烟草组培苗实验步骤
烟草植物组织培养
烟草植物组织培养实验一实验目的学习和掌握植物组织培养技术。
深刻理解植物细胞的全能性。
二实验原理植物组织培养是从20世纪30年代初期发展起来的一项生物技术。
由于其拥有占地少、繁殖系数大等特点，现以在全世界的园林植物尤其是花卉的种苗繁育上得到广泛应用。
本文着重介绍组织培养技术的理论原理、操作过程、生产技术以及经济核算等方面的内容，使大家对组织培养在园林植物尤其是花卉的种苗繁育的应用有所了解，为以后的实际操作提供依据。
在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。
从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期。
①起动期是指细胞准备进行分裂的时期。
用于接种的外植体的细胞，通常都是成熟细胞，处在静止状态。
起动期是通过一些刺激因素（如机械损伤、改变光照强度、增加氧等）和激素的诱导作用，使外植体细胞的合成代谢活动加强，迅速进行蛋白质和核酸的合成。
机械损伤能诱导植物体细胞开始分裂，如伤口上会出现愈伤组织。
在植物组织培养中沿用了愈伤组织这一名词，但是植物组织培养中诱导外植体细胞分裂形成的愈伤组织，大都不是损伤的结果。
外源的生长素类物质对诱导细胞开始分裂效果很好，因此生长素类物质在植物组织培养中得到广泛应用，常用的有生长素（2，4-二氯苯氧乙酸2，4-D、萘乙酸NAA、萘乙酰胺NAD和吲哚乙酸IAA、吲哚丙酸IPA和吲哚丁酸IBA）细胞分裂素（6-苄氨基嘌呤6-BA、6-糠氨基嘌呤（KT）氯吡苯脲（KT-30，CPPU））等。
分裂期是指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子细胞的过程。
处于分裂期的愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明。
外植体的脱分化因植物种类、器官来源及其生理状况的不同而有很大差别。
例如，烟草、胡萝卜等植物的脱分化比较容易，禾本科植物的脱分化比较难；花的脱分化比较容易，茎、叶的脱分化比较难；幼嫩组织的脱分化比较容易，成熟的老组织脱分化比较难。
烟草组织培养实验方案
烟草组织培养实验方案摘要本实验通过配制四种培养基来实现烟草种子萌发，种子苗叶片诱导、分化及植株再生，从而获得课题所需要的基因受体植株。
关键词烟草组织培养前言组织培养不仅是一种植物快速繁殖的手段,同时也是植物改良、种质保存和次生物质生产的理想途径。
烟草是典型的基因工程模式植物,易于进行组织培养,容易得到再生的转化植株。
一实验植物：华烟6号二实验材料：华烟6号种子三实验方法与步骤1．培养基的配制本次实验使用（1）种子萌发培养基：MS培养基+GA30.7mg/L；（2）愈伤组织诱导及其幼芽分化培养基:MS+2,4-D 0.5 mg/L +6-BA 1.0 mg/L；（3）幼芽增殖培养基：MS+6-BA 1.0 mg/L +NAA 0.2 mg/L；（4）生根培养基：MS+NAA 0.2 mg/L。
上述培养基均附加3%蔗糖，0.8%琼脂，pH5.8，培养温度25±2℃，光照强度2 000 lx。
2. 培养基的灭菌——高压蒸汽灭菌（湿热灭菌法）3. 无菌苗的获得把烟草种子用市售丝袜（或纱布）包好，先分别用75%乙醇或无菌水浸泡30 s，用无菌水洗净表面抑制种子萌发的药物，待洗涤的水清澈透明，然后将烟草种子用70%酒精浸泡1 min, 10%NaClO消毒10 min,经无菌水漂洗后，在超净工作台处（紫外灭菌20～30min）接种于以配置好的（1）培养基,放入(27±1)℃的光照培养架中培养。
光照周期为10 h(8:00~18:00)光照,12 h暗培养。
种子苗具4~5叶时继代扩繁备用。
4. 烟草叶片愈伤诱导及不定芽分化在超净工作台上取上述烟草无菌苗幼嫩叶片1~2片于无菌培养皿中，将叶片切成1.0～1.5平方厘米的小方块，接入（2）中培养。
约2～3d后，叶片外植体卷曲、增厚、膨胀，15d后外植体脱分化形成疏松絮状浅黄绿色的愈伤组织，愈伤组织诱导率为100%。
30d后，从叶片外植体产生的疏松愈伤组织上分化出许多浅黄绿色芽点。
普生实验报告烟草幼苗培养
普生实验报告
实验名称烟草幼苗的组织培养
实验目的：
1.掌握植物组织培养中无菌操作技术。
2.学习用生长调节剂对植物器官发生的诱导方法。
记录一：周次：14
6-BA:NAA=1:5 2-4D
6-BA:NAA=5:1 对照组
记录二：周次：15
6-BA:NAA=1:5 2-4D
6-BA:NAA=5:1 对照组
记录三：周次：16
6-BA:NAA=1:5 2-4D
6-BA:NAA=5:1 对照组
作用：6-BA ：促进芽的形成,诱导愈伤组织发生。
NAA ：促进细胞分裂与扩大，诱导形成不定根。
差异：培养基中生长素、细胞分裂素浓度不同，可以诱导烟草幼片生根或生芽。
细胞的全能性：植物组织当中原本已经分化的细胞，一旦脱离原有的机体环境，成为离体状态，在适宜的营养和外界条件下，就会表现出全能性，从已经分化的细胞发生脱分化，成为重新具有分裂能力的细胞，并能重新生长发育成完整的植株。
实习报告烤烟壮苗的培育
实习报告烤烟壮苗的培育（一）、实习目的（1）、通过苗床整地、施基肥、播种等实践操作掌握烤烟烟苗的播种技术。
（2）、观察出苗期、十字期、伸根期、出苗率、苗的长势和长相及苗床水肥等管理掌握苗期生育动态。
（3）、通过理论知识与实践相结合提高观察问题和分析、解决问题的能力。
（4）、通过课程实习养成独立思考、认真好学、吃苦耐劳、刻苦钻研、团结友爱、协作互助的良好作风。
（二）、实习时间、地点实习时间：2xxx年12月实习地点：xx农林大学作物科学学院教学基地（三）、实习原理与方法实习中烤烟烟苗是在温室内采用营养钵育苗，即采用个体小钵形式，实行一苗一钵培育，并由营养钵提供营养的方式。
营养钵育苗的苗距受钵体控制，能做到适宜和一致，有利于提高烟苗的整齐度，增加可用苗数。
其次，烟苗带钵移栽，根系损伤少，烟苗抗逆性强，栽后成活率高，还苗快，甚至没有还苗期，有利于烟苗移栽后的早发快长。
此外，对营养土消毒经济方便，苗床病、虫、杂草害易于控制。
实习是通过田间实践操作，观察测定后，结合文献资料，对数据进行整理分析，得出烤烟苗期的生长情况。
（四）、实习内容（1）、苗床整地在无病虫害，并消毒过的温室内将苗床地浅耕、耙细、整平，并整成三个平畦，分别作为云烟8（5）、翠碧一号和K326的苗床。
注意在育苗期间温室内禁止吸烟。
（2）、营养钵制作营养土要选用无病虫害的新土，过细筛，加入1%复xx拌匀，其中复xxN、P、K比例为10：8：15。
理想的营养土要求成钵后肥沃、疏松、保水，无病原菌的特性。
营养土配成后进行装钵，装钵前须对营养土加水拌和，使之湿润，以便于装钵，营养土的湿度要掌握好，不能过干或过湿，以手握成形，掉下散开为宜。
钵体有一次性的和可回收的。
本次实习使用可回收多次利用的塑料钵。
装钵时，可先装钵一半，稍加按实后再装土满钵，形成上松下实的钵体结构。
装土完毕，即可进行播种。
（3）、播种播种时先用手指轻压每个钵的中央，形成小的凹陷，使种子播后处于一定深度，对提高出苗率有利，每钵播2-3粒种子。
实训三 烟草苗情观察
实训三烟草苗情观察
一、实训目的
通过观察烟草幼苗长势长相，了解其生长规律，分辨苗期各个生育期，为今后到工作烟草站育苗打下基础。
二、实训场地
教室。
三、实训形式
以个人为单位进行观察。
四、实训材料用具
腐叶土、营养钵、云烟87种子、水、铅笔、记载表等。
五、实训内容
营养钵装一半腐叶土，并播2-3粒云烟87种子，盖土不见种子，浇足水，每天观察1次，并填写观察记载表。
六、作业
1、管理好营养钵培育烟苗
2、烟苗观察记载
①烟苗观察记载表
②烟苗生育期观察记载表。
一种烤烟育苗方法
一种烤烟育苗方法
烟育苗是指将烟草种子在特定的环境中培育成苗。
以下是一种常见的烤烟育苗方法：
1. 选种：选择适合自己地区气候和土壤条件的优质烟草种子。
2. 浸种：将烟草种子放入温水中浸泡12-24小时，使种子吸水膨胀。
3. 播种：在育苗盘或培育箱中均匀撒播种子，不要密植。
4. 培育基质：使用透气、保水性好的培育基质，如腐叶土和沙土混合。
在育苗盘或培育箱底部放一层混合基质。
5. 覆土：将一层培育基质轻轻覆盖在种子上，约厚度为种子的两倍左右。
6. 浇水：用喷雾器或水龙头小水流轻轻浇水，保持培育基质湿润但不过湿。
7. 光照：烤烟喜欢充足的阳光，将育苗盘或培育箱放置在明亮的位置，每天保证至少6-8小时的日照。
8. 温度控制：种子萌发需要适宜的温度，一般为20-25摄氏度。
可使用温度控制设备，如加热垫等，保持适宜的温度。
9. 管理：定期检查湿度和温度，保持适宜的条件。
防止病虫害的发生，如蚜虫、介壳虫等，可以使用安全的农药进行防治。
10. 移植：苗长到3-4片真叶时，可以进行移植到室外苗床或温室中继续生长。
以上是一种常见的烤烟育苗方法，具体的方法可能会因地区和个人需求有所不同，可以根据实际情况适当调整。
同时，也可以参考相关的育苗技术书籍和专业人士的建议。
烟草幼苗的组织培养
烟草幼苗的组织培养
一、目的与要求
掌握植物组织培养中无菌操作技术 学习用生长调节剂对植物器官发生的诱导方法
二、 实验原理
植物组织培养 在无菌条件下，将植物体的一部分细胞、组织、器 官切割下来，接种到营养介质上，使其增殖成一群细胞、组织、器官， 甚至完整植物体的实验技术。
植物细胞全能性 植物体的每个活细胞都有相同的遗传组成，在适
当条件下具有繁殖出完整植株的能力。 脱分化 已经分化的细胞，发生生理、生化的改变，退回到胚性 细胞的过程。 再分化 经过退分化的细胞或组织再次获得分化成不同功能的细 胞、组织、器官或完整植物体。 改变生长素NAA和细胞分裂素6-BA浓度比例，可以决定烟草幼苗从 叶片直接分化生成根或芽。 2，4-D能够诱导生成愈伤组织。
1% 1% 1% 3%
3个实验组 5.8 0.8%
Step1: 配大瓶培养基(无激素)
500 ml
Step 2: 分瓶,加激素, 调PH=5.8
125ml
ctrl
NAA:6-BA=1:5
NAA:6-BA=5:1 2,4-D
Step 3:分装,加琼脂
30ml
四、操作步骤
1.灭菌：
(1)器具灭菌： 剪、镊、培养皿，诱导培养基， 120℃，高压灭菌15-20min；
五、无菌操作注意事项
1.
2.
无菌操作时不要讲话，以免污染；
用酒精对双手消毒时，务必待酒精彻底挥发后再靠近酒 精灯火焰，以免火焰伤手。
烟草幼苗的组织培养实验报告
烟草幼苗的组织培养实验报告一，实验名称：烟草幼苗的组织培养二，实验原理：植物组织培养是指在无菌条件下，分离并在培养基中培养立体植物组织（器官和细胞）的技术。
植物组织培养的理论基础是植物细胞具有全能型。
植物组织当中原本已经分化的细胞，在脱离原有机体环境成为离体状态，在适宜的营养和外界条件下，就会表现出全能性，从已经分化的细胞发生脱分化，成为重新具有分裂能力的细胞（本实验中用到的是愈伤组织，是由植物的一个离体的细胞，一块组织或一个器官的细胞脱分化形成的），并重新生长发育成完整的植株。
生长素，细胞分裂素浓度之间的平衡可以决定烟草组织幼苗的叶片或茎髓将产生根，茎或仅仅是愈伤组织。
三，实验材料和用具：1、材料：烟草幼茎2、用具：超净工作台、高压灭菌锅、培养箱、电子天平、移液器、手术器械、20ml量筒、PH试纸、烧杯、玻璃棒、三角烧瓶、封口膜、高压橡皮筋。
3、试剂：MS培养基、NAA、6-BA四，实验步骤：1、培养基的配置成分实际称取量大量元素（10×）40 ml蒸馏水300 ml微量元素（100×） 4 ml有机成分（100×） 4 ml铁盐（100×） 4 ml蔗糖12 g定容至400 ml激素（1 mg/ml）每130 ml MS加：生根6-BA=13 μl NAA=65 μl生芽6-BA=65 μl NAA=13 μl对照组（不加激素）pH值 5.8分瓶30 ml/瓶琼脂0.24 g2、培养基、剪子、镊子、枪头需在高压灭菌锅120摄氏度灭菌20分钟。
3、接种前打开无菌间和超净台紫外灯照射30分钟4、肥皂洗手和手腕，关闭无菌间棚顶紫外灯，打开超净台风机，并关掉超净工作台上的紫外灯。
再用百分之七十的酒精喷手。
5、点燃酒精灯6、将橡皮筋解开（不掀开封口膜），放到无菌风道侧面。
将镊子见到放到酒精灯外焰灼烧，冷却后剪取外肢体。
迅速用另一手持三角瓶，去下封口膜，瓶口略倾斜，在酒精灯外焰上灼烧数秒。
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烟草叶片的组织培养
一、实验原理与实验步骤
在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。
从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期。
植物材料：烟草植株
药品：（2,4-D、NAA、6-BA浓度均可）、1mol/L NaOH、1mol/L HCL 蒸馏水、70%酒精0.01%升汞
仪器：玻璃杯、玻璃棒、pH试纸(5.5-9.0)、1瓶无菌水、1个无菌烧杯、1包无菌滤纸、1个无菌白瓷板、培养瓶若干移液器、微波炉、灭菌器、超净工作台、酒精灯、解剖刀、镊子
二、实验方法与步骤
1、MS培养基母液的配制
注意：
1、大量元素按照使用时高10倍的数值称取，分别将各种化合物称量后，除CaCl2·2H2O单独配制外，其余化合物混合在500ml烧杯中加适量蒸馏水溶解，用玻璃棒搅拌促溶，倒入1000ml容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，置小口瓶中保存，贴上标签注明化合物名称（或编号），浓缩倍数，配制日期和配制者姓名，CaCl2·2H2O配制同上置于另一小口瓶中。
2、微量元素母液的配制
按要求浓缩100倍的数值称取，分别将各种化合物称量除铁盐（FeSO4·7H2O 和Na2-EDTA.2H2O）作为一组单独配制外，其余化合物可混合置于烧杯内加少量蒸馏水溶解后，定容在1000ml容量瓶中，置小口瓶中保存，贴上标签
3、铁盐配制将FeSO4·7H2O和Na2-EDTA.2H2O分别溶于450ml蒸馏水中，加热，（很重要）不断搅拌，溶解后，两液混合，调PH至5.5加水定容至1000ml，置于小口瓶中，贴上标签。