细胞传代实验报告

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细胞传代培养

一.实验目的

初步掌握哺乳动物细胞的原代培养与传代培养的基本操作过程,为生物技术在医学上的

应用打下基础。

二、原理

从生物体中取出某种组织或细胞,模拟体内生理条件,在人工培养条件下使其生存、生

长、繁殖或传代,这一过程称为细胞培养。细胞培养技术的最大优点是使我们得以直接

观察

活细胞,并在有控制的环境条件下进行实验,避免了体内实验时的许多复杂因素,还可

以与

体内实验互为补充,可同时提供大量生物性状相同的细胞作为研究对象,耗费少,比较

经济,

因此成为生物学研究的重要手段。

细胞培养可分为原代培养和传代(继代)培养。直接从体内获取的组织细胞进行首次培养

原代培养;当原代培养的细胞增殖达到一定密度后,则需要做再培养,即将培养的细胞

分散

后,从一个容器以1:2或其他比率转移到另一个或几个容器中扩大培养,为传代培养,

代培养的累积次数就是细胞的代数。

细胞培养是一种程序复杂、要求条件多而严格的实验性工作。所有离体细胞的生长都受

温度、渗透压、ph值、无机盐影响,消毒、配液等均有严格的规范和要求,特别是无菌

作是细胞培养成败的关键。

三、材料和试剂

1、细胞:293细胞株

2、试剂:0.25%胰酶、1640培养基(含10%小牛血清)

3、仪器和器材:倒置显微镜,培养箱、电动枪,培养板,吸液枪,5ml玻璃吸管、酒精

灯等

四、操作步骤

1、将长满细胞的培养板中原来的培养液吸去。

2、加入1~2ml 0.25%胰酶溶液,使板底细胞都浸入溶液中。

3、马上吸走胰酶液,再次加入2ml左右的胰酶,同样马上吸去,再加入几滴胰酶放入

培养箱中消化几分钟

4、用吸管将贴壁的细胞反复吹打成悬液,再按照观察的生长情况确定的传代比例传代

5.根据确定的比例来取需要的量(剩余的细胞拿来做细胞计数),加入4ml左右的培养液

6.前后左右的来回震荡使细胞分散均匀后,将培养板放入培养箱

7.收拾整理超净台

附:消化液配制方法:

称取2.5克胰酶蛋白酶,加入100ml10xpbs+纯水溶解到1l,滤器过滤除菌,4℃保存,

用前可在37℃下回温。

10x pbs配方:na2hpo4(14.2g) kh2po4(2.32g) nacl(80g) kcl(2.02g) (调至ph=7.4)

五、实验结果

传代后的细胞在2小时左右就能附着在培养瓶壁上,2天左右就在瓶内形成单层,

达到七八成满。这时需再次传代

六、讨论与反思

无菌操作中的注意事项

在无菌操作中,一定要保持工作区的无菌清洁。为此,在操作前要认真地洗手并用75%乙醇消毒。操作前20~30分钟起动超净台灭菌。培养瓶要在超净台内才能打开瓶塞,打开之前和加塞前瓶口都要在酒精灯上烧一下,打开瓶口后的操作全部都要在超净台内完成。操作完毕后,加上瓶塞,才能拿到超净台外。使用的吸管在从消毒的铁筒中取出后要手拿末端,将尖端在火上烧一下,戴上胶皮乳头,然后再去吸取液体。总之,在整个无菌操作过程中都应该在酒精灯的周围进行。

每天观察细胞形态,掌握好细胞是否健康的标准:健康细胞的形态饱满,折光性好,生长致密时即可传代。

多做,熟能生巧篇二:细胞生物学实验传代培养

一、【实验目的】

1、了解动物细胞传代培养的基本原理。

2、掌握动物细胞传代培养的基本操作,并对hela细胞进行传代培养。

二、【实验原理】

hela 是henrietta lacks的简称,henrietta lacks 是一位患有子宫颈癌的美国妇女的名字,在她死后,该细胞走被广泛散发到各研究机构,并无限次地繁殖分裂下去。

培养细胞的特性:

贴附生长:必须贴附于支持物表面才能生长。见于各种实体瘤细胞。

悬浮生长:于悬浮状态下即可生长,不需要贴附于支持物表面。见于各种造血系统肿瘤细胞。

每代贴附生长细胞的生长过程:

1、游离期细胞接种后在培养液中呈悬浮状态.也称悬浮期。此时细胞质回缩,胞体呈圆球形。10分钟一4小时

2、贴壁期细胞附着于底物上,游离期结束。细胞株平均在10分钟一4小时贴壁。

3、血清中有促使细胞贴壁的冷析球蛋白和纤粘素、胶原等糖蛋白(生长基质),这些带正电荷的糖蛋白的促贴壁因子先吸附于底物上,

悬浮细胞再与吸附有促贴

壁因子的附着。

4、潜伏期此时细胞有生长话动,而无细胞分裂。细胞株潜伏期一般为6~24小时。

5、对数生长期细胞数随时间变化成倍增长,活力最佳,最适合进行实验研究。

6、停止期(平台期)细胞长满瓶壁后,细胞虽有活力但不再分裂

细胞传代方法

1、悬浮生长细胞传代

离心法传代:离心(1000转/分)去上清,沉淀物加新培养液后再混匀传代。直接传代法:悬浮细胞沉淀在瓶壁时,将上清培养液去除l/2一2/3,用吸管直接吹打形成细胞悬液再传代。

2.悬浮生长细胞传代(hela细胞)

此类细胞部分呈现贴壁生长现象,但贴壁不牢,可用直接吹打法使纫胞从瓶壁脱落下来,进行传代。

3、贴壁生长细胞传代

采用酶消化法传代。常用的消化液有0.25%的胰蛋白酶液。

细胞培养用液的配制

1、d-hanks原液试剂配方

氯化钠 80.0g 磷酸氢二钠(na hpo ·2h o) 0.6g 氯化钾 4.0g 磷酸二氢钾 0.6g 三

蒸水 1000ml

2、d-hanks工作液试剂配方

d-hanks原液 100ml 三蒸水 896ml 0.5% 酚红液 4ml 3、消化液:

胰蛋白酶作用于与赖氨酸或精氨酸相连接的肽健,除去细胞间粘蛋白及糖蛋白,影响细

胞骨架,从而使细胞分离。胰蛋白酶液浓度越高,作用越强,但超过一定限度会损伤细胞。

胰蛋白酶是一种黄白色粉末,用无ca2+、mg2+的pbs缓冲液配制常用的胰蛋白酶液浓度是

0.25%。用滤器过滤除菌。

胰蛋白酶液消化时间:2-10分钟。用含血清培养液终止其对细胞的消化作用

完全培养基的组成

基础培养基 80%一95%

血清 5%一20%(一般加10%)

碳酸氢钠 2.0 g/l 青、链霉素各100卑位/毫升

血清质量好坏是实验成败的关键。

常用血清有胎牛血洁、新生牛血清、小牛血情、兔血清、马血清等,其中以胎牛血清质

量最好。

优质血清的标准:透明,淡黄色,无沉淀物,无细菌、支原体、病毒污染。血清的灭活

(消除补体活性):56 ℃,30 分钟

血清的消毒:过滤除菌

三、【实验材料】

实验用具:离心管(2支),移液枪(每个台面一把),枪头,吸管(4根),培养皿(每

组2个)

实验药品:0.25%胰酶,d-hanks,1640培养基

四、【实验操作】

1. 用75%乙醇擦手,取离心管一个,打开超净台(照明、风机),把离心管置于架子上。

然后用75%乙醇擦一下台面,点燃酒精灯。取尖吸管、吸量管各一支,套好吸球,放置在专

用的架上。

2.从冰箱中取出0.25%胰酶、d-hanks、培养基。可以把胰酶和d-hanks的瓶盖打开

或者拧松。

3.取待传代的细胞,用尖吸管弃去旧的培养基,加入d-hanks。轻轻摇动后将hanks弃

掉。

4.用尖吸管吸取适量胰酶加入,加入的量以覆盖整个细胞培养面为宜,轻轻摇动。2-5

分钟后迅速将消化液吸出。消化时间长短是实验成败的关键,宁可短消化,不能过消化。否

则细胞会变死。在倒置显微镜下观察,当细胞质回缩,胞间间隙加大为消化适宜。

5.取培养基加入细胞,反复轻轻吹打培养皿壁,制备细胞细胞悬液。吹打的部位均匀,

从上到小,从左到右,顺序进行吹打,保证各个部位的培养细胞均能吹打

到,成片的细胞已经分散成小的细胞团或者单细胞便停止吹打。吹打时用力不要过猛,

尽量不要出现气泡,以免损伤细胞。

6.至所有细胞从培养皿底部脱落下来,然后吸取至离心管中。1000 rpm离心5分钟。(无

需准确计数时离心可略)

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