olympus_i71倒置显微镜操作规程
CXO_OLYMPUS IX71倒置荧光显微镜使用与维护SOP
起 草：李敏惠 日期：2007.10.24 审 核：邹强 日 期：2007.11.07 批 准：王伦安 日期：2007.11.15生效日期：2007.12.01签 字：修订号生效日期制定（变更）原因及目的：01 2007.12.01 开始按SOP 管理 02 03 分子生物学 [ ]份 组织病理学 [ ]份 细胞培养室 [ 1 ]份 天然产物 [ ]份 抄送SPF 级动物 [ ]份精密仪器室 [ ]份准 备 室 [ ]份技术档案室 [ 1 ]份OLYMPUS IX71倒置荧光显微镜使用与维护SOP1 适用范围¾ 本SOP 适用于OLYMPUS IX71倒置荧光显微镜的使用及维护保养。
2职责¾ 操作人员：认真执行本SOP 的内容，并作好相关记录。
¾ 设备管理员：培训、指导操作人员正确执行本SOP ，同时需按本SOP 对设备进行定期维护保养并作好相应记录。
3主要性能参数 物镜转换器 六孔，带有简易防水装置聚焦行程9mm （从载物台表面起，向上7mm ，向下2mm ），同轴粗/微调节钮（微调精度1μm ，微调每圈行程100μm ），上限位锁定机构，粗调扭力矩调节器初始图像光口 上光口，更换内置1×/1.6×变倍器显微镜镜体前置操作光路选择钮，透射光强调节钮和灯开关，TTL 脉冲控制钮。
100W 透射光照明柱IX2-ILL100 照明支柱倾斜装置（30度倾角，带有减震装置）；聚光镜架（行程50mm ，带有摆动装置）；可调视场光阑，4个滤色片架（直径45毫米，厚度=6mm 或更小）透射光照明器外接电源装置 TH4-200 200V ，TH4-HS 手动控制器，重量2.2kg观察筒双目观察筒 U-BI90 瞳间距调焦范围：50～76mm ，带有屈光度调节功能，视场数22 载物台右手控制旋钮载物台IX2-SFR行程：50mm （X ）×50mm （Y ），载物台插入板可更换（直径110mm ）聚光镜 长工作距离聚光镜IX2-LWUCD5孔转盘（其中3孔直径30mm ，2孔直径38mm ），孔径光阑可调，N.A.0.55，W.D.27mm目镜 WHN10×-H 高眼点，带屈光度调节功能，视场数22 荧光照明器 IX2-RFA 直型设计，带有视场光阑模块，有滤色片滑板（2个位置，直径32mm ，厚度或更小） 反射光荧光装置荧光滤色镜转盘 IX2-RFAC 转盘上有6个位置，内置光闸光源 100W汞灯室和变压器4 主要应用范围¾透射光明场、透射光相差、反射光荧光显微观察5 启动5.1 5.2 5.36.16.2 6.36.46.5 6.6 6.76.8将光强调节钮调节到最小；打开显微镜电源，将主开关拨到“I”（开）；荧光观察时，开荧光汞灯光源，将主开关拨到“I”（开）；¾汞灯是高压激发，其内是高压，切忌频繁开关，可能的话，需观察的样本请集中在一个时间段观察，在开灯10~15分钟后开始观察效果较好。
Olympus 1X71 用户手册说明书
UCL Institute of Child HealthUser guide Olympus 1X71Dr Bertrand VernayLight Microscopy Facility ManagerWellcome building, Office W2.09Tel Office: 42224TelMobile************Email:***************.ukRevised December 2014Table of contentspage 3 ......... O wnershippage 3 ........ Access Rulespage 3 ......... O lympus Customer Support Contactpage 4 ........ General SpecificationsMicroscopy Techniques AvailableObjectivesFilter CubesCameraFluorescence IlluminationPixels to Microns CalibrationConsumables Listpage 5 ......... Quick User GuidesTransmitted LightEpifluorescenceImage Capturepage 6 ......... Halogen Lamp Operationpage 7 .... Kohler Illuminationpage 8 ........ Adjusting the Objective Correction Collar page 9 ........ Prior Lumen200 Metal Halide Lamp Operation page 10 .. Image Capture with HClmagepage 11 ... Selecting the Right Fluorochrome/Filter Setpage 11 DAPIpage 12 Endow GFP/EGFP Bandpasspage 13 DsRed(TRITC/Cy3)page 14 Cy5page 15 Cy7page 16 ....Prior Lumen200 Spectral Outputpage 17 ... Hamamatsu ORCA-R2 Spectral ResponseOwnershipProf. Jane Sowden, Developmental Biology Unit (Purchased in 2011)Access Rules∙No access without prior training by the Light Microscopy Facility Staff ∙Free of hourly charge for Sowden and Ferretti groups, £1 hourly charge for all other users towards the cost of the consumables is expected ∙Prof. Sowden team has priority over other users.∙Users must always record their activity in the Log book∙Problem(s) with the microscope should be reported as soon as they are noticedOlympus customer support service: /microscopy The system is not covered by a maintenance contractOlympus requires a PO number before sending an engineerGeneral specificationsMicroscopy techniques available∙Brightfield∙Phase contrast∙EpitluorescenceObjectives∙O ly mpu s UP l an FL N 10x Ph1 NA0.3 WD10.0 mm∙Olympus LUCPlanFLN 20x Ph1 NA 0.45 WD 6.6-7.8 with correction collar ∙Olympus LUCPlanFLN 40x Ph2 NA 0.6 WD 3.0-4.2 with correction collar ∙Ze is s o bj ec t ive s c an al s o be use dCamera (see p16)Hamamatsu ORCA R2 CCD Camera with HClmage Capture SoftwareFluorescence illumination (see p16)Prior Lumen 200 Metal Halide Light Source (2000 hours/bulb)Pixels to Microns calibration5x objective binning 1x1 1 pixel = 1.88 um10x objective binning 1x1 1 pixel = 1.03 um20x objective binning 1x1 1 pixel = 0.514 um40x objective binning 1x1 1 pixel = 0.256 umCalibration with a micrometer under transmitted white ligh tConsumables listPrice correct as of November 2013∙Prior Lumen 200 bulb LM375 (£550, Prior Scientific Instruments Ltd)∙Prior Lumen 200 light guide LM587 (£400, Prior Scientific Instruments Ltd)∙Halogen bulb 12V/100W (£1.8, Technical Lamp Supplies UK)Quick user guidesUsers must always record their activity in the Log bookTransmitted light1.Halogen Lamp Power Supply Unit TH4 "ON"2.Light Path selector on "Ocular"3.Kohler illumination adjusted4.Correct phase ring in position (10x & 20x Ph1, 40x Ph2)5.Filter cube on po sition #6EpifluorescenceWarnings:Do not shut the unit down within 30 minutes of powering up the unit.∙After shutting down the unit allow 30 minutes before re-powering up ∙After shutting down the unit allow 30 minutes before changing the bulb. Failure to do so is likely to result in damage to the bulb.1.Prior Lumen 200 module on2.Prior Lumen 200 intensity knob >0%3.Light Path selector lever on "Ocular"4.Correct filter cube in position5.Fluorescence shutter openImage Capture1.Start Camera controller (press until LED turns green)puter on (Login: Jane/ Password: Ja*e)3.HClmage software open4.Light Path selector lever on Camera5.Correct transmitted light/epifluorescence set-up6."L i v e"mo de7.Adjust exposure time accordingly. Make use of the Histogram and the Saturatio noptions8."A b o r t"9."C a p t u r e l"10.S a v e a s in M y D o cu me n ts>U s e r N ame_U n i t>Fi le N am e.t i f11.Shut-down: exit HClmage, log out windows session, camera on stand-by (pressuntil LED turns orange)Halogen lamp operation:Turning on the lamp1.Make sure the light intensity control knob (5) is in the MIN (minimum intensity)position on the microscope frame.2.Make sure the light intensity control knob (1) is in the MIN (minimum intensity)position on the TH4 module.3.Set the main switch (2) to "I" (ON) on the TH4 module.4.On the microscope front, press the transmitted light ON-OFF button (6) so thatthe button is illuminated.5.Adjust the brightness with the light intensity control knob (5).6.To turn OFF, set the transmitted light ON-OFF button (6) to OFFHalogen lamp operation:T urning off the lamp1.Set the light intensity control knob (5) to the MIN (minimum intensity) position onthe microscope frame.2.Set the light intensity control knob (1) to the MIN (minimum intensity) position onthe TH4 module.3.Set the main switch (2) to "0" (OFF) on the TH4 module.Kohler illumination:1.Rotate the turret (1) to the "BF" position. (Any of positions 3,4 or 5, position 1=Ph1, 2 = Ph2)2.Slide the aperture iris diaphragm lever (2) to fully open the diaphragm.3.Slide the field iris diaphragm lever (3) to the fully open position.4.Engage the 10x objective and bring the specimen into focu s.ing the field iris diaphragm lever (3), completly close the field iris diaphragm.6.Rotate the condensor height adjustment knob (4) to bring the field iris diaphragmimage into focus.7.Center the field iris diaphragm (3) using the condenser centering kno bs (5).8.Open the field iris diaphragm (3) until its image reach the limits of the field of view,adjust the centering if necessary.9.Open the field iris diaphragm (3) until not visible.Step 6 Step 7 Step 8 Step 9Adjusting the objective correction collarCorrection is possible according to the vessel bottom thickness.1.When the thickness of the vessel bottom is known, match the scale reading of thecorrection collar to the thickness of the vessel in use.or2.If the thickness of the vessel is unknown or diverge from the manufacturerspecifications, the optimum position for the correction collar can be obtained by judging the image resolution and contrast. When a satisfactory image is not obtain after focusing:1. Rotate the correction collar to the left and right, refocus each time andcompare the images.2 Then rotate the collar in the direction yielding a better image, rotate thecorrection collar to the left and right, refocus each time and compare theimages.3 Repeat this cycle until the position with the optimum image is found.20x Correction Collar 40x Correction CollarCorrection Collar Scale0 mm0.17 mm (glass coverslip #1.5)0.5 mm1 mm (most tissue culture plates)1.5 mm2 mmPrior Lumen200 Metal Halide Lamp Operation:Starting Up the Lumen1.Switch the Lumen power switch on.2.Make sure the ventilation vent on the left hand side is unobstructed or the lampwill overheat resulting in automatic shutdown and damage to the module.3.Allow 1-5 minutes for light to reach 70% of output.4.Allow 30 minutes for the Lumen to reach operational temperature.5.Warning: Do not power down the unit within 30 mins of power up. This may re-duce the effective lifetime of the bulb.Shutting down the LumenThe following warnings apply as damage to the bulb may result if instructions not followed:1.Warning: Do not shut the unit down within 30 minutes of powering up the unit.2.Warning: After shutting down the unit allow 30 minutes before re-powering up orchanging the bulb. Failure to do so is likely to result in damage to the bulb.Warning: the airoutlet for heatventilation mustnot but obstructed[Mono: 1 Channel ⏹ Mono: 1 Channel v•[C10600-100 (O R CA-R 2) S IN: 011316 ⏹C10600-106 (CIRCA-R2) SP!: 011316--- — X CaptureXBinning and SubArray Advanced Camera PropertiesBinning and SubArray Advanced Camera PropertiesusL IP r o c e s s i n gIF! 0uL P r oc es s in gD e p t h16 b itBinning and SubArray Binning [1 Sub-Array ResetPreset Sizes[1344 x 1024 ⏹X 0 0 L i e d a g .:Width 1344 Image Capture with HClmage1. Click the Capture pane.2. Click Live for a live image from the camera3. Camera binning or image sub-array can be set in the Binning SubArray panel.4. In the Camera Control panel, adjust exposure/gain manually or automatically by clicking on Auto Expose; view the intensity distribution in the histogram.5. Check Sat. (saturation) in the histogram of the Image Display to guard against image saturation. Saturated pixel are indicated in Red. Yellow indicates pixels ap -proaching saturation.6. Adjust camera exposure and gain settings as necessary7. Click Abort.8. Click Capture1 to acquire an image.9.Click the Save icon to save the image in My Documents>UserName_Unit>file name.tifC a p t u r eMEMCapturelAbort1Capture1iY 2/ C a m e r a C o n t r o l1 Li n 1,1.A.M.Pi n M.,11Auto ExposeAu to Expos eT e m p e r a t u r e [C ] Current100 Camera ControlTemperature [C]OffsetB4UDefault ⏹DefaultGain Exposure 00.10000(OffsetG a i n E x pos u re 0 ! ;0. 10400C 1Ilkstogursr ;401Lopg:• ItE•4 • a-YO 0Height 1024I lb O..^ • la Coorto0wpo•d • ItI P f o r H O V I. M o o n.. t l e f r a89Selecting the right fluorochrome/filter setPosition #149000 - ET - DAPIExciter 350/50xbeamsplitter 400113Emitter ET460/50m550Wavelength (nm)Position #241017 EndowGFP/EGFP Bandpass Emitter ET470/40xBeamsplitter 495LPEmitter ET 525/50mPosition #349005 - ET - DSRed (TRITC/Cy3) Exciter ET545/30xBeamsplitter T570LPXREmitter ET620/60m100Position #4 49006 - ET - Cy5 emitter ET620/60xBeamsplitter T660LPXR Emitter ET700/75n,Position #549007 - ET - Cy7Exciter ET710/75xBeamsplitter T760LPXREmitter ET810/90m700 750 800 850Wavelength (nm)T7601pxrHClmage Live。
olympus_i71倒置显微镜操作规程
OLYMPUS IX71倒置显微镜操作规程编写人：於锋时间一、目的正确使用倒置显微镜对细胞标本的形态特征进行观察，为生命科学的研究提供更多可靠的实验数据。
二、原理倒置显微镜系统（IX71系列）是在透镜成像原理基础上发展起来的显微观察系统，利用卤素灯为光源，光线经过聚光镜汇聚后透过标本，通过物镜对标本进行聚焦放大成像，最后通过目镜把物镜所成的像再次放大，从而使实验者能够清晰的分辨体外培养的细胞的形态以及内部结构，主要用于体外活细胞培养形态观察，根据实验需求配置了明场、暗场、相差、荧光等技术模块。
三、主要操作规程相差观察：1.打开主开关2.转动光路选择盘到“眼睛”位置。
3.装上观察样本。
使用10X物镜，将聚光镜转盘转到“BF”位置。
4.瞳距调节5.屈光度调节：通过螺旋目镜屈光度调节环。
6. 通过粗微调对样本准确调焦。
选择所用物镜，10X，20X，40X。
相差观察时转动聚光镜转盘到“PH”位置。
相差只能用10X，20X物镜观察和摄影。
7. 调节光线强度：明场观察时，调节孔径光栏。
相差观察时，打开孔径光栏8. 观察。
荧光观察步骤：1.打开荧光供电装置开关，关掉显微镜主开关。
等大约10分钟后电弧稳定。
2.连接UV防护板3.把光路选择转盘和选择杆转到“眼睛”位置。
4.使相应的荧光激发滤色镜进入光路5.根据标本不同，选择U，B，G激发。
6.打开激发光光闸使光通过把所用物镜推入光路10X，20X，40X。
7.把标本放在载物台上，对标本进行调焦，如果荧光衰退快，请将激发光光闸推入光路使用1小时后关掉电源开关。
普通明场观察：1.打开明场电源开关（“︱”为开，“○”为关）2.将样品置于载物台上3.将光路选择旋钮调至观察位置4.从低倍镜开始观察，相差环拨到明场（BF）位置，荧光滤色块转盘拨到“1”的位置5.调节透射光光强，调焦，找到预观察视野6.依次换到高倍镜，观察样品7.拍照时将光路选择旋钮调至相机位置关机：1. 关闭汞灯电源（注意：汞灯需使用半小时以上方可关闭，关闭半小时以后方可再次开启）2. 将透射光强调到最小，透射光选择按钮按出3. 关闭明场电源开关4. 将镜头转到低倍镜，取出样品，若使用过油镜用干净的擦镜纸擦拭镜头5. 确认数据已经保存，关闭软件6. 使用光盘拷贝数据（禁止使用移动储存设备拷贝数据）7. 关闭电脑，登记使用时间、荧光数字等使用情况倒置IX71显微镜透射光明场观察步骤观察相差时，要使用与相差物镜放大倍数相匹配的相差环板。
倒置显微镜使用详解及注意事项
倒置显微镜使用详解及注意事项
1.开机
打开开关①、开关②、开关③显微镜及操作台④开电脑、软件
注：荧光电源需在使用荧光时开，开关间隔时间保持30min以上，相机电源在需要拍照时打开
2.制片放在载物台上，倒置
①用控制面板进行物镜选择，点击OBJ按钮，选择物镜倍数；
②点击CON按钮，选择观察通道：彩色制片选择
A：明场：任何倍数
需要用浮雕效果选择
Phl:4×
DICN1:10×、20×、40×
DICN2:60×油镜
注：荧光不需要选择油镜
3.荧光:打开荧光电源，点击控制面板选择荧光模式
打开荧光操作面板Open键，选择荧光强度
4.拍照:打开相机电源选择黑白或彩色相机拍照，保存为JPEG2000原始图像
5.关机:先关软件，电脑，再关硬件。
细胞生物学实验：倒置显微镜使用基本技术
倒置显微镜
目镜
物镜盘 光源旋钮 电源开关
载物台
粗调旋钮 微调旋钮
倒置显微镜组成和普
通显微镜一样，只不 过物镜与照明系统颠 倒，在载物台之下。 用于观察培养的活细 胞，具有相差物镜， 显示效果较好。
倒置显微镜使用前
1.插上电源线 2.入座，打开电源开关 3.旋开光源旋钮至合适亮度 4.调整目镜至合适瞳距
使用倒置显微镜的观察
1.将待观察细胞容器置于载物台正中 2.切换物镜至最低倍数，在目镜下观察
细胞 3.调节粗调旋钮，使焦距对准细胞 4.调节微调旋钮，达到最佳观测效果 .切换较高倍数的物镜以获得更好的放
大效果
倒置显微镜使用后
1.观察结束后，取下细胞容器 2.用酒精棉球擦拭载物台面 3.将物镜切换至最低倍数 4.将光源旋钮旋至最低 5.关闭显微镜开关 6.拔掉电源 7.写好仪器使用记录
倒置荧光显微镜使用方法(一)
倒置荧光显微镜使用方法(一)倒置荧光显微镜使用方法简介倒置荧光显微镜是一种常用于细胞、组织等生物样品观察的显微镜。
其特点是将物镜和光源的位置倒置，使得观察样品更加方便。
下面将介绍几种常见的倒置荧光显微镜使用方法。
方法一：样品准备1.在无菌条件下，将生物样品移植到培养皿或载玻片中。
2.样品可以是活细胞，也可以是固定的组织切片等。
3.如果需要染色，可以根据实验需求选择适当的荧光染料。
方法二：显微镜设置1.将倒置显微镜放在实验台上，并确保显微镜的稳定性。
2.打开显微镜电源，待显微镜系统启动后进行下一步操作。
3.调整光源，使得荧光光源均匀而明亮。
4.根据实验需求选择适当的滤光片，用于选择荧光发射波长。
方法三：样品装载1.将培养皿或载玻片放置在显微镜的样品台上。
2.使用目镜观察样品并调整焦距，确保样品清晰可见。
3.根据样品大小和形状进行显微镜调焦，以获得最佳的观察效果。
4.确保样品和显微镜的镜头之间没有空气或污染物，以避免影响观察结果。
方法四：荧光观察1.使用目镜观察样品后，可以使用显微镜的荧光通道进行观察。
2.打开荧光激发光源，调整光强度适当，避免过度曝光或低信号。
3.使用适当的荧光滤光片，选择要观察的荧光波长范围。
4.使用气体扩散器或其他方法降低样品温度，以减少荧光褪色和光损伤。
方法五：图像处理与分析1.使用相机或图像采集系统，记录荧光显微镜观察的图像。
2.可以使用图像处理软件进行曝光、对比度、亮度等调整，以优化图像质量。
3.利用图像分析软件进行细胞大小、数量、定量荧光信号等参数的测量和分析。
方法六：清洁与维护1.每次使用完成后，及时关闭荧光光源和显微镜电源。
2.用干净的纸巾或棉签轻轻擦拭显微镜的镜头和其他表面。
3.定期检查显微镜的各个部件，如镜头、滤光片、光源等，若有问题及时修理或更换。
以上是倒置荧光显微镜的使用方法，希望对您的实验有所帮助。
请根据实际需求进行调整和适配，并注意实验的安全性和准确性。
OLYMPUS_IX71倒置显微镜操作规程
OLYMPUS IX71倒置显微镜操作规程编写人：於锋时间一、目的正确使用倒置显微镜对细胞标本的形态特征进行观察，为生命科学的研究提供更多可靠的实验数据。
二、原理倒置显微镜系统（IX71系列）是在透镜成像原理基础上发展起来的显微观察系统，利用卤素灯为光源，光线经过聚光镜汇聚后透过标本，通过物镜对标本进行聚焦放大成像，最后通过目镜把物镜所成的像再次放大，从而使实验者能够清晰的分辨体外培养的细胞的形态以及内部结构，主要用于体外活细胞培养形态观察，根据实验需求配置了明场、暗场、相差、荧光等技术模块。
三、主要操作规程相差观察：1.打开主开关2.转动光路选择盘到“眼睛”位置。
3.装上观察样本。
使用10X物镜，将聚光镜转盘转到“BF”位置。
4.瞳距调节5.屈光度调节：通过螺旋目镜屈光度调节环。
6. 通过粗微调对样本准确调焦。
选择所用物镜，10X，20X，40X。
相差观察时转动聚光镜转盘到“PH”位置。
相差只能用10X，20X物镜观察和摄影。
7. 调节光线强度：明场观察时，调节孔径光栏。
相差观察时，打开孔径光栏8. 观察。
荧光观察步骤：打开荧光供电装置开关，关掉显微镜主开关。
等大约10分钟后电弧稳定。
连接UV防护板把光路选择转盘和选择杆转到“眼睛”位置。
使相应的荧光激发滤色镜进入光路根据标本不同，选择U，B，G激发。
打开激发光光闸使光通过把所用物镜推入光路10X，20X，40X。
把标本放在载物台上，对标本进行调焦，如果荧光衰退快，请将激发光光闸推入光路使用1小时后关掉电源开关。
普通明场观察：打开明场电源开关（“︱”为开，“○”为关）将样品置于载物台上将光路选择旋钮调至观察位置4.从低倍镜开始观察，相差环拨到明场（BF）位置，荧光滤色块转盘拨到“1”的位置5.调节透射光光强，调焦，找到预观察视野6.依次换到高倍镜，观察样品7.拍照时将光路选择旋钮调至相机位置关机：1. 关闭汞灯电源（注意：汞灯需使用半小时以上方可关闭，关闭半小时以后方可再次开启）2. 将透射光强调到最小，透射光选择按钮按出3. 关闭明场电源开关4. 将镜头转到低倍镜，取出样品，若使用过油镜用干净的擦镜纸擦拭镜头5. 确认数据已经保存，关闭软件6. 使用光盘拷贝数据（禁止使用移动储存设备拷贝数据）7. 关闭电脑，登记使用时间、荧光数字等使用情况倒置IX71显微镜透射光明场观察步骤观察相差时，要使用与相差物镜放大倍数相匹配的相差环板。
奥林巴斯相机说明书
奥林巴斯相机说明书篇一：Olympus 荧光显微镜操作手册奥林巴斯（Olympus）荧光显微镜操作手册Olympus BX51物镜：4 X 0.16 （无DIC）10 X 0.4020X 0.7540X 1.00 oil100X 1.40oil荧光滤色块转盘：1. WU 蓝2. WIB 绿（长通）3. WIBA 绿（带通）4. WIG 红5. CFP 青6. YFP 黄操作步骤：（注意：样品须在低倍镜下放置和取下）DIC 观察：1. 打开明场电源开关（“丨”为开，“O”为关）2. 将样品置于载物台上，用样品夹夹好3. 将起偏器、检偏器、DIC 棱镜推入光路，荧光滤块转盘拨到“ 1”位置，DIC 棱镜应与相应的物镜倍数相匹配6.7.8.9. 4. 先选用低倍物镜（“ 10 X”）5. 调节透射光的强度，调节焦距，找到视野6. 换到高倍镜头，观察样品7. DIC 观察时，光路选择拉杆拉到中间位置， 既可观察， 也可拍照 荧光观察：1. 打开明场电源开关2. 打开汞灯电源开关3. 将样品置于载物台上，用样品夹夹好4. 检偏器、 DIC 棱镜在光路外5. 将荧光光路shutter 打开（“O”为开，“•”为关）， 需保护样品时关闭 shutter光路选择拉杆推至最里边 根据样品的标记情况将荧光滤块转盘转到相应的位 通过两组减光滤片调节激发光强度 从低倍镜开始观察，调焦，找到预观察视野，10. 依次换到高倍镜头，观察样品11. 拍照时光路选择拉杆完全拉出 普通明场观察：1. 打开明场电源开关（“丨”为开，“O”为关）2. 将样品置于载物台上，用样品夹夹好3. 起偏器、检偏器、 DIC 棱镜在光路外，荧光滤块转盘拨到“1”位置，DIC棱镜拨到明场（BF）位置4. 先选用低倍物镜（“ 4X”）5. 调节透射光的强度，调节焦距，找到视野6. 依次换到高倍镜头，观察样品7. 光路选择拉杆拉到中间位置既可观察，也可拍照关机：1. 关闭汞灯电源（注意：汞灯需使用半小时以上方可关闭，关闭半小时以后方可再次开启）2. 将透射光调到最小，关闭明场电源开关3. 将镜头转到低倍镜，取出样品，若使用过油镜用干净的擦镜纸擦拭镜头4. 确认数据已经保存，关闭软件5. 使用光盘拷贝数据（禁止使用移动储存设备拷贝数据）6. 关闭电脑，登记使用时间、荧光数字等使用情况Olympus IX71物镜：物镜倍数相差环4 X 0.13 PHL10 X 0.30 PH120 X 0.45 PH140 X 0.60 PH260X 1.35 oil （无相差）荧光滤色块转盘：1. WU 蓝2. WIB 绿（长通）3. WIBA 绿（带通）4. WIGA 红5. CFP6. YFP操作步骤：相差观察：1. 打开明场电源开关（“丨”为开，“O”为关）2. 将样品置于载物台上3. 将光路选择旋钮调至观察位置4. 从低倍镜开始观察，调节到与镜头相匹配的相差环，荧光滤块转盘拨到“ 1 ”的位置5. 调节透射光光强，调节焦距，找到预观察视野6. 依次换到高倍镜，（注意调节相差环）观察样品7. 拍照时将光路选择旋钮调至相机位置荧光观察：1. 打开明场电源开关置5.6.7. 2. 打开汞灯开关3. 将样品置于载物台上4. 将荧光光路shutter 打开“O”为开，“•”为关），需保护样品时关闭 shutter5. 将光路选择旋钮调至观察位置6. 根据样品的标记情况将荧光滤块转盘转到相应的位7. 通过两组减光滤片调节激发光强度8. 从低倍镜开始观察，调焦，找到预观察视野，9. 依次换到高倍镜头，观察样品10. 拍照时将光路选择旋钮调至相机位置 普通明场观察：1. 打开明场电源开关（“丨”为开，“O”为关）2. 将样品置于载物台上3. 将光路选择旋钮调至观察位置4. 从低倍镜开始观察，相差环拨到明场（BF ）位置，荧光滤色块转盘拨到“ 1”的位调节透射光光强，调焦，找到预观察视野依次换到高倍镜，观察样品拍照时将光路选择旋钮调至相机位置关机：1. 关闭汞灯电源（注意：汞灯需使用半小时以上方可 关闭，关闭半小时以后方可再次开启）2. 将透射光强调到最小，透射光选择按钮按出3. 关闭明场电源开关4. 将镜头转到低倍镜，取出样品，若使用过油镜用干净的擦镜纸擦拭镜头5. 确认数据已经保存，关闭软件6. 使用光盘拷贝数据（禁止使用移动储存设备拷贝数据）7. 关闭电脑，登记使用时间、荧光数字等使用情况Olympus SZX16物镜：1X变倍：0.7~11.5荧光滤色块转盘：UV 蓝GFPHQ^RFP2 红操作步骤：明场观察：将样品置于载物台上推入光路选择拉杆，荧光滤块转盘拨到空位选择合适的光源冷光源观察使用不透明的底板（黑或白），打开环形光电源开关（“ 为开，“O”为关），调节光强度，找到预观察视野，调节变倍比，观察样品⑵ 底光源观察使用透明玻璃底板，打开底座电源开关（“丨”为开，“O” 为关），将LBD 滤片推入光路，调节反光镜方向、对比度和光强度，找到预观察视野，调节变倍比，观察样品4. 拍照时将光路选择拉杆拉出荧光观察：1. 将样品置于载物台上2. 一般选择黑色不透明底板3. 打开汞灯电源开关4. 荧光光路挡板推出1. 2. 3. ⑴篇二：OLYMPU在各国外使用总结经验及说明奥林巴斯XZ-1 tipsXZ-1from Jonathon DonahueHere's a grab bag of XZ-1 information... from my posts, and others, on Dpreview... and from other places. 这里是一个大杂烩的XZ-1 信息... 从我的帖子，和其他人，DPREVIEW ... 和其他地方。
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OLYMPUS IX71倒置显微镜操作规程
编写人：於锋时间
一、目的
正确使用倒置显微镜对细胞标本的形态特征进行观察，为生命科学的研究提供更多可靠的实验数据。
二、原理
倒置显微镜系统（IX71系列）是在透镜成像原理基础上发展起来的显微观察系统，利用卤素灯为光源，光线经过聚光镜汇聚后透过标本，通过物镜对标本进行聚焦放大成像，最后通过目镜把物镜所成的像再次放大，从而使实验者能够清晰的分辨体外培养的细胞的形态以及内部结构，主要用于体外活细胞培养形态观察，根据实验需求配置了明场、暗场、相差、荧光等技术模块。
三、主要操作规程
相差观察：
1.打开主开关
2.转动光路选择盘到“眼睛”位置。
3.装上观察样本。
使用10X物镜，将聚光镜转盘转到“BF”位置。
4.瞳距调节
5.屈光度调节：通过螺旋目镜屈光度调节环。
6. 通过粗微调对样本准确调焦。
选择所用物镜，10X，20X，40X。
相差观察时转动聚光镜转盘到“PH”位置。
相差只能用10X，20X物镜观察和摄影。
7. 调节光线强度：明场观察时，调节孔径光栏。
相差观察时，打开孔径光栏
8. 观察。
荧光观察步骤：
1.打开荧光供电装置开关，关掉显微镜主开关。
等大约10分钟后电弧稳定。
2.连接UV防护板
3.把光路选择转盘和选择杆转到“眼睛”位置。
4.使相应的荧光激发滤色镜进入光路
5.根据标本不同，选择U，B，G激发。
6.打开激发光光闸使光通过把所用物镜推入光路10X，20X，40X。
7.把标本放在载物台上，对标本进行调焦，如果荧光衰退快，请将激发光光闸推入光路
使用1小时后关掉电源开关。
普通明场观察：
1.打开明场电源开关（“︱”为开，“○”为关）
2.将样品置于载物台上
3.将光路选择旋钮调至观察位置
4.从低倍镜开始观察，相差环拨到明场（BF）位置，荧光滤色块转盘拨到“1”的位置
5.调节透射光光强，调焦，找到预观察视野
6.依次换到高倍镜，观察样品
7.拍照时将光路选择旋钮调至相机位置
关机：
1. 关闭汞灯电源（注意：汞灯需使用半小时以上方可关闭，关闭半小时以后方可再次开启）
2. 将透射光强调到最小，透射光选择按钮按出
3. 关闭明场电源开关
4. 将镜头转到低倍镜，取出样品，若使用过油镜用干净的擦镜纸擦拭镜头
5. 确认数据已经保存，关闭软件
6. 使用光盘拷贝数据（禁止使用移动储存设备拷贝数据）
7. 关闭电脑，登记使用时间、荧光数字等使用情况
倒置IX71显微镜透射光明场观察步骤
观察相差时，要使用与相差物镜放大倍数相匹配的相差环板。
相差元件（聚光镜内）PHL PH 1（PH C）PH 2
物镜4倍10倍、20倍40倍、60倍虚线框内第一次观察调整完成后不需要进行调整，除非更换相差光学元件。
倒置显微镜IX71荧光观察方法步骤
荧光观察应遵循先明场对标本定位，然后再转入荧光观察的顺序。