酶切
实验六-酶切

五、利用限制性内切酶克隆
克隆PCR产物的方法之一,是在PCR产物两端设
计一定的限制酶切位点,经酶切后克隆至用相同 酶切的载体中。但实验证明,大多数限制酶对裸 露的酶切位点不能切断。必须在酶切位点旁边加 上一个至几个保护碱基,才能使所定的限制酶对 其识别位点进行有效切断。 酶切位点(内切酶的识别序列)要加在引物的 5‘端 具体为:5'-保护碱基+酶切位点+引物序列-3'
四、使用限制酶注意事项
当微量的污染物进入限制性内切酶贮存液中时,会影响其进
一步使用,因此在吸取限制性内切酶时,每次都要用新的吸 管头。如果采用两种限制性内切酶,必须要注意分别提供各 自的最适盐浓度。 若两者可用同一缓冲液,则可同时水解。 若需要不同的盐浓度,则低盐浓度的限制性内切酶必须首先 使用,随后调节盐浓度,再用高盐浓度的限制性内切酶水解。 也可在第一个酶切反应完成后,用等体积酚/氯仿抽提,加0.1 倍体积3mol/L NaAc和2倍体积无水乙醇,混匀后臵-70℃低温 冰箱30分钟,离心、干燥并重新溶于缓冲液后进行第二个酶 切反应。
割双链。但这几个核苷酸对则是任意的。
第二类内切酶
酶识别的专一核苷酸顺序最常见的是4个或6个核苷酸
识别顺序是一个回文对称顺序,即有一个中心对称轴
同尾酶;切割不同的DNA片段但产生相同的粘性末端的 一类限制性内切酶。
这一类的限制酶来源各异,识别的靶序列也不相同,但产生相
同的粘性末端。 由同尾酶产生的DNA片段,是能够通过其粘性末端之间的互补 作用彼此连接起来的。当把同尾酶切割的DNA片断与原来的限 制性内切酶切割的DNA片段连接后,原来的酶切位点将不存在, 不能被原来的限制性内切酶所识别。
酶切注意事项

酶切DNA酶切一般分为质粒直接酶切和PCR产物酶切。
DNA酶切及凝胶电泳一.DNA的限制性内切酶酶切分析限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上,并切割双链DNA。
它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰(甲基化)作用且依赖于ATP的存在。
Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA,而Ⅲ类酶在识别位点上切割DNA分子,然后从底物上解离。
Ⅱ类由两种酶组成: 一种为限制性内切核酸酶(限制酶),它切割某一特异的核苷酸序列; 另一种为独立的甲基化酶,它修饰同一识别序列。
Ⅱ类中的限制性内切酶在分子克隆中得到了广泛应用,它们是重组DNA的基础。
绝大多数Ⅱ类限制酶识别长度为4至6个核苷酸的回文对称特异核苷酸序列(如EcoRⅠ识别六个核苷酸序列:5'- G↓AATTC-3'),有少数酶识别更长的序列或简并序列。
Ⅱ类酶切割位点在识别序列中,有的在对称轴处切割,产生平末端的DNA片段(如SmaⅠ:5'-CCC ↓GGG-3');有的切割位点在对称轴一侧,产生带有单链突出末端的DNA片段称粘性未端, 如EcoRⅠ切割识别序列后产生两个互补的粘性末端。
5'…G↓AATTC…3' →5'… G AATTC…3'3'…CTTAA↑G …5' →3'… CTTAA G…5'DNA纯度、缓冲液、温度条件及限制性内切酶本身都会影响限制性内切酶的活性。
大部分限制性内切酶不受RNA或单链DNA 的影响。
当微量的污染物进入限制性内切酶贮存液中时,会影响其进一步使用,因此在吸取限制性内切酶时,每次都要用新的吸管头。
如果采用两种限制性内切酶,必须要注意分别提供各自的最适盐浓度。
若两者可用同一缓冲液,则可同时水解。
若需要不同的盐浓度,则低盐浓度的限制性内切酶必须首先使用,随后调节盐浓度,再用高盐浓度的限制性内切酶水解。
酶切验证的原理

酶切验证(Enzyme Digestion)是一种常用的分子生物学技术,用于确定DNA片段的长度、验证DNA克隆以及判断基因的存在与否。
该技术利用酶切酶(restriction enzyme)的特异性作用,将DNA分子切割成特定大小的片段,并通过其长度的分离和测定来验证特定的DNA序列。
酶切验证的基本原理是通过酶切酶的作用将DNA分子切割成特定的片段,然后将这些片段进行电泳分离和测定。
DNA双链由核苷酸组成,而酶切酶则能够识别并切割具有特定核酸序列的DNA链。
不同的酶切酶具有不同的核酸识别和切割特异性,因此可以生成不同大小的DNA片段。
酶切验证的步骤主要包括:酶切反应、电泳分离、染色可视化和测定片段长度四个步骤。
1.酶切反应:首先需要将要测试的DNA待测片段与适当的酶切酶一起在适当的缓冲液中反应。
酶切酶根据其切割特异性,在特定的核酸序列附近切割DNA 链。
具体而言,酶切酶识别并切割具有合适酶切位点的DNA序列,将双链DNA切割成两个特定的片段。
这样,一个长DNA片段可以被切割成多个短片段。
2.电泳分离:酶切反应完成后,需要将切割得到的DNA片段进行电泳分离。
电泳是一种基于DNA片段大小和电荷的分离技术。
在电泳过程中,DNA片段按照大小被推进电泳缓冲液中的琼脂糖凝胶(或者其他介质)的孔隙中。
由于琼脂糖凝胶的孔径大小和浓度不同,较短的DNA片段能够快速穿过凝胶,而较长的DNA片段则较慢。
3.染色可视化:完成电泳后,需要对DNA片段进行染色。
最常用的染色方法是亚甲基蓝染色,在电泳上渗透亚甲基蓝染色溶液。
亚甲基蓝能够与DNA分子相互作用,使DNA带上颜色。
通过染色,我们可以清晰地看到DNA分子在凝胶上的迁移情况。
4.测定片段长度:最后一步是测定DNA片段的长度。
我们使用已知长度的DNA分子作为标准,通过与标准品的片段长度的比较确定待测片段的长度。
标准品的片段长度是已知的,因此可以用来确定待测片段长度。
酶切验证的主要优势在于其简单、快速和可靠。
sumo酶切条件

sumo酶切条件
SUMO酶切条件可能会因酶的来源、底物和实验条件而有所不同,一般需要考虑以下几个因素:
1.酶与底物的比例:通常为1:100,即1μg酶对应
100μg底物。
2.酶切体系:通常包括融合蛋白1000μg、10x SUMO
Protease Buffer20μL、SUMO蛋白酶2μL和ddH2O (蒸馏水)定容至1000μL。
3.酶切条件:推荐在4℃下酶切过夜,用户可以根据
自己研究的目的蛋白进行摸索。
也可在25℃下酶切1h,SUMO标签的切割效率大于95%。
酶切是一项专业性较强的实验操作,需要根据实际情况进行调整和优化。
在进行酶切实验之前,建议仔细阅读酶的说明书和操作指南,严格按照实验步骤进行操作,以确保实验结果的准确性和可靠性。
酶切注意事项及问题

一、建立一个标准的酶切反应目前大多数研究者遵循一条规则,即10个单位的内切酶可以切割1μg不同来源和纯度的DNA。
通常,一个50μl的反应体系中,1μl的酶在1X NEBuffer终浓度及相应温度条件下反应1小时即可降解1μg已纯化好的DNA.如果加入更多的酶,则可相应缩短反应时间;如果减少酶的用量,对许多酶来说,相应延长反应时间(不超过16小时)也可完全反应.二、选择正确的酶不言而喻,选择的酶在底物DNA上必须至少有一个相应的识别位点。
识别碱基数目少的酶比碱基数目多的酶更频繁地切割底物.假设一个GC含量50%的DNA链,一个识别4个碱基的酶将平均在每44(256)个碱基中切割一次;而一个识别6个碱基的酶将平均在每46(4096)碱基切割一次.内切酶的产物可以是粘端的(3’或5’突出端),也可以是平端的片段。
粘端产物可以与相容的其它内切酶产物连接,而所有的平端产物都可以互相连接.相关信息参见目录的Compatible Cohesive Ends And Recleavable Blunt Ends一文。
三、酶内切酶一旦拿出冰箱后应当立即置于冰上.酶应当是最后一个被加入到反应体系中(在加入酶之前所有的其它反应物都应当已经加好并已预混合)。
酶的用量视在底物上的切割频率而定。
例如,超螺旋和包埋法切割的DNA通常需要超过1U/μg的酶才能被完全切割。
参见目录第244和264之"切割质粒DNA”和"包埋法切割DNA”。
四、 DNA待切割的DNA应当已去除酚、氯仿、乙醇、EDTA、去污剂或过多盐离子的污染,以免干扰酶的活性。
DNA的甲基化也应该是酶切要考虑到的因素。
关于甲基化的内容,参见第252页至253页之甲基化相关内容。
五、缓冲液对于每一种酶NEB都提供相应的最佳缓冲液,可保证几乎100%的酶活性.使用时的缓冲液浓度应为1X。
有的酶要求100μg/ml的BSA以实现最佳活性.在这种情况下,我们也相应提供100X的BSA(10mg/ml)。
酶切原理及步骤

酶切原理及步骤一、酶切原理1.酶切反应酶切反应是指使用酶作为催化剂,对底物进行切割或降解的反应。
在酶切反应中,酶的活性中心与底物特异性结合,通过催化作用将底物分解成小分子片段。
2.酶切位点酶切位点是指酶与底物特异性结合的部位。
不同的酶具有不同的酶切位点,通常由特定的氨基酸序列组成。
3.酶切动力学酶切动力学描述了酶切反应的速度和底物浓度之间的关系。
在一定条件下,当底物浓度高于某一阈值时,反应速度将达到最大值。
二、酶切步骤1.酶液准备在进行酶切实验前,需要准备适量的酶液。
根据实验需求选择合适的酶种类和浓度。
通常,酶液需要在冰箱中冷藏保存。
2.样品准备将待测样品进行预处理,以便与酶液混合后进行反应。
样品处理方法因实验而异,常见的处理方法包括细胞破碎、蛋白质提取等。
3.酶切反应设置将准备好的酶液和样品混合,加入适量的缓冲液(如pH 7.4的Tris-HCl缓冲液),设置反应温度和时间。
4.酶切反应温度和时间设置根据所选酶的活性要求和实验条件,设置适宜的反应温度和时间。
通常,适宜的反应温度为37℃,反应时间因底物种类和浓度而异。
5.反应终止和产物检测在反应结束后,需要终止反应并检测产物。
常用的终止方法包括加入酚/氯仿抽提、加热或加入抑蛋白剂。
产物检测方法因实验而异,常见的检测方法包括蛋白质印迹、电泳、光谱分析等。
三、酶切实验设计1.酶种选择2.根据实验需求选择合适的酶种类。
不同的酶具有不同的特异性,需要根据目标蛋白质序列选择具有相应酶切位点的酶。
同时还需要考虑所选酶的活性、稳定性和安全性。
3.实验条件优化在进行酶切实验前,需要对实验条件进行优化。
主要包括底物浓度、缓冲液pH值、离子强度、反应温度和时间等方面的优化。
通过调整实验条件可以提高产物的产量和质量。
4.产物检测方法选择根据实验需求选择合适的产物检测方法。
常用的检测方法包括蛋白质印迹、电泳、光谱分析等。
需要根据目标产物性质选择适宜的检测方法以便于后续分析。
酶切操作流程

酶切操作流程
酶切操作又称限制酶切,是一种基因工程技术中常用的方法。
步骤如下:
1. 选取所需的限制酶,它必须能够切割待处理DNA,而不会切割其他不需要处理的DNA。
2. 准备待处理的DNA,这通常是通过PCR扩增、酵母菌基因库、人类基因库等方法获得的。
3. 按照酶制造商提供的说明书,将选定的限制酶加入待处理DNA 中。
4. 在适当的温度下,将加有限制酶的DNA溶液放置一段时间,以便酶切反应进行。
5. 检查反应产物,可以通过凝胶电泳等方法来确定切割的效果。
6. 对反应得到的DNA进行处理,如将其连接到表达载体、进行基因重组、序列测定等。
酶切操作可以用于基因工程的多个方面,如构建质粒、检查基因突变、抽取DNA等。
它的操作简单、容易操作,已广泛用于基因工程领域。
酶切后没有条带的原因

酶切后没有条带的原因
酶切后没有条带可能有多种原因,包括但不限于以下几点:
1.PCR产物问题:如果PCR产物有问题,可能导致酶切后没有条带。
这可能由于引物设计不正确、
PCR程序设置的退火温度过高或样本提取过程中出现问题。
2.电泳问题:电泳操作可能出现问题,例如电泳时间过长导致DNA跑出胶,或者制胶时出现问题,
如忘记加EB等,或加EB时胶温度过高。
3.酶切条件问题:如果酶切条件掌握不当,例如酶的活性受到影响,可能导致质粒被切碎,从而在
电泳图上无法看到条带。
4.质粒问题:质粒本身可能存在问题,如质粒上酶切位点太多导致质粒被降解为小片段,电泳时跑
出去了或是太小难以从电泳图上显示出来。
此外,如果质粒上只有一种酶的酶切位点或是其中一种或两种酶失活,或两个酶的位点非常接近,也可能导致电泳图上无法看到条带。
5.凝胶浓度问题:如果凝胶浓度过大,可能使marker(相当于阳性对照)的大条带都跑不开,导致
电泳图上无法看到条带。
要确定具体原因,可能需要进行进一步的实验和调查。
例如,可以通过重新进行PCR或酶切实验,检查电泳和制胶过程,以及确认酶的活性和酶切条件等,来找到问题的根源。
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粘性末端;是交错切割,结果形成两条单链末端, 这种末端的核苷酸顺序是互补的,可形成氢键, 所以称为粘性末端。
如EcoRI的识别顺序为: 5’…… G’AA|TT_C ……3’
3’…… C_TT|AA’G …… 5’
垂直线表示中心对称轴,从两侧“读”核苷酸顺序都是 GAATTC 或 CTTAAG ,这就是回文顺序( palindrome )。 _ 和 ‘表示在双链上交错切割的位置,切割后生成 5’……G 和 AATTC……3’、3’……CTTAA和G……5’二个DNA片段,各有一 个单链末端,二条单链是互补的,其断裂的磷酸二酯键以 及氢键可通过DNA连接酶的作用而“粘合”。
(3)反应缓冲液
购买商品限制酶时,一般生物公司产 品手册均有各种酶最适放映缓冲液的资料 可查询。要注意其离子浓度、PH等.
(4)酶切温度及时间
大多数限制酶的反应温度为37℃,酶 切反应时间一般为1~1.5h。
(5)反应体积
(6)器材处理
酶切实验所用器材均需高压灭菌,实 验中用镊子夹取,放置手上杂酶污染。
(2) 酶切消化反应的温度
大多数常用反应温度为37℃,相当一 部分酶在反应温度升高时活力不稳定。如 EcoRⅠ,在 42 ℃就被灭活,而少数酶在高 于37℃市活力升高,例如SfiⅠ在50 ℃是酶 活力为37℃的5倍。另有一些酶需要在低于 37℃下反应,如SmaⅠ,最适反应温度在 25 ℃左右。
(3)反应体积
同尾酶:
有时两种酶切割序列不完全相同,但却能产 生相同的粘性末端,这类酶被称为同尾酶, 可以通过DNA连接酶将这类末端连接起来,但 原来的酶切位点将被破坏,有时可能会产生 一个新的酶切位点。如Xba1、Nhe1以及Spe1 切割的DNA序列不同,但均给出相同的“CTAG” 粘性末端。这些粘性末端连接后,以上的酶 将不能再切割,但却产生了一个新的4核苷酸 的酶切位点,即 Bfa1的酶切位点。
(7)终止反应
酶切后有3中方法终止反应:1)一般 65 ℃10~15min可灭活内切酶。2)加入 EDTA螯合限制辅助因子Mg2+终止反应。 注意:如果酶切反应后还要进行其他酶反 应(如连接酶等),不得使用EDTA终止反 应。3)用酚/氯仿抽提,乙醇沉淀,纯化酶 切产物。
6、内切酶实验注意事项
(1)限制酶 选用高质量的酶制剂,使之不含有外 切酶等杂酶活性。注意保持内切酶的活性, 将酶从低温冰箱中取出后应立即置于事先 准备好的冰浴中,用后立即放回低温冰箱。
(2)底物DNA
底物纯度要高,不能含有RNA,蛋白 质或含量极少,液不能含有过高的EDTA、 SDS等去污剂及过量的盐离子浓度,更不 能有酚、氯仿、乙醇等有机溶剂。
平头末端: II型酶切割方式的另一种是在同一位置 上切割双链,产生平头末端。例如EcoRV 的识别位置是: 5’…… GAT’|ATC …… 3’
3’…… CTA’|TAG …… 5’
切割后形成5’…… GAT和ATC …… 3’、 3’…… CTA和TAG …… 5’。这种末端同 样可以通过DNA连接酶连接起来。
1、寄主控制的限制与修饰现象 2、核酸限制性内切酶的类型及基本特性
3、 同裂酶和同尾酶
4、 核酸限制性内切酶的命名法
5、影响核酸限制性内切酶活性的因素
6、内切酶实验注意事项
1、寄主控制的限制与修饰现象
限制与修饰系统是细胞的一种防卫手段, 各种细菌都能合成一种或几种能够切割DNA 双链的核酸内切酶,它们以此来限制外源 DNA存在于自身细胞内,但合成这种酶的细 胞自身的DNA不受影响,因为这种细胞还合 成了一至两种修饰酶(甲基化酶) ,对自身 的DNA进行了修饰,限制性酶对修饰过的 DNA不能起作用。这种现象被称为寄主控制 的限制与修饰现象。
(5)反应时间
由于以商品提供的内切酶都是相对纯 的制剂,只是在所用检测条件下未显示杂 酶活力,并不是绝对不含其它杂酶,若反 应时间过长,有可能出现杂酶活力。因此, 在使用时要避免长时间的酶解反应,一般 可选择1~1.5h的时间,最长不要超过3h。
(6)DNA分子自身
酶单位规定为:在最适反应条件下 1h完全消化1μg λDNA的酶量为一个单位, 需注意的是酶单位数是以切割线性 DNA 为标准定出的,消化其它种类的 DNA则 应根据DNA分子的大小、形状等适当增 加或减少所需酶量。
II型
此型限制酶能识别专一的核苷酸顺序,并 在该顺序内的固定位置上切割双链。由于这类 限制性内切酶的识别和切割的核苷酸都是专一 的。因此,这种限制性内切酶是 DNA 重组技术 中最常用的工具酶之一。这种酶识别的专一核 苷酸顺序最常见的是4个或6个核苷酸,少数也 有识别5个核苷酸以及7个、8个、9个、10个和 11个核苷酸的。 II 型限制性内切酶的识别顺 序是一个二重对称的回文序列。这种酶的切割 可以有两种方式:
III型
III型限制性内切酶也有专一的识别顺
序,但不是对称的回文顺序,在识别顺序旁 边几个核苷酸对的固定位置上切割双链。 但这几个核苷酸对不是特异性的。因此, 这种限制性内切酶切割后产生的一定长度 DNA片段,具有各种单链末端。因此不能应 用于基因克隆。
内切酶以双链DNA做底物,需要镁离子做辅 助因子,有特异的识别序列,但不同的酶也有许 多差别,见下表 I型
切割位点 非特定,识 别序列前后 100~1000bp 范围内 有 ATP、SAM 大 小
II型
特定,识别 序列中或近 处 无
III型
特定,识别 序列3’端 25~27bp处 有 ATP 大
甲基化作用 辅助因子 分子量
3、 同裂酶和同尾酶
同裂酶:
有时两种限制性内切酶的识别核苷酸顺序 和切割位置都相同,有时其差别只在于当 识别顺序中有甲基化的核苷酸时,一种限 制性内切酶可以切割,另一种则不能。例 如HpaⅡ和MspⅠ的识别顺序都是 5’……G’CG_G……3’,如果其中有5’-甲基胞 嘧啶,则只有HpaⅡ能够切割。这些有相同 切点的酶称为同裂酶(同切酶或异源同工 酶)。
DNA的酶切鉴定
唐利
医学实验中心
实验目的和要求
1、学习和掌握限制性内切酶的特性及 酶切原理 2、熟悉限制性内切酶实验的注意事项 3、了解限制性内切酶是DNA重组技术 的关键工具。
相关基础知识
限制性核酸内切酶:是一类能识 别 双 链 DNA 分 子 特 异 性 核 酸 序 列 的 DNA 水解酶。是体外剪切基因片段的 重要工具,所以常常与核酸聚合酶、 连接酶以及末端修饰酶等一起称为工 具酶。限制性核酸内切酶不仅是 DNA 重组中重要的工具,而且还可以用于 基因组酶切图谱的鉴定。
例如流感嗜血杆菌中3个酶的命名:
酶的来源 Haemophilus 属名 酶的名称 influenzae 种名 Hind Ⅰ HindⅡ HindⅢ d 株系 特异性甲基化酶 ↓ GTPy PuAC ↓ A AGCTT
பைடு நூலகம்
5、影响核酸限制性内切酶活性的 因素
(1)DNA的纯度及 DNA的甲基化程 度
DNA甲基化、附有蛋白质或高分子 量DNA胶体溶液太黏稠均会降低内切酶 的、消化效率。
酶反应体积一般不宜小于20l,因为过 小的反应体积在加入各种成分时易产生误 差,甘油含量易超过5%,会抑制内切酶活 性。在37 ℃保温可因水分蒸发而明显改变 反应体系中各成分的浓度,从而影响酶活 力。但反应体积过大,酶浓度变小,底物 浓度太低,同时要考虑反应完毕进行电泳 时,所加样品中DNA的量能够在电泳中显 出清晰的谱带。
2、限制性核酸内切酶的类型及特 性
按限制酶的组成、与修饰酶活性关系以及切 断核酸的情况不同,分为三类:
Ⅰ型 Ⅱ型* Ⅲ型
I型
该限制性内切酶能识别专一的核苷酸 顺序,并在识别点附近的一些核苷酸上切 割DNA分子中的双链,但是切割的核苷酸 顺序没有专一性,是随机的。这类限制性 内切酶在DNA重组技术或基因工程中用处 不大,无法用于分析DNA结构或克隆基因。 这类酶如EcoB、EcoK等。
(4)缓冲液中离子浓度
不同的限制酶多缓冲液中盐浓度的要 求各不相同。一般配置高、中、低3中缓冲 液用于限制酶反应。用两种酶消化DNA, 若各种酶所需盐浓度相同时,消化可同时 进行;若需要的盐浓度不同,则必须先用 低盐浓度的限制酶消化完成后,再调整到 高盐缓冲系统,加入需高盐浓度的内切酶 继续消化。
4、限制性核酸内切酶的命名法
用属名的头一个大写字母和种名的头两个 小写字母表示寄主菌的物种名称,如E. coli 用Eco表示,所以用斜体字。 用一个字母代表菌株或型,如流感嗜血菌 Rd菌株用d,即Hind。
如果一种特殊的寄主菌株,具有几个不同 的限制与修饰体,则以罗马数字表示,如 HindⅠ, HindⅡ,HindⅢ等。