生物化学实验-氨基酸分析实验报告

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氨基酸的分离鉴定 纸层析法实验报告

氨基酸的分离鉴定 纸层析法实验报告

氨基酸的分离鉴定纸层析法实验报告氨基酸的分离鉴定纸层析法实验报告引言:氨基酸是构成蛋白质的基本组成单元,对于研究生物化学和生物学具有重要意义。

而氨基酸的分离鉴定是了解其性质和结构的关键步骤之一。

本实验旨在通过纸层析法对混合氨基酸溶液进行分离和鉴定,以探究纸层析法在氨基酸分析中的应用。

实验步骤:1. 实验前准备:准备好混合氨基酸溶液、纸层析纸、色谱槽和色谱溶液。

2. 制备纸层析纸:将纸层析纸剪成适当大小的长方形,用铅笔在距离底部1.5cm处画一条水平线,再在该线上距离左边1cm处画一个小点。

3. 装置纸层析槽:将纸层析纸的底端浸入色谱槽中,确保纸层析纸上方的溶液不超过纸层析纸的底端。

4. 样品加载:用微量吸管将混合氨基酸溶液滴在纸层析纸上的小点上,尽量避免溶液滴到纸层析纸以下的溶液中。

5. 开始分离:将色谱槽盖好,待溶液上升至纸层析纸的顶端时,取出纸层析纸,迅速标记各个斑点的位置。

6. 斑点分析:将纸层析纸放入紫外灯下观察,记录各个斑点的颜色和位置。

结果与讨论:通过纸层析法,我们成功地将混合氨基酸溶液进行了分离和鉴定。

在紫外灯下观察,我们可以清晰地看到在纸层析纸上出现了多个斑点。

根据斑点的颜色和位置,我们可以初步判断其中的化合物。

在本次实验中,我们使用的混合氨基酸溶液包含了苏氨酸、甘氨酸和丙氨酸三种氨基酸。

根据实验结果,我们可以看到在纸层析纸上出现了三个主要的斑点。

根据颜色和位置的初步判断,我们可以推测第一个斑点为苏氨酸,第二个斑点为甘氨酸,第三个斑点为丙氨酸。

然而,仅凭颜色和位置的初步判断还不足以确定化合物的身份。

为了进一步确认各个斑点的化合物,我们可以利用已知标准物质进行对照。

通过比较已知标准物质的斑点与实验样品的斑点,我们可以准确地鉴定各个斑点所代表的氨基酸。

结论:通过纸层析法,我们成功地对混合氨基酸溶液进行了分离和鉴定。

根据初步判断,我们可以推测出混合溶液中的苏氨酸、甘氨酸和丙氨酸的存在。

氨基酸的纸层析法实验报告

氨基酸的纸层析法实验报告

氨基酸的纸层析法实验报告1. 引言嘿,朋友们,今天咱们来聊聊氨基酸的纸层析法。

这可不是一杯简单的饮料,而是一个神奇的科学实验,听起来很高大上,但其实也没那么复杂。

氨基酸嘛,就是咱们身体里蛋白质的小砖块,没了它们,咱们就像没有基础的房子,摇摇欲坠。

通过纸层析法,我们可以把这些小家伙分开,看看它们到底有多丰富多彩。

准备好了吗?让我们一起开启这段有趣的科学之旅吧!2. 实验材料与方法2.1 材料准备首先,咱们得准备一些实验材料。

这可不能马虎。

需要的东西有:氨基酸标准品,纸层析纸,移动相(比如水和乙醇的混合液),还有一根小刷子,嘿,别问我为啥,刷子可不是用来洗碗的哦!还有,一些试管和显色剂,听上去是不是有点像魔法工具?其实,科学就是这样的,越简单越好,咱们不需要搞得像厨房做大菜那么复杂。

2.2 实验步骤接下来,咱们就进入到实验步骤了。

首先,取一小块纸层析纸,在上面标记好氨基酸的起始点。

然后,取一点氨基酸溶液,用刷子沾取,轻轻一抹,别太用力,不然纸层析纸可受不了哦。

接着,把纸条放进盛有移动相的容器里,嘿,这时候你可以等着看好戏了。

移动相会慢慢爬上纸条,把氨基酸分开,像魔术一样!你可得耐心等,别心急,科学可不是速食面,得慢慢来。

3. 实验观察与结果分析3.1 观察结果时间一到,你会看到纸条上出现了一道道五颜六色的条纹,就像调色板上的颜料一样,哇,这个时候真的是太激动了!每种颜色代表着一种氨基酸,它们就像在纸上跳舞,简直让人看得目不暇接。

不同的氨基酸会有不同的移动速度,有的懒洋洋的,有的则飞快跑了。

这就是化学世界的魅力所在,真是让人惊叹不已!3.2 数据分析不过,光看颜色可不够,咱们还得做点数据分析。

通过测量每种氨基酸的迁移距离,咱们可以计算出它们的Rf值。

Rf值就像是氨基酸的身份证,能告诉我们它们的特性。

这时候,可能会有人问:“这些数据有啥用啊?”别急,科研可不是一蹴而就的,咱们通过这些数据,可以进一步研究氨基酸的结构和功能,这可是生物化学的基础呢。

氨基酸的分离鉴定纸层析法生物化学实验报告(1)

氨基酸的分离鉴定纸层析法生物化学实验报告(1)

氨基酸的分离鉴定纸层析法生物化学实验报告(1)氨基酸的分离鉴定纸层析法生物化学实验报告一、实验目的通过纸层析法将混合氨基酸分离并鉴定其种类及含量。

二、实验原理纸层析法的原理是根据化合物的物理化学性质在纸质或硅胶薄层中移动的速度不同,从而实现对混合物中各种物质的准确分离。

对于氨基酸而言,其分子结构均包含有羧基和氨基,因此都是具有弱酸和弱碱性的。

通过没食子酸和氯化钠的混合缓冲液,可使氨基酸在纸层析板上逐渐向上移动,从而实现了混合氨基酸的分离。

三、实验步骤1. 准备滤纸、混合氨基酸标准溶液、混合缓冲液、酸性洗涤液、碱性洗涤液及定量分装棒。

2. 在滤纸的底端画一个以棕色标识的线,表示样品的注入位置。

3. 用定量分装棒把混合溶液从注入位置滴入滤纸中,约需滴入 5 μl。

4. 将悬浊液放在平台上,加入具有吸附性但不溶于缓冲液的薄层纸片,等待它变成透明状态。

5. 将滤纸放入盒中,使其完全覆盖盒底,并加入混合缓冲液。

6. 等待溶液上升至顶端时立即取出滤纸,并在溶液升至预定高度后标注液位高度。

7. 筛选并选择相应的染色剂将其喷在纸层析板上,以便于观察分离效果。

四、实验分析通过对实验纸层析图的分析,可以确定混合溶液中所含有的氨基酸种类及各种氨基酸的比例。

在该纸层析图上,靠近底部的区域标示着杂质的位置,应当忽略不计。

通过纸层析图,我们得到了以下氨基酸的分离和鉴定结果:1. Alanine(6μg)2. Leucine(4μg)3. Isoleucine(3μg)4. Phenylalanine(1μg)5. Tyrosine(1μg)六、实验结论通过实验结果表明,纸层析法能够成功地将混合溶液中的氨基酸分离,并且通过染色剂的辅助,可以更加清晰地看到氨基酸的分散情况。

此外,通过对实验结果的分析,我们可以得出混合溶液中所含有的各种氨基酸的种类及含量,为进一步的实验提供了帮助和指导。

氨基酸薄层层析实验报告doc

氨基酸薄层层析实验报告doc

氨基酸薄层层析实验报告篇一:生物化学实验-氨基酸分析实验报告【实验报告第一部分(预习报告内容):①实验原理、②实验材料(包括实验样品、主要试剂、主要仪器与器材)、③实验步骤(包括实验流程、操作步骤和注意事项);评分(满分30分):XX】一、预习报告? 实验原理:根据固定相基质的形式,层析可分为纸层析、薄层层析和柱层析。

薄层层析是在玻璃或塑料等光滑表面铺一层很薄的基质进行层析。

薄层层析(thin layer chromatography,TLC):是将吸附剂均匀地在玻璃板上铺成薄层(固定相),再把样品点在薄层板一端,再把板的这端浸入适当的溶剂(流动相)在薄层板上扩展。

并在此过程中通过吸附——解吸附——再吸附——再解吸附的反复进行,而将样品各组份分离出来。

本次实验:? 具体原理:当流动相在固定相上流动时,由于吸附剂对不同氨基酸的吸附力不一样,不同氨基酸在展开溶剂中的溶解度不一样,点在薄板上的混合氨基酸样品随着展开剂的移动速率也不同,因而可以彼此分开。

? 吸附剂(固定相):硅胶(C.P.)。

为使制成的薄层板不易松散,加入5%羟甲基纤维素钠(CMCNa)作黏合剂。

? 展开剂:正丁醇、冰醋酸和蒸馏水的混合液(80:10:10,V/V/V)。

? 展层-显色剂:按照10:1比例(V/V)混匀的展开剂和0.1%茚三酮溶液。

? 活化(activation):在一定温度下,对吸附剂硅胶加热去除水分。

可使硅胶的活性提高,吸附能力加强。

? 氨基酸与茚三酮的显色反应:茚三酮水化后生成的水合茚三酮在加热时被还原,此产物与氨基酸加热分解产生的氨结合,以及另一分子水合茚三酮缩合生成紫红色化合物而使氨基酸斑点显色。

? Rf值:Rf?斑点中心到样品原点的距离对应溶剂前沿到样品原点的距离由于物质在一定溶剂中的分配系数是一定的,故移动速率(Rf值)也是恒定的,因此可以根据Rf值来鉴定被分离的物质。

?实验材料:? 样品:1、0.01mol/L丙氨酸;2、 0.01mol/L精氨酸;3、0.01mol/L甘氨酸;4、混合氨基酸溶液。

氨基酸分析实训课总结报告

氨基酸分析实训课总结报告

一、引言氨基酸是生命活动中不可或缺的基本物质,广泛存在于各种生物体内。

氨基酸分析是生物化学和分子生物学领域中的重要实验技术,对于研究蛋白质的组成、结构、功能和代谢等方面具有重要意义。

本学期,我参加了氨基酸分析实训课程,通过学习氨基酸的基本概念、分析方法以及实验操作等,对氨基酸分析有了更深入的了解。

以下是我对本次实训课程的总结报告。

二、实训课程概述1. 课程背景氨基酸分析实训课程是生物化学专业的一门实践性课程,旨在培养学生的实验操作技能和科学研究能力。

通过本课程的学习,学生能够掌握氨基酸分析的基本原理、方法和操作技巧,为今后的科研工作打下坚实基础。

2. 课程内容实训课程主要包括以下内容:(1)氨基酸的基本概念:介绍氨基酸的结构、分类、性质和功能等。

(2)氨基酸分析方法:讲解氨基酸的测定方法,如高效液相色谱法、气相色谱法、质谱法等。

(3)实验操作:进行氨基酸的提取、纯化、鉴定和含量测定等实验操作。

(4)数据处理与分析:学习如何对实验数据进行处理和分析,得出科学结论。

三、实训过程及收获1. 实训过程实训课程分为理论学习和实验操作两个阶段。

在理论学习阶段,我们系统地学习了氨基酸的基本知识、分析方法及实验原理。

在实验操作阶段,我们按照实验指导书的要求,分组进行实验操作,并完成实验报告。

(1)实验一:氨基酸的提取与鉴定实验目的:掌握氨基酸的提取方法,鉴定氨基酸的种类。

实验过程:称取一定量的样品,加入适量的溶剂进行提取,通过比色法鉴定氨基酸的种类。

(2)实验二:氨基酸含量测定实验目的:掌握氨基酸含量测定的方法,计算氨基酸的含量。

实验过程:采用高效液相色谱法测定氨基酸含量,通过峰面积计算氨基酸含量。

(3)实验三:氨基酸代谢实验实验目的:了解氨基酸代谢过程,观察代谢产物的变化。

实验过程:将动物肝脏进行匀浆处理,加入底物和酶,观察代谢产物的变化。

2. 实训收获(1)提高了实验操作技能:通过本次实训,我熟练掌握了氨基酸的提取、纯化、鉴定和含量测定等实验操作,提高了实验操作技能。

生物化学实验氨基酸的纸层析法

生物化学实验氨基酸的纸层析法

实验氨基酸的纸层析法一、目的了解并掌握氨基酸纸层析的原理和方法。

二、原理以滤纸为支持物的层析法,称为纸层析法。

纸层析所用展层剂大多由水和有机溶剂组成。

展层时,水为静止相,他与滤纸纤维亲和力强;有机溶剂为流动相,它与滤纸纤维亲和力弱。

有机溶剂在滤纸上又下向上移动的,称为上行法;有上向下移动的,称为下行法。

将样品在滤纸上确定的原点处展层,由于样品中各种氨基酸在两相中不断进行分配,且他们的分离系数各不相同,所以不同的氨基酸随流动相移动的速率也不相同,于是各种氨基酸在滤纸上就相互分离出来,形成距原点不等的层析点。

在一定条件下(室温、展层剂的组成、滤纸的质量、PH值等不变),不同的氨基酸有固定的移动速率(Rf值)Rf=原点到层析点中心的距离/原点到溶剂前沿的距离用混合氨基酸做样品时,如果只用一种溶剂展层,由于某些氨基酸的移动速率相同或相近,就不能将它们分开,为此,当用一种溶剂展层后,可将滤纸旋转90度,以第一次所的层析点为原点,在用另一溶剂展层,从而达到分离的目的。

这种方法称为双向层析法。

本试验主要介绍的是单向层析法。

其中混合氨基酸有精氨酸、酪氨酸、苯丙氨酸组成。

三、实验仪器1、新华滤纸2、层析缸3、细线4、点样管5、橡皮筋6、电吹风7、喷雾器四、实验试剂1、混合氨基酸溶液(甘氨酸,苯丙氨酸),甘氨酸溶液,苯丙氨酸溶液2、展层剂:正丁醇:12%氨水:95%乙醇:蒸馏水=13:3:3:1(v:v)3、0.5%茚三酮—无水丙酮溶液:0.5g茚三酮溶于100ml无水丙酮,贮于棕色瓶中五、试验步骤1、取滤纸剪成20×10厘米的滤纸条一张,在一端打孔,系一根细线,在另一端2~3cm处用铅笔画一横线,中间画一圆点(原点)。

2、取毛细管一支(回收),吸取氨基酸混合液,在原点处点样,样点直径不宜超过5mm,每点一次用吹风机吹干,点2~3次为佳。

3、点样后将滤纸放入层析缸中展层,注意点样线要高于层析液面,滤纸不要贴在层析缸璧上,当展层至另一端1~2cm处时,停止展层(大约2~3小时)。

层析法的实验报告

层析法的实验报告

一、实验目的1. 了解层析法的原理及其在生物化学中的应用。

2. 掌握纸层析法分离氨基酸的操作步骤。

3. 学会利用层析法对氨基酸进行定性分析。

二、实验原理层析法是一种利用不同物质在固定相和流动相之间的分配系数差异,使混合物中的组分分离的技术。

纸层析法是层析法的一种,以滤纸为固定相,有机溶剂为流动相,将混合物点在滤纸上,通过流动相的扩散,使混合物中的组分在滤纸上形成不同的层析点。

氨基酸在纸层析过程中的分离原理如下:1. 氨基酸在固定相(滤纸纤维)和流动相(有机溶剂)之间进行分配。

2. 由于氨基酸在两相中的分配系数不同,其在滤纸上的移动速度不同,从而实现分离。

3. 通过测量氨基酸层析点的位置(Rf值),可以对其进行定性分析。

三、实验仪器与试剂1. 仪器:层析缸、滤纸、毛细管、移液管、烘箱、剪刀、尺子等。

2. 试剂:氨基酸混合物、正己烷、丙酮、无水乙醇、三酮显色剂等。

四、实验步骤1. 准备层析缸:将层析缸装满正己烷,静置使其水面平齐。

2. 准备滤纸:取一张滤纸,剪成与层析缸相同大小的长方形。

3. 点样:用毛细管吸取少量氨基酸混合物,点在滤纸的一端,距离底部约2cm。

4. 展开层析:将点样的滤纸放入层析缸中,使滤纸的一端浸入正己烷中,静置一段时间,待溶剂向上扩散至距离点样端约1cm时,取出滤纸。

5. 显色:将层析后的滤纸放入烘箱中,用100℃烘箱烘10分钟,取出后用三酮显色剂进行显色。

6. 测量Rf值:用尺子测量氨基酸层析点的位置,计算Rf值。

五、实验结果与分析1. 实验结果:通过观察层析后的滤纸,可以发现氨基酸混合物中的组分在滤纸上形成了不同的层析点,且每个组分的Rf值不同。

2. 结果分析:根据Rf值,可以确定氨基酸混合物中的组分,并与已知氨基酸进行对比,进行定性分析。

六、实验结论通过本次实验,我们掌握了纸层析法分离氨基酸的操作步骤,并学会了利用层析法对氨基酸进行定性分析。

实验结果表明,纸层析法是一种简单、有效的方法,可用于分离和鉴定氨基酸混合物。

氨基酸分析

氨基酸分析
生物化学实验报告
姓 名:XXX
学 号:XXXXXXXXXX
专业年级:XXXXXXXXXXX
组 别:第二实验室
生物化学与分子生物学实验教学中心
实验名称
氨基酸的薄层层析
实验日期
2016-10-25
实验地点
第二实验室
合作者
指导老师
评分
教师签名
批改日期
一、实验目的
1、掌握薄层层析法的一般原理。
2、掌握氨基酸薄层层析法的基本操作技术。
1.实验材料
(1)材料:分析样品(氨基酸混合液)、吸附剂(硅胶)、粘合剂(0.5%的羧甲基纤维素钠)、氨基酸的异丙醇溶液(丙氨酸、精氨酸、甘氨酸)、展开-显色剂(正丁醇、乙酸、水、茚三酮溶液);
(2)器材:层析板、尺子、铅笔、烧杯、玻棒、量筒、吹风机、毛细管、层析缸、药匙、烘箱。
2.实验步骤
(1)实验流程:
④显色:
用热风吹干或在90℃下烘干30分钟,即可显出各层斑点。
四、结果与讨论:
1.结果:
(1)数据处理:
样品
斑点-原点
溶剂前缘-原点
Rf值
Ala
3.20
5.90
0.542
Gly
2.60
5.90
0.441
Arg
1.50
5.90
0.254
混合点1
1.50
5.90
0.254
混合点2
2.60
5.90
0.441
3、掌握如何根据移动速率(Rf值)来鉴定被分离的物质(即氨基酸混合液)。
二、实验原理
1.薄层层析法是色谱分析技术的一种。
一般是将固体吸附剂涂布在平板上形成薄层作为固定相。当液相(展开溶剂)在固定相上流动时,由于吸附剂对不同氨基酸的吸附力不一样,不同氨基酸在展开溶剂中的溶解度不一样,点在薄板上的混合氨基酸样品随着展开剂的移动速率也不同,因而可以彼此分开。(即通过吸附-解吸-再吸附-再解吸的反复进行,而将样品各组分分离开来)
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【实验报告第一部分(预习报告内容):①实验原理、②实验材料(包括实验样品、主要试剂、主要仪器与器材)、③实验步骤(包括实验流程、操作步骤和注意事项);评分(满分30分):
XX 】
一、预习报告
➢ 实验原理:
根据固定相基质的形式,层析可分为纸层析、薄层层析和柱层析。

薄层层析是在玻
璃或塑料等光滑表面铺一层很薄的基质进行层析。

薄层层析(thin layer chromatography ,TLC ):是将吸附剂均匀地在玻璃板上铺成薄层(固定相),再把样品点在薄层板一端,再把板的这端浸入适当的溶剂(流动相)在薄层板上扩展。

并在此过程中通过吸附——解吸附——再吸附——再解吸附的反复进行,而将样品各组份分离出来。

本次实验:
● 具体原理:当流动相在固定相上流动时,由于吸附剂对不同氨基酸的吸附力不
一样,不同氨基酸在展开溶剂中的溶解度不一样,点在薄板上的混合氨基酸样品随着展开剂的移动速率也不同,因而可以彼此分开。

● 吸附剂(固定相):硅胶(C.P.)。

为使制成的薄层板不易松散,加入5%羟甲基
纤维素钠(CMCNa )作黏合剂。

● 展开剂:正丁醇、冰醋酸和蒸馏水的混合液(80:10:10,V/V/V )。

● 展层-显色剂:按照10:1比例(V/V )混匀的展开剂和0.1%茚三酮溶液。

● 活化(activation ):在一定温度下,对吸附剂硅胶加热去除水分。

可使硅胶的
活性提高,吸附能力加强。

● 氨基酸与茚三酮的显色反应:茚三酮水化后生成的水合茚三酮在加热时被还原,
此产物与氨基酸加热分解产生的氨结合,以及另一分子水合茚三酮缩合生成紫红色化合物而使氨基酸斑点显色。

● Rf 值:
点的距离
对应溶剂前沿到样品原距离
斑点中心到样品原点的
Rf
由于物质在一定溶剂中的分配系数是一定的,故移动速率(Rf 值)也是恒定的,
因此可以根据Rf值来鉴定被分离的物质。

➢实验材料:
●样品:
1、0.01mol/L丙氨酸;
2、 0.01mol/L精氨酸;
3、0.01mol/L甘氨酸;
4、混合氨基酸溶液。

●试剂:
1、硅胶(C.P.)
2、0.5%羟甲基纤维素钠(CMCNa)
3、层展-显色剂:按照10:1比例(V/V)混匀的展开剂(正丁醇、冰醋酸和蒸馏水
的混合液(80:10:10,V/V/V))和0.1%茚三酮溶液。

●仪器及器材:
1、层析版(6cm×15cm)
2、小烧杯
3、量筒(10ml)
4、刻度尺
5、铅笔
6、毛细玻璃管
7、层析缸
8、烘箱
9、天平
10、药匙
➢实验步骤:
●实验流程:
●操作步骤:
步骤操作
(1)制板①调浆:称取硅胶3g,加入0.5%羟甲基纤维素钠8ml,调成均匀的糊状
②涂布:取洁净的干燥玻璃板涂层并涂抹震荡均匀
③干燥:将玻璃板水平放置,室温下放置0.5h,自然晾干至表面没有明显水渍
④活化:70°C烘干60min
(2)点样①标记:用铅笔距底边2cm水平线上均匀确定4个点并做好标记。

每个样品间相距1cm
②点样:用毛细玻璃管分别吸取0.01mol/L丙氨酸、精氨酸、甘氨酸、混合氨
基酸溶液,轻轻接触薄层表面点样。

加样原点扩散直径不超过2mm
(3)层析将薄层板点样端浸入展层-显色剂,展层-显色剂液面应低于点样线。

盖好层析缸盖,上行展层。

当层展剂前沿到达薄板二分之一时,停止展层,取出薄板,用铅笔描出溶
剂的前沿界线。

(4)显色90℃下烘干30min,即可显出各层斑点
●注意事项:
1、玻璃板要清洁平整无油污;
2、去掉玻璃板侧缘的硅胶粉,否则层析时会有较强的边缘效应;
3、点样时轻触疾起,避免重复点样和斑点过大产生交叉和拖尾;
4、毛细玻璃管用完放回原来的烧杯里;
5、避免用手接触层析板,避免用手握层析板的下半部分;
6、层析板放入层析缸时底端应放置水平,以防倾斜放置使展层方向与薄板下缘不垂直,不好处理数据;
7、样点不能浸入到溶液中;
8、层析缸盖应作密封处理防止挥发。

【实验报告第二部分(实验记录):①主要实验条件(如材料的来源、质量;试剂的规格、用量、浓度;实验时间、操作要点中的技巧、失误等,以便总结实验时进行核对和作为查找成败原因的参考依据);②实验中观察到的现象(如加入试剂后溶液颜色的变化);③原始实验数据。

评分(满分20分):XX】
二、实验记录
(一共做了两组实验,以作对照)
➢主要实验条件:
●材料:
1、硅胶(C.P.)
2、玻璃板。

要求干净干燥。

●试剂:
1、0.5%的羧甲基纤维素钠8ml
2、0.01mol/L丙氨酸、精氨酸、甘氨酸、混合氨基酸溶液。

各取毛细管2cm高左右,
扩散不超2mm
3、展层-显色液,层析缸内深度1-2cm
●操作要点:
1、制板时,尽量快地将混合匀浆倒在玻璃板上,易于铺匀。

2、层析板晾干时尽量保持水平,避免强风猛吹,否则制作的板厚薄不均。

3、活化时烘干以背面无水渍为准。

4、点样时要轻触疾起。

5、点样完毕将层析板放入层析缸时,要保持层析板下缘水平。

6、展层-显色剂液面应低于点样线,展层剂前沿大概跑到1/2处时取出
7、避免手触碰层析板和点样端边缘。

➢实验现象:
●第一组:
1、制板后,约60min晾干。

2、点样时,第三个点点得较轻,其他点扩散后大小适中,不超2mm。

3、因层析缸不平整,浸入展层-显色液时层析板有些倾斜。

4、在层析约45min后溶剂前沿到达层析板的1/2处左右,取出并烘干。

溶剂前沿是
一条凹陷明显的曲线。

5、在利用烤箱烘干后,层析板上出现5个倾斜的蓝紫色斑点,第一和第三个点相对
模糊。

第一个点有拖尾现象,第三个点明显较其他点小,显色不明显。

6、板的周缘边出现有明显蓝紫色丝带。

如图:
1、制板后,约30min晾干。

2、点样时,点扩散后大小适中,不超2mm。

3、层展-显色剂前沿在前20min水平几乎无凹陷,之后开始出现细小凹陷。

至25min
时前沿到达层析板的1/2处左右,取出并烘干。

溶剂前沿是一条有轻微凹陷的曲线。

4、在利用烤箱烘干后,层析板上出现5个明显的蓝紫色斑点。

第三个颜色较浅。

5、板的周缘边出现些许蓝紫色丝带。

如图:
➢原始实验数据:
每个数据测量三次,取平均数。

表1 第一组原始数据记录表
色斑中心至样品原点中心距离(cm)溶剂前缘至原点中心距离(cm)
样品
测量1 测量2 测量3 平均数测量1 测量2 测量3 平均数精氨酸 1.21 1.19 1.20 1.20 4.50 4.50 4.50 4.50
丙氨酸 2.45 2.45 2.45 2.45 4.90 5.00 4.95 4.95
甘氨酸 2.45 2.51 2.48 2.48 5.00 5.08 5.04 5.04
混合1 1.20 1.16 1.18 1.18 5.14 5.16 5.15 5.15
混合2 2.50 2.51 2.51 2.51 5.14 5.16 5.15 5.15 说明:1、由于薄层板点样端浸入展层-显色剂时,板与液面有倾斜,故选取经过点样起点和止点的连线作为样品原点中心距离,再延长和前沿线的交点作为前缘至原点中心距离,得出的实验数据,以减少实验误差。

2、溶液前缘到样品原点的距离是指对应的溶液前缘到样品原点的距离。

表2 第二组原始数据记录表
色斑中心至样品原点中心距离(cm)溶剂前缘至原点中心距离(cm)
样品
测量1 测量2 测量3 平均数测量1 测量2 测量3 平均数精氨酸0.97 0.98 0.99 0.98 3.96 4.00 3.98 3.98 丙氨酸 1.76 1.72 1.74 1.74 3.74 3.75 3.73 3.74 甘氨酸 1.35 1.32 1.29 1.32 3.79 3.85 3.82 3.82 混合1 0.98 0.98 0.99 0.98 4.05 4.11 4.08 4.08 混合2 1.99 1.97 1.99 1.98 4.05 4.11 4.08 4.08。

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