标本采集手册

标本采集手册
标本采集手册

*****医院

*******附属医院

检验科

标本采集手册

编制人:***

审核人:***

发布日期:2015年06月01日实施日期:2015年06月1日

【重要提示】

检验结果,至关重要的是必须依赖于检测标本的高质量。

所以我们要将每一份标本视为无法重新获得的唯一标本,必须小心细致地采集、保存、转运、检测。

依据医学实验室(ISO15189:2007)认可文件分析前程序定义:按照时间顺序,从临床医生开出医嘱申请单开始,到分析检验程序开始前的全过程:包括检验申请、患者准备、原始样品的采集、运送到实验室并在实验室进行传输。从定义的过程中不难看出,大部分工作都是患者、医生、护士、运输人员在实验室外完成的,对于分析前质量控制工作至关重要,过程中极易出现的问题,就是标本质量不符合要求,为此实验室工作人员很难控制。

获得高质量标本:

临床医生:主动明确告知患者如何进行配合。

护理人员:严格按照标准规范采集标本。

运输人员:及时安全转运、送达标本。

前言

随着检验医学快速发展、检验方法的不断改进,检测项目和检测结果的针对性、可靠性、有效性的不断提高,从而极大的丰富和满足了临床诊断与治疗评估对检验的需要。同时检验分析前的各种影响或干扰因素相对增多,对检测标本的留取与收集也提出了更高的要求。为此向医护人员提供以下标本采集规范。而患者也必需了解留取标本的基本知识,遵照医嘱,配合医护人员,使检验结果更加准确可靠,有效地服务临床工作。我们真诚的希望医护人员在临床诊疗工作中发现问题,及时联系共同解决。同时我们也希望以此《手册》与临床交流沟通,不断地改进检验科各实验室质量控制工作,使标本的采集标准化、规范化,实现检验分析前各类影响因素的最小化,为临床医护人员、患者提供高质量的服务。

****医院

(*****附属**医院)检验科

2015年6月

《标本采集手册》使用说明

医护人员使用本手册前,请仔细阅读以下内容:

检验科奉行“规范、准确、及时、领先”的质量方针,按照卫生部《医疗机构临床实验室管理办法》和ISO15189的要求进行全方位的改革,在不断听取临床意见的基础上,逐渐形成我科的服务特色:

1、检测报告实现电子化(个别特殊项目除外)。

2、常规检测在下午5点之前发报告,急诊标本按规定时间发报告,检测结果可到HIS系统中查询,手工项目和特检项目的检测/报告时间请参阅本手册“附录2”。

3、上班时间各专业咨询电话为临床提供检验结果的咨询、解释服务。

4、为保证生物安全,急诊手术建议术前抽血送检输血四项,24h之内报告结果。

5、检验科接受临时追加项目的申请,需与检验科联系。

说明

1、手册中“报告时间”指检验科收到标本至检测报告发出时间。

2、标本采集运送直接影响检测结果的准确性,请严格遵循本手册。

3、标本采集时间有助于分析、解释检测结果,请尽量准确。

4、采集标本的容器一定要正确。

附:检验科服务电话

检验科各部门电话急诊检验电话

门急诊组*******

急诊(中午)

******* 临床检验组*******

生化检验组*******

急诊(晚班、节假日)

******* 免疫检验组*******

微生物检验组******* 其余上班时间急诊咨询请与各专业组联系

目录

前言 (3)

《标本采集手册》使用说明 (4)

目录 (5)

1 标本采集与送检基本流程 (7)

1.1 填写申请单或开电子医嘱 (7)

1.2 生成条形码(原始样品标识) (7)

1.3 患者准备 (7)

1.4 容器准备 (8)

1.5 采集原始样品 (10)

1.6 原始样品采集者身份标识 (12)

1.7 标本运输 (12)

1.8 接收与拒收 (13)

1.9 拒收不合格标本的处理 (14)

1.10 已接受标本的检验 (14)

1.11 因分析失败而需再检标本处理 (14)

1.12 检测后标本存放 (14)

1.13 追加检测项目及时间限制 (155)

1.14 已测标本处理 (16)

1.15 报告发布 (16)

1.16 服务承诺 (17)

2 标本采集、保存、送检的基本要求 (17)

2.1 血液标本 (17)

2.2 尿液标本 (19)

2.3 粪便标本 (21)

2.4 痰液标本 (21)

2.5 阴道分泌物标本 (22)

2.6 关节腔积液标本 (22)

2.7 唾液标本 (22)

2.8 细菌培养标本 (23)

2.9 骨髓细胞学标本 (26)

2.10 分子生物学标本 (29)

3 各种标本的采集 (31)

3.1 临检标本采集 (31)

3.2 生化标本采集 (45)

3.3 免疫标本采集 (49)

3.4 微生物标本采集 (51)

3.5 细胞分子遗传学检组标本采集 (69)

4 影响分析前质量控制主要因素 (73)

4.1 患者和标本采集者准备 (73)

4.2 需要考虑的生物因素和药物干扰 (77)

4.3 检验分析前质量控制存在的问题与对策 (81)

5 附录 (85)

5.1 检验项目采集容器、报告时间一览表 (85)

1 标本采集与送检基本流程

1.1 填写申请单或开电子医嘱

临床医生须熟知检验项目的临床意义。住院部:医师开出电子医嘱;门急诊:医师开出电子申请单。医嘱/申请单应含但不限于以下信息:门诊号或住院号、患者的姓名、性别、出生日期/年龄、科室、床号、临床诊断、特殊检验注意事项、申请检查项目、标本类型、申请时间、医生姓名等。

1.2 生成条形码(原始样品标识)

1.2.1 临床医护人员必须根据医嘱/检验申请单检验项目,做好患者准备,生成条形码。

1.2.1.1 病房条形码应含有以下信息:住院号、患者姓名,性别、年龄、科室、床号、条码号,检验项目。

1.2.1.2 门诊条形码应含有以下信息:病员号、患者姓名,性别、年龄、条码号、检验项目、科室。

1.2.2 条形码必须清晰,纵向粘贴在对应的真空采血管(见附录1)上,具体以覆盖住原标签为准,并留有一定的透明区(如左图),以观察标本状况用。病人的姓名端向上(如右图),条码区的任何区域不得被覆盖,禁止在条码上涂写,必须保持条码的完整和清晰。

1.3 患者准备

1.3.1 住院病人静脉血标本原则上应清晨空腹抽取。

1.3.2 门诊病人应避免疾走、跑步等剧烈运动,并应静坐半小时以上采集标

本。

1.3.3 采血前一天起忌用烟、酒、茶、咖啡,并应尽可避免使用任何药物,不能停用的药物应予注明。如抗生素、皮质激素、维生素及其他影响代谢或干扰测试反应的药物,以便解释结果时参考。

1.3.4 血清脂质或脂蛋白测定应在空腹12~14小时采集血液标本。

1.3.5 为提高对糖尿病筛查和诊断的敏感性,测定早餐后2小时血糖优于空腹血糖,糖尿病治疗监测和疗效评价,有时须分别测定空腹和餐后血糖。

1.3.6 有些特殊试验如外周血微丝蚴检查、肌酐清除率、尿成分定量分析等,请参考本手册中标本采集要求进行病人准备。

1.4 容器准备

1.4.1 静脉血

为推进检测技术的准确及快速化,真空采血管的临床应用,已成为采集血液标本的主要方式。采血管中添加分离胶、促凝剂,缩短了血液凝固时间,血清分离的效果好,缩短了报告结果的时间,同时也减少了交叉污染等生物安全隐患,规范了采血技术,提高了检测标本质量,方便了医护人员及患者。

1.4.1.1 真空采血管的种类

真空采血管添加剂包括多种成分,如抗凝剂、促凝剂、分离胶等,其品种、性能、浓度直接影响血样的性状和检测结果。真空采血技术则在品种、浓度方面做到规范一致,并能长期维持其有效性,使添加剂对检测结果的影响降到最小。由于血液分析的多样性,故抗凝剂的使用种类较多,抗凝及促凝原理,效果也不一样,我科常用的有如下几种:

管帽颜色添加剂适用范围规格(ml)

淡紫红蓝黑黄红

EDTA-K2

枸橼酸钠

枸橼酸钠

分离胶/促凝剂

血常规等

凝血机制

血沉

血生化、免疫

分子生物学及其它

2

1.8

1.6

3

3-5

1.4.1.2 真空采血管使用中应注意的几个问题

a)真空采血管的选择:按检验项目的要求选择相应的真空管,这点至关重要。b)采血顺序:为血清管(红色、黄色、粉红色帽)→枸橼酸钠管(蓝色帽)→EDTA 管(紫色帽)→血沉管(黑色帽)。主要原因是第一管内往往含有组织液,易造成凝血,不适于做血凝测定,当该患者不需采血清管标本时,应先采其它抗凝管,再采蓝色管。

c)标本采集:取血时患者应松弛,环境温暖,防止静脉挛缩,束膊时间不可过长,禁止拍打手臂,否则可造成局部血液浓缩或激活凝血系统。观察采血是否顺利,采血量是否符合要求。采集后要充分混匀,否则抗凝剂将达不到抗凝效果,血液凝固后将严重影响检测结果。

d)血液与抗凝剂的比例:抗凝剂在血标本中的绝对含量可改变血浆中钙离子浓度进而影响实验结果。钙的绝对浓度越高,PT、APTT凝固时间越短。

每种真空管按照试管里的添加剂(抗凝剂或促凝剂)都有一定的真空量(试管上有一个黑色方块标志,为该真空管的标定容量),每次采集标本时都要达到标定容量,采集过多过少都会影响检测结果。

e)申请单号与试管号的一致性:申请单与标本唯一对应,采集血标本前应粘贴条形码,并确认粘贴牢固,避免标本送检过程中脱落。

f)血标本采集后,绝不可将真空管帽与管体分离,避免混淆和氧化。

1.4.2 尿液

1.4.

2.1 住院患者

带胶盖的塑料尿杯。

1.4.

2.2 门诊患者

带胶盖的塑料尿杯。

1.4.3 粪便

1.4.3.1 住院患者

带胶盖的塑料便杯。

1.4.3.2 门诊患者

带胶盖的塑料便杯。

1.5 采集原始样品

1.5.1 采集静脉血

1.5.1.1 遵照医嘱/申请单作好样品采集前所用的真空采血管以及消毒器材、一次性采血针等备用。采血前应向患者作适当解释,以消除疑虑和恐惧。如遇患者采血后发生晕厥,可让患者平卧,通常休息片刻即可恢复,必要时可通知急诊科医生诊治。

1.5.1.2 采集部位:通常采用肘部静脉,如肘部静脉不明显时,可改用手背静脉或内踝静脉,必要时也可从股静脉采血。小孩可用颈外静脉采血,但有危险性,以少用为宜。

1.5.1.3 严格按照无菌技术操作(除按规定穿戴工作服外,还应穿戴一次性手套和口罩),防止患者采血部位感染,保证一人一针,杜绝交叉感染。

1.5.1.4 使用真空采血器采集,当采血针穿刺进入血管后,由于采血管内的负压作用,血液自动流入采血管内;整个采血过程无血液外溢和污染。

1.5.1.5 如果有血标本外溢应立即对其用500毫克/每升安尔碘消毒处理。

1.5.1.6 样品采集过程中,对所使用的采集材料应妥善处置,严格执行无菌操作,使用合格的材料,使用前进行严格检查,保证安全;

1.5.1.7 静脉采血时,止血带压迫时间宜小于1min,若止血带结扎超过2min,大静脉血流受阻而使毛细血管内压上升,可有血管内液与组织液交流,能使相对分子质量小于5000的物质溢入组织液;随着压迫时间的延长,局部组织发生缺氧而引起血液成分变化渐大,检查结果时出现不应有的增高或减低。

1.5.1.8 标本采集后,应立即将抗凝标本轻轻颠倒混匀数次,再次核对患者姓名和号码。

1.5.1.9 为保证检测结果准确,禁止在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采血。

1.5.1.10 样品采集过程完成后,用过的一次性采血针应弃于专用利器盒,其他废弃物应放在固定的医用垃圾箱内,决不能任意丢弃,污染环境对所使用的采集材料应及时、妥善处置,保证环境和人员安全。

1.5.2 采集末梢血

1.5.

2.1 采集过程门诊患者由检验科人员收取检验申请单。

1.5.

2.2 采集部位通常采用无名指,婴幼儿手指太小可用大拇趾或足跟采血。末

梢血采血法操作方便,但血循环较差,受气温影响较大,检查结果不够恒定,特别是冬季波动幅度更大,一般情况下不宜使用。

1.5.

2.3 采血时患者应松弛。

1.5.

2.4 采血人员应技术熟练,“一针见血”,并避免过度挤压,否则将影响检测结果。

1.5.

2.5 标本采集后,立即将抗凝标本轻弹或吹吸混匀数次。最后再次核对病人姓名和号码。

1.5.

2.6 用过的一次性采血针、毛细吸管应弃于专用利器盒,其他废弃物应放在固定的医用垃圾箱内,决不能任意丢弃,污染环境。

1.5.

2.7 严格按照无菌技术操作(除按规定穿戴工作服外,还应穿戴一次性手套和口罩),防止患者采血部位感染,保证一人一针,杜绝交叉感染。如果有血液标本外溢应立即对其用75%乙醇溶液消毒处理。样品采集过程中,对所使用的采集材料应妥善处置,严格执行无菌操作,使用合格的材料,使用前进行严格检查,保证安全。样品采集过程完成后,对所使用的采集材料应及时、妥善处置,保证环境和人员安全。

1.5.

2.8 皮肤采血时,应尽量避开有炎症、化脓、冻伤等皮肤损害部位处采血。皮肤出汗时,应先用干棉球擦干。以免血液稀释。

1.5.

2.9 采用末梢血时,不要用力挤压皮肤,血液应自然流出。

1.5.3 采集尿液标本

尿液标本可在临床医护人员的指导下,由患者本人或家属或其授权人员采集。必要时(如需采集导管尿、穿刺尿等)由有资质并经过培训的临床医护人员采集。采尿时,应避免经血、白带、精液、粪便等混入,此外还应注意避免烟灰、糖纸等异物混入。应根据不同实验要求,留取不同种类的尿液标本、不同的取样方式和尿量。标本留取后,应及时送检,以免细菌繁殖、细胞溶解等。其它按照“标本采集、保存及运送的基本要求中尿液标本”执行。

1.5.4 采集粪便标本

1.5.4.1 取少量标本(蚕豆大小)放于塑料容器内加盖;常规检查选取有粘液、脓血等病变成分的粪便;外观无异常及粪便潜血检测标本须从表面、深处多处取材。

1.5.4.2 应避免月经血、尿液、消毒剂及污水等污染粪便标本。

1.5.5 采集浆膜腔积液标本

1.5.5.1 浆膜腔积液标本一般由医护人员采集。浆膜腔积液采集一般分别行胸腔穿刺术、腹腔穿刺术,心包腔及关节穿刺术采集标本。样品采集过程完成后,用过的一次性注射器应弃于专用利器盒,其他废弃物应放在固定的医用垃圾箱内,决不能任意丢弃,污染环境对所使用的采集材料应及时、妥善处置,保证环境和人员安全。

1.5.5.2 为防止标本细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等,送检及检查必须及时。为防止凝固,应在存放标本的容器中加抗凝剂。可用肝素10U或用100g/L 浓度的EDTA溶液,其与标本量之比为1:10。理学检查和细胞学检查宜采用EDTA抗凝。

1.5.6 采集脑脊液标本

1.5.6.1 脑脊液标本由临床医师进行腰椎穿刺采集,必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得。穿刺后应由医师做压力测定,正常脑脊液压力卧位为0.78~1.76kPa;儿童为0.4~1.0kPa。待压力测定后将脑脊液分别收集于3个无菌小瓶(或试管)中,每瓶1~2ml即可,第一瓶做细菌学检查,第二瓶做生化或免疫学检查,第三瓶做细胞计数。

1.5.6.2 样品采集过程完成后,用过的一次性注射器应弃于专用利器盒,其他废弃物应放在固定的医用垃圾箱内,决不能任意丢弃,污染环境对所使用的采集材料应及时、妥善处置,保证环境和人员安全。

1.6 原始样品采集者身份标识:标本采集后,采集者对所采集的标本进行电脑登记(通过扫描条形码录入电脑),以记录下标本采集时间和采集者的身份。

1.7 标本运输

1.7.1 采集标本的护士将已进行电脑登记的标本交给护工,然后严格按照标本运输要求将标本送至检验科,再在检验科标本接收处的电脑上扫描标本条形码(或由检验科标本接收人员扫描),以记录检验科接受标本的时间。

1.7.2 运送标本必须在安全、密闭的条件下进行,严防溢出,溢出后应立即对环境进行消毒处理。

1.7.3 对有传染性的血液标本运送以确保不污染环境和保护人员的安全为原

则。

1.7.4 在标本送至检验部门之前所发生的一切安全问题和影响检测结果的问题,均由标本送检人员负责。

1.8 接收与拒收

1.8.1 合格标本的标准

1.8.1.1 检验申请单(纸质或电子)应包含下列内容:患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、申请日期、标本类型、标本采集日期和时间、及申请检验的实验项目,接受标本时,电脑中须记录接收标本日期和时间。内容不全时住院患者以病案号为唯一识别,门诊患者以姓名和条形码为唯一识别。

1.8.1.2 标本容器标识应与患者姓名检验申请单的内容一致。

1.8.1.3 标本种类、采集量符合所申请实验的要求。

1.8.1.4 标本及时送检并实施了相应的正确保存措施。

1.8.1.5 采集标本的过程,符合实验要求。

1.8.1.6 合格的标本接收时,应对所接收的标本进行登记,包括患者姓名、科室、标本的类型、检验项目及接收标本日期和时间。

1.8.2 拒收标本的标准

1.8.

2.1 检验申请单填写的内容与标本容器标识不一致、涂改、信息不完整、无明确标识、不能识别者;

1.8.

2.2 标本类型采集错误。

1.8.

2.3 标本送检超过送检要求时间。

1.8.

2.4 标本量过少,婴幼儿、严重烧伤等特殊情况除外。

1.8.

2.5 送检的检验申请单和容器沾有污物。

1.8.

2.6 标本出现凝血、溶血、脂血。

1.8.

2.7 容器破裂、标本外溢者。

1.8.3 不合格标本产生的常见原因

1.8.3.1 未询问病人姓名,未核对标签,采错标本。

1.8.3.2 在输液时抽血,造成血样污染或被稀释:由于前臂静脉存在广泛联系,同一手臂一侧输液另一侧抽血会污染,输液及输血的针头或滞留管内采血都会造成污染并稀释血样。

1.8.3.3 抽血时压脉带使用时间过长,病人攥拳太紧,部分抽血困难,采血后未卸下针头直接快速注入试管,甚至注入气泡,造成溶血,这些都将影响检测结果。

1.8.3.4 抽血量少或量不准,需要加抗凝剂的标本未按血液和抗凝剂比例抽血,甚至没有及时颠倒混匀,造成标本明显凝固而失效。

1.8.3.5 错过最佳采血时间:如血培养应在抗菌药物应用前或无法停药时下次用药前并在发热时采集,且需多次采集。

1.8.3.6 尿液留取时间过长,有效成分已分解,或混入其它分泌物。

1.8.3.7 粪便标本未及时送检,或未使用便盒容器。

1.9 拒收不合格标本的处理

1.9.1 不合格标本,检验科应对标本进行登记(LIS记录),包括标本的姓名、科室、标本的类别、检验项目及时间等。

1.9.2 拒收标本通知临床医生或护士。

1.9.3 如果特殊情况下,接收了不合格标本,检验报告单中必须注明标本不合格的原因,在结果解释时,必须考虑其对结果的影响。

1.10 已接受标本的检验

根据各标本的检验目的分配到各专业组进行检验

1.11 因分析失败而需再检标本处理

标本分析失败导致检验结果不能发布或分析结果与临床诊断明显不符合时,应及时对原始样品做重复检验。如果复检结果仍不能发布的,应及时与临床联系,告诉其情况,共同分析原因。

1.12 检测后标本存放

检验科在一定时间内保存已检验过的样品(加盖),以备复查和必要时核查。

临检室:

血常规标本2~8℃保存2天

胸腹水、CSF标本2~8℃保存2天

尿液、粪便及其它体液标本不保存

血凝标本2~8℃保存2天

免疫室:

HIV检测标本-20℃保存1月

其它标本2~8℃保存3天

生化室:2~8℃保存3天

微生物:

ICU病房及新生儿室的痰标本2~8℃保存3天

脑脊液、胸腹水等无菌体液2~8℃保存3天

其它标本不保存

1.13 追加检测项目及时间限制

1.13.1 在标本量足够和被分析物稳定的情况下,检验科提供临时追加检测项目服务。

临床医生首先将追加项目电话通知检验科。

1.13.2 若标本量足够且在追加时限内,医生开出医嘱,电话将条码通知到检验科。

1.13.3 若标本量不足或已超过追加时限,需重新采集标本。特殊情况下必须使用原标本时,检验科将在报告单备注中注明对结果的影响。

1.13.4 追加项目的时间限制如下(以下时间均从标本送达检验科开始计算):1)微生物室

微生物学检测强烈建议采集新鲜标本。仅在特殊情况下(如标本难以获取时)可以追加项目。标本送达实验室未超过1小时,按临床要求追加。超过1小时,则只能增加涂片染色、真菌培养以及抗原检测等项目。

2)免疫室

免疫检验项目在3天内可追加,但其滴度或者效价有所改变,因此结果仅供参考,并在备注中注明。

3)生化室

若标本分离效果好(分离胶将血清和血块分隔开了),24小时内可追加所有项目。若标本分离效果不好(分离胶没将血清和血块分隔开),血糖和血钾在4小时内可以追加,其他检测项目在12小时内可追加。

4)临检室

网织红细胞和疟原虫在4小时内可追加。其他检测项目不能追加,必须重新采集标本。

5)血栓与止血

凝血常规和DIC相关检查在4小时内可追加。凝血因子及抗凝、纤溶系统建议采集新鲜标本。

1.13.5 追加附加检测项目方式

1.13.5.1 临床医护电话通知检验科相关专业组/室,双方确认后对该标本进行附加检测;

1.13.5.2 临床医师尽快开电子医嘱,打印条形码并送达检验科相关专业组/室;

1.13.5.3 专业组/室收到条形码后立即核对“电话通知”内容,准确无误后方可发送检验报告。

1.13.6 检验科追加标本采集的需求

1.13.6.1 在不可预知的条件下,可能会有部分标本因分析失败而需重新进行检验,或对同一原始样本进一步检验造成标本量不足。

1.13.6.2 此时对于住院病人,实验室应通知相关医生,详细说明情况,要求重新采集标本。

1.13.6.3 对于门诊病人,则应尽快与病人取得联系,说明情况后重新采集。

1.13.6.4 若已错过采集时机(如已用药),则由医生决定是否有继续采集标本的必要。

1.14 已测标本处理

检验过的标本和标本污染的各种废物,放入指定医疗垃圾桶,由医院环卫人员统一收集后,统一处理。

1.15 报告发布

1.15.1 检验科所有报告均以发布后的最终报告为惟一报告。

1.15.2 普通检验结果收到标本后按附录2中“报告时间”栏中规定的时间内发布报告。

1.15.3 如遇设备故障、维修,标本检测适当后延,并及时通知临床医生。

1.15.4 检验申请单及检验结果记录至少保存一年。

1.16 服务承诺

1.16.1 工作认真、负责、谦虚、热情、耐心,对临床或患者提出的意见和建议及时整改、反馈、解释。

1.16.2 特殊检查项目或批量的体检须提前与检验科预约,以便进行人员和设备的准备。

1.16.3 紧急情况,检验科可先接收标本进行检测,在2小时内申请医生补录医嘱或电话申请及条形码。

声明:未经检验科登记、允许,检验科对所有外送检验标本的运送、保存、取回、报告单发放、结果解释、数据复检及录入电脑等不负任何责任。

2 标本采集、保存、送检的基本要求

标本采集是直接关系检验结果的基本要素,如果标本采集不当,即使最好的仪器设备、高水平的检验人员也难以弥补采集标本时引入的误差、甚至错误。

标本保存和运送是检验质量保证的重要环节之一。由于采集的标本受各种外界因素的影响,可能使检验结果受或大或小的误差,因此必须正确掌握标本保存和运送。

2.1 血液标本

采血管分普通管、抗凝管和促凝分离胶管三类。常用抗凝剂有枸橼酸钠、EDTA-K2等。根据不同的检验项目,选用合适的抗凝剂十分重要。

2.1.1 选择抗凝剂注意事项:

2.1.1.1 含有K+、Na+的抗凝剂不能用于测定K+、Na+的标本。

2.1.1.2 EDTA抗凝剂不能用于测定Ca2+的标本,因为Ca2+可与它们形成不溶性物质。

2.1.1.3 使用抗凝剂要注意血与抗凝剂的比例,如血沉取109mmol/L的枸橼酸钠0.4ml,抽1.6ml血;凝血机制取0.2ml,抽1.8ml血;血常规用EDTA抗凝管抽2.0ml血等。

2.1.2 标本采集注意事项

2.1.2.1 血常规(全血细胞分析)检验标本:应按抗凝管刻度准确采血至2mL,

采血后立即上下颠倒混匀,5-8次,不可用力震荡,采血后应尽快送检(需显微镜观察细胞形态的标本采血后应及时推片固定,因为超过2小时WBC形态发生改变。)

2.1.2.2 末梢采血时,务必清洁消毒,待干燥后穿刺,用1次性采血器。婴儿可取自脚后跟两侧处,一般不取手指,采血中不可用力挤压,以免组织液混入血液,使血液易于凝固和稀释,出现误差。

2.1.2.3 凝血检测(PT、APTT、TT、FIB、DD)标本,空腹采静脉血(餐后脂血影响检测结果,使因子Ⅶ活化,导致PT缩短),采血时患者应保持平静状态30min以上(剧烈活动可使因子Ⅷ活化,APTT明显缩短)。必须准确采血至刻度线2.0mL。采血后应立即轻轻上下颠倒混匀5-8次,不可有凝块,采血后应尽快送检(必须2h内检测)。

2.1.2.4 红细胞沉降率(ESR)检验标本:准确采血至2.0mL刻度线,采血后立即轻轻上下颠倒混合5-8次,应尽快送检。

2.1.2.5 如果要求检查疟原虫,静脉血标本应在采集后1小时内制备血液涂片。如果超过一小时,应提示处理时间。间日疟及三日疟应在发作后2小时至10小时左右采血,恶性疟应在发作后20小时采血。

2.1.2.6 血清(生化、免疫等)标本,采血后:

a)普通管(红帽)采血后标本不需颠倒混合,22-25℃(室温)15-30min后可自行(自发)完全凝固,冷藏标本凝集较慢。

b)促凝剂管(黄帽)者采血后需立即轻轻上下颠倒混合5-8次使凝集加快。c)应避免溶血,并及时分离血清,如需隔日检验,应密封后冰箱冷藏储存。

2.1.2.7 静脉采血时止血带结扎过久,可引起误差。如以结扎1min的样品结果为基数,则结扎3min,可使血浆总蛋白增加5%,胆固醇增加5%,胆红素增加8%。

2.1.2.8 采血用针头过细会使血K+升高。

2.1.2.9 特别注意采血不能在输液的同侧进行,更应杜绝在输液管内采血,因输液成分会影响检测结果(使相应的结果偏高,如输K+、Glu时,可使所测K+、Glu明显增高),或使血液稀释检测结果偏低。

2.1.2.10 标本采集前,必须在试管或容器上贴上电子医嘱内容一致的条形

码,保证申请单与标本的唯一性识别。

2.1.3 多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血:

先采无菌血培养管

再采无添加物试管(红帽管、黄帽管)

然后采有添加物/抗凝试管,并按以下顺序:

先采枸橼酸盐(蓝帽管)

再采EDTA乙二胺四乙酸盐(淡紫色帽管)

最后枸橼酸盐(黑帽管)

当该患者不需采血培养管和血清管(红帽管、黄帽管)标本时,应先采其它抗凝管(淡紫色帽管、黑帽管),再采蓝色管

2.1.4 标本保存、运输

2.1.4.1 采样后必须立即送检的常规项目:血沉、各种细菌培养,特别是厌氧菌培养。

2.1.4.2 采样后0.5h内必须送检的常规项目:血糖、电解质、血液细胞学、体液细胞学等。

2.1.4.3 采样后1~2 h内必须送检的常规项目:各种蛋白质类、脂类、酶类、抗原、抗体测定等。

2.1.4.4 采样后2 h以上才能送检者,则常对标本采取必要的保存手段。对血糖可直接分离血清后冷冻保存;K+ 必须分离血清后密封2~8℃存放;对其他一般项目,可加盖密封后直接2~8℃存放,但血沉和细胞学检查不能采用此方法。

2.1.4.5 标本保存1个月:一般对检测物分离后,-20℃存放。

2.1.4.6 标本需长期保存(3个月以上者):对检测物分离后(包括菌种) -70℃保存,还应避免反复冻融。

2.2 尿液标本

2.2.1 尿液的收集,根据检验目的,常用如下尿标本:

2.2.1.1 首次晨尿:即留取清晨第一次尿,因较浓缩、条件恒定,便于对比,适合住院病人,能真实地反映肾脏病理情况。

2.2.1.2 随机尿:不为条件所限,适于门诊、急诊病人,但受多种因素的影响,有形成分的浓度较低。

2.2.1.3 午后尿:午餐后2h尿中尿胆原和糖含量高,适于这两种成分的检验,可提高阳性检出率。

2.2.1.4 12h尿:头晚8时排空膀胱并弃去此次尿液,再收集至翌晨8时前的全部尿液,适用于Addis尿沉渣计数。

2.2.1.5 3h尿:收集清晨5~8时尿标本,用于1小时尿沉渣计数。

2.2.1.6 24h尿:适于代谢产物24h定量测定,如尿蛋白、糖、钠、钾、氯、钙、尿酸等。应准确的收集24h尿液并测尿量,从混匀尿液中采集100~200ml 送检。收集24h尿液应根据检验目的加入适当防腐剂。

2.2.1.7 清洁尿(中段尿、导尿、膀胱穿刺尿等):适于细菌培养,应注意无菌操作。

2.2.2 尿液采集方法

2.2.2.1 尿液检验最好留取新鲜标本2小时内检查完毕,否则尿液生长细菌、细胞溶解或被污染等,使其中的化学成分发生变化。新鲜晨尿最佳,以清晨第一次尿为宜,较浓缩,条件恒定,便于对比。

2.2.2.2 门、急诊患者亦可随机留尿。

2.2.2.3 在留取24h或12h尿液时,尿液标本最好至4℃冰箱保存,也可根据检测目的加入防腐剂。

2.2.2.4 尿中某些化学物质及有形成分不稳定,一经排出后易发生物理、化学变化;而尿中原有或污染的细菌生长也可导致成分改变,如葡萄糖被分解。因此,采集的尿应加盖后立即送检。在采集2h内完成有关检查。

2.2.2.5 如不能及时送检或收集较长时段尿样,可采取化学防腐(不能用于微生物检查)、4℃冷藏等保存措施;尿样标本冰箱可保存6-8h,但最长不超过8h,因细胞等有型成分会有破坏,会有结晶析出。尿标本不能冷冻,否则会影响某些成分的检测。

2.2.2.6 根据不同检测目的选择不同的防腐剂,临床最多用的尿样防腐剂为:甲苯(toluene):常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查,5-20mL/L 尿液。

2.2.2.7 尿沉渣检查:清晨空腹第一次尿,应在2h内送检。标本置于干燥、洁净的容器尿杯或带胶盖的塑料离心管中,至少10mL。一般情况下,由患者自己

临床检验标本采集手册

临床检验标本采集手册 芜湖县中医院检验科 临床检验标本采集指南及注意事项临床检验标本采集与处理问题已普遍引起了人们得重视、芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心得室间质评活动,并取得较好成绩。为做到临床检验质量保证,必须做到对实验检查得全过程进行全面得质量控制与质量管理。这里包括:实验前(分析前)、实验中(分析中)与实验后(分析后)三个阶段得质量控制,其中实验前质量控制尤其重要、分析前质量管理就是一个最薄弱得环节,试验误差中60~70%来自实验前,而且实验前误差就是仪器、试剂、质控品与标准品等再好也无法解决得。实验前质量控制主要包括:⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存与运送⑷标本处理等。 一、病人准备 1.患者得状态: 一般需在安静状态下采集标本,如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时,可使血红蛋白、白细胞增高。运动后,由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸,可造成许多检验结果得变化,如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高,还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分得变化。 2. 患者得饮食: 2.1多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右),最好就是早晨空腹采血。研究表明,餐后血液中GLU、TG、ALT、ALP、BUN、Na等均可升高。进食高蛋白或高核酸食物,可引起血中尿素(Urea)及尿酸(UA)得增高;进食高脂肪食物,可引起TG得大幅度增高。餐后采集得血液样本,其血清常出现乳糜状,影响到许多检验测定得正确性、一些饮料如咖啡,也可使淀粉酶(AMY)、促甲状腺素(TSH)等升高。 2、2 禁食过久也会影响检测结果、通常血糖浓度呈下降趋势;胆红素清除速率降低,引起血清胆红素浓度上升。绝食状态下脂肪酸与酮酸成为肌肉能量来源,因此血清中酮体、脂肪酸与甘油得浓度会显著增加、禁食48小时后,血清甘油三酯增加20%,此后又会下降。绝食使血清尿酸盐浓度显著上升。身体饥饿时醛固酮分泌增加,尿排钾增加引起血清钾降低。

检验科标本采集运送手册

检验标本的采集运输指南 一、医生申请 ?遵循有效性、时效性、经济性的原则正确填写相应的检验申请单?申请单内容包括:姓名、性别、年龄、住院号、科别、床号、临床诊断、标本种类、申请医师姓名、日期、检验项目 ?临床医生正确填写申请单,字迹清晰 二、患者采集前准备 ?患者状态:一般要求处于安静、休息状态,晨起是大部分标本采集的最佳时间。 ?饮食:多数试验要求采血前禁食8-12h ,饮食中的不同成分可直接影响检验结果。餐后血液中ALT、GLU、BUN、Na+等均可升高 ?药物:化学影响和物理影响 三、标本采集 1血液标本的采集注意事项 ?尽量采集早晨7-9时的空腹血。 ?采血管上正确标明患者的姓名、住院号、科别等信息,切勿混淆。?采静脉血避免止血带结扎过久,结扎时间过久可导致某些指标产生变化,如血浆总蛋白、胆固醇、胆红素等

?避免溶血,溶血影响多项检测项目的结果,会使血清中钾、ALT、AST、LDH等升高,钠、氯、钙等降低。 ?要特别注意不能在输液的同侧采血,更应杜绝在输液管内采血。?输注脂肪乳,6小时内影响检验结果。 ?采血后立即颠倒混匀,避免剧烈震荡。 2、常规尿液标本的采集 ?晨尿:即清晨第一次尿,适合住院病人,较浓缩、条件恒定,能真实地反映肾脏病情况。 ?随机尿:适于门诊、急诊病人,但受多种因素的影响,有形成分的浓度较低。 ?24h尿:适于代谢产物24h定量测定,如尿蛋白、钠、钾、等。应准确的收集24h尿液送检,根据检验目的加入适当防腐剂。 尿液标本的采集、送检注意事项 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息 ?收集尿标本的容器必须清洁、干燥,防止混入异物 ?尿常规与一般定性检查留取量至少要在尿标本收集管的中间刻度线以上。 ?尿常规标本应尽量在1小时内送检;尿液红细胞形态标本尽量在2小时内送检;其它项目标本应在留取后尽快送检,不能超过4小时。 3、粪便标本的采集 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息

临床检验标本采集手册精编WORD版

临床检验标本采集手册精编W O R D版 IBM system office room 【A0816H-A0912AAAHH-GX8Q8-GNTHHJ8】

临床检验标本采集手册 芜湖县中医院检验科 临床检验标本采集指南及注意事项 临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心的室间质评活动,并取得较好成绩。为做到临床检验质量保证,必须做到对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括:实验前(分析前)、实验中(分析中)和实验后(分析后)三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制尤其重要。分析前质量管理是一个最薄弱的环节,试验误差中60~70%来自实验前,而且实验前误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。实验前质量控制主要包括:⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存和运送⑷标本处理等。 一、病人准备 1.患者的状态: 一般需在安静状态下采集标本,如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时,可使血红蛋白、白细胞增高。运动后,由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸,可造成许多检验结果的变化,如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高,还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分的变化。 2. 患者的饮食: 2.1 多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右),最好是早晨空腹采血。研究表明,餐后血液中GLU、TG、ALT、ALP、BUN、Na等均可升高。进食高蛋白或高核酸食物,可引起血中尿素(Urea)及尿酸(UA)的增高;进食高脂肪食物,可引起TG的大幅度增高。餐后

采集的血液样本,其血清常出现乳糜状,影响到许多检验测定的正确性。一些饮料如咖啡,也可使淀粉酶(AMY)、促甲状腺素(TSH)等升高。 2.2 禁食过久也会影响检测结果。通常血糖浓度呈下降趋势;胆红素清除速率降低,引起血清胆红素浓度上升。绝食状态下脂肪酸和酮酸成为肌肉能量来源,因此血清中酮体、脂肪酸和甘油的浓度会显着增加。禁食48小时后,血清甘油三酯增加20%,此后又会下降。绝食使血清尿酸盐浓度显着上升。身体饥饿时醛固酮分泌增加,尿排钾增加引起血清钾降低。 2.3 素食者:长期素食者低密度脂蛋白(LDL)和极低密度脂蛋白(VLDL)浓度都会偏低,总脂质和磷脂浓度也会减少,胆固醇和三酸甘油脂浓度可能只有杂食个体的三分之二。 2.4 咖啡因:咖啡、可乐、茶、以及多种药物都含有咖啡因,它是一种温和的刺激物和微弱的利尿剂。能刺激肾上腺髓质,促使儿茶酚胺分泌增加,使血糖浓度轻微上升、甘油三脂上升;但是血清胆固醇浓度会下降。 2.5 乙醇:长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶(GGT)活性会上升,甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。中度酒精量会伤害骨骼肌细微结构,因此会使血清肌酸激酶(CK)活性上升。有报道喝酒会使ALT和AST测定值上升,不过少量饮酒的影响效应很低。 2.6 吸烟:吸烟者会引起白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、红细胞数和血红蛋白增加、平均红细胞体积偏高。抽烟者血浆β脂蛋白、胆固醇、甘油三脂等浓度高于未抽烟者,而高密度脂蛋白胆固醇低于未抽烟者。 3.药物的影响:

检验科样本采集手册

检验标本采集手册 检验结果是临床医师在诊疗过程中所需要的重要信息,临床医师可以根据这些检验结果及病人的临床情况来区分疾病的不同阶段,观察疾病的变化,判断预后或观察疗效。所以分析前阶段样本的质量保证是直接关系到检验结果能否真实客观地反应患者当前病情的一个重要环节。 一、病人准备 1.病人状态 一般需在安静状态下采集标本,如患者处于高度紧张的状态时,可使血红蛋白、白细胞增高。由于劳累或受冷等刺激、也可见白细胞的增高。运动能影响许多项目的测定结果。运动的影响可分暂时和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少;丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响,如激烈运动后使CK、LDH、ALT、AST和GLU等的测定值升高,有些恢复较慢,如ALT在停止运动1h后测定,其值仍可偏高30%~50%。 2.饮食 多数试验要求在采血前禁食12h,因为饮食中的不同成分可直接影响实验结果。 (1) 餐后血液中TG、ALT、GLU、BUN、Na等均可升高,进食高蛋白或高核酸食物,可以引起血中的尿素氮(BUN)和尿酸(UA)的增高。进食高脂肪食物后采集的血液样本,其血清会出现浑浊,可影响许多检验测定的正确性。甚至喝代咖啡的饮料,可引起淀粉酶(AMY)、AST谷丙转氨酶(ALT)、碱性磷酸酶(ALP)等升高。但空腹时间过长,会使GLU,蛋白质降

低,而胆红素升高。 (2) 高脂餐后2~4h采血,多数人ALP含量增高,主要来自肠源性同工酶,且与血型有密切关系,O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。 (3) 高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加,但不影响肌酐含量。 (4) 高比例不饱脂肪酸食物,可减低胆固醇含量;香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍。 (5) 含咖啡因饮料,可使血浆游离脂肪酸增加,并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。 (6) 饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、乙醛、乙酸等增加,长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶亦较不饮酒的病人为高,甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。 吸烟:儿茶酚胺、血清可的松亦较不吸烟者为高,血液学方面亦有变化,白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、血红蛋白偏高、平均红细胞体积偏高。 3.药物 药物对检验的影响非常复杂,在采样检查之前,以暂停各种药物为宜,如某种药物不可停用,则应了解可能对检验结果产生的影响。庆大毒素、氨苄青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因可使胆红素增加、维生素C 可使血糖、胆固醇、甘油三脂、尿酸严重降低。 4.体位 体位影响血液循环,由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变,则细胞成分和大分子物质的改变较为明显,例如由卧位改为站位,血浆ALB、

常见微生物标本的采集

常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则:尽早采集、根据可疑的病原体,选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎,标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集;持续性菌血症可随时采集;间歇性菌血症,应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次;多部位采集,如两侧肘静脉或动、静脉同时采取;对于已使用抗生素而无法停止的患者,也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血,可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml,婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养,培养基和血液标本量的比例应>10:1,将血液中的各类杀(抑)菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等,常加入对氨基苯甲酸(PABA)50μg/ml中和磺胺类,青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类,硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠(sodium polyanethol sulfonate, SPS)可抑制血清中的抗菌物质,并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊;②血球层上面出现颗粒状的生长物,并且有自下而上的溶血;③有明显的凝块;④液体表面有菌膜,培养液清晰或浑浊等,表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力(色)平板,普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d,接种血平板、巧克力(色)平板,分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度,在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时,同时注入需氧瓶和厌氧瓶,厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等;培养液中有刃天青,无氧时无色,有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊,或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊,提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板,置需氧和厌氧环境中,如果都只生长1种细菌,则为兼性厌氧菌;如果仅在厌氧环境中生长,可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素,应考虑细菌L型存在,将血液接种高渗培养基中,分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上,观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入

检验科[全套]SOP文件

检验科全套SOP文件 124.236.7.* 质量手册目录 01质量手册说明 02质量手册版本控制 03科室简介 04授权书 05批准令 06公正性申明 07修改记录 08质量方针与质量目标 09组织和管理 10投诉地解决 11不符合项地识别和控制 12纠正措施 13预防措施 14内部审核 15管理评审 16人员 17设施和环境 18检验前程序 19检验程序 程序文件目录 001 程序文件目录 002 批准令 003修改爷 01 文件控制程序 02计算机管理程序 03 合同评审程序 04 医疗咨询控制程序

05 客户投诉控制程序 06 不合格项控制程序 07 纠正措施控制程序 08 预防措施控制程序 09 内部质量审核控制程序 10 人员任用资质评定程序 11 仪器管理程序 12 仪器校准程序 13 样本管理程序 14 生物参考范围建立程序 15 实验不确定度评定程序 16、检测结果溯源程序 17、内部质量审核控制程序 18、室间质量评价程序 19、生物安全管理程序 20、需求地确定及实验室能力评审控制程序 21 新检测项目建立程序 22、满意度监测程序 23、标识控制程序 24、仪器标识控制程序 25、质量保证程序 26、检测申请单格式确定程序 27、检测结果报告控制程序 28、检测结果修改与变更程序 29、试剂管理程序 30、结果报告程序 作业指导书 临床检验作业指导书 01静脉血常规样品采集手册 02末梢血常规样品采集手册 03静脉血血沉样品采集手册 04血型鉴定血液标本的采集 05尿液常规标本采集手册 06一般尿液标本的采集手册 07特殊尿液标本的采集手册

微生物标本采集 送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则: 1、病程早期、急性期或症状典型时,使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染,严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本,采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理: 1、标本保存在4℃环境中,在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存,用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌,必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送,严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送,有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本: 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌,一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌(A、B群、肺炎链球菌等)、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤

寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式:培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准:1)两次培养均出现同一种细菌(可排除污染); 2)发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本: 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的,检出细菌提示有细菌性(急性化脓性、结核性等)脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌(A、B群和肺炎链球菌)、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查: (1) 一般细菌涂片检查:例如:革兰阴性、凹面相对的球菌,可能是脑膜炎奈瑟菌;链状排列的革兰阳性球菌;长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌,可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查

临床标本采集指南资料

临床检验标本采集指南及注意事项 临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。为做到临床检验质量保证,中华人民共和国卫生部卫生技术标准化委员会已将临床检验标本采集和处理的有关问题,列为国家和行业的标准化文件,以达到对临床检验工作的规范化要求。如中华人民共和国卫生行业标准 ws/T225-220.WS/T229-202.WS/T223-2002.WS/T222-2002.WS/T230-2002和中华人民共和国国家标准GB 19489-2004等,分别对临床化学检验标本、便携式血糖仪血标本、凝血因子测定标本、尿液标本、乙型肝炎表面抗原酶免疫检测标本、临床酶活性浓度测定标本、临床诊断中聚合酶链反应标本和实验室生物安全等标本均提出了标准化的要求。实践证明,为保证临床检验质量,必须做到全过程质量控制,即对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括:实验前(分析前)、实验中(分析中)和实验后(分析后)三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制尤其重要。国内外均有报道,试验误差中60~70%来自实验前(分析前),而且实验前(分析前)误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。因此,必须注意做好实验前质量管理。实验前质量控制主要包括: (1)病人准备(2)标本采集(3)标本运送(4)标本处理等 一、病人准备 标本采集前病人的状态对检测结果会有一定的影响,因此,各种不同检测项目对标本采集前病人的状态有不同的要求。如血脂测定须病人禁食12~14h后采血(否则出现脂血);情绪紧张会使血糖升高;吗啡、可待因可使淀粉酶(AMS)升高;吃香蕉能使尿液5-羟吲哚乙酸升高等。所以,在病人要做某些化验检查之前,必须嘱咐病人做好相应的准备。 二、标本采集 1、血液标本 1.1防止干扰物污染(特别是定量分析标本) 1.2采血方法要正确。 1.3信息无误:标本采集后,必须在试管或容器上贴上检验申请单号码、住院病人应有床号、姓名,且应当场核对无误。 1.4叮嘱病人采血前4小时勿喝茶或咖啡、勿吸烟饮酒。尽量了解病人对刺激物和成瘾药物的接触史,供评价检验结果时参考。 1.5采血时间在上午7~9时进行,采血前病人应禁食12小时。

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计:微生物标本的检测误差来源:80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源:45%分析前10%分析中(仪器))45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的,在我们的大型医院都存在这个问题,而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 (1)75%酒精清洁局部皮肤。 (2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm (直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 (3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。 (4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 (1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。 (2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 (3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 (4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。 (5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 (6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。 (7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 (8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 (1)采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次,以除去口腔内大量杂菌,用力咳出肺深部的脓痰,置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。

标本采集运输指南

标本采集运输指南 1目的 对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以 及样品在实验室内的传输过程进行控制,以保证检验前样 品的质量。 2 范围 适用于检验科受理的标本。 3 职责 3.1临床医师负责检验的申请。 3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。 3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留 取标本。 3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集,特殊标本由临床医生采集。 3.5医院指定的标本收集人员负责定时到临床各科室 收集标本和运输。 3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。 4 工作程序 4.1检验申请 4.1.1 检验项目选择

临床医师根据病人病情需要和检验项目的敏感度、特 异性来正确选择检验项目。检验科人员可为其提供检验项 目的咨询,监督实验室服务对象选择的检验项目是否明确,实验室检验项目能否满足实验室服务对象的要求。 4.1.2检验申请表 本实验室的检验申请表包括以下内容: a)患者的唯一性标识,如门诊病人的诊疗卡号、住院 病人的住院号; b)患者的姓名、性别、年龄; c)患者就诊或住院的科别、床号; d)样品的类型和原始解剖部位,如静脉抗凝血等; e)申请的检验项目或项目的组合; f)临床标本采集日期和时间; g)实验室收到样品的日期和时间; h)申请者姓名; i)申请日期。 4.2病人的准备 为了使检验结果有效地用于临床,临床医护人员和检 验人员应了解标本收集前影响结果的非病理性因素,如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对标本 采集的影响。提出要求病人予以配合和服从的内容,采取 切实措施,保证采集的标本符合疾病的实际情况。

标本采集手册

*****医院 *******附属医院 检验科 标本采集手册 编制人:*** 审核人:*** 发布日期:2015年06月01日实施日期:2015年06月1日

【重要提示】 检验结果,至关重要的是必须依赖于检测标本的高质量。 所以我们要将每一份标本视为无法重新获得的唯一标本,必须小心细致地采集、保存、转运、检测。 依据医学实验室(ISO15189:2007)认可文件分析前程序定义:按照时间顺序,从临床医生开出医嘱申请单开始,到分析检验程序开始前的全过程:包括检验申请、患者准备、原始样品的采集、运送到实验室并在实验室进行传输。从定义的过程中不难看出,大部分工作都是患者、医生、护士、运输人员在实验室外完成的,对于分析前质量控制工作至关重要,过程中极易出现的问题,就是标本质量不符合要求,为此实验室工作人员很难控制。 获得高质量标本: 临床医生:主动明确告知患者如何进行配合。 护理人员:严格按照标准规范采集标本。 运输人员:及时安全转运、送达标本。

前言 随着检验医学快速发展、检验方法的不断改进,检测项目和检测结果的针对性、可靠性、有效性的不断提高,从而极大的丰富和满足了临床诊断与治疗评估对检验的需要。同时检验分析前的各种影响或干扰因素相对增多,对检测标本的留取与收集也提出了更高的要求。为此向医护人员提供以下标本采集规范。而患者也必需了解留取标本的基本知识,遵照医嘱,配合医护人员,使检验结果更加准确可靠,有效地服务临床工作。我们真诚的希望医护人员在临床诊疗工作中发现问题,及时联系共同解决。同时我们也希望以此《手册》与临床交流沟通,不断地改进检验科各实验室质量控制工作,使标本的采集标准化、规范化,实现检验分析前各类影响因素的最小化,为临床医护人员、患者提供高质量的服务。 ****医院 (*****附属**医院)检验科 2015年6月

标本管理制度

标本管理制度 -标准化文件发布号:(9456-EUATWK-MWUB-WUNN-INNUL-DDQTY-KII

临床检验中心标本管理制度为规范实验样本的采集、接收及保存,以保证原始标本在采集、接收及保存过程中方法适当,原始标本中待测成分不受影响,特制定本制度。 1.范围 适用于科室所有标本的采集、接收、及保存。 2.职责 2.1 、质量管理小组负责标本管理的指导和监督。 2.2、检验人员负责各自检测标本的管理和标本采集手册的编制。 3、工作程序 3.1、编制标本采集手册 3.1.1、由各专业实验室负责人组织实验室成员编制各自实验室的标本采集手册,标本采集手册应至少包括以下内容:(1)、实验室能够提供的使用检测项目目录;(2)、所有检测项目的临床适用范围;(3)、采集标本前给患者提供的指导书;(4)、患者的准备;(5)、原始标本的惟一标识;(6)、采集原始标本的方法;(7)、标本收集容器及所需添加剂;(8)、标本的类型;(9)、所需标本量;(10)、标本应该在何时采集;(11)、运送标本的方法及注意事项;(12)、实验室所需患者的临床资料;(13)、标本采集人采取何种方式进行签名;(14)、标本采集过程存在的安全问题;(15)、标本存放的条件和时限;(16)、标本的另外适用检测项目。 3.1.2、质量管理小组对标本采集手册的内容进行审查,如发现不合格内容,可责令实验室负责人修改。 3.1.3、由质量主管征求患者和临床医护部门的意见进行修改,修改后经科主任批准,分发给各标本采集部门和个人。 3.1.4、标本采集手册应作为科室文件,遵循《文件控制程序》,由质 量管理小组保存。 3.1.5、质量管理小组应就标本采集手册内容定期征求患者和临床医护部门的意见,并对标本采集手册内容进行审查。 3.2、标本的接受

检验科标本采集、运送及管理制度

检验科标本采集、运送及管理制度 1、制定《标本采集手册》,对检验、医护、运送等相关人员 进行教育和培训,避免由于标本采集、运送、管理等因素而影响检 测质量及生物安全。 2、标本采集前应告知患者注意事项,以减少因运动、过度空腹、饮食、饮酒、吸烟等因素对检验结果的影响。 3、采集时核对患者基本信息、检验项目、标本类型、容器、抗凝剂选择、采集量等,按照正确的标本采集途径,规范的操作方法, 采集合格的标本。 4、标本采集后应在规定的时限内及时送检,避免因暂存环 境和时间延缓等因素,而影响标本检测结果的准确性。不能及时送 检的标本,要按规定的贮存条件及方式妥善保管。 5、建立标本验收、登记、处理的工作程序。接收标本时须 认真核对患者基本信息、标本类型、标本量、容器、标识、检验目 的等,对不符合采集规范的标本应及时通报送检医师或其它相关人员,明确处理意见,做好记录。不合格标本不得上机检测,更不能 将明知是“失真的”检验结果签发报送临床,危及救治质量和患者 安全。 6、标本接收后应及时处理,防止标本中被测成分降解或破坏。缓检标本应核对后妥善保存。 7、向外单位送检或接收外单位送检的标本应专人负责并有

记录,医院其他科室使用检验标本从事科研时,必须征得专业主管、科主任同意,并作详细记录备案。 8、检验后的标本应按规定根据不同要求和条件限时保留备查,特殊标本特殊保存。 9、标本采集、运送及检验人员须严格执行生物安全防护要求,使用合格的标本输送箱,加盖封闭运送,检验申请单不得与标本容器卷裹混放。接触标本时须佩带防护手套,工作完毕后,按要求彻底清洗双手,防止感染。 10、废弃标本应严格按照实验室感染性材料和废弃物管理相关规定处理。 保持门窗干净、无尘土、玻璃清洁、透明。

临床检验标本采集手册

临床检验标本采集手册 芜湖县中医院检验科临床检验标本采集指南及注意事项临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心的室间质评活动,并取得较好成绩。为做到临床检验质量保证,必须做到对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括:实验前(分析前)、实验中(分析中)和实验后(分析后)三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制尤其重要。分析前质量管理是一个最薄弱的环节,试验误差中60?70%来自实验前,而且实验前误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。实验前质量控制主要包括:⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存和运送⑷标本处理等。 一、病人准备 1.患者的状态:一般需在安静状态下采集标本,如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时,可使血红蛋白、白细胞增高。运动后,由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸,可造成许多检验结果的变化,如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高,还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分的变化。 2. 患者的饮食: 2.1 多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右),最好是早晨空腹采血。研究表明,餐后血液中GLU TG ALT ALP BUN Na等均可升高。进食高蛋白或高核酸食物,可引起血中尿素(Urea)及尿酸(UA)的增高;进食高脂肪食物,可引起TG的大幅度增高。餐后采集的血液样本,其血清常出现乳糜状,影响到许多检验测定的正确性。一些饮料如咖 啡,也可使淀粉酶(AMY)促甲状腺素(TSH)等升高。 2.2 禁食过久也会影响检测结果。通常血糖浓度呈下降趋势;胆红素清除速率降低,引起血清胆红素浓度上升。绝食状态下脂肪酸和酮酸成为肌肉能量来源,因此血清中酮 体脂肪酸和甘油的浓度会显着增加。禁食48 小时后,血清甘油三酯增加20%,此后又会下降。绝食使血清尿酸盐浓度显着上升。身体饥饿时醛固酮分泌增加,尿排钾增加引起血清钾降低。 2.3 素食者:长期素食者低密度脂蛋白(LDL)和极低密度脂蛋白(VLDL)浓度都会偏低,总脂质和磷脂浓度也会减少,胆固醇和三酸甘油脂浓度可能只有杂食个体的三分之

检验科标本采集指南

检验科标本采集指南 患者采血前的准备 一.一般要求:病人在采血前24h内应避免运动和饮酒,不宜改变饮食习惯和睡眠习惯。静脉血标本采集最好在起床后1h内进行。 采血时间以上午7~9时较为适宜。门诊病人提倡静坐15分钟后 再采血。 二.采血时间:有些血液成份日间生理变化较大,因此应相对固 定采血时间,一般以清晨空腹抽血为宜〈急症项目除外〉。 三.患者体位:有些血液成份存在立位与卧位之间的差异,为减 少这种影响,取血病人的体位应相对固定。一般采用坐位取血, 而且取血前应让病人有10分钟的时间稳定自己的体位。 四.剧烈的运动:激动的情绪都会影响到一些血液成份浓度的变化,取血的当晨病人不宜做剧烈的运动,避免情绪激动,取血前 应有10分钟的休息。 五.输液的影响:由于边输液边采血影响血液成份的测定!规定 输液时应在输液的另一侧手臂取血。 六.生活方式的影响:烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食,可使血 液中某些成份高于正常,需与一般病理情况相区别,取血前几日 应注意避免。 七.生理差别的影响:不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经

期,血液成份有一定的生理差异,应注意与病理情况区别。 静脉血液采集作业指导书 一. 目的 抽取静脉血标本以做各项检验。 二. 适用范围 适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。 三. 物品准备:止血带、一次性垫巾、无菌棉签、爱尔碘消毒液、一次性采血针、负压真空管(数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气)、试管架、编号笔。 四. 检验申请单填写要求: 1.检验申请单用笔填写,使用正楷字,字迹清楚,填写完整。2.填写内容包括:受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集日期、申请医生。 五. 操作步骤: 1.查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备,向受检者解释操作目的,以取得合作。在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。 2.选择血管,常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉,小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。 3.在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。 4.用爱尔碘棉签消毒穿刺部位。 5.在静脉穿刺部位上方4-7厘米处扎止血带,嘱受检者握紧拳

临床检验标本采集指南

临床检验标本采集指南 工人医院(中德西南人民医院) 检验科 质量方针 准确及时,方便快捷; 科学管理,优质服务; 满足临床,持续改进。

质量目标 1、服务围:本科向服务对象提供临床基础检验,临床生化检验,临床免疫检验,临床血液学检验等本专业相关的检验报告,并提供相应的咨询服务,最大程度地满足病人和临床需求。 2、服务标准:本科严格按照医疗机构《临床实验室管理办法》,《ISO 15189》标准,为服务对象提供高效、优质的服务,追求服务对象尽量满意。 3、质量要求:以ISO 15189标准为准则,不断完善质量体系,确保检测结果的公正性、科学性和权威性,及时准确地为病人和服务对象提供可靠的检验报告,确保室间质评和室质控VIS值成绩优秀。 4、服务相关承诺:本科严格按照ISO 15189标准建立质量控制体系,并保证持续有效运行,并严格按照质量体系文件从事各项质量活动和技术活动,按期实现质量目标。 科室主任寄语: 此质量方针和质量目标是检验科服务、质量和技术管理的宗旨,其特点可操作性、可评价性和可控制性。 1、准确及时:就是质量第一,精益求精。检验科将通过建立和实施质量管理体系和持续改进体系,准确及时地发出检验报告。 2、方便快捷:就是以病人为中心,关爱生命。每一位病人和诊治病人的临床医生都希望开出检验申请单后能立即得到检测结果。在保证检验质量的前提下,尽可能缩短报告周期。特别是急诊检验和危急值报告。我们必须实现检验科是为临床服务的,而方便就是服务之涵。 检验科服务咨询: 检验科: 0

血液检验标本采集指南 检验项目标本要求采血管类别颜色采血 量 混匀放置送检要求 全血细胞分析+五分类静脉随机全血紫色管(EDTA-K2抗 凝管 2ml 采血要快,见血立即混匀 5-8次,竖放,2小时送检 ABO、RH血型、交叉合血静脉随机全血紫色管(EDTA-K2抗 凝管 2ml 立即混匀5-8次,竖放,2 小时送检 糖化血红蛋白静脉随机全血紫色管(EDTA-K2抗 凝管2ml 立即混匀5-8次,竖放,2 小时送检 血凝检验静脉无脂血全 血兰色管(枸橼酸钠 1:9抗凝) 2ml 立即混匀5-8次,竖放,2 小时送检 血沉检验静脉随机全血黑色管(枸橼酸钠 1:4抗凝)2ml 立即混匀5-8次,竖放,2 小时送检 血流变学检验空腹静脉全血绿色管(肝素钠抗凝)3-5ml 立即混匀5-8次,竖放,2 小时送检 急诊生化如电解质、肾功淀粉酶、心梗三项定量等静脉随机全血绿色管(肝素钠抗凝)3-5ml 立即混匀5-8次,竖放, 及时送检 肝肾功、血脂、电解质、心肌酶谱、风湿三项等生化类项目空腹静脉全血 (最好上午) 红头生化类普通管, 无抗凝剂 3-5ml 竖直放入试管架,2小时送 检 免疫类项目空腹静脉全血红头生化类普通管, 无抗凝剂3-5ml 竖直放入试管架,2小时送 检 输血前检查空腹静脉全血红头生化类普通管, 无抗凝剂3-5ml 竖直放入试管架,2小时送 检 下图为美国临床及实验室标准研究院(CLSI)[原美国临床实验室标准化委员会(NCCLS)]推荐采血顺序,在实际工作中,如患者静脉条件较差,有可能采血不足,则应首先考虑凝血1(蓝帽)和血沉(黑帽)检测管,因 为这两管要求严格。

微生物标本采集大全

微生物标本采集大全 日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次 正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 (1)75%酒精清洁局部皮肤。 (2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm(直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 (3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。(4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 (1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。 (2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 (3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 (4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。 (5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 (6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。 (7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 (8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、骨髓的采集

试题微生物标本采集与运送

《微生物标本采集与运送规范》培训试卷科室姓名职业得分 一、单选题50分(每题5分) 1. 微生物实验室误差最大的影响因素为: ( ) A. 实验前误差 B. 实验误差 C 验后误差 D. 随机误差 2. 血培养必须在( )内送检 A. 30min B. 1h C. 2h D. 4h 3 血培养的阳性检出率与( )成正比例的关系 A. 温度和时间 B. 采血量和采血时间 C. 采血量和采血套数 D. 采集方法和采血量 4. 某患者采血培养1套,培养结果为“表皮葡萄球菌”,判断这是污染菌还是致病菌,需要( ) A. 增加消毒次数 B. 增加采血量 C. 增加采血套数 D. 延长培养时间 5. 血培养瓶接种前和接种后,放置的最佳温度为( ) A. 0℃ B. 4℃ C. 室温(15~25℃) D. 35℃ 6. 下呼吸道感染患者最佳的送检标本为( ) A. 痰液 B. 支气管肺泡灌洗液(BALF) C. 咽拭子 D.唾液(口水) 7. 下呼吸道感染患者,除了做痰培养以外,还应该做( ) A. 血培养 B. 咽拭子 C. 厌氧菌 D. 分泌物 8. 下列申请单中标本采集部位不确定,检验目的不明确,属于不合格申请单的是( ) A. 中段尿培养 B. 痰培养 C. 分泌物培养 D. 脑脊液培养 9. 中段尿标本最常见的影响因素是( ) A. 容易受污染 B. 喝水过量 C.喝水过少 D. 无影响 10. 下列尿液标本中适合做厌氧菌培养是( ) A. 清洁中段尿 B. 留置尿管导尿 C. 耻骨上膀胱穿刺 D. 24h尿 二、多选题25分(每题5分) 1. 下列标本类型中, ( )属于有价值的标本,有重要的临床意义,鼓励送检 A. 血液 B. 骨髓 C. 胸腹水 D.脑脊液 E. 关节液 2 常用的拭子标本不适合作为送检标本的原因有( ) A. 使用方便 B. 标本量太少 C. 容易干燥 D. 不易接种到培养基中 E. 木(竹)签中含有抑菌物质 3. 下列关于痰液标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 采样前应刷牙(不用牙膏)或用冷开水漱口,以避免口腔正常菌群污染 B. 采取晨痰第一口痰最佳,咳痰时应咳取深部痰液 C. 做结核分支杆菌检查时,痰液量应增加 D. 肺部感染患者中有25%~50%可能会有菌血症,因此应同时做血培养 4. 下列关于血培养标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 在使用抗菌药物治疗前采集 B. 如患者已经使用抗菌药物的,应在下次使用抗菌药物之前采集 C. 应在患者寒战开始时,或发热初起时采集 D. 血培养标本应按“套”采集,采集套数为2~3套,不能采集单一瓶数 E. 必须严格执行无菌操作,避免污染,采集后应快送检,如未能及时送检,应放置4℃冰箱保存 5.下列痰培养标本属于不合格标本,应予拒收的有( ) A. 24h内重复采集的痰样本 B. 唾液(口水) C. 咽拭子 D.. 痰液做厌氧菌培养 三、简答题25分 简述微生物样本采样基本原则

检验科标本采集手册

检验科标本采集手册 患者采血前的准备 1. 一般要求:病人在采血前24h内应避免运动和饮酒,不宜改变饮 食习惯和睡眠习惯。静脉血标本采集最好在起床后1h内进行。采血时间以上午7~9时较为适宜。门诊病人提倡静坐15分钟后再采血。 2. 采血时间:有些血液成份日间生理变化较大,因此应相对固定采 血时间,一般以清晨空腹抽血为宜〈急症项目除外〉。 3. 患者体位:有些血液成份存在立位与卧位之间的差异,为减少这 种影响,取血病人的体位应相对固定。一般采用坐位取血,而且取血前应让病人有10分钟的时间稳定自己的体位。 4. 剧烈的运动:激动的情绪都会影响到一些血液成份浓度的变化, 取血的当晨病人不宜做剧烈的运动,避免情绪激动,取血前应有10分钟的休息。 5. 输液的影响:由于边输液边采血影响血液成份的测定!规定输液 时应在输液的另一侧手臂取血。 6. 生活方式的影响:烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食,可使血液中 某些成份高于正常,需与一般病理情况相区别,取血前几日应注意避免。 7. 生理差别的影响:不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经期, 血液成份有一定的生理差异,应注意与病理情况区别。 8. 葡萄糖耐量测定:试验前三天正常饮食,试验当日清晨空腹抽血 2ml,并同时留尿。将100克葡萄糖溶于300ml温水中嘱病人一次服下,立即记录时间;然后分别在服糖后60、120、180分钟,各抽血2ml,并每次同时留取尿液,注名管号和杯号,立即送检,分别测定血糖及尿糖。 静脉血液采集作业指导书 1. 目的 抽取静脉血标本以做各项检验。 2. 适用范围 适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。 3. 物品准备:止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、一 次性采血针、负压真空管(数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气)、试管架、编号笔、口罩。 4. 检验申请单填写要求: 4.1 检验申请单用钢笔填写,使用正楷字,字迹清楚,填写完整。 4.2 填写内容包括:受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。 5. 操作步骤: 5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备,向受检者解释操作目的,以取得合作。在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。 5.2 选择血管,常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉,小儿可采用颈外静脉、大隐静

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