粗多糖测定方法的比较
两种测定杂色云芝胞外多糖方法的比较

云芝 ( oo ̄ vri l )l Cn l es oo S 称彩绒 革 盖菌 、 色云芝 、 绒菌 、 c r  ̄ 杂 彩 瓦菌 , 属担 子菌 亚 门, 纲 , 菌 隶 层菌 非褶
目( 多孔菌 目) , 多孔菌科 、 栓菌属. 该菌主要为药用, 去湿化痰效果, 有 可治疗肺病和慢性支气管炎 、 迁延 性或慢性肝炎, 还可作为肝癌患者的免疫治疗药物[1 1. - 云芝 的主要活性成分是云芝多糖。 云芝菌丝体 3 从 和发酵液中提取 的多糖均具有极强烈的抑制癌细胞活性. 云芝多糖功效显著。 药用价值高. 可做为各类 药品、 保健品、 功能性食品的原料闻 . 将云芝多糖开发为天然药物免疫促进剂和调节剂, 于其他疾病 应用 的防制方 面具有 更广 阔 的应用 前景 .
w r a r d o t a d w lo i v sia e e a v n a e a d d s d a t g f h s w t o s T e r s l h w d e e c r e u , n e a s n e t t d t d a t g n ia v na e o e e t o me h d . i g h t h eut s o e s
收 稿 日期 :09 1— 1 2 0 — 2 2 基 金 项 目 : 南 科技 学 院高 层 次 人 才 科 研启 动项 目(0 7 0 ) 河 20 20
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21 0 0丘
河南科 技 学 院学报 ( 自然科 学版 )
测量多糖含量 的方法主要有碱性酒石酸铜滴定法、 比色法, 即蒽酮硫酸法和苯酚硫酸法【】 5. -一般来 7 说, 比色法的灵敏度较高, 且样品用量少. 苯酚硫酸法和蒽酮硫酸 比色法是常用的两种测定多糖含量的方 法. 为此, 本文运用两种方法来测定液体发酵杂色云芝菌的胞外多糖含量, 通过一系列实验考察两种测定 方法的优缺点 以便为云芝多糖乃至各种食用菌多糖等的测定提供参考和借鉴意义.
多糖含量的测定方法

多糖含量的测定方法有多种,以下列举其中几种常用的方法: 1. 酚硫酸法:将样品与酚硫酸反应生成稳定的紫色化合物,通过测定紫色化合物的吸光度来确定多糖含量。
2. 蒽酮-硫酸法:样品经热水溶解后,乙醇沉淀,除去其他可溶性糖及杂质的干扰,用热水溶解沉淀物并稀释定容。
此法操作简便,测定速度快,可用于多糖的实时快速测定和定性分析。
3. 刚果红显色法:在一定条件下,刚果红显色剂能与乙酰甘露聚糖生成有色复合物,而不与麦芽糖糊精、蔗糖和葡萄糖等发生明显的显色反应。
由此可以建立定量分析芦荟多糖含量的刚果红显色分光光度法。
此外,还有其他方法如色谱法、光谱法等也可以用于多糖含量的测定。
具体使用哪种方法需要根据实验目的、样品性质和实验条件等因素进行选择。
不同品种鹿鞭多糖含量比较及性质分析_李峰

社, 1997: 2232- 2234. [ 3] 国家药典委员会. 中华人民共和国药典 # 1 部 [ S] . 2005: 28. [ 4] 谭仁祥. 植物成分分析 [ S] . 北京: 科学出版社, 2002: 555 - 610. [ 5] 付志红, 谢 明勇, 聂 少平, 等. 不 同品 种 车前 子中 多糖 含量 比较
8. 02
1. 63
9# 马鹿 ( 内蒙古赤峰马鹿场, 干燥品 )
6. 47
1. 47
500mL 圆底烧瓶中, 加水 200m L, 回流提取 2 次, 每次 11 5h, 合 并两 次 水 提液 减 压 浓 缩 至 100mL, 加 氯 仿 100mL 萃取 3次, 取上层清液加无水乙醇使含醇量达 到 80% , 于 4e 冰箱沉淀过夜, 抽滤, 沉淀用少量丙酮 洗涤 4~ 5次, 得到沉淀, 干燥, 即得到马鹿鞭、花鹿鞭 粗多糖。 21 2 样品中鹿鞭多糖含量的测定 ¹ 对照品溶液的 配制备: 精密称取无水葡萄糖对照品 100mg, 置 100mL 量瓶中, 加水溶解并 稀释至刻度, 摇匀, 即得 ( 每毫升 含无水葡萄糖 1. 001m g) 。º 标准曲线的制备: 精密吸
人参和西洋参、丹参、白芷、牛蒡子、苍术、甘草、薄公 英、苦地胆、麦冬等几十味药材进行了鉴别。本文用此 方法对中药降香及易混淆品山油柑进行了成功鉴别。 该种方法科技含量高, 操作简单, 易学, 省时, 最重要的 是其检测结果直观、清晰, 可作为中药鉴别的方法。 参考文献 [ 1] 中国医学科学院药用植物资源开发研究所. 中药志 ( 第 5册 ) [M ] .
食用菌中粗多糖的测定

食用菌中粗多糖的测定苯酚硫酸法作业指导书本作业指导书主要依据NY/T 1676-2008 《食用菌中粗多糖含量的测定》标准而制定作业指导书。
1 范围本标准规定了食用菌粗多糖的比色测定法。
本标准适用于各种干、鲜食用菌产品中粗多糖及食用菌制品中粗多糖含量的测定,不适用于添加淀粉、糊精组分的食用菌产品,以及食用菌液体发酵或固体发酵产品。
2 原理多糖在硫酸作用下,先水解成单糖,并迅速脱水生成糖醛衍生物,与苯酚反应生成橙黄色溶液,在490nm处有特征吸收,与标准系列比较定量。
3 试剂和材料除非另有说明,在分析中仅使用确认为分析纯的试剂和符合GB/T 6682的蒸馏水。
3.1 试剂3.1.1 浓硫酸(H2SO4)。
3.1.2 无水乙醇(C2H6O)。
3.1.3 苯酚(C6H6O),重蒸馏。
3.1.4 80%乙醇。
3.1.5 葡萄糖(C6H12O6),使用前应于105℃恒温烘干至恒重。
3.1.6 80%苯酚溶液:称取80g苯酚(3.1.3)于100ml烧杯中,加水溶解,定容至100ml后转至棕色瓶中,至4℃冰箱中保存。
3.1.7 5%苯酚:吸取5ml苯酚溶液(3.1.6),溶于75ml水中,混匀,现配现用。
3.1.8 100mg/L标准葡萄糖溶液:称取0.1000g葡萄糖于100ml烧杯中,加水溶解,定容至1000ml,至4℃冰箱中保存。
4 仪器和设备4.1 可见分光光度计4.2 分析天平:感量0.001g。
4.3 超声提取器。
4.4 离心机5 分析步骤5.1 样品称取称取样品0.5g,精确到0.001g,置于50ml具塞离心管中。
5.2 单糖去除缓慢加入80%乙醇,同时用涡旋仪振摇,使混合均匀,置超声提取器中超声提取30min。
4000r/min离心10min,弃去上清液,保留沉淀。
5.3 样品中有无淀粉、糊精弃去上清液转移10ml至试管中,加入1滴碘溶液,振荡混合,观察是否有淀粉或糊精与碘溶液反应后呈蓝色或红色。
阿胶口服液中粗多糖含量测定方法的研究

阿胶口服液中粗多糖含量测定方法的研究刘春霖ꎬ吴晓云ꎬ谢强胜ꎬ高天阳ꎬ董蓬(山东省食品药品检验研究院ꎬ山东省食品药品安全检测工程技术研究中心ꎬ山东济南250101)摘要:目的㊀建立苯酚-硫酸法测定阿胶口服液中粗多糖的含量ꎮ方法㊀采用沉淀蛋白质法使相对分子质量大于10000的高分子物质与阿胶分离ꎬ80%(V/V)乙醇溶液沉淀粗多糖ꎬ比色法测定ꎮ结果㊀葡聚糖含量在10.8~172.8μg范围内ꎬ线性关系良好ꎮ加标回收率在97.1%~100.1%ꎬ精密度RSD为0.11%ꎬ重复性RSD为1.4%ꎮ结论㊀本方法简便准确可靠ꎬ可用于阿胶口服液中粗多糖含量的测定ꎮ关键词:阿胶口服液ꎻ粗多糖ꎻ含量测定中图分类号:R927.2㊀文献标识码:A㊀文章编号:2095-5375(2020)07-0390-004doi:10.13506/j.cnki.jpr.2020.07.005StudyonthedeterminationmethodsofpolysaccharidecontentinDonkey-hideGelatinOralSolutionLIUChunlinꎬWUXiaoyunꎬXIEQiangshengꎬGAOTianyangꎬDONGPeng(ShandongResearchCenterofEngineeringandTechnologyforSafetyInspectionofFoodandDrugꎬShandongInstituteforFoodandDrugControlꎬJinan250101ꎬChina)Abstract:Objective㊀Toestablishthephenol-sulfuricacidmethodforthedeterminationofpolysaccharidecontentinDonkey-hideGelatinOralSolution.Methods㊀Macromolecularmaterialwithrelativemolecularweightgreaterthan10000wereseparatedfromdonkey-hidegelatinbyprecipitationproteinmethod.Thepolysaccharidewasprecipitatedby80%(V/V)ethanolsolutionanddeterminedbycolorimetry.Results㊀Theglucanshowedagoodlinearrelationshipatarangeof10.8~172.8μg.Theaveragerecoveryrateswerebetween97.1%~100.1%.TheprecisionRSDandrepeatabilityRSDwere0.11%ꎬ1.4%respectively.Conclusion㊀ThismethodwassimpleꎬaccurateandreliableꎬandcanbeusedtodeterminationpolysaccharidecontentinDonkey-hideGelatinOralSolution.Keywords:Donkey-hideGelatinOralSolutionꎻPolysaccharideꎻDetermination㊀㊀阿胶为马科动物驴(EquusasinmL.)的干燥皮或鲜皮经煎煮㊁浓缩制成的固体胶ꎮ它是我国传统的名贵补血中药ꎬ具有补血滋阴ꎬ润燥ꎬ止血ꎬ增强体质ꎬ增强免疫力等功效[1-3]ꎮ本次研究的阿胶口服液是以阿胶为主要原料ꎬ添加熟地黄㊁党参㊁枸杞子㊁黄芪等中药材ꎬ经提取㊁浓缩㊁配制㊁灌装等主要工艺制成的产品ꎬ具有增强免疫力的保健功能ꎮ上述添加的中药材均含有多糖类成分ꎬ文献研究报道具有免疫调节㊁抗氧化㊁抗疲劳的作用[4-8]ꎮ近年来ꎬ很多学者对不同中药材的粗多糖含量进行了研究[9-10]ꎬ但是针对阿胶口服液中粗多糖的研究还比较少ꎮ本研究采用沉淀蛋白质等前处理方法ꎬ使样品中相对分子质量大于10000的高分子物质与阿胶分离ꎬ然后在体积分数80%乙醇溶液中沉淀ꎬ与水溶液中单糖和低聚糖分离ꎬ用苯酚-硫酸反应ꎬ其呈色强度与溶液中糖的浓度成正比ꎬ在485nm波长下比色测定粗多糖(以葡聚糖计)含量ꎮ1㊀仪器与试药1.1㊀仪器㊀MettlerToledoMs十万分之一电子天平(德国梅特勒公司)ꎻ恒温水浴锅(上海树立仪器仪表有限公司)ꎻTDZ5-WS离心机(长沙湘仪离心机仪器有限公司)ꎻXK96-B涡旋混合器(姜堰市新康医疗器械有限公司)ꎻTU-1901紫外分光光度计(北京普析通用公司)ꎮ㊀作者简介:刘春霖ꎬ男ꎬ主管药师ꎬ研究方向:保健食品㊁化妆品检验ꎬE-mail:chunlin0320@126.com㊀通信作者:董蓬ꎬ女ꎬ副主任药师ꎬ研究方向:保健食品质量控制ꎬTel:130****3937ꎬE-mail:138****6847@163.com1.2㊀试剂试药㊀乙酸锌㊁亚铁氰化钾㊁苯酚㊁无水乙醇㊁浓硫酸ꎬ分析纯ꎻ水为去离子水ꎻ乙酸锌溶液:称取乙酸锌[Zn(CH3COO)2 2H2O]21.9gꎬ加冰乙酸3mLꎬ加水溶解并稀释至100mLꎻ亚铁氰化钾溶液:称取亚铁氰化钾{K4[Fe(CN)6] 3H2O}10.6gꎬ加水溶解并稀释至100mLꎻ80%(V/V)乙醇溶液:20mL水中加入无水乙醇80mLꎬ混匀ꎻ苯酚溶液(50g L-1):称取精制苯酚5.0gꎬ加水溶解并稀释至100mLꎬ混匀ꎬ备用ꎮ葡聚糖标准品:相对分子量500000ꎬ批号:BCBN7863Vꎬ购自Sigma公司ꎮ葡聚糖标准储备液:准确称取干燥至恒重的葡聚糖对照品0.5gꎬ加水溶解ꎬ并定容至50mLꎬ混匀ꎬ置冰箱中保存ꎮ此溶液1mL含葡聚糖10mgꎮ葡聚糖标准使用液:吸取葡聚糖标准储备液1.00mLꎬ置100mL容量瓶中ꎬ加水至刻度ꎬ混匀ꎬ置冰箱中保存ꎮ此溶液1mL含葡聚糖100μgꎮ阿胶:某阿胶制品公司提供ꎬ和样品来源为同一家公司ꎮ样品:某阿胶制品公司提供ꎬ3批编号分别为1㊁2㊁3ꎮ2 方法与结果2.1㊀标准曲线系列溶液制备㊀精密吸取葡聚糖标准使用液0 00㊁0 10㊁0.20㊁0.40㊁0.60㊁0.80㊁1.00㊁1.20㊁1.40㊁1.60mL(相当于葡聚糖0㊁10㊁20㊁40㊁60㊁80㊁100㊁120㊁140㊁160μg)ꎬ分别置于25mL比色管中ꎬ准确加水补充至2.0mLꎬ加入50g L-1苯酚溶液1.0mLꎬ在旋转混合器上混匀ꎬ小心加入浓硫酸10.0mLꎬ于旋转混合器上小心混匀ꎬ置沸水浴中煮沸2minꎬ冷却后用分光光度计在485nm波长处ꎬ以试剂空白为试验参比ꎬ1cm比色皿测定吸光度值ꎮ以葡聚糖浓度(μg)为横坐标ꎬ吸光度值为纵坐标ꎬ绘制标准曲线ꎮ2.2㊀样品溶液的制备2.2.1㊀试样沉淀蛋白质处理㊀取混合均匀的试样15mLꎬ置250mL容量瓶中ꎬ加水50mLꎬ缓慢加入乙酸锌溶液5mL和亚铁氰化钾溶液5mLꎬ加水至刻度ꎬ混匀ꎬ静置30minꎬ用干燥滤纸过滤ꎬ取续滤液备用ꎮ2.2.2㊀沉淀粗多糖㊀准确吸取上一步滤液5mLꎬ置于50mL离心管中ꎬ加入无水乙醇20mLꎬ混匀ꎬ置4ħ冰箱中冷藏过夜ꎬ以4000rpm离心30minꎬ弃去上清液ꎬ残渣用体积分数80%乙醇溶液数毫升洗涤ꎬ以4000rpm离心15minꎬ离心后弃上清液ꎬ反复操作2次ꎬ残渣用水溶解并定容至25mLꎬ混匀ꎬ此溶液为样品测定液ꎮ2.2.3㊀样品测定㊀分别吸取2.0mL样品测定液置25mL比色管中ꎬ加入50g L-1苯酚溶液1.0mLꎬ混匀ꎬ加入浓硫酸10.0mLꎬ混匀ꎬ密塞ꎬ沸水浴加热2minꎬ立即冷却至室温得待测溶液ꎮ在485nm波长处测定吸光度值ꎮ从标准曲线上查出葡聚糖的质量ꎬ计算ꎬ即得样品粗多糖含量ꎮ2.3㊀标准曲线回归方程线性范围㊀取标准曲线系列溶液进仪器测定ꎬ结果表明葡聚糖的标准溶液在10.8~172.8μg范围内具有良好的线性关系ꎬ相关系数为0.9999ꎬ结果见表1ꎮ表1 线性试验结果线性范围/μg线性回归方程相关系数r10.8~172.8Y=0.00416X-0.010720.99992.4㊀取样量考察㊀分别量取同一批号的样品5㊁10㊁15㊁25mL各2份ꎬ按上述样品溶液的制备方法制得待测溶液ꎬ测得葡聚糖含量分别为244.6㊁253 1㊁285.7㊁280.9mg (100mL)-1ꎬ结果表明取样量为15mL时蛋白质沉淀完全ꎬ粗多糖沉淀量适当ꎬ样品溶液吸光度值在标准曲线中段ꎬ所以确定15mL为取样量ꎮ2.5㊀重复性考察㊀精密量取同一批号混合均匀的样品6份ꎬ按上述方法制得待测溶液ꎬ比色测定后计算葡聚糖含量ꎬ结果6份样品葡聚糖含量的RSD为1.4%ꎬ表明该方法重复性良好ꎮ2.6㊀精密度考察㊀取制得的待测溶液ꎬ按上述方法连续测定6次吸光度ꎬ利用标准曲线计算葡聚糖含量ꎬ结果6次葡聚糖含量的RSD为0.11%ꎬ表明该方法精密度良好ꎮ2.7㊀稳定性考察㊀取制得的待测溶液ꎬ按上述方法分别于比色后0㊁1㊁2㊁4h测定吸光度ꎬ结果4次葡聚糖含量的RSD为0.96%ꎬ表明比色后供试品溶液在室温条件下4h内稳定ꎮ2.8㊀回收率考察㊀精密量取同一批号混合均匀的样品9份ꎬ分为3组浓度ꎬ每组浓度3份样品ꎬ每组分别精密称取葡聚糖对照品约18㊁22.5㊁27mgꎬ置250mL容量瓶中ꎬ分别精密加入混匀的试样7.5mLꎬ依法制备加标样品ꎮ按上述方法进行测定ꎬ结果平均回收率在97.1%~100.1%ꎬ表明该方法回收率好ꎬ结果见表2ꎮ2.9㊀方法检出限㊀参照GB/T5009.1-2003«食品卫生检验方法理化部分总则»中附录A.2.2规定ꎬ检出限为3倍空白值的标准偏差(测定次数nȡ20)相对应的质量ꎬ吸光法按国际理论与应用化学家联合(IUPAC)规定ꎮ检出限按下式进行计算:检出限=Ks/bꎻb-标准曲线回归方程中的斜率ꎻs-20次空白值的标准偏差ꎻK-一般为3ꎬ结果见表3ꎮ表2㊀回收率试验结果(n=3)回收水平回收率(%)平均回收率(%)RSD(%)低浓度98.9797.11.696.1496.30中浓度99.0697.61.795.7598.09高浓度101.00100.12.097.75101.52表3㊀检出限试验结果试验次数吸光度试验次数吸光度标准偏差s3s斜率b检出限/μg10.003110.0020.001630.004890.004161.220.004120.00330.007130.00240.004140.00250.002150.00260.005160.00270.005170.00080.001180.00290.002190.002100.001200.0022.10㊀样品测定2.10.1㊀沉淀蛋白质方法㊀精密量取3批混合均匀的样品15mLꎬ按上述方法进行测定ꎬ计算葡聚糖含量ꎬ结果见表4ꎮ表4㊀沉淀蛋白质方法样品测定结果样品编号含量/mg (100mL)-1平均含量/mg (100mL)-11245.56247.2248.902266.71265.0263.373254.46252.8251.122.10.2㊀未沉淀蛋白质方法㊀按样品企业标准规定的检测方法ꎬ精密量取3批混合均匀的样品5mLꎬ置于100mL容量瓶中ꎬ加水80mL左右ꎬ于沸水浴上加热2hꎬ冷却至室温后补加水至100mL刻度ꎬ混匀ꎬ过滤ꎬ弃去初滤液ꎬ收集续滤液供沉淀粗多糖ꎮ沉淀粗多糖及样品测定等步骤均同 2.2 项下方法ꎬ结果见表5ꎮ㊀㊀由表4~5可知ꎬ未沉淀蛋白质方法比沉淀蛋白质方法测得的葡聚糖含量高约106mg (100mL)-1ꎬ结果差异较大ꎮ为找到结果差异的原因ꎬ我们做了以下方面的研究ꎮ表5㊀未沉淀蛋白质方法样品测定结果样品编号含量/mg (100mL)-1平均含量/mg (100mL)-11346.78350.8354.802380.18376.2372.163361.48356.8352.122.11㊀含阿胶阴性空白对照溶液测定及比较㊀根据企业提供33kg阿胶制成20000支口服液(20mL/支)的配方量ꎬ计算得口服液中阿胶浓度为82.5mg mL-1ꎮ为得到和样品相同阿胶含量的阴性空白对照ꎬ本研究取阿胶ꎬ粉碎ꎬ过筛ꎬ精密称定8.25gꎬ置100mL量瓶中ꎬ加水80mLꎬ水浴煮沸溶解ꎬ冷却ꎬ加水ꎬ定容至刻度ꎬ4000r min-1ꎬ离心20minꎬ取上清液备用ꎮ2.11.1㊀含阿胶沉淀蛋白质阴性空白溶液的制备㊀精密量取上述上清液15mLꎬ按 2.2 项下方法制得样品测定液ꎮ2.11.2㊀含阿胶未沉淀蛋白质阴性空白溶液的制备㊀精密量取上述上清液5mLꎬ按 2.10.2 项下方法制得样品测定液ꎮ将上述两种样品测定液按 2.2.3 项下方法进行测定ꎬ计算葡聚糖含量ꎬ结果见表6ꎮ表6㊀含阿胶阴性空白对照溶液测定结果编号含量/mg (100mL)-1平均含量/mg (100mL)-1Ⅰ9.508.98.39Ⅱ100.9299.698.25㊀注:Ⅰ:阿胶溶液沉淀蛋白质阴性空白ꎻⅡ:阿胶溶液未沉淀蛋白质阴性空白㊀㊀由表6可知ꎬ阿胶中的蛋白质对粗多糖测定干扰显著ꎬ未沉淀蛋白质的样品溶液比沉淀蛋白质的样品溶液测定结果高约91mg (100mL)-1ꎬ这与表4~5两种方法测定结果差值约106mg (100mL)-1相吻合ꎬ验证了本研究采用的沉淀蛋白质前处理方法ꎬ能够有效去除阿胶口服液中蛋白质对粗多糖测定的严重干扰ꎮ3 讨论3.1㊀本研究中阿胶口服液企业标准规定的粗多糖检测方法有提取步骤ꎬ该操作是针对固体样品的ꎬ且长时间沸水浴可能引起糖结构变化ꎬ甚至使碳键断裂而导致所测多糖含量偏低ꎮ阿胶口服液是均匀澄清的液体ꎬ经验证本法采用沉淀蛋白质的前处理可有效避免上述问题ꎬ且能够有效去除蛋白质带来的测定干扰ꎮ3.2㊀比色法测定多糖并非特异性反应ꎬ出现测定结果平行偏差较大ꎬ所以试验中沉淀㊁洗涤㊁弃上清液㊁样液的转移等操作都要严谨ꎬ实际操作时可增加平行样的测定[11]ꎮ参考文献:[1]㊀国家药典委员会.中华人民共和国药典2015年版(一部)[S].北京:中国医药科技出版社ꎬ2015:189-190. 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阿胶粗多糖脱蛋白方法比较及抑制酪氨酸酶活性研究

阿胶粗多糖脱蛋白方法比较及抑制酪氨酸酶活性研究阿胶是一种传统的中药材,具有滋补养生的功效。
阿胶中的蛋白质含量较高,影响了其药效的发挥。
研究阿胶蛋白质的去除方法以及对酪氨酸酶活性的影响,具有重要意义。
阿胶粗多糖的脱蛋白方法有很多种,常用的方法主要包括纯物理方法、化学方法和酶解方法。
纯物理方法主要是通过高压、超声波、离心等手段破坏蛋白质的结构,使其沉淀下来。
化学方法则是利用酸碱或有机溶剂等对蛋白质进行沉淀。
酶解方法则是通过添加蛋白酶将蛋白质降解为小肽或氨基酸。
这些方法各有优缺点,选择合适的方法需要根据具体情况来确定。
在研究抑制阿胶中的酪氨酸酶活性时,可以使用体外试验或体内试验。
体外试验一般是将阿胶提取物与酪氨酸酶酶液一起孵育,然后测定酶活性的变化。
常用的测定方法有紫外吸收法、荧光法和色谱法等。
体内试验则是通过动物模型,将阿胶提取物灌胃给小鼠或大鼠,然后检测其体内酪氨酸酶活性的变化。
这些试验可以评估阿胶对酪氨酸酶的抑制作用。
研究表明,阿胶中的多糖成分具有一定的抑制酪氨酸酶活性的能力。
粗多糖的抑制作用强于精制多糖。
粗多糖中含有较多的小分子多糖和蛋白质,这些成分可能参与到了抑制酪氨酸酶活性的过程中。
多糖的结构和含量也对其抑制作用起到一定影响。
多糖抑制酪氨酸酶的作用机制可能与物理阻碍和竞争性抑制有关。
阿胶粗多糖的脱蛋白方法和阻断酪氨酸酶活性的研究对于阿胶药效的发挥具有重要意义。
科学地选择合适的脱蛋白方法可以有效去除阿胶中的蛋白质。
阿胶中的多糖成分对酪氨酸酶具有一定的抑制作用,这也为阿胶的进一步开发利用提供了基础。
目前的研究还较为有限,对多糖的抑制机制和实际应用还需要进一步的探索和研究。
对多糖测定方法的探讨

时 间内将其水 解成 寡糖 和单糖 , 当粗 多糖 的分子 量较 大 但
时, 水解是 很难控 制 的。 比如 对香 菇粗 多糖 ( 分子 量 5 0, 0 0 0~10 0, 0 的完 全水解 就需要 4 H I 2 2 O 0 ,0 0 ) 0 M C 或 M H S
于 10 0 ℃作用 3 6 时 。因此如果 用葡萄糖 做标准 曲线 , — 小
由重 复 的二 糖 结 构 单 元 组 成 的 带 有 负 电荷 的长 链 大 分
子 。 作为蛋 白聚糖 的一 部 分 , 泛 存 在于 脊椎 动 物组 织 广
的细胞外基 质 中。常见 的 G G有透 明质酸 ( A)硫 酸软 A H 、
准糖 制作标 准 曲线 后 , 通 过 多糖 的显 色 反 应 测 定 吸 光 再
据提供 了有力保 证 。
糖胺 聚糖 ( A 是 多 糖 中 的 重 要 的组 成 , G G) 它是 一类
Hale Waihona Puke 硫 酸法是 用得较多 的方法 , 酚 一硫 酸试剂 可 与游离 的寡 苯 糖、 多糖 中 的己糖 、 醛酸起显 色反 应 , 糖 己糖在 4 0 m处有 9n 最大 吸收值 , 收值 与糖含 量呈线 性关 系 。此 法 是先 用标 吸
骨素( s 、 c )硫酸皮肤素( s 、 D ) 硫酸角质素( e S 和肝 K p— ) 素( e ) H p 6种。研究表明: 糖胺聚糖具有许多方面的生物
活性 , 多数无 毒 , 比较 理想 的药 物 。比如 : 素具 有抗 凝 是 肝 血 作用 , 渗析 和体外血循 环 中起 到防止血 液凝 固 的作 在血 用 , 可防止血 栓生成 。硫酸软 骨 素具有 特殊 的免 疫抑 制 还 作用 , 可防止 动脉 粥状 硬化 , 在临 床 上用 于 治疗 风 湿 还 并 痛、 关节炎 、 经痛 及腰 痛 有 较好 效 果 。透 明质 酸可 增 加 神
多糖提取——精选推荐

传统的海带多糖的提取方法包括:热水提取法、酶提取法、碱提取法,度是而这些提取方法都存在一定的缺陷。
热水提取的方法采用的温70^-80'}C耗能多,提取时间长.工业生产需要使用的酶量大,不经济。
酶提取的方法提取的时间长,碱提取法是现在工业提取海带多糖的主要方法,但是碱提取方法会造成多糖生物活性的降低。
因此寻找合适的提取方法来降低能耗,提高海带多糖的提取率以及活性变得越来越重要。
为达到这一目的,我们现采用超声波方法来提取海带多糖,随后对其理化性质和生物学活性进行检侧,并与传统方法进行比较,以期得到海带多糖提取的最佳方法。
配制1%的碳酸钠溶液:称取15g无水碳酸钠加入1500mL水称取制备好的200g海带粉,置于不锈钢桶中,加入配好的碳酸钠溶液2. 8L,在50℃水浴5h,趁热用棉纶网进行吊滤,并不断用热冲洗保持温度,获得的吊滤液于5000r/min离心15min,保留上清液。
按体积比平均分成两份,一份上清液经减压浓缩(40 ℃)后,加入三倍体积95%乙醇,沉淀过夜。
离心后获得海带粗多糖 E.另一份上清液中加入氛化钙( 2g/1OOmL),静置,5000r/min离心去除揭藻酸钙。
上清液经减压浓缩(40 ℃)后,加入三倍体积95%乙醉,沉淀过夜.离心后获得海带硫酸多糖F.将以上所得沉淀E, F各重新溶于水,离心除去不溶物。
上清液再加三倍体积95%乙醇,静置沉淀.生成沉淀经无水乙醇、乙醚洗涤,重新溶于蒸馏水,置于一20℃冰箱冷冻过夜,冷冻干燥得到海带杂多糖E,以及海带硫酸多糖粗品F1可溶性大豆多糖是一种从大豆中提取的多糖类化合物,主要由膳食纤维组成,而膳食纤维对治疗高血压、高血脂、心血管疾病和肥胖病等具有积极作用[1-3]。
可溶性大豆多糖还具有分散稳定性、乳化性,所以常用于酸性饮料中[4-5]。
其属于酸性多糖,结构类似于果胶,多数类型由半乳糖、阿拉伯糖、半乳糖醛酸,也包括鼠李糖、海藻糖、木糖、葡萄糖等。
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一)苯酚法测定可溶性糖【实验原理】植物体内的可溶性糖主要是指能溶于水及乙醇的单糖和寡聚糖。
苯酚法测定可溶性糖的原理是:糖在浓硫酸作用下,脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛能与苯酚缩合成一种橙红色化合物,在10-100mg范围内其颜色深浅与糖的含量成正比,且在485nm波长下有最大吸收峰,故可用比色法在此波长下测定。
苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的测定,方法简单,灵敏度高,实验时基本不受蛋白质存在的影响,并且产生的颜色稳定160min以上。
【实验仪器及试剂】1.仪器:分光光度计、电炉、铝锅、20mL刻度试管、刻度吸管、记号笔、吸水纸适量。
2.试剂:(1)90%苯酚溶液:称取90g苯酚(AR),加蒸馏水10mL溶解,在室温下可保存数月。
(2)9%苯酚溶液:取3mL 90%苯酚溶液,加蒸馏水至30mL,现配现用。
(3)浓硫酸(比重1.84)。
(4)1%蔗糖标准液:将分析纯蔗糖在80℃下烘至恒重,精确称取1.000g。
加少量水溶解,移入100mL容量瓶中,加入0.5mL浓硫酸,用蒸馏水定容至刻度。
(5)100ug/L蔗糖标准液:精确吸取1%蔗糖标准液1mL加入100mL容量瓶中,加水定容。
【实验步骤】1.标准曲线的制作:取20mL刻度试管11支,从0-10分别编号,按表27-1加入溶液和水,然后按顺序向试管内加入1mL 9%苯酚溶液,摇匀,再从管液正面以5-20s。
加入5 mL浓硫酸,摇匀。
比色液总体积为8 mL,在恒温下放置30min。
显色。
然后以空白为参比,在485nm波长下比色测定,以糖含量为横坐标,光密度为纵坐标,绘制标准曲线,求出标准直线方程。
2.可溶性糖的提取取新鲜植物叶片,擦净表面污物,剪碎混匀,称取0.10-0.30g,共3份,分别放入3支刻度试管中,加入5-10mL 蒸馏水,塑料薄膜封口,于沸水中提取30min(提取2次),提取液过滤入25mL容量瓶中,反复冲洗试管及残渣,定容至刻度。
3.测定吸取0.5mL样品液于试管中(重复2次),加蒸馏水1.5mL,同制作标准曲线的步骤,按顺序分别加入苯酚、浓硫酸溶液,显色并测定光密度。
由标准线性方程求出糖的量,按下式计算测试样品中糖含量。
式中:C一标准方程求得糖量(ug)α一吸取样品液体积(mL)V-提取液量(mL)n一稀释倍数W一组织重量(g)可溶性糖含量(%)=从标准曲线查得糖的量(μg)×提取液体积(ml)×稀释倍数/[测定用样品液的体积(ml)×样品重量(g)×106]×100粗多糖的检验方法1、方法原理粗多糖在硫酸的作用下,水解成单糖,并迅速脱水生成糖醛衍生物,与苯酚缩合成有色化合物,用分光光度法测定样品在粗多糖含量。
2、主要设备和仪器设备721型分光光度计(上海第三分析仪器厂)试剂葡萄糖标准液:精确称取105℃干燥恒重的标准葡萄糖0.1000g,置100mL容量瓶中加热蒸馏水溶解稀释至刻度,其浓度为1.0mg/mL,用稀释成浓度为0.1mg/mLd的标准工作液。
5%苯酚溶液:取苯酚100g,沙浴蒸馏,收集180℃-182℃溜分,称取此馏分5g,用水溶解后,定容至100mL棕色容量瓶中备用(现用现配)。
3、测定步骤3.1、最大吸收波长的选择精密吸取0.04mg/mL无水葡萄糖溶1.0 mL,置10mL具塞试管中,加入蒸馏水使体积为2.0mL,再加苯酚试液1.0mL,摇匀,迅速滴加浓硫酸5.0mL,摇匀后放置5min,置沸水浴中加热15min,取出后冷却至室温。
以蒸馏水代替糖溶液如加上法配制空白。
用721分光光度计在470-510nm测定吸光度,测定最大吸收波长为490±nm。
3.2、标准曲线的绘制精密吸收浓度为0.1mg/mL的葡萄糖标准标准工作液0、0.20、0.30、0.40、0.60、0.80mL,分别置于10mL具塞试管中,各加蒸馏水使体积为2.0mL,再加苯酚试液1.0mL,摇匀,迅速滴加浓硫酸5.0 mL,摇匀后放置5min,置沸水浴中加热15min,取出后冷却至室温。
以蒸馏水代替糖溶液如上法配制空白。
用721分光光度计,1cm比色皿,在490nm处测定吸光度,绘制葡萄糖浓度-吸光度工作曲线。
结果浓度在0.010-0.04mg/mL范围内与吸光度呈现性关系。
回归方程Y=7.52×10-3X+1.13×10-3, Y=0.9997(n=6)。
3.3、含量测定3.31、多糖的提取与精制取300mL,用氟仿多次萃取,以除去蛋白质,加活性炭1%脱色,抽滤,滤液加入95%乙醇,使含醇量达80%,静置过夜。
过滤,残渣用无水乙醇、丙酮、乙醚多次洗涤,真空干燥,即得粗多糖。
3.32、供试液的配制精密称取粗多糖粉末0.2000g,置于50mL容量瓶中,定容,摇匀,即得供试品溶液。
3.33、样品含量测定精密度吸取供试品溶液2.0mL,按“标准曲线绘制”项下方法分别测定吸光度。
结果计算:多糖含量(%)=(C·D)/V×100式中:C-供试液葡萄糖浓度(mg/mL);D-代试液的稀释因素;V-供试液体积(mL)。
粗多糖测定方法的研究摘要:应用硫酸-苯酚比色法测食品中的粗多糖的含量而且分别用葡萄糖做标准品和用葡聚糖做标准品。
结果表明前者测的结果稍偏高,大约高于4.8﹪。
此方法简便快捷,准确度高,重现性好,可适用于各种粗多糖的测定。
关健词:枸杞多糖;灵芝多糖;分光光度法;由十个以上单糖通过糖苷键连接而成的碳水化合物称为“多糖”。
它一般都是天然高分子化合物。
多糖包括活性多糖和膳食纤维两大类。
活性多糖专指具有某种特殊生物活性的多糖化合物,如真菌多糖、植物多糖和壳聚糖等。
这些多糖具有复杂的、多方面的生理活性和功能,如:免疫调节功能;抗肿瘤作用;延缓衰老作用;降血脂、抗血栓作用等功能[1-2],因而越来越引起人们的关注。
多糖的测定方法目前还没有国家规定的方法,文献报道的方法基本上是苯酚-硫酸法和蒽酮-硫酸法,在作标准曲线大部分都是用葡萄糖来做标准品,而不是用葡聚糖(MW500,000),因为葡聚糖标准品在国内难于获得且价格昂贵。
但是根据国内外大量研究资料表明:香菇、金针菇、云芝、冬草、夏草、灵芝、茯苓、猪苓中所含的具有增强免疫、抑制肿瘤、镇静、强心、消炎等生理活性的水溶性多糖均由β(1—3)或β(1—6)糖苷键连接葡聚糖构成主链和支链,有的甚至就是β-葡聚糖,那么用葡萄糖作标准品和用葡聚糖作标准品去测食品中的多糖含量时是否有差别且差别为多少,本文以枸杞多糖和灵芝多糖来进行上述实验。
1.材料与方法1.1供试材料枸杞多糖由深圳思味特科技有限公司提供(多糖含量在40-60﹪,其含量由国家检测部门检测);灵芝多糖由深圳思味特科技有限公司提供(多糖含量在40-60﹪,其含量由国家检测部门检测);葡聚糖(MW500,000) sigma公司;1.2试剂(1)铜储备液:称取0.3gCuSO45H2O,3g柠檬酸钠,加水溶解并稀释至100ml,混匀,备用。
(2)铜试剂溶液:取铜储备液50ml,加水50ml,混匀后加入固体无水硫酸钠12.5g并使其溶解。
临用新配。
(3)洗涤剂:取水50ml,加入10ml铜试剂溶液,10ml氢氧化钠溶液,混匀。
(4)乙醇溶液(80﹪):20ml水中加入无水乙醇80ml,混匀。
(5)氢氧化钠溶液(10﹪):称取lOg氢氧化钠,加水溶解并稀释至100ml,加入固体无水硫酸钠至饱和,备用。
(6)硫酸溶液:取10ml浓硫酸加入到80ml左右水中,混匀,冷却后稀释至100ml。
(7)苯酚溶液(5﹪):取苯酚100g,油浴蒸馏,收集180℃-182℃馏分。
称取精制苯酚5.0g,加入溶解并稀释至100ml,混匀,溶液置冰箱中可保存一个月。
(8)葡萄糖/葡聚糖标准储备溶液:精密称取在1050C于燥至恒重的葡萄糖/葡聚糖标准品1.0080g,加水溶解,并定容至100ml,混匀,置冰箱中保存。
此溶液每ml含10.080mg葡萄糖/葡聚糖。
(9)葡萄糖/葡聚糖标准使用溶液:吸取葡萄糖/葡聚糖标准储备溶液2.00ml,置于100ml容量瓶中,加水至刻度,混匀,置冰箱中保存。
1.3仪器752C紫外分光光度计离心机旋转混匀器1.4实验方法1.4.1 葡萄糖标准曲线制备精密吸取葡萄糖标准使用溶液0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0,(相当于葡萄糖0,0.04032,0.08064,0.12096,0.16128,0.2016mg)分别置于25ml比色管中,准确补充水至2.0ml,加入苯酚溶液2.0ml,在旋转混匀器上混匀,小心加入浓硫酸10ml,于旋转混匀器小心混匀,置沸水浴中煮沸15min,冷却后用分光光度计在490nm波长处以试剂空白溶液为参比,1cm比色皿测定吸光度值。
具体结果见表1。
表1 葡萄糖标准与浓度的关系__________________________________________________________________标准液(ml) 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0浓度(mg/ml) 0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.10吸光度(A) 0 0.166 0.343 0.514 0.690 0.882___________________________________________________________________ 以葡萄糖质量为横坐标,吸光度值为纵坐标,绘标准曲线(图1)。
图1 标准回归曲线方程图其回归方程Y=4.4122X-0.0147,相关系数r=0.9996。
1.4.2 葡聚糖标准曲线制备精密吸取葡聚糖标准使用溶液0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0,(相当于葡聚糖0,0.02,0.04,0.06,0.08,0.10mg)分别置于25ml比色管中,准确补充水至2.0ml,加入苯酚溶液2.0ml,在旋转混匀器上混匀,小心加入浓硫酸10ml,于旋转混匀器小心混匀,置沸水浴中煮沸15min,冷却后用分光光度计在485nm波长处以试剂空白溶液为参比,1cm比色皿测定吸光度值。
具体结果见表2。
表2 葡聚糖标准与浓度的关系_____________________________________________________________________ _标准液(ml) 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0浓度(mg/ml) 0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1吸光度(A) 0 0.083 0.171 0.256 0.352 0.456__________________________________________________________________以葡聚糖质量为横坐标,吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线(见图2)。