞生物学以及疫苗的研究均出现了崭新的技术性变化。
在四种感染人的疟原虫中,P.f的致病性最为严重,其研究历来倍受重视,本文就疟原虫(主要是P.f)基因转染方面的研究作一综述。
1 疟原虫基因转染的种类 1.1短暂转染 自70年代末Hinnen等[6]建立酵母转染技术以来,真核细胞的转基因技术在基因调控和基因功能的研究中起到了极其重要的作用。
1993年Goonewardence等[7]首先进行了疟原虫基因转染开创性的工作,为疟原虫基因转染技术的不断发展和广泛应用奠定了基础。
作者将虫荧光素酶(fireflyluciferase)基因插入鸡疟原虫(Plasmodium gallinaceum,P.g)有性期基因pgs28的编码区,构成嵌合基因后克隆入质粒载体pUC13,以电穿孔法导入P.g的雌配子和受精的合子,24小时后检测到虫荧光素酶的短暂表达。
两年后,Wu等[8]报导了P.f环状体的短暂转染。
疟原虫入侵红细胞机制研究进展

中国分 类号 : 3 2 3 文献标识码: R 8 A
玮( 综述) 吴忠道 Fra bibliotek余新炳 ( 审校)
在 分类 上 , eie 根据 疟 原虫 的 裂 殖子 和 子 Lv 等 n 孢子具 有顶端 复 合物 的超微 结 构 , 疟原 虫 与等 孢 将 球虫 , 肉孢子 虫 , 弓形虫 等 统 归入 顶端 复 合 物 门【 。 1 J 他 们拥有 特征性 的顶端 细胞器 , 包括顶 突及极 环 , 顶
在这个 模型 中 , 肌动 蛋 白丝 锚 定 在微管 或 原 生 质膜 (M) 的一些 其他细胞 支架结 构上 . 球蛋 白尾部 P 下 肌 与跨 膜成分 相 互作 用产生运动 。 1 裂殖子 的 侵人过程 裂殖 子 开 始 接触 红 细胞 表 面 是 随 机 的 和 可逆 的。裂殖子表 面 的任何 部分均 可黏 附红 细胞 。这种 黏 附是红细 胞表 面受 体与裂殖 于表面配 体 的特 异性 结合 。但在红 细 胞 表面 , 触 后 紧接 着是 一 系 列高 接 效 的能动运 动 : 殖 子 产 生顶 端 隆 凸与红 细 胞 相连 裂 接进行 再 定 位。这 种再 定 位被 一 种 向 后 的运 动驱 动, 或依靠 随意 的布 朗运 动 。当顶 突的顶 端 与 红 细
密作用 , 在这 个 过程 中起 重要 作 用 的有 裂 殖子 表 被
2 1 肌动蛋白的作用 顶端复合物 门寄生虫入侵 . 宿 主细胞 的过程 可被 某 些 药物 因子 所抑 制 , 些 药 这 物 因子 可妨碍 寄生 虫 肌 动蛋 白拉长 和/ 肌 动蛋 白 或
集 结 n 。肌动蛋 白的 聚 合作 用 在 寄 生 虫 侵 入 宿 主 】 细胞 的过程 中起了重要 作 用, 生侵入所 需 的动力 。 产 在大 多数细胞 , 肌动 蛋 自动力 由肌动 蛋 白结 合 蛋 白 控制 , 包括极 丝成帽 蛋 白, 成帽 蛋 白防止 极丝 末端 自 发解 聚并 打 断 单 体 增 加 [ 。采 用 低 浓 度 的细 胞 松 8 3
疟疾实验技术

薄血膜:用推片一端中部刮取血液 1~1.5ul,将血置于载玻片离厚血膜 适当远的地方,推片下缘平抵载玻 片的中线,当血液在载玻片与推片 之间向两侧扩展至约2cm 宽时,使 两玻片保持25°~35°角,从右向左 迅速向前推成舌状薄血膜。
推片技巧:将推片匀速向前,勿停顿。 涂片的厚薄取决于速度和角度: 快、大(厚) 慢、小(薄) 一张满意的血涂片应厚薄均匀,头、体、尾鲜明 尾 体 头
瑞氏染色(主要成分:甲醇)
• 厚血膜需要用蒸馏水或清水溶血。(用蜡笔在厚、 薄血膜间划一界限)
• 在薄血膜上滴加6~7滴瑞氏染液,轻轻摇动玻片, 使染液在血膜上展开30秒钟,加蒸馏水或缓冲液 10~12滴,摇动玻片,使染液与水充分混合,并将 染液引到厚血膜上,使厚薄血膜同时染色5分钟, 然后用蒸馏水或缓冲液将血膜冲洗干净,晾干后 检查。
• 染剂和溶剂的质量(分析纯、容器无水、 试染) • 染液的新旧 (染色前1~2周配制,越久越 好) • 染液的稀释浓度
浓 ——着色快,各种细胞着色深,薛氏 点、 茂氏点等粗大显著 。
稀 ——染液浓度低,着色慢,但各种细 胞内部结构着色均匀、清晰,但薛氏点、
• 稀释和冲洗用水(pH7.0~7.2 ) 太蓝——水pH值偏碱,用pH较低的缓冲水冲 洗; 太红——水pH值偏酸,用pH较高的缓冲液冲 洗; 偏酸 太深——建议延长冲洗时间。
恶性疟配子体形态
雄(小)配子体:腊肠形, 两端钝圆。胞浆浅蓝色或 淡紫红色。核较大,疏松, 位于中央,浅红色,核周 可见不染色带。疟色素松 散分布于核周围。
雌(大)配子体:新月形,两 端稍尖。胞浆深蓝色。核较小 ,致密,深红色,位于中央, 核周可见透明不染色带。疟色 素密布于核的周围。
间日疟、恶性疟厚血膜中形态特点
疟原虫代谢途径与致病机理的生物学研究

疟原虫代谢途径与致病机理的生物学研究疟疾作为一种由疟原虫引起的恶性传染病,已经成为世界上现代感染病案例的主要代表。
疟疾在热带和亚热带地区流行,每年有数百万人感染,数十万人死亡。
目前,虽然已有许多有效的治疗和预防疟疾的方法,但仍然存在着许多挑战,包括疟疾传播的复杂性以及疟原虫的耐药性问题。
因此,对疟原虫代谢途径和致病机理的生物学研究具有重要意义。
疟原虫代谢途径疟原虫的代谢途径比较特殊,与哺乳动物和细菌存在较大差别。
在疟原虫内部,存在一系列极其复杂的代谢途径,其中最为重要的是异戊二烯醇二磷酸酵素羧化途径和三羧酸循环。
异戊二烯醇二磷酸酵素羧化途径是疟原虫产生ATP的主要途径,同时也是疟原虫代谢途径中最为特殊的部分。
该途径的主要特点是,疟原虫内部并没有线粒体,因此需要通过其他途径产生ATP。
在异戊二烯醇二磷酸酵素羧化途径中,异戊二烯醇二磷酸被转化为丙酮酸磷酸,然后进入三羧酸循环产生ATP。
三羧酸循环是疟原虫代谢途径中的另一个重要组成部分,它是疟原虫产生能量的主要途径之一。
在三羧酸循环中,疟原虫通过氧化糖类和脂肪酸等代谢物质产生ATP。
同时它也是疟原虫在代谢路程中主要用来产生酰辅酶A的途径之一。
疟原虫致病机理疟原虫感染人体后,会引起一系列炭水化合物和脂肪酸的代谢异常,从而影响人体的免疫系统和生命体征等方面。
具体而言,疟原虫致病的主要机理有以下几个方面:1.清除巨噬细胞:疟原虫通过产生一些生物化学物质,例如糖基化调节因子等,来干扰巨噬细胞的清除作用,从而防止其被人体免疫系统清除。
2.干扰红细胞的代谢:疟原虫通过产生一些生物化学物质,例如类旋毛虫状蛋白等,来干扰红细胞的代谢过程,从而破坏人体正常的代谢途径,导致机体代谢紊乱和失调。
3.引发免疫系统炎症反应:疟原虫感染人体后,会引发人体免疫系统的炎症反应,从而导致炎症细胞的聚集和肿瘤坏死因子等免疫因子的释放,从而加重疟疾症状并导致组织和器官的损伤。
疟原虫代谢途径与致病机理的生物学研究目前,疟疾在全球范围内仍然是一个重要的公共卫生问题,因此对疟原虫代谢途径与致病机理的生物学研究具有非常重要的应用意义。
疟原虫病原学研究进展及防治策略

疟原虫病原学研究进展及防治策略疟原虫病是由疟原虫引起的一种传染病。
疟原虫属于单细胞原生动物,寄生在蚊子身上,并通过蚊子叮咬传播给人类。
这种病对人体的影响非常严重,除了高热外,病人还会发生恶心、呕吐、头痛等症状。
随着科技的发展,疟原虫病原学研究也不断取得进展。
科学家们通过不断深入的研究,逐渐揭示了疟原虫的寄生生活史以及它们与宿主之间的相互作用,为疟疾的防治提供了新的思路。
疟原虫病原学基础疟原虫属于根足虫纲、透明植物动物细胞张力依赖性增长型原生动物,是人类历史上众所周知的三大瘟疫之一。
从疟原虫的形态及生活史来看,其疟原虫本身存在两种形态:无性形态和有性形态。
无性形态为孢子形态,从感染人类蚊子的体内获得近1400万个疟原虫孢子。
有性形态为配子形态,发生于宿主蚊子的体内。
疟原虫的寄生生活史有三种类型: A型、B型和C型疟原虫。
不同类型的疟原虫在细胞寄生时具有不同的特征。
例如,Plasmodium falciparum寄生在红细胞内,而P. vivax和P. ovale不仅寄生在红细胞内,还可以在肝脏内寻找并寄生。
疟原虫通过蚊子叮咬人体并注入唾液,从而感染人体最主要的是P. falciparum,其次是P. vivax、P. ovale和P. malariae。
疟原虫的宿主疟原虫的宿主为蚊子和人类。
蚊子叮咬感染疟疾的人类,疟原虫就会进入蚊子的体内,同时在蚊子的唾液中滋生。
当蚊子再次叮咬人类时,这些疫情将再次传播给人类。
疟原虫在宿主体内的寄生生活史是一个循环的过程,但由于不同类型的疟原虫寄生生活史有所不同,在研究时需要根据具体疟原虫型号来进行研究。
防治策略疟原虫是一种尖端寄生生物,单细胞的运动能力很强,这也意味着疟疾的防治工作面临着很大的挑战。
幸运的是,通过持续的科学研究,防治疟疾的新策略不断涌现。
下面将介绍几种常见的防治疟疾的方法。
1. 疫苗在疟原虫的学术圈中,疫苗一直是一个备受关注的领域。
研究表明,通过使用疫苗注射进行预防接种可以有效地降低疟疾的发病率。
疟原虫入侵人类红细胞机制研究进展

疟原虫入侵人类红细胞机制研究进展魏子巍;杨宝玲;尹德琦;李娇;鲍丽;段萍;姜宁【摘要】疟原虫作为一种侵入红细胞的顶复门原虫代表虫种,目前对疟原虫入侵宿主红细胞的机制知之甚少.尽管疟原虫中蛋白质的基本或非基本性质越来越明确,但其功能和蛋白质之间如何相互作用,以及如何有效的抑制疟原虫入侵的机制了解不多.论文讨论裂殖子入侵红细胞的机制,介绍裂殖子入侵宿主红细胞的早期阶段及疟原虫入侵期间与宿主红细胞的平衡和相互作用,阐明当裂殖子入侵红细胞时,由肌动蛋白-肌球蛋白收缩系统提供动力,为研究疟原虫等顶复门原虫的入侵机制奠定了基础,对研究疟原虫具有重要的意义.【期刊名称】《动物医学进展》【年(卷),期】2019(040)004【总页数】4页(P100-103)【关键词】疟原虫;入侵;顶复门;红细胞【作者】魏子巍;杨宝玲;尹德琦;李娇;鲍丽;段萍;姜宁【作者单位】沈阳农业大学畜牧兽医学院 ,辽宁沈阳 110866;沈阳农业大学畜牧兽医学院 ,辽宁沈阳 110866;沈阳农业大学畜牧兽医学院 ,辽宁沈阳 110866;辽宁省血液中心 ,辽宁沈阳 110866;辽宁省血液中心 ,辽宁沈阳 110866;辽宁省血液中心 ,辽宁沈阳 110866;沈阳农业大学畜牧兽医学院 ,辽宁沈阳 110866【正文语种】中文【中图分类】S852.729系统生物学的进展已经完全改变了大家对疟原虫的了解[1]。
随着分子生物学技术的发展,如CRISPR/Cas9系统和结构生物学(如低温电子显微镜)的出现,可以研究病原体复杂的生物学过程。
虽然目前的研究取得了很大的进展,但对于大部分寄生虫蛋白质的实际功能知之甚少。
在疟原虫感染的血液阶段,裂殖子入侵红细胞的过程中,目前已了解的入侵机制较少。
毫无疑问,许多主要的裂殖子蛋白是疫苗开发的潜在靶标,主要包括裂殖子表面蛋白质和分泌蛋白质。
但对它们确切的功能,除了基本或非基本性质或假定的与宿主细胞结合的配体之外,都没有深入的了解。
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第17卷第1期2010年3月寄生虫与医学昆虫学报ActaParasit01.Med.Entom01.SinV01.17,No.1Mar.,2010doi:10.3969/j.issn.1005-0507.2010.01.009红内期恶性疟原虫转运系统研究进展周洪昌1王恒2’(1.湖州师范学院医学院微生物与免疫教研室,浙江湖州313000;2.中国医学科学院基础医学研究所,北京100005)摘要恶性疟原虫在终末分化的红细胞中发育生长,虽然可以有效的逃避宿主免疫系统的攻击,但同时也面临没有现成的转运系统可供利用等方面的挑战。
事实上,红内期疟原虫发展了一套新的转运系统用于其自身蛋白在宿主红细胞中的转运。
本文将综述最近几年来红内期恶性疟原虫有关转运信号、蛋白分选和转运等机制方面的最新进展。
关键词恶性疟原虫;蛋白转运在高等真核生物中,有关蛋白质分泌和内吞等机制已经有详尽的研究。
但是对于红内期恶性疟原虫来说,从模式生物研究而来的规律未能完全解释其特有的现象。
由于其寄生在终末分化的红细胞内,故面临一些挑战:首先,成熟红细胞中没有细胞器,没有可以直接利用的转运系统;其次,为了生存和繁殖,它需要营养物质的补充和渗透压的平衡。
因此,恶性疟原虫不仅需要将蛋白质输送到普通的细胞器,如内质网、高尔基体、线粒体等,还需要将蛋白输送到宿主细胞的胞浆及红细胞膜,以形成新的转运系统。
同时,还需要将蛋白输送到如质体、微粒体、棒状体等器官。
另外,其营养物质的获取和渗透压的平衡,也需要通过各种途径,摄取周围环境和宿主红细胞中的营养物质(Kirk,2001)。
这些转运的有效和正确运作,对于恶性疟原虫来说至关重要。
本文将重点介绍最近十多年来恶性疟原虫的分泌和内吞途径两方面的研究进展。
1真核细胞3种经典囊泡转运过程为更好地了解疟原虫寄生红细胞内的物质转运过程,首先介绍一下真核细胞中经典的转运过程。
真核细胞的经典囊泡转运过程的研究已经有超过30年的历史。
2004年,《细胞》杂志曾经对该领域的进展做总结性的回顾(Bonifacinoeta1.,2004)。
收稿日期:2009-04—16・通讯作者:E-mail:hengwang@puree.edu.cn・40・细胞内的转运囊泡不会自发形成,而是一个被高度调控的生物化学过程。
在囊泡形成过程中,一系列囊泡蛋白通过程序化的相互作用导致来源膜加囊包被、囊泡形成、脱落、包被蛋白脱落、与靶膜融合、包被蛋白重新循环等一系列有序的过程。
COPI和COPII囊泡介导内质网与高尔基体之间的物质转运:COPI主要介导高尔基体到内质网的转运或高尔基囊泡间的转运,COPII主要介导内质网到高尔基体的转运;Clartrin包被的囊泡介导细胞质膜到内体的转运。
2红内期恶性疟原虫的囊泡转运2.1红内期恶性疟原虫囊泡转运的基础条件2.1.1硬件基础:恶性疟原虫具有其自身的用于囊泡转运的硬件基础。
免疫定位技术已经确证了恶性疟原虫的一批内质网的标志蛋白,如分子伴侣PfBip(Kumareta1.,1991),钙结合蛋白PIERC(LaGrecaeta1.,1997),PfSec61的Ot和.y亚基(Couffineta1.,1998)定位在疟原虫胞浆或细胞核周围区域,暗示这些区域可能是恶性疟原虫的内质网或者内质网的一部分。
但是,至今只有一些比较零散的证据证明恶性疟原虫中存在高尔基体。
恶性疟原虫的高尔基体标志蛋白的同源物如PfERD2(ElmendorfandHaldar,1993)和PfRab6(deCastroeta1.,1996)(顺式和反式高尔基体标志蛋白)是分离存在的,意味着恶周洪昌等:红内期恶性疟原虫转运系统研究进展性疟原虫的高尔基体不像其他真核细胞的高尔基体一样堆集成柬(vanWyeeta1.,1996)。
利用一种真菌代谢产物BFA(能够阻断多肽分泌并引起顺式高尔基体到内质网的逆向转运),能够阻断蛋白转运到棒状体、红细胞浆、红细胞质膜等,意味着功能性高尔基体的存在。
恶性疟原虫感染红细胞中还存在一个特殊的结构,位于红细胞膜下方的茂氏点或称Maurer氏腔隙(Maurer'sclefts,MC)(Lanzereta1.,2006),有证据提示MC很可能是恶性疟原虫在红细胞内重建的一个分泌器官,是某些分泌到红细胞膜上的蛋白在转运过程中的中转站。
恶性疟原虫的COPI和COPII的同源蛋白(如PfSec31P(Adisaeta1.,2001))已经被发现证实;此外,其他一些组分如恶性疟原虫来源的动力素蛋白(Lieta1.,2004;Charneaueta1.,2007)、介导膜融合的多种SNAREs(Ayongeta1.,2007)都已经被发现和证实。
2.1.2软件基础:细胞内合成的蛋白质、脂类等物质之所以能够定向的转运到特定的细胞器取决于2个方面:一是蛋白质中包含特殊的信号序列;二是细胞器上具特定的信号识别装置-分选受体。
在经典的真核细胞中,第一个蛋白分类信号发生作用的位点在核糖体,由其判断合成的蛋白是否进入分泌途径。
这就需要蛋白N端的信号序列识别,以此决定是进入内质网的腔隙还是内质网膜,从而第一次决定其蛋白的命运(Bonifacinoeta1.,2004)。
在恶性疟原虫中,凡进入内质网系统的蛋白都含有一个经典的疏水性N末端信号序列,如包含N端3—17个氨基酸在内的大约15个疏水性氨基酸残基构成的信号序列。
此外,部分穿越纳虫空泡膜的蛋白具有更长的疏水性氨基酸序列(最长的可达80个氨基酸)。
疟原虫的翻译系统可以很好地识别经典和隐蔽的信号序列(Martieta1.,2005;Przyborskieta1.,2005a)o2004年,两个独立研究小组报道了疟原虫分泌元件(Martieta1.,2004)或囊泡转运信号(Hillereta1.,2004)一RxLxQ/E模体,RxLxQ/E模体对于恶性疟原虫编码的蛋白输送到宿主红细胞胞浆或细胞膜上具有重要作用。
(Hillereta1.,2004;Martieta1.,2004;Horrockseta1.,2005)o这一类蛋白大约有400多种,可以穿越纳虫空泡膜到宿主细胞中,可以定位到宿主细胞浆中,茂氏点以及红细胞膜。
这一部分分泌蛋白的信号序列可能包括经典的N端信号序列及其后的RxLxQ/E模体。
近期研究发现,RxLxQ/E模体两侧的氨基酸序列对蛋白的最终定位也具有重要的作用(Martieta1.,2005;Przyborskieta1.,2005b;Nuneseta1.,2007;Hisseta1.。
,2008)。
需要注意的是,并不是所有的穿越纳虫空泡膜的蛋白都具有RxLxQ/E模体,如PfEMPl、PfSBPI、PfMAHRPl缺少N端疏水序列以及经典的RxLxQ/E模体(Horrockseta1.,2005)。
虽然如此,但N端相似的序列可能提示了类似的信号信息。
2.2红内期恶性疟原虫白勺转运通路疟原虫细胞内的转运方式目前认为至少包括以下几种(Cookeeta1.,2004;Przyborskieta1.,2005a):(1)通过疟原虫内的内质网.高尔基体经典途径,由高尔基体的囊泡转运至疟原虫胞膜;(2)不经高尔基体,由内质网的分泌小泡直接运输到疟原虫表膜;(3)由核糖体合成后,在胞浆内由分子伴侣或其他分子运送至表膜或疟原虫内其他结构(如食物泡、质体、棒状体等)。
蛋白分子如何跨越纳虫空泡目前仍存在诸多争议,推测至少可能存在以下3种方式:(1)在纳虫空泡的某些位点,疟原虫膜与纳虫空泡膜直接融合,在囊泡介导的情况下直接运送疟原虫蛋白分子进入红细胞内;(2)囊泡与疟原虫膜融合、纳虫空泡内的囊泡转运以及囊泡与纳虫空泡膜融合3步运输方式;(3)囊泡与疟原虫膜融合后将内容物释放至纳虫空泡,释放的蛋白分子再通过位于纳虫空泡上的其他转运蛋白——例如ABCtransporte卜一运送至红细胞内。
蛋白向红细胞胞浆或红细胞表膜的运输,也有很多假设,比较流行的观点认为:(1)红细胞内的囊泡运输,(2)Maurer’sclefts及其管道与纳虫空泡相连,直接运送蛋白分子至Maurer’Sclefts,部分蛋白再由Maurere’Sclefts运输至红细胞膜表膜。
2.2.1红内期恶性疟原虫细胞内的转运:线粒体和质体方向的转运。
疟原虫含有线粒体和类似于植物叶绿体的进化残留物,被称为质体(Apicoplast或plastid)。
一些研究成功地将GFP融合蛋白定位到线粒体上,如PfflSP60(Satoeta1.,2003),研究证明在一个68氨基酸区域中确定了一个输入信号(Satoeta1.,2003;Satoet・41・寄生虫与医学昆虫学报第17卷第1期a1.,2004a;Satoeta1.。
2004b)。
有些研究也发现了不少介导进入线粒体所需要的酶复合物的恶性疟原虫编码的同源物(Macaseveta1.,2004)。
疟原虫的质体可能是由红色藻类二次共生形成的,由四层膜包围(Kohlereta1.,1997)。
因此,蛋白输入质体的方式比输入两层膜包围的叶绿体要复杂的多。
在恶性疟原虫和刚地弓形虫的研究中发现,定位到质体的蛋白除N端信号序列以外还有一个隐蔽的转导肽。
最早是在酰基载体蛋白(ACP)的研究中发现的。
只携带ACP氨基端信号序列的GFP融合蛋白只能定位到纳虫空泡腔,除氨基端信号序列还有隐蔽信号的GFP融合蛋白则能成功进入质体(Wallereta1.,2000)。
蛋白输入质体的转运模型认为:氨基端的信号序列调节翻译时蛋白转入内质网,进入内质网后被切去信号序列;由于隐蔽信号的存在,使其不进入经典的分泌途径,而是向质体转运。
因此只有含隐蔽信号的蛋白才能向质体转运。
显然,质体定位蛋白在到达顺式高尔基体之前已经离开了经典的分泌通路。
同理,BFA不影响蛋白到质体的转运,暗示着到质体的蛋白转运不需要囊泡运输这个过程。
所以有研究者称可能疟原虫的质体属于内质网内(Fotheta1.,2003)。
食物泡方向的转运。
疟原虫的食物泡是血红蛋白降解和疟色素形成的场所。
最初研究认为红内期疟原虫通过胞口(Cytostome)摄取红细胞胞浆中的血红蛋白和其他一些成分(Goldbergeta1.,1990)。
这些含血红蛋白的囊泡样颗粒被转运到酸性的食物泡,由一些蛋白酶进行消化降解(Franciseta1.,1997)。
近期有研究提出两种不同的内吞模型,其中Elliott等(Elliotteta1.,2008)通过透射电镜和三维还原技术,动态的展示了整个内吞过程,提出血红蛋白的4种内吞方式;而Lazarus等(Lazaruseta1.,2008)通过免疫电镜,提出了非囊泡依赖的血红蛋白内吞模型。