第八章 维生素的测定
第八章 脂肪、Vc、单宁的测定

在装有2-3粒浮石并已烘至恒重的洁净的 抽提瓶内,加入约瓶体1/2的无水乙醚,把抽 提器各部分连接起来,打开冷凝水流,在水 浴上进行抽提。调节水浴的温度,使冷凝下 滴的乙醚速度为180滴/分。抽提时间一般需 8-10小时,含油量高的作物种子,应延长抽 提时间,至提取管中的乙醚用滤纸试验无油 迹时,抽提完成。
称 取 样 品 2 ~ 4g 两 份 ( 含 油 0.7-1g) , 精 确 至 0.001g。置于105±2℃烘箱中烘干1小时后取出,放 入干燥器内冷却至室温。同时另测试样的水分。将 试样放入碾钵内碾细,必要时可加入适量纯石英砂 助碾,用角勺将碾细的试样移入干燥的滤纸筒内, 取少量脱脂棉蘸乙醚抹净碾细的粉末、擦净碾锤、 碾钵和角勺上的试样和油迹,一并投入滤纸筒内, (对于已烘干磨细的样品可直接称样装筒),在试样 面层塞以脱脂棉或折叠封闭,然后将滤纸筒放入抽 提管内(也可用滤纸包进行)。
将样品预先在80℃的烘箱中干燥约2小时, 谷类、大豆、油沙豆经粉碎后,95%的可过40 目筛;油菜、胡麻、红花种子等粉碎后,95 % 的 可 过 20 目 筛 ; 花 生 仁 、 蓖 麻 仁 等 切 成 0.5mm以下的薄片;芝麻用粉碎机或碾钵碾碎, 不要留整粒;向日葵种子经剥壳后,籽仁粉 碎至均匀的粉状。试样处理完毕后,立即混 合均匀,装入磨口瓶中备用。
2、结果计算:
粗脂肪%(干基)=粗脂肪的质量*100/试样质量(干计) 带壳的油料作物粗脂肪%=籽仁粗脂肪%*出仁率% 结果用算术平均值表示,保留小数后两位。 结果允许相对差相,大豆不大于2%;其它作物不大 于1%。
二、残余法
本法适于测定谷类、油料作物种子大量样品的 脂肪测定。
1、测定步骤:
试样的选取和制备:选取有代表性的种子, 拣出杂质,按四分法缩减取样。小粒种子,如 芝麻、油菜等,取样量不得少于10g;大粒种 子,如大豆、花生仁等取样量不得少于15g。
8-维生素(8)

第一节 维生素A的测定
维生素A的测定常用的方法有三氯化锑比色法、 紫外分光光度法、荧光分析法、液相色谱法。
一、三氯化锑比色法
1 原理 维生素A在三氯甲烷中与三氯化锑相互作用,生
成蓝色物质,其颜色深浅与溶液中所含维生素A的 含量成正比。
参看GB/T 7629-2008
微生物法
原理:某一种微生物的生长(繁殖)必需某些维 生素。例如干酪乳酸杆菌(Lactobacillus casei,简称L.C.)的生长需要核黄素,培养 基中若缺乏这种维生素该细菌便不能生长。 在一定条件下,该细菌生长情况,以及它 的代谢物乳酸的浓度与培养基中该维生素 含量成正比,因此可以用酸度及混浊度的 测定法来测定样品中核黄素的含量。
水洗
皂化瓶内混合物
乙醚洗
分液漏斗1号
振摇,静置,分层
醚层
水层
提
取
分液漏斗2号
振摇,静置,分层
醚层
水层
分液漏斗1号
分液漏斗3号 振摇,静置,分层
醚层
水层
水洗
分液漏斗1号
振摇,静置,分层
水层
醚层
KOH溶液洗
振摇,静置,分层
洗
KOH溶液层
涤
醚层
水洗
振摇,静置,分层
水层
醚层
水洗
振摇,静置,分层
水层
醚层
分液漏斗醚层
乙醚洗涤
无水硫酸钠
浓 缩
水浴蒸馏
减压抽干
氯仿定容(5mL)
(2)研磨法:适用于每克样品维生素A含量大于5~10μg样品 的测定,如肝的分析。(步骤简单,省时,结果准确。)
维生素C含量的测定

实验^一、维生素 C 含量的测定一、 实验目的1、 掌握碘标准溶液的配制方法与标定原理。
2、 掌握直接碘量法测定维生素 C 的原理、方法及其操作。
二、 实验原理用I 2标准溶液可以直接测定维生素 C 等一些还原性的物质。
维生素 C 分子 中含有还原性的二烯醇基,能被 丨2定量氧化成二酮基,反应式如下:--------- O --------C C —C C O OH OH HHIC —CH 2OH + 12IOH由于反应速率较快,可以直接用I 2标准溶液滴定。
通过消耗I 2溶液的体积及其 浓度即可计算试样中维生素 C 的含量。
直接碘量法可测定药片、注射液、蔬菜、 水果中维生素C 的含量。
等物质的量关系:n( Vc)==n( 12)0.17 6(cV)|2 Vc %= m(试样)三、仪器和试剂 (1)仪器分析天平,250ml 锥形瓶,100ml 量筒,10ml 量筒,酸式滴定管,滴定基管架, 25ml 移液管 ⑵试剂医药维生素C 药片,HAc(2 mol/L),淀粉(0.5%),NaSO 标准溶液(0.1 mol/L), 12标准溶液(0.1 mol/L)。
—O ---------C ——c —c II II I OOHCH 2OH + 2HI即:m(试样)V C %176(cV)i 210三、实验步骤1. 0.05 mol •L-1 I 2标准溶液的配制与标定将3.3g I 2与5g KI置于研钵中,在通风柜中加入少量水(切不可多加!) 研磨,待丨2全部溶解后,将溶液转入棕色瓶中,加水稀释至250mL摇匀。
用移液管移取25.00mL Na2SQ标准溶液于250mL锥形瓶中,加50mL水、5mL0.5%淀粉溶液,用丨2标准溶液滴定至稳定的蓝色,30s内不褪色即为终点。
平行标定三次。
2. 维生素C含量的测定准确称取约0.2g维生素C片(研成粉末即用),置于250mL锥形瓶中,加入新煮沸过并冷却的蒸馏水100mL 10mL 2mol・L-1 HAc和5mL0.5%淀粉指定剂,立即用12标准溶液滴定至溶液显稳定的蓝色,30s内不褪色即为终点。
8 维生素的测定

• 2.试剂
• 3.操作步骤
(1)样品处理
① 分离柱的制备。如图所示。 ② 纯化。
图 层析装置
(2)测定 ① 标准曲线的绘制。 ② 样品测定。 4.结果计算
x c V 100 m 1000
式中 x——样品中维生素D的含量,mg/100g; c——标准曲线上查得样品溶液中维生素D的含量,μg
/mL;(如按国际单位,每国际单位=0.025μg维生素D); V——样品提取后用三氯甲烷定容之体积,mL; m——样品质量。
存在;它们不能供给机体热能。也不是构成组织 的基本原料,主要功用是通过作为辅酶的成份调 节代谢过程,需要量极小;它们一般在体内不能 合成,或合成量不能满足生理需要,必须经常从 食物中摄取;长期缺乏任何一种维生素都会导致 相应的疾病。
我们在评价食品的营养价值,开发利用高 含量维生素的食品资源,指导人们合理调整膳食 结构,指导制定加工工艺或贮存条件,最大限量 地保留各种维生素,还要控制强化食品中加入量, 防中毒,都离不开分析检测工作。
维生素B2对光,特别是紫外线敏感,易被光 线破坏; 维生素C对氧、铜离子敏感,易被氧化。
根据上述性质,测定水溶性维生素时,一般都 在酸性溶液中进行前处理。
维生素Bl、B2
盐酸水解淀粉酶、 酶解
木瓜蛋白酶
提取 活性人造浮石、
硅镁吸附剂
纯化
维生素C通常采用草酸、草酸—醋酸、偏磷 酸—醋酸溶液直接提取。在一定浓度的酸性介质中, 可以消除某些还原性杂质对维生素C的破坏作用。
纸层析法
1.原理 以丙酮和石油醚提取食物中的胡萝卜素及其
他植物色素。以石油醚为展开剂进行纸色谱, 胡萝卜素极性最小,移动速度最快,从而与其 他色素分离。剪下含胡萝卜素的区带,洗脱后 于450nm波长下定量测定。
维生素c的测定实验报告

维生素c的测定实验报告维生素C的测定实验报告维生素C,也被称为抗坏血酸,是一种重要的营养物质,对于人体的健康具有重要的作用。
然而,维生素C是一种易于氧化的物质,容易受到外界环境的影响而失去活性。
因此,准确测定维生素C的含量对于我们了解其在食物中的含量以及其对人体健康的影响具有重要意义。
本次实验旨在通过一种简单而有效的方法,测定某种食物中维生素C的含量。
实验所用的方法是利用维生素C与碘化钾反应生成碘的特性,通过测定反应中生成的碘的含量来间接测定维生素C的含量。
首先,我们需要准备实验所需的材料和设备。
材料包括某种含有维生素C的食物样品、碘化钾溶液、淀粉溶液、稀盐酸溶液等。
设备包括量筒、烧杯、滴定管、分液漏斗等。
实验的步骤如下:1. 首先,我们需要将某种含有维生素C的食物样品称取一定量,并加入适量的稀盐酸溶液进行研磨和混合,以使维生素C与稀盐酸反应。
2. 接下来,我们将研磨好的食物样品溶液转移到一个烧杯中,并加入适量的碘化钾溶液。
在加入碘化钾溶液的过程中,我们需要搅拌均匀,以确保维生素C与碘化钾充分反应。
3. 当食物样品溶液与碘化钾溶液反应后,我们可以观察到溶液的颜色发生变化。
这是由于维生素C与碘化钾反应生成的碘溶液呈现出深蓝色。
4. 为了确定维生素C与碘化钾反应的终点,我们可以加入一滴淀粉溶液。
淀粉溶液在酸性条件下与碘溶液反应生成蓝黑色的复合物,可以作为指示剂。
当溶液的颜色由蓝色转变为无色时,说明维生素C与碘化钾的反应已经达到终点。
5. 为了测定维生素C的含量,我们需要通过滴定的方法来测定反应中生成的碘的含量。
首先,我们需要准备一定浓度的硫代硫酸钠溶液作为滴定剂。
然后,将滴定剂滴加到反应烧杯中,直到出现颜色变化,标志着碘与维生素C的反应已经完全消耗。
通过滴定的方法,我们可以得到维生素C与碘的化学计量比,从而计算出维生素C的含量。
实验中还需要进行一系列的对照实验和重复实验,以确保结果的准确性和可靠性。
维生素的分析与检验-----维生素B12含量的测定

《生物产品的分析与检验》维生素的分析与检验-----维生素B12含量的测定目 录1. 认识维生素2. 维生素B12对人体的意义3. 维生素B12的性质4. 维生素B12测定方法一、认识维生素维生素是维持人体正常生理机能所必需的生物活性物质。
维生素广泛存在于动、植物和微生物体内。
维生素类物质的分类(按其溶解性质分)脂溶性维生素:主要有A、D、E、K等水溶性维生素:主要有B族(B1、B2、B12等)、维生素C、烟酸、叶酸、泛酸等。
维生素测定方法主要有化学分析法、比色法、分光光度法(紫外和荧光)、层析法、色谱法(气相色谱和高效液相色谱)和微生物法等。
二、维生素B12对人体的意义维生素B 12的主要生理功能是参与制造骨髓红细胞,防止恶性贫血,防止大脑神经受到破坏。
自然界中的维生素B 12都是微生物合成的,高等动植物不能制造维生素B12 维生素B 12是需要一种肠道分泌物(内源因子)帮助才能被吸收的惟一的一种维生素。
当人体肠胃异常,缺乏这种内源因子,即使膳食中来源充足也会患恶性贫血。
植物性食物中基本上没有维生素B 12。
三、维生素B12的性质维生素B 12(vitamin B12),又称钴胺素,是含钴的B族维生素之一;在pH小于3或大于8的强酸或碱性溶液中极易分解,遇强光或紫外线易被破坏。
维生素B 12在紫外区波长处有最大吸收。
在361nm波长处的吸收峰干扰因素少,通常以361nm作为测定波长。
三、维生素B12含量测定方法◆测定维生素B12的方法有微生物法、比色法、紫外分光光度法、离子交换层析法、原子吸收分光光度法和高效液相色谱法。
紫外分光光度法是较常见的方法。
◆以维生素B12注射液中B12含量的测定为例介绍紫外分光光度法测定维生素B12含量的方法。
测定方法一、紫外分光光度法测定维生素B12含量(一)测定原理在紫外区278nm(纳米)、361nm与550nm波维生素B长处有最大吸收。
在361nm波长处的吸收峰干扰因素少,通常以361nm作为测定波长,测定待测溶液的吸光度,用吸光度计算含量。
8-维生素(8)
二、HPLC法(GB/T 12388) HPLC法 12388)
1.原理 1.原理 样品中的维生素A及维生素E经皂化提取处理后, 样品中的维生素A及维生素E经皂化提取处理后,将其 从不可皂化部分提取至有机溶剂中。 从不可皂化部分提取至有机溶剂中。用高效液相色谱法 C18反相柱将维生素A和维生素E分离,经紫外检测器检 反相柱将维生素A和维生素E分离, 测,并用内标法定量测定。 并用内标法定量测定。 最小检出量分别为V 0.8ng; 最小检出量分别为VA:0.8ng;α-E:91.8ng;γ-E: 91.8ng; 36.6ng; 36.6ng;δ-E:20.6ng。 20.6ng。
4. 操作步骤 4.1 样品处理 4.1.1 皂化 称取1 10g样品 含维生素A 3µg,维生素E 称取1~10g样品(含维生素A约3µg,维生素E各 样品( 异构体约为40µg)于皂化瓶中, 30mL无水乙醇 异构体约为40µg)于皂化瓶中,加30mL无水乙醇, 无水乙醇, 于皂化瓶中 进行搅拌,直到颗粒物分散均匀为止。 进行搅拌,直到颗粒物分散均匀为止。加5mL 10%抗坏血酸 苯并[e]芘标准 2.00mL,混匀。 10%抗坏血酸,苯并[e]芘标准液2.00mL,混匀。 抗坏血酸, 芘标准液 加10mL1:1氢氧化钾,混匀。于沸水浴上回流 10mL1:1氢氧化钾 混匀。 氢氧化钾, 30min使皂化完全。皂化后立即放入冰水中冷却。 30min使皂化完全。皂化后立即放入冰水中冷却。 完全
2 试剂 无水乙醚、无水乙醇、三氯甲烷等试剂需预先处理。 无水乙醚、无水乙醇、三氯甲烷等试剂需预先处理。 维生素A标准溶液、维生素E 维生素A标准溶液、维生素E标准溶液 内标物溶液:10µg苯并 芘 苯并[e] 内标物溶液:10µg苯并[e]芘 /mL 3 仪器和设备 高压液相色谱仪带紫外分光检测器。 高压液相色谱仪带紫外分光检测器。
维生素的定量测定实验报告
维生素的定量测定实验报告一、实验目的本实验旨在掌握常见维生素的定量测定方法,了解维生素在人体健康中的重要作用,并通过实验操作提高实验技能和数据处理能力。
二、实验原理不同的维生素具有不同的化学性质和检测方法。
本次实验以维生素C 为例,采用碘量法进行定量测定。
维生素 C 具有还原性,能与碘发生氧化还原反应。
在酸性条件下,维生素 C 与碘反应生成脱氢抗坏血酸和碘化氢。
通过用已知浓度的碘溶液滴定样品中的维生素 C,根据碘溶液的消耗量,可以计算出样品中维生素 C 的含量。
三、实验材料与仪器1、材料新鲜水果(如橙子、柠檬等)、2%草酸溶液、标准碘溶液(005 mol/L)、淀粉指示剂。
2、仪器电子天平、容量瓶(100 mL、250 mL)、移液管(5 mL、10 mL、20 mL)、酸式滴定管、锥形瓶、玻璃棒、烧杯、研钵。
四、实验步骤1、样品处理选取新鲜水果,洗净、擦干,去皮后称取200 g,置于研钵中研碎,加入 2%草酸溶液 20 mL,搅拌均匀后转移至 100 mL 容量瓶中,用少量 2%草酸溶液多次冲洗研钵,洗液一并转入容量瓶中,定容至刻度,摇匀。
2、滴定用移液管准确吸取 100 mL 样品溶液于 250 mL 锥形瓶中,加入 20 mL 2%草酸溶液,1 mL 淀粉指示剂,立即用标准碘溶液滴定至溶液呈蓝色,且在 30 秒内不褪色,即为终点。
记录碘溶液的用量。
3、空白实验另取 30 mL 2%草酸溶液于 250 mL 锥形瓶中,加入 1 mL 淀粉指示剂,用标准碘溶液滴定至终点,记录碘溶液的用量(V0)。
五、实验数据记录与处理1、数据记录|实验次数|样品消耗碘溶液体积(mL)|空白消耗碘溶液体积(mL)||::|::|::|| 1 | V1 | V0 || 2 | V2 | V0 || 3 | V3 | V0 |2、计算维生素 C 的含量(mg/100 g)=(V V0) × C × 0088 × 100 /(m× 10)其中,V 为样品消耗碘溶液的平均体积(mL),V0 为空白消耗碘溶液的体积(mL),C 为碘溶液的浓度(mol/L),0088 为 1 mL 碘溶液(005 mol/L)相当于维生素 C 的质量(mg),m 为样品的质量(g)。
维生素B片含量测定的方法验证课件
CH2CH2OH
Cl- HCl
CH3
维生素B片含量测定的方法验证
2
性质
• 溶解性:水中易溶,乙醇中微溶,乙醚中不溶 • 硫色素反应:
特征性鉴别
• 紫外吸收特性:Amax=246含n量m测定 • 与生物碱沉淀试剂反应 • 氯化物特性:氯化物检查
维生素B片含量测定的方法验证
3
原理
• 特征性鉴别——硫色素反应
• 吸收波长选择 • 精密度试验:用同一份样品溶液测定6次,计算RSD% • 重复性试验:引如用何其引他用组? 同学数据(称样量,吸光度)
计算标示量%,计算RSD% • 稳定性试验:考察样品溶液30min内的稳定性,计算
RSD%
• 加样回收率试验:根据重复性试验的结果,设计加样 回收率试验
• 含量测定:根据测定结果计算含量,标示量%。
• RSD < 2.0%
维生素B片含量测定的方法验证
18
加样回收试验
98~102%
取含量测定时一半的称样量,0.5g/2
维生素B片含量测定的方法验证
19
撰写方法学验证论文
• 线性与范围: 设计对照品溶液的浓度 • 精密度试验 • 稳定性试验 根据实验测定数值进行计算 • 重复性试验 • 加样回收试验: • 设计称样量、对照品加入量 • 含量测定:根据实验测定数值进行计算
维生素B片含量测定的方法验证
8
分析方法的验证
1
线性关系和范围
2
精密度试验
3
重现性试验
4
加样回收试验
5
稳定性试验
维生素B片含量测定的方法验证
9
线性与•范精围密称取片粉40.98mg(相当于维生素B125mg),置100ml
第八章 维生素的测定
(3) 浓缩与定容
石油醚提取液→经无水硫酸钠(约5g)(脱 水) →与旋转蒸发器蒸发瓶; 用约l0ml石油醚冲洗分液漏斗及无水硫酸 钠3次,洗液→旋转蒸发器蒸发瓶;
于55℃水浴中减压蒸馏回收石油醚→待瓶 中剩下约2ml石油醚时→取下蒸发瓶,用氮气 冲干→加入2.00ml石油醚定容。
(4) 纸层析
第三节
水溶性维生索的测定
一、水溶性维生素的性质 1. 易溶于水,而不溶于苯、乙醚、氯仿等大多 数有机溶剂; 2. 在酸性介质中很稳定; 3. 在碱性介质中不稳定,易于分解;
4. 易受空气、光、热、酶、金属离子等的影响, 维生素B2 对光,特别是紫外线敏感,易被光 线破坏;维生素C对氧、铜离子敏感,易被氧 化。
将醚液经过无水硫酸钠滤入三角瓶中→用 约25m1乙醚冲洗分液漏斗和硫酸钠两次,洗 液并入三角瓶内→水浴蒸馏,回收乙醚→减 压抽干,立即准确加入一定量三氯甲烷(约 5m1左右),使溶液中维生素A含量在适宜浓度 范围内(3—5ug/m1)。
(2)标准曲线的绘制
以维生素A含量为横坐标,以吸光度为纵坐标 绘制曲线。 准确吸取维生素A标准溶液0,0.1,0.2,0.3,0.4, 0.5mL于6个10mL容量瓶中,用三氯甲烷定容 制备标准系列使用液→制成标准比色系列→调节 光度法零点→将标准比色系列按顺序移到光路前,迅 速加入9mL三氯化锑一三氯甲烷溶液,于6s内测定吸 光度(每支比色杯都在临测前加入显色剂)。 取6个3cm比色杯顺次移入标准系列使用液各1m1, 每个杯中加乙酸酐 l滴,在620nm波长处,以 l0mL三氯甲烷加1滴乙酸酐。
(8)维生素C标准使用液:准确吸取适量标准维 生素C贮备液,于100mL容量瓶中,用10g/L草酸 溶液稀释定容,使1.0mL含0.02mg维生素C。 (9)2,6-二氯靛酚溶液:称取52mg碳酸氢钠, 溶解于200ml沸水中,然后称取50mg2,6一二氯 靛酚,溶解于上述碳酸氢钠溶液中,冷却后, 于250mL容量瓶中,用蒸馏水稀释定容,过滤于 棕色瓶内,贮存冰箱,每周至少标定1次。
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第三节
水溶性维生索的测定
一、水溶性维生素的性质 1. 易溶于水,而不溶于苯、乙醚、氯仿等大多 数有机溶剂; 2. 在酸性介质中很稳定; 3. 在碱性介质中不稳定,易于分解;
4. 易受空气、光、热、酶、金属离子等的影响, 维生素B2 对光,特别是紫外线敏感,易被光 线破坏;维生素C对氧、铜离子敏感,易被氧 化。
β-胡萝卜素标准溶液配制:
准确取β-胡萝卜素标准品50mg,加少量氯 仿溶解,用石油醚稀释至50mL。分取此溶液1mL, 用石油醚稀释至100mL,此溶液每毫身升含β胡萝卜素10ug,临用前配制。
3.仪器与设备 ①玻璃层析缸
②分光光度计
③旋转蒸发器,具150m1球形瓶 ④点样器或微量注射器 ⑤新华滤纸:定性、快速或中速l0l号
(3)样品测定 测定样品空白液和样品溶液的吸光度, 从标准曲线中查出相应的维生素A含量。 取二个3cm比色杯,分别加入1mL三氯甲 烷(样品空白液)和1mL样品溶液,各加1滴乙 酸酐。其余步骤同标准曲线的制备。分别测 定样品空白液和样品溶液的吸光度,从标准 曲线中查出相应的维生素A含量。
6.结果计算
加入10m1水,稍稍振摇,若无混浊现象, 表示皂化完全。
②提取:水提取皂化物、乙醚萃取不皂化物
皂化液移入分液漏斗→用30ml水分两次冲洗皂化 瓶→用50m1乙醚分两次冲洗皂化瓶→洗液并入分液漏 斗→水层放入第二分液漏斗→再用30m1乙醚分两次冲 洗皂化瓶→洗液倾入第二分液漏斗→水层放入第三分 液漏斗→醚层并入第一分液漏斗→如此重复操作,直 到醚层不再使三氯化锑-三氯甲烷溶液呈兰色为止。
③洗涤:水提取皂化物、碱液提取醚溶性酸皂 在第一分液漏斗中→加入30ml水→分层后 弃去水层→加入15—20ml0.5moL/L的氢氧化钾 溶液→弃去下层碱液→用水洗涤,至水洗液不 再使酚酞变红为止→醚液静臵l0—20分钟后, 小心放掉析出的水。
④浓缩:水浴蒸馏,回收乙醚,浓缩至瓶中 剩约5m1乙醚。
(二)紫外分光光度法 1.原理 维生素A的异丙醇溶液在325nm波长下有最 大吸收峰,其吸光度与维生素A的含量成正比。 2.适用范围及特点 灵敏度较比色法高,可测定维生素A含量低 于5ug/g的样品。但在维生素A最大吸收波长 325nm附近许多其他化合物也有吸收。 本法适用于透明色油,维生素A的浓缩物等 纯度较高的样品。
②样品测定: 称取适量样品→皂化、提取、洗涤、脱 水、蒸发溶剂后→用异丙醇溶解并移入50m1 容量瓶中定容→于紫外分光光度计325nm处 测定其吸光度→从标准曲线上查出相当的维 生素A含量。
6. 结果计算
c——由标准曲线查得维生素A含量,I.U/mL y——样品的异丙醇溶液体积,mL; m——样品重量,g。 V——样品提取后加入三氯甲烷定容之体积,mL
C——由标准曲线上查得样品溶液中维生素A的含 量,ug/mL C0——由标准曲线上查得样品空白液中维生素A 的含量,ug/mL m——样品质量,g V——样品提取后加入三氯甲烷定容之体积,mL 100/1000——将样品中维生素A是由ug/g折算成 mg/100g的折算系数 如按国际单位,每1国际单位=0.3ug维生素A。
将醚液经过无水硫酸钠滤入三角瓶中→用 约25m1乙醚冲洗分液漏斗和硫酸钠两次,洗 液并入三角瓶内→水浴蒸馏,回收乙醚→减 压抽干,立即准确加入一定量三氯甲烷(约 5m1左右),使溶液中维生素A含量在适宜浓度 范围内(3—5ug/m1)。
(2)标准曲线的绘制
以维生素A含量为横坐标,以吸光度为纵坐标 绘制曲线。 准确吸取维生素A标准溶液0,0.1,0.2,0.3,0.4, 0.5mL于6个10mL容量瓶中,用三氯甲烷定容 制备标准系列使用液→制成标准比色系列→调节 光度法零点→将标准比色系列按顺序移到光路前,迅 速加入9mL三氯化锑一三氯甲烷溶液,于6s内测定吸 光度(每支比色杯都在临测前加入显色剂)。 取6个3cm比色杯顺次移入标准系列使用液各1m1, 每个杯中加乙酸酐 l滴,在620nm波长处,以 l0mL三氯甲烷加1滴乙酸酐。
二、脂溶性维生素的测定步骤
(一)用皂化法处理样品,水洗去除类脂物。
(二)用有机溶剂提取脂溶性维生素。 (三)浓缩后溶于适当的溶剂后测定。
三、维生素A的测定 (一)三氯化锑比色法 l.原理 在氯仿溶液中,维生素A与三氯化锑可生成 蓝色可溶性络合物,在620nm波长处有最大吸收 峰,其吸光度与维生素A的含量在一定的范围内 成正比,故可比色测定。
① 点样:
② 展开: ③ 洗脱: (5) 比色测定
用1cm比色皿,以石油醚调节零点度,从 标准曲线上查出相应的含量。
5.结果计算
式中: x——样品中胡萝卜素的含量,以β-胡萝卜素 计,mg/100g; c——在标准曲线上查得的胡萝卜素含量,ug V1——点样体积,mL; V2——样品石油醚提取液浓缩后的定容体积, mL; M——样品质量,g。
4.测定步骤
(1) 标准曲线的绘制
吸取β-胡萝卜素标准使用液0.1 mL、0.2 mL 、 0.4 mL 、0.6 mL 、0.8 mL 1.0mL,以石油醚定容至 10mL,分别于450nm波长处测定吸光度,绘制标准曲线。
(2) 样品提取与洗涤 ① 粮食直接磨粉,蔬菜与其他植物性食品打成 匀浆。 提取:样品(含胡萝卜素20—80ug) →100m1带塞 的锥形瓶中→加入20m1丙酮、5m1石油醚→振摇1 分钟,静止5分钟→将提取液转入盛有100m15% 硫酸钠溶液的分液漏斗中。 之后再用10ml丙酮一石油醚混合溶液提取 2—3次,直至提取液无色为止。
三、测定维生素的意义
1. 有助于评价食品的营养价值,开发利用富含 维生素的食品资源 2.指导人们合理调整膳食结构,防止维生素缺 乏症
3. 研究维生素在食品加工、贮藏等过程中的稳 定性,指导人们制定合理的工艺条件及贮存 条件,最大限度地保留各种维生素
4. 监督维生素强化食ຫໍສະໝຸດ 的强化剂量四、维生素的分析方法 维生素分析的方法有化学法、仪器法、微 生物法和生物鉴定法。
(1)参与神经介质、激素的生物合成
(2)是一种营养添加剂、强化剂、抗氧化剂。
(二)2,6一二氯靛酚滴定法
1. 原理
2. 仪器 (1) 组织捣碎机。 (2) 25mL、10mL滴定管。 (3) 100ml具塞量简。
3.试剂
(1)20g/L草酸溶液。 (2)10g/L草酸溶液。 (3)淀粉指示剂:取1g可溶性淀粉,加10mL冷水 调成稀粉浆,倒入正在沸腾的100ml水中,搅拌 至透明,放冷备用。 (4)60g/L碘化钾溶液。
(3) 浓缩与定容
石油醚提取液→经无水硫酸钠(约5g)(脱 水) →与旋转蒸发器蒸发瓶; 用约l0ml石油醚冲洗分液漏斗及无水硫酸 钠3次,洗液→旋转蒸发器蒸发瓶;
于55℃水浴中减压蒸馏回收石油醚→待瓶 中剩下约2ml石油醚时→取下蒸发瓶,用氮气 冲干→加入2.00ml石油醚定容。
(4) 纸层析
(8)维生素C标准使用液:准确吸取适量标准维 生素C贮备液,于100mL容量瓶中,用10g/L草酸 溶液稀释定容,使1.0mL含0.02mg维生素C。 (9)2,6-二氯靛酚溶液:称取52mg碳酸氢钠, 溶解于200ml沸水中,然后称取50mg2,6一二氯 靛酚,溶解于上述碳酸氢钠溶液中,冷却后, 于250mL容量瓶中,用蒸馏水稀释定容,过滤于 棕色瓶内,贮存冰箱,每周至少标定1次。
四、β-胡萝卜素的测定——层析法 1.原理: 以丙酮和石油醚提取食物中的胡萝卜素及其 他植物色素;以石油醚为展开剂进行纸层析。胡 萝卜素极性最小,移动速度最快,从而与其它色 素分开。剪下含胡萝卜素的区带,洗脱后于 450nm波长下进行比色测定。
2.试剂 ①石油醚(沸程30—60℃)
②丙酮 ③丙酮一石油醚混合液:3:7(V/V) ④无水硫酸钠 ⑤5%硫酸钠溶液(M/V) ⑥1:1氢氧化钾溶液(M/V) ⑦无水乙醇:同比色法测定维生素A试剂。 ⑧β-胡萝卜素标准溶液
3.试剂 ① 维生素A标准溶液 ② 异丙醇 4. 仪器:紫外分光光度计 5. 测定方法 ① 标准曲线绘制: 制备标准系列使用液→以空白液调仪器零 点→在325nm波长下测定吸光度→绘制标准曲线 分别取维生素A标准溶液(每毫升含10I.U)0.0, 1.0,2.0,3.0,4.0,5.0ml,于10毫升棕色容 量瓶中,用异丙醇定容。
4、一般在体内不能合成,或合成量不能满足生理需要, 必须经常从食物中摄取;
5、长期缺乏任何一种维生素都会导致相应的疾病。
二、维生素的种类: 1.根据其化学性质、结构: 胺类、醛类、醇类、酚式、醌类等。 2.根据其物理性质(溶解性)可分为: (1) 脂溶性维生素:维生素A、维生素D、维生 素K、维生素E。 (2) 水溶性维生素:维生素C、维生素B1、维 生素B2、维生素B6、维生素P、维生素PP。
第二节
脂溶性维生素的测定
一、脂溶性维生素的理化性质:
1.溶解性:不溶于水,易溶于脂肪、乙醇、丙 酮、氯仿、乙醚、苯等有机溶剂。
2.耐酸碱性:VA、VD对酸不稳定,VE对酸稳定。 VA、VD对碱稳定,VE对碱不稳定。 3.耐热性、耐氧化性:VA、VD、VE耐热性好, VA易被氧化,光、热促进其氧化;VD不易被氧 化;VE在空气中能慢慢被氧化,光、热、碱能 促进其氧化作用。
第八章 维生素的测定
第一节 食品中的维生素及测定意义
脂溶性维生素的测定 水溶性维生素的测定
第二节 第三节
思考题
第一节 食品中的维生素及测定意义
一、维生素的特性 :
1、维生素或其前体化合物都在天然食物中存在;
2、不能供给机体热能,也不是构成组织的基本原料; 3、主要功用是通过作为辅酶的成份调节代谢过程,需 要量极小;
二、测定水溶性维生素时的前处理方法 (一)维生素Bl、B2通常采用盐酸水解,或再 经淀粉酶、木瓜蛋白酶等酶解作用,使结合态 维生素游离出来,再将它们从食物中提取出来。