石蜡切片技术介绍

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石蜡切片

石蜡切片

切片机的主要构造
标本台 即标本蜡块固定台或载物台。带有方向调节旋钮。
持刀架
固定切片刀的装置。
厚度调节器 调节切片厚度的装置, 以微米(um)为单位, 一般1~30 um范围。
切片刀的组成 切片刀、刀裤和刀柄
切片刀
有刀头、刀体和刀尾之分 有刀刃、刀面和刀背之分
切片刀刃锋利且无瑕疵是切片操作过程中 所必不可少的条件
目前,常用的展片方法:水浴展片、温台展片、手工展片
水浴展片
水浴展片的仪器
水浴展片的主要步骤
温台展片
温台展片的仪器
温台展片的主要步骤
徒手展片
不足之处是展片温度不能很好的控制,只 能依靠实验者的经验来判断。
徒手展片的主要步骤
未展平的石蜡切片
石蜡切片展片
展片完成的石蜡切片
注意:展片最终的质量评定都需 要在低倍显微镜下验证
刀刃质量的检查 在低倍(80×)显微镜下,利用显微镜 视野内的光线观察刀刃情况。 若刀刃无缺口,则刀刃可呈现一直线。
切片刀的磨刀与鐴刀
原则 戗 磨 顺 鐴
石蜡切片的质量保证主要与三方面有关 1.切片机和切片刀的质量 2.标本材料的处理过程 3.实验者的切片技术
石蜡切片前的准备
1.修切蜡块 (1)分块 用单面刀片轻轻地在包埋的蜡块表面划直线分 割,稍用力掰开,这个过程称为分块,多次重 复此过程,直至每个标本单独为一个石蜡块。 (2)修块 将分割的标本石蜡块进行修整, 一般标本四周的石蜡为1~2mm 标本蜡块包埋面是标本切面,应修整为近似的正方形和长方 形,从蜡块的侧面观察,蜡块修整为梯形状,可以增大蜡块与木 头托的粘附面。
裱片的操作过程
烤 片
烤片的目的 (1)利用烤箱内的温度将切片上的少量水分蒸发掉。 (2)烤箱内的温度热量可使黏附剂(如蛋白甘油)中的蛋白发生 变性,将组织蜡片黏附在载物片上,这种黏附的过程是需要一 个重要的媒介即少量的水分才能完成。

石蜡切片法的原理及应用

石蜡切片法的原理及应用

石蜡切片法的原理及应用1. 石蜡切片法的原理•石蜡切片法,也称为石蜡切片技术,是一种常用于生物组织切片和植物切片的方法。

它是将生物样本或植物材料浸泡在石蜡中,并使用切片机将其切割成薄片的技术。

石蜡切片法的原理基于石蜡的特性和切片机的工作原理。

•石蜡是一种固态蜡状物质,具有良好的可模塑性。

它的熔点较低,在55-60摄氏度范围内熔化,使得将样本浸泡在石蜡中能够快速固化和切割。

切片机通过旋转刀片和样本的移动来切割石蜡固化后的样本,从而得到薄片。

•石蜡切片法的原理包括以下几个步骤:–样本固定:将生物组织或植物材料固定在切片床上,通常通过福尔马林等化学物质进行固定。

–组织处理:将固定后的样本进行去水化和脱脂处理,以去除水分和脂肪等物质,使样本更易于渗透和固化。

–石蜡浸渍:将处理后的样本浸泡在石蜡中,使石蜡渗透到样本组织中,并使其固化。

–切片制备:将石蜡固化的样本放置在切片机上,通过旋转刀片和样本的移动来切割石蜡,得到薄片。

–切片染色:将薄片固定在载玻片上,并进行染色处理,以增强样本的可视化效果和对细胞结构的观察。

2. 石蜡切片法的应用•石蜡切片法在生物医学研究、临床医学和植物学等领域具有广泛的应用价值。

以下是石蜡切片法的一些主要应用:2.1 生物组织切片•生物组织切片是石蜡切片法最常见的应用之一。

通过石蜡切片法可以将生物组织固化并切割成薄片,用于观察和研究组织的结构和功能。

生物组织切片可用于研究疾病的病理学特征、细胞增殖和分化等过程。

2.2 病理分析•石蜡切片法在病理学方面具有重要的应用。

通过切割和染色石蜡切片,可以观察到细胞核、细胞质和细胞间质等组织成分的细微结构,实现对肿瘤、感染和其他疾病的病理分析和诊断。

2.3 细胞学研究•石蜡切片法可用于细胞学研究,通过切割和染色石蜡切片,可以观察细胞的形态、结构和功能等特征,对细胞的增殖、分化和凋亡等过程进行研究。

细胞学研究在癌症和其他疾病的研究中具有重要的意义。

石蜡切片的原理和基本步骤

石蜡切片的原理和基本步骤

石蜡切片的原理和基本步骤石蜡切片是一种常用于生物医学和生物化学实验中的技术。

通过使用石蜡作为嵌入剂,将组织标本固定在特定位置,并以薄片的形式制备,方便进一步的显微镜观察。

这篇文章将介绍石蜡切片的原理和基本步骤。

石蜡切片的原理主要涉及组织标本的固定、去水、脱脂、渗透、嵌入、切割和染色等步骤。

下面将逐步详细介绍每个步骤。

第一步是组织样本的固定。

固定是将生物组织中的蛋白质和核酸固定住,防止组织变性和腐败。

常用的固定剂包括乙酸乙酯、福尔马林和缓冲盐水。

在固定过程中,组织样本通常需要用切片器切割成较小的块。

第二步是去水。

在固定样本中,常常会有一些水分存在。

水分对之后的处理步骤会造成影响,所以需要进行去水处理。

去水可以通过渐进浓度的有机溶剂(例如乙醇)进行。

通常从浓度较低的乙醇开始,逐渐提高乙醇浓度,直至100%乙醇。

第三步是脱脂。

脱脂是为了去除溶剂和固定剂中的脂类物质。

脂类物质在之后的步骤中会妨碍切片的制备。

脱脂一般使用有机溶剂(如苯和二甲苯)进行处理。

第四步是渗透。

渗透是将脱脂样本置于石蜡中,使其被石蜡渗透。

石蜡具有良好的透明性和稳定性,可以保持组织样本的形状并方便切割。

渗透一般在60-65°C的温度下进行。

第五步是嵌入。

嵌入是将渗透好的样本放入预先制备的模具中,加热使其固化。

嵌入后的样本与石蜡牢固结合,形成坚固的石蜡块,有利于后续切割操作。

第六步是切割。

切割是将嵌入好的组织样本切割成非常薄的片。

常用的切片工具有旋转式切片机和滑动切片机。

切割时,需要将石蜡切割成5-10微米厚度的切片。

最后一步是染色。

染色是为了使细胞结构更清晰可见。

常用的染色剂有血红蛋白染剂和亚甲基蓝染剂等。

染色可以根据需要选择染色时间和染色剂。

石蜡切片的制备过程需要一定的实验技巧和仪器设备。

为了获得高质量的切片,需要注意固定、去水和渗透的处理时间和温度,以及切割的速度和厚度。

切割后的切片需要进行适当的质控,确保切片的质量并方便进一步的显微镜观察。

石蜡切片技术

石蜡切片技术
⑤、展片后把载玻片放在平盘上编好记号置于37℃温箱烘干,一昼夜干燥后即可取出存放于切片盒待染。
10、脱蜡复水
石蜡切片经二甲苯Ⅰ、Ⅱ脱蜡各5~10min,然后放入100%、95%、90%、80%、70%等各级酒精溶液中各3~5min,再放入蒸馏水中3min。
染色液多数为水溶液,因此,染色前必须将蜡脱去,使切片中的材料由有机相进入到水相。一般采用二甲苯脱蜡,逐级复水与脱水浸蜡过程正好相反,但是,由于蜡片较薄,所需时间比脱水浸蜡要短的多。
由于乙醇与石蜡不相溶,而二甲苯既能溶于乙醇又能溶于石蜡,所以脱水后还要经过二甲苯以过渡。当组织中全部被二甲苯占有时,光线可以透过,组织呈现出不同程度的透明状态。
透明注意事项
(1)使用透明剂时,要随时盖紧盖子,以免空气中的水分进入。
(2)更换每级透明剂,动作要迅速,一方面为了不使材料块干涸,另一方面能避免吸收湿气。
11、染色
切片放入苏木精中染色约10~30min。染色时间应根据染色剂的成熟程度及室温高低,适当缩短或延长。室温高时促进染色,染色时间可短些,否则可适当延长时间,冬季室温低时可放入恒温箱中染色。
12、水洗
用自来水流水冲洗约15min。冲洗过程中使切片颜色发蓝(或放入碱性水中也可,但用促蓝剂对伊红可能拒染,如果时间来得及,应以流水冲洗使切片显示蓝色为宜),但要注意流水不能过大,以防切片脱落,并随时用显微镜检查见颜色变蓝为止。
包埋的操作过程
包埋时,将纸盒放在已经加热的温台上,从温箱中取出盛放纯石蜡的蜡杯,倒入包埋用的纸盒中,取出存放材料的蜡杯3,迅速轻轻地用镊子夹取材料平放于纸盒底部(注意切面朝下放置),再用温镊子轻轻拨动材料,使之排列整齐。轻轻将纸盒两侧的把手提起,慢慢地平放在面盆,并立即使它沉入水中,使盒中包埋块迅速凝固。待石蜡完全凝固(约30min)后即可取出备用。

常用的经典组织学技术

常用的经典组织学技术

常用的经典组织学技术经典组织学技术是研究细胞和组织学形态结构的重要手段,是现代生命科学中不可或缺的一部分。

随着科技的发展和进步,组织学技术不断创新和完善,但是一些经典的组织学技术仍然广泛应用于生命科学的研究领域。

下面将对常用的经典组织学技术进行介绍。

一、石蜡切片技术石蜡切片技术是组织学研究中最常用的技术之一。

它可以将组织切成非常薄的切片,使得组织的形态结构可以在显微镜下观察和研究。

石蜡切片技术的步骤大致如下:首先将组织固定、脱水处理,然后将组织浸入蜡中进行渗透处理,最后将渗透好的组织切出薄片。

石蜡切片技术具有较高的分辨率和生物安全性,因此广泛应用于组织形态学研究、诊断和治疗。

二、冰冻切片技术冰冻切片技术是一种较新的组织学技术,其基本原理是将组织迅速冷冻,然后切成薄片。

与石蜡切片技术相比,冰冻切片技术可以得到更好的组织微观结构和细胞内的亚细胞结构信息,尤其适合于一些对生物体很敏感的组织,如神经组织。

冰冻切片技术可以直接应用于某些特殊的生命科学领域,如蛋白质晶体学和冷冻电镜技术等。

三、光学显微镜技术光学显微镜技术是组织学研究中应用最广泛的技术之一,也是组织学技术学习中最基础的技术之一。

这种技术可以通过灯光和透镜将显微镜下的物体放大,并且在不破坏样品的情况下识别和分析不同的细胞和组织结构。

光学显微镜技术在诊断学、细胞学、解剖学、生物学和化学等领域均有广泛应用。

四、免疫组化技术免疫组化技术是一种基于抗体-抗原相互作用原理的组织学技术,将特定抗原标记着色分析。

通过在组织或细胞上添加合适的抗体,对该抗原特定位置进行标记,从而在显微镜下较为清晰地观察到抗原的位置、形态和分布情况,是现代生命科学中极为重要的分析方法之一,特别适用于组织病理学、免疫学和肿瘤学等领域。

五、原位杂交技术原位杂交技术是一种能够检测基因或RNA等核酸分子的组织学技术。

利用标记着色质和探针的互动,把探针寡核苷酸序列与样品中的核酸混合,然后目视观察其在细胞或组织中的位置、分布和数量来检测其在样品中的表达情况和作用机制的过程。

石蜡切片

石蜡切片

石蜡切片制作基本技术石蜡切片法包括取材、固定、洗涤和脱水、透明、浸蜡、包埋、切片与粘片、脱蜡、染色、脱水、透明、封片等步骤。

一般的组织从取材固定到封片制成玻片标本需要数日,但标本可以长期保存使用,为永久性显微玻片标本。

1.取材应根据要求选取材料来源及部位。

例如植物细胞有丝分裂多选取洋葱根尖,细胞分裂快又便于切取;猪的肝小叶边界清晰明确;耳蜗以豚鼠的内耳易于定位和剥离。

材料必须新鲜,搁置时间过久则产生蛋白质分解变性,导致细胞自溶及细菌的滋生,而不能反映组织活体时的形态结构。

2.固定用适当的化学药液——固定液浸渍切成小块的新鲜材料,迅速凝固或沉淀细胞和组织中的物质成分、终止细胞的一切代谢过程、防止细胞自溶或组织变化,尽可能保持其活体时的结构。

固定能使组织硬化,有利于切片的进行,而且也有媒浸作用,有利于组织着色。

固定液的种类很多,其对组织的硬化收缩程度以及组织内蛋白质、脂肪、糖类等物质的作用各不相同。

例如纯酒精可固定肝糖而能溶解脂肪,甲醛能固定一般组织,但溶解肝糖和色素。

固定液可分为单一固定液及混合固定液。

前者有甲醛(蚁醛、福尔马林)、酒精、醋酸或冰醋酸、升汞、锇酸(四氧化锇)、重铬酸钾及苦味酸等,单一固定液不能固定细胞中的所有成分;混合固定液可以互补不足,常用的混合固定液有Bouin氏液、Zenker 氏液、FAA液、Carnoy氏液、SuSa液(配方见有关技术书籍)。

因此,应根据所要显示的内容来选择适宜的固定液。

10%福尔马林(4%甲醛)或10%磷酸缓冲福尔马林是病理切片常规使用的固定液,不仅适用于常规HE(苏木精-伊红)染色,还可以用于组织学有关的其他技术的切片染色。

固定液的用量通常为材料块的20倍左右,固定时间则根据材料块的大小及松密程度以及固定液的穿透速度而定,可以从1小时至数天,通常为数小时至24小时。

3.洗涤与脱水固定后的组织材料需除去留在组织内的固定液及其结晶沉淀,否则会影响以后的染色效果。

石蜡制片技术

石蜡制片技术

(六)烘干

将烫好的片子自然烘干,或 45℃烤片箱干燥1~2天,注意 防尘。
(七)脱蜡、染色、脱水、 透明
将玻片标本放于100%X(15-30min)→100%X(12min)→50%X+50%A(1-2min)→100%A(12min)→95%A(1-2min)→85%A(1-2min)→番红 (85%A配制)(2-4h)→85%A(3-5s)→95%A(3-5s) →固绿(100%A配制)(30s)→95%A(12min)→100%A(1-2min)→100%A(1-2min) →50%X+50%A(1-2min)→100%X(12min)→100%X(1-2min) 注意番红染色时间要长些(至少3h以上),随后的两 次经过酒精的时间都应很短,以免洗掉染上的番红, 固绿的染色时间大约在20-30s,其他各步的时间大约1 至2分钟,均要视具体情况而定。
(二)固定和抽气
(一)将切取的植物材料放入固定液中, 使其细胞原生质在极短的时间内停止生命活 动,尽量保持细胞原有的细微结构,也可使 某些柔软的材料适当硬化,便于切片。材料 的长和宽最大不超过1cm。固定液为材料的 20倍左右。固定时间24小时,其间要放入抽 真空机中抽气15-30分钟至材料完全沉浸在固 定液下面。并用铅笔写好标签。
五、石蜡制片的操作流程
(一) 取材 (二)固定和抽气 (三)脱水、透明及渗蜡 (四) 包埋 (五)修块 、切片和烫片 (六)烘干 (七)脱蜡、染色、脱水、透明 (八)封片
(一)取材

选取经过自己设计实验的对照和处理 的材料,根据不同的要求,从植物体上 选取有代表性的器官或组织,取材力求 新鲜,以避免组织发生死后变化。取材 时要用快刀切割材料,不能挤压,所取 的材料不宜过大,在不影响观察的情况 下应尽可能小些,这样有利于药剂透入 组织和细胞中。

石蜡切片技术

石蜡切片技术

(6)透明:纯酒精/二甲苯=1∕1浸渍2小时,再转入纯的二甲苯中二 次,每次1小时,至大体呈明亮感即可。
(7)浸蜡:将组织留在透明剂中,轻轻倒上等体积已熔化的石蜡, 放入40℃的温箱10小时(过夜),再加入熔化的石蜡至3/4体积,调 节温箱至48℃,透蜡3小时,再经3次纯蜡,温度56℃,每次约1 小时,直至透明剂完全排出。
3.脱水
材料洗涤后,其中含水,水与石蜡不能混合,必须除去。去水 用酒精,材料由水入酒精中,不能操之过急,须由低度酒精渐 至高度酒精。通常由30%、50%、70%、80%、90%、100%, 每次须经半小时或更长时间,材料大的,时间须延长。若暂时 不能埋蜡、材料可放在70%酒精中保存,经久不坏。在高度酒 精中,不能过久.因酒精能使材料硬化,过久则材料由硬而脆, 切时易于粉碎。
石蜡切片技术
植物组织石蜡切片技术
石蜡切片法是显微技术上最重要、最常用的一种 方法。它是把材料封埋在石蜡里面,用旋转切片 机切出很薄(6~8微米)的切片用于显微观察。
石蜡切片的一般步骤:
1.固定 2.洗涤 3.脱水 4.透明 2.封埋 6.切片 7.粘片 8.脱蜡 9.染色 10.脱水 11. 透明 12.封片
水稻幼穗组织爱氏苏木精整染法
(1) FAA固定液固定幼穗组织24小时以上。 (2) 50%酒精洗涤2~3次,每次1小时。 (3)爱氏苏木精稀释液中整染2天 。 (4)水洗,返蓝,换水2~3次,水洗1天。 (5) 脱水及复染 :经20%,40%,60%,75%(过夜),85%
各级酒精,每级约2小时,0.5%伊红酒精(95%)染液4~6小 时,无水酒精脱水2次,每次1.5小时。
材料透明后,要进行浸蜡,才能进行埋蜡。浸蜡也宜于渐次进行,一般 先用石蜡和二甲苯的混合液(50%级和70%级)浸蜡,再用纯石蜡换三 次,每次的时间,视材料大小而定,通常每次半小时,材料大,时间必 须加长。在浸蜡的过程中,须注意温度,不能超过石蜡熔点2℃以上 。
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合在一起进行固定如:
单纯固定:
? 福尔马林formalin:10%的甲醛(37%——40%) ? 醋酸(0.3%~5%) ? 苦味酸(饱和溶液,三硝基苯酚) ? 铬酸0.5~1% ? 锇酸1~2% ? 升汞(氯化汞饱和水溶液约7%)
混合固定:
? 用两种或两种以上的试剂混合在一起进行固定如: ? 卡诺氏固定液
(一)取材
杀生(动物) ? 1.目的:动物必须杀生,然后取出所需组织 ? 2.方法:一般采用乙醚(氯仿)麻醉后解剖,
取出所需组织。 ? 3.注意事项:
? 性别合适 ? 麻醉前动物生活正常,以免影响其代谢活动,
进而影响细胞结构 ? 取材部位要准, ? 速度快
(一)取材
1.目的:得到所需要的组织 2.方法:a.用剪刀剪下组织
(二)固定
1.目的: 为了使取样的细胞在形态结构和成分方面
保持与生活的状态一样,就必须迅速杀死细胞 避免失水变形,自溶破坏结构等。
固定液的选择:快;不溶解;不收缩膨胀; 软硬适中;增加折光度;增加染色能力;长期 保存等7项。
2.方法
? (1)固定剂的种类:一般采用化学固定 单纯固定:只用一种试剂固定: 混合固定:用两种或两种以上的试剂混
3.固定时应注意的事项
固定条件的选择: 种类、浓度、温度和时间 固定要快否则会自溶: 组织快,不能太多,否则固定不透:
(三)冲洗
1.冲洗的目的 除去固定剂,主要是防止固定的毒害作用,
固定时间太长,组织收缩变脆。
2.冲洗的方法
⑴ 冲洗液随固定液而定,冲洗的选择:不形 变提取,不反应,有效除去固定液。 ? ①固定液为水溶液时,以水或低浓度的酒精冲 洗; ? ② 固定液是酒精多以不同浓度的酒精冲洗, 以酒精冲洗,浓度要低于固定液的酒精浓度Байду номын сангаас 材料与酒精的比例一般为1:10(加入的体积) (70%乙醇换洗3次,每次20~60min )
? 卡诺氏固定液 (Carnoy's Fluid) 适用于一般植物 组织和细胞的固定 ,常用于根尖 ,花药压片及子房 石蜡切片等 .有极快的渗透力 ,根尖材料固定 15—
20min即可,花药则需 1h左右,此液固定最多不超过 24h,固定后用95%酒精冲洗至不含冰醋酸为止 ;如 果材料不马上用 ,需转入70%酒精中保存 .固定液的 重要特性是能迅速穿透细胞,将其固定并维持染 色体结构的完整性,还要能够增强染色体的嗜碱 性,达到优良染色效果。
? F.A.A固定液 又称标准固定液,万能固定液.适 用于一般根,茎,叶,花药,子房组织切片.在植 物形态解剖研究上应用极广;
? FAA固定液的优点在于:兼有保存剂作用,冰醋 酸既能抵消酒精和甲醛对组织的收缩作用又是 细胞核的优良固定剂,沉淀核蛋白,且对免疫 组化无碍更无掉片之理。FAA固定液具有强大 的固定效能,较之单纯固定更科学更快更好! 对染色体的观察效果较差.
b.冲洗动物组织,动物(生理盐水、糜蛋白酶溶 液)植物(缓冲液或水)冲洗干净,防止失水,避免压挤 损伤,用生理盐水、糜蛋白酶冲去表面的血、粘液和赃物。
c.切成小块 3注意事项:
? 要准 ? 要快 ? 避免损伤(方向,刀要快,不能挤压) ? 植物取材:用剪刀剪下材料时一定要植物生活正常,不要 因缺水、营养和温度光照发生明显改变,影响细胞结构, 同时发育程度、部位要准。
(2)固定方法
? 静置固定: 将组织块放入盛有固定液的小的 称量瓶、小烧杯或青霉素瓶中,在室温或低 温(0~4℃)固定一段时间,不断摇动能增 加固定效果,植物和动物经常使用这种方法。
? 灌注固定: 常用于动物,将固定液通过已麻 醉的动物血管中,让血液流动,固定所需细 胞,该方法有点,固定均匀,不出现自溶现 象,但较繁琐。
第二章 石蜡切片技术
一、显微切片技术产生的原因
? 光学显微镜发展到一定程度之后,渴望知道细胞 结构
? 由于组织太厚,光线很难穿过 ? 压片可使组织变薄,但引起变形、易位,除核外,
看不到其他结构,因此需要切片变薄。 ? 因细胞水多,太软,无法切片
? 鉴于上述情况找到一种方法使 细胞水被替代, 变硬,能直接切片的方法,最广泛使用的就是 石蜡切片技术
3.注意事项
(1) 冲洗彻底——否则收缩、变硬、抽取 (2)不能时间太长太急——变软,肿胀(吸水) (3) 摇动有利于冲洗干净——加快分子运动
(四)脱水
1. 目的: 因石蜡与水不混合,在用石蜡透入前必须将细 胞中的水彻底脱掉,否则石蜡进不去材料,无 法让细胞变硬,无法进行切片。
2.方法
? 脱水剂的选择 原则:①凡与水和石蜡亲和性好的②且不使细胞剧
酒精:冰醋酸(3:1) 酒精:冰醋酸:氯仿(6:1:3)适用于动植物一 般组织细胞。 ? FAA 福尔马林(38%甲醛)5 ml: 冰醋酸5ml:70%酒精90 ml 幼嫩材料用50%酒精代替70%酒精,可防止材料收缩;还 可加入5 ml甘油(丙三醇)以防蒸发和材料变硬. ? 但单细胞及丝状藻类除外,也不适于细胞学研究
(2)冲洗方法
? 静置冲洗:加入冲洗液,静置一段时间,倒出 该液,加入新的冲洗液,反复几次(5~6次), 每次30分钟左右,振荡有好处。(时间开始一 次为20~30分钟,以后几次可延长1~2h,)具 体时间与材料性质、大小和温度有关。
? 流水冲洗:将小瓶用纱布蒙住,放入盆中,流 水冲洗,效果较静置冲洗为好,时间为12~24h, 但流水不能太大太急,也不能太长,太长使组 织变软肿胀,冲洗时间有时长达24h左右,如 木本植物的木质部。
二、石蜡切片技术的优点
为什么选择这一技术呢?主要因为它有 以下优点:便于推广、经济、适用、简 便。
? 经济,价格低,可反复使用; ? 技术难度不大,容易掌握,但要精通也不
容易;
? 设备要求不高 ; ? 可长期保存; ? 染色容易,而且都能被染色,形成好的反
差和好的选择性。
三、石蜡切片的主要过程
杀生(取材)——固定——冲洗——脱水— —保存——透明——石蜡透入——包埋—— 切片——复水——染色——脱水——封藏— —观察保存 ? (一)取材、固定、洗涤、脱水 ? (二)透明、透蜡、包埋 ? (三)切片、贴片 ? (四)染色、封藏
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