低温胁迫对建兰叶片内源多胺含量的影响
外源ABA对低温胁迫下蝴蝶兰叶片生理指标的影响
外源ABA对低温胁迫下蝴蝶兰叶片生理指标的影响田丹青;葛亚英;刘晓静;潘刚敏;沈晓岚;潘晓韵;郁永明【期刊名称】《浙江农业学报》【年(卷),期】2013(025)001【摘要】为研究脱落酸(ABA)对蝴蝶兰抗寒性的影响,以蝴蝶兰中苗为试材,叶面喷施50 mg· L-1脱落酸(ABA)1 d后,于6℃低温胁迫4d,以清水喷施为对照,在低温处理0,1,2,3和4d后测定叶片相对电导率、丙二醛(MDA)含量、脯氨酸(Pro)含量、过氧化氢酶(CAT)和超氧化物歧化酶(SOD)活性.结果表明:喷施ABA可以延缓蝴蝶兰叶片的相对电导率和MDA含量的上升,减少Pro的累积量,提高CAT和SOD的活性.说明喷施ABA提高了蝴蝶兰叶片的抗氧化酶活性,减少了膜脂过氧化产物的积累,降低了细胞膜透性,从而减轻了低温胁迫的伤害.【总页数】5页(P68-72)【作者】田丹青;葛亚英;刘晓静;潘刚敏;沈晓岚;潘晓韵;郁永明【作者单位】浙江省农业科学院花卉研究开发中心,浙江杭州311202;浙江省农业科学院花卉研究开发中心,浙江杭州311202;浙江省农业科学院花卉研究开发中心,浙江杭州311202;浙江省农业科学院花卉研究开发中心,浙江杭州311202;浙江省农业科学院花卉研究开发中心,浙江杭州311202;浙江省农业科学院花卉研究开发中心,浙江杭州311202;浙江省农业科学院花卉研究开发中心,浙江杭州311202【正文语种】中文【中图分类】S682.31【相关文献】1.外源H2 O2对低温胁迫下大红柑生长及叶片生理指标的影响 [J], 蒋景龙;沈季雪;徐卫平;田雲;李丽2.外源氯化钙对低温胁迫下胡椒抗寒生理指标的影响 [J], 伍宝朵; 唐虎; 胡丽松; 范睿; 杨建峰; 周艳飞; 郝朝运3.喷施外源GABA对高温条件下茶树叶片部分生理指标的影响 [J], 曹语;任太钰;马媛春;李芳;房婉萍;朱旭君4.外源氯化钙对低温胁迫下胡椒生理指标的影响 [J], 李家庆;胡丽松;范睿;杨建锋;郑维全;郝朝运;伍宝朵5.外源褪黑素对低温胁迫下烟草幼苗生理指标的影响 [J], 张嘉雯;卢绍浩;赵喆;赵铭钦因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
低温胁迫对蝴蝶兰内源激素的影响
低温胁迫对蝴蝶兰内源激素的影响
刘 学庆 ，孙 纪 霞 ，丁朋松 ，张京伟 ，郭文姣 刘 莉莉 ２ ，
（． 台市 农业科 学研究 院 ，山东 烟 台 ２ ５ ０ ； ． 莱市职业 中等专 业学校 ，山东 蓬莱 ２ ５ ０ ） １ 烟 ６ ５ ０ ２蓬 ６６０
摘 要 ： 以 ３个 抗 寒 性 不 同 的 蝴 蝶 兰 品 种 为 试 材 ，研 究 了 不 同低 温 条 件 下 蝴 蝶 兰 叶 片 内 ＡＢ Ａ、Ｉ Ａ 与 ＧＡ ３种 内 Ａ 源 激 素 等 的 变 化 规 律 ， 分 析 了 蝴 蝶 兰 抗 冷 的 生 理 生 化 机 理 。研 究 结 果 表 明 ：１低 温 胁 迫 条 件 下 ，随 着 温 度 的 降 （） 低 ， 叶 片 内 部 内源 激 素 的变 化 越 来 越 显 著 。Ｃ （ ２ ℃／ １ ℃ ） 处 理 温 度 下 ， 内源 激 素 变 化 较 为 平 缓 ，而 昼 ３ 夜 ８
ｔｅ ｔ ｎ ． ｈ ｏ ｔｎ ｆ ｅ ｄ ｇ ｎ ｕ ｏ ｍ ｏ ｅ ｎ ｒ ａ ｅ ｎ ｃ ｕ ｌ ｔ ｄ ｒ ｐ ｄ ｙ ｗｉ ｈ ｅ ｒ ａ ｅ ｏ ｒ ａｍｅ ｔＡ Ｔ ｅ ｃ ｎ ｅ ｔ ｏ ｎ ｏ ｅ ｏ ｓ ｈ ｒ ｎ ｓ ｉ ｃ ｅ ｓ ｄ ａ ｄ ａ ｃ ｍｕ ａｅ ａ ｉ ｌ ｔ ｔ ｅ ｄ ｃ ｅ 处理 的变化 则较为剧 烈 。３种 内源激 素 的含 量 随着温度 降低有 显著增 加 的趋 势 。（） ２ 随着处 理 时 间的延长 ，各 品种 叶片 内 ＡＢ Ａ、Ｉ ＡＡ与 Ｇ 含量 的高低均 呈现先 升高 后降低 的趋势 。（）低温 胁迫条 件下 ， Ａ ３
低温胁迫对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响
低温胁迫对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响近年来，随着全球气候的变化，气温波动越来越频繁，特别是极端低温的概率逐渐增大。
低温胁迫因此成为影响植物生长和发育的一个重要因素，严重影响作物的产量和质量。
本文将探讨低温胁迫对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响。
气温对植物的生长和发育具有重要的影响，其中白及光合作用更是植物生长和发育的核心过程。
低温条件下，光合色素产生和光合作用的速率会受到影响，从而影响植物的生长和发育。
低温胁迫会导致植物的叶片变薄，导致叶片的生理学功能下降。
尤其是在低温胁迫条件下，植物的光合色素合成和光合作用速率都会受到明显的抑制。
低温胁迫会破坏光合膜系统的完整性，降低ATP合成速率，导致光合作用速率降低。
研究表明，低温胁迫下叶片的最大光能利用效率和潜在光合速率均受到抑制。
同时，低温胁迫还会影响光系统的稳定性和反应性。
实验证明，在低温胁迫下，植物叶片光系统II和I的反应中心的活性和可逆性降低，导致叶片光合作用的光响应减弱，使得能量耗散增加而产生损伤。
叶绿素荧光被广泛地应用于研究低温胁迫下光合系统的响应。
低温胁迫会对叶绿素荧光参数产生显著的影响，反映出光能转化过程中的失衡情况。
主要表现为：首先，低温胁迫能够显著降低叶绿素荧光的起始强度；第二，低温胁迫能够降低叶片光系统II和I和总光合能力。
随着低温的加重，光响应曲线的高峰位置的红光波段逐渐减小，光响应曲线的曲率也逐渐降低；第三，当光照强度增大时，低温胁迫下光能量利用效率显著降低，表现为荧光效率增加。
结论低温胁迫会对植物的光合作用和叶绿素荧光参数产生较大的影响，导致植物的光能利用效率和光合能力降低。
尤其是在农业生产中，如果农作物长期处于低温胁迫状态下，将导致其产量和质量受到严重损害。
因此，必须采取措施，如调整种植时间、增施有机肥料和施用生物制剂，以增强植物对低温胁迫的抵抗能力，并提高其适应性和生存能力。
低温胁迫下甘蓝型冬油菜抗寒性与叶片激素含量的关联性
江苏农业学报(ＪｉａｎｇｓｕＪ.ｏｆＡｇｒ.Ｓｃｉ.)ꎬ２０２３ꎬ３９(１):１５￣２１ｈｔｔｐ://ｊｓｎｙｘｂ.ｊａａｓ.ａｃ.ｃｎ范军强ꎬ路晓明ꎬ王会文ꎬ等.低温胁迫下甘蓝型冬油菜抗寒性与叶片激素含量的关联性[Ｊ].江苏农业学报ꎬ２０２３ꎬ３９(１):１５￣２１.ｄｏｉ:１０.３９６９/ｊ.ｉｓｓｎ.１０００￣４４４０.２０２３.０１.００２低温胁迫下甘蓝型冬油菜抗寒性与叶片激素含量的关联性范军强１ꎬ２ꎬ㊀路晓明１ꎬ２ꎬ㊀王会文１ꎬ２ꎬ㊀武军艳１ꎬ２ꎬ㊀刘丽君２ꎬ㊀马㊀骊２ꎬ㊀蒲媛媛１ꎬ２ꎬ㊀李学才１ꎬ２ꎬ㊀孙万仓１ꎬ２(１.甘肃农业大学农学院ꎬ甘肃兰州７３００７０ꎻ２.省部共建干旱生境作物学国家重点实验室ꎬ甘肃兰州７３００７０)收稿日期:２０２２￣０４￣２０基金项目:甘肃农业大学干旱生境作物学重点实验室主任基金项目(ＧＳＣＳ￣２０２０￣Ｚ１)ꎻ国家现代农业产业技术体系项目(ＣＡＲＳ￣１２)ꎻ国家自然科学基金项目(３１８６０３８８㊁３１９６０４３５)作者简介:范军强(１９９８－)ꎬ男ꎬ甘肃通渭人ꎬ硕士研究生ꎬ研究方向为作物遗传育种ꎮ(Ｅ￣ｍａｉｌ)２２６０６５１６９３＠ｑｑ.ｃｏｍ通讯作者:孙万仓ꎬ(E￣mail)182****1851＠１６３.ｃｏｍ㊀㊀摘要:㊀为探究不同抗寒性甘蓝型冬油菜在应对低温胁迫时内源激素含量的变化ꎬ并阐明其抗寒性与叶片激素含量的关联性ꎬ选用感温性差异较大的４个甘蓝型冬油菜品种(品系)ꎬ分别于４ħ及０ħ处理不同时间后测定植株叶片内玉米素(ＺｅａｔｉｎꎬＺＴ)㊁赤霉素(ＧｉｂｂｅｒｅｌｌｉｎＡ３ꎬＧＡ３)㊁水杨酸(ＳａｌｉｃｙｌｉｃａｃｉｄꎬＳＡ)㊁生长素(Ｉｎｄｏｌｅ￣３￣ａｃｅｔｉｃａｃｉｄꎬＩＡＡ)和脱落酸(ＡｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄꎬＡＢＡ)５种内源激素的含量ꎬ并联系抗寒性评价指标进行相关性分析ꎮ结果表明ꎬ与对照(２４ħ)相比ꎬ低温处理后甘蓝型冬油菜叶片中ＩＡＡ㊁ＺＴ㊁ＧＡ３含量显著降低ꎬＡＢＡ含量较对照(２４ħ)上升２~３倍ꎬ不同品种(品系)ＳＡ含量增幅差异较大ꎮ相关性分析结果表明ꎬＡＢＡ㊁ＩＡＡ㊁ＧＡ３㊁ＳＡ含量的耐寒系数与抗寒性呈显著负相关ꎮ总之ꎬ内源激素含量会随外界温度变化而变化ꎬ且强抗寒性甘蓝型冬油菜品种(品系)叶片中激素含量的变化(上升或下降)幅度小于弱抗寒性品种(品系)ꎮ关键词:㊀甘蓝型冬油菜ꎻ低温胁迫ꎻ半致死温度ꎻ内源激素ꎻ抗寒性中图分类号:㊀Ｓ５６５.４０１㊀㊀㊀文献标识码:㊀Ａ㊀㊀㊀文章编号:㊀１０００￣４４４０(２０２３)０１￣００１５￣０７ＡｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｂｅｔｗｅｅｎｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅａｎｄｌｅａｆｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔｏｆＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ｕｎｄｅｒｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓｔｒｅｓｓＦＡＮＪｕｎ￣ｑｉａｎｇ１ꎬ２ꎬ㊀ＬＵＸｉａｏ￣ｍｉｎｇ１ꎬ２ꎬ㊀ＷＡＮＧＨｕｉ￣ｗｅｎ１ꎬ２ꎬ㊀ＷＵＪｕｎ￣ｙａｎ１ꎬ２ꎬ㊀ＬＩＵＬｉ￣ｊｕｎ２ꎬ㊀ＭＡＬｉ２ꎬ㊀ＰＵＹｕａｎ￣ｙｕａｎ１ꎬ２ꎬ㊀ＬＩＸｕｅ￣ｃａｉ１ꎬ２ꎬ㊀ＳＵＮＷａｎ￣ｃａｎｇ１ꎬ２(１.ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＡｇｒｏｎｏｍｙꎬＧａｎｓｕＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＬａｎｚｈｏｕ７３００７０ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＳｔａｔｅＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＡｒｉｄｌａｎｄＣｒｏｐＳｃｉｅｎｃｅꎬＬａｎｚｈｏｕ７３００７０ꎬＣｈｉｎａ)㊀㊀Ａｂｓｔｒａｃｔ:㊀ＴｏｓｔｕｄｙｔｈｅｃｈａｎｇｅｓｏｆｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｐｌａｎｔｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔｉｎＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ｖａｒｉｅｔｉｅｓ(ｓｔｒａｉｎｓ)ｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒ￣ｅｎｔｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｕｎｄｅｒｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓｔｒｅｓｓꎬａｎｄｔｏｃｌａｒｉｆｙｔｈｅｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎｂｅｔｗｅｅｎｔｈｅｉｒｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅａｎｄｌｅａｆｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔꎬｆｏｕｒＢ.ｎａｐｕｓＬ.ｖａｒｉｅｔｉｅｓ(ｓｔｒａｉｎｓ)ｗｉｔｈｇｒｅａｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｉｎｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙｗｅｒｅｓｅｌｅｃｔｅｄａｎｄｗｅｒｅｔｒｅａｔｅｄａｔ４ħꎬ０ħｆｏｒｄｉｆｆｅｒｅｎｔｔｉｍｅｓꎬｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ.Ｔｈｅｎｃｏｎｔｅｎｔｓｏｆｆｉｖｅｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｓｉｎｔｈｅｌｅａｖｅｓｏｆｔｈｅｐｌａｎｔｓｗｅｒｅｄｅｔｅｃｔｅｄꎬｓｕｃｈａｓｚｅａｔｉｎ(ＺＴ)ꎬｇｉｂｂｅｒｅｌｌｉｎＡ３(ＧＡ３)ꎬｓａｌｉｃｙｌｉｃａｃｉｄ(ＳＡ)ꎬｉｎｄｏｌｅ￣３￣ａｃｅｔｉｃａｃｉｄ(ＩＡＡ)ａｎｄａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄ(ＡＢＡ)ꎬａｎｄｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｗａｓｍａｄｅｗｉｔｈｅｖａｌｕａｔｉｏｎｉｎｄｅｘｅｓｏｆｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ.Ｔｈｅｒｅｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔꎬｃｏｍｐａｒｅｄｗｉｔｈｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌ(２４ħ)ꎬｃｏｎｔｅｎｔｓｏｆＩＡＡꎬＺＴａｎｄＧＡ３ｉｎｌｅａｖｅｓｏｆＢ.ｎａｐｕｓＬ.ｄｅｃｒｅａｓｅｄｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙａｆｔｅｒｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｔｒｅａｔｍｅｎｔꎬａｎｄｃｏｎｔｅｎｔｏｆＡＢＡｉｎｃｒｅａｓｅｄｂｙｔｗｏｔｏｔｈｒｅｅｔｉｍｅｓ.ＴｈｅｉｎｃｒｅａｓｅａｍｐｌｉｔｕｄｅｏｆＳＡｃｏｎｔｅｎｔｉｎｄｉｆｆｅｒｅｎｔｖａｒｉｅｔｉｅｓ(ｓｔｒａｉｎｓ)ｏｆＢ.ｎａｐｕｓＬ.ｗａｓｄｉｆｆｅｒｅｎｔ.ＲｅｓｕｌｔｓｏｆｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔꎬｔｈｅｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔｓｏｆＡＢＡꎬＩＡＡꎬＧＡ３ａｎｄＳＡｃｏｎｔｅｎｔｓｗｅｒｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｎｅｇａｔｉｖｅｌｙｃｏｒｒｅｌａｔｅｄｗｉｔｈｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ.Ｉｎｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎꎬｔｈｅｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔｃｈａｎｇｅｓｗｉｔｈｔｈｅｃｈａｎｇｅｏｆｅｘｔｅｒｎａｌｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅꎬａｎｄｔｈｅｃｈａｎｇｅ(ｉｎｃｒｅａｓｅｏｒｄｅｃｒｅａｓｅ)ｏｆｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔｉｎｌｅａｖｅｓｏｆＢ.ｎａｐｕｓＬ.ｖａ￣ｒｉｅｔｉｅｓ(ｓｔｒａｉｎｓ)ｗｉｔｈｓｔｒｏｎｇｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｗａｓｌｅｓｓｔｈａｎｔｈａｔｏｆｖａｒｉｅｔｉｅｓ(ｓｔｒａｉｎｓ)ｗｉｔｈｗｅａｋｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ.５１Ｋｅｙｗｏｒｄｓ:㊀ＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ꎻｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓｔｒｅｓｓꎻＳｅｍｉ￣ｌｅｔｈａｌｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅꎻＥｎｄｏｇｅｎｏｕｓａｕｘｉｎꎻｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔ￣ａｎｃｅꎻＣｏｒｒｅｌａｔｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓ㊀㊀低温逆境下植物内源激素会调控相关结构的建成与功能表达[１]ꎬ同时在植物适应逆境的过程中发挥重要作用ꎮ冬油菜种植区在向天水市以西㊁以北方向扩展的过程中ꎬ最早实施的就是甘蓝型冬油菜[２]ꎮ随着北移工作的推进ꎬ甘蓝型冬油菜作为蜜源植物㊁油料作物和观赏作物ꎬ具有极大的经济价值与生态价值[３]ꎮ冷胁迫后植物内源激素含量会发生明显变化[４]ꎬ脱落酸(ＡｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄꎬＡＢＡ)在低温环境下会大量合成[５]ꎬ这会引起相关抗逆蛋白质的合成[６]ꎮ多数学者认为植物激素是抗寒基因表达的启动因素[７]ꎮ阐明低温下抗寒性与激素调控的关系ꎬ将为推动冬油菜越冬研究提供新方向ꎮ本研究选取感温性差异较大的４个甘蓝型冬油菜品种ꎬ低温处理后测定内源激素水平及叶片低温半致死温度ꎬ以探究甘蓝型冬油菜抗寒性与叶片激素含量的关联性ꎮ１㊀材料与方法１.１㊀试验材料选取４个感温性不同的甘蓝型冬油菜品种作为试验材料ꎬ详见表１ꎮ表１㊀试验材料基本情况Ｔａｂｌｅ１㊀Ｂａｓｉｃｓｉｔｕａｔｉｏｎｏｆｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｍａｔｅｒｉａｌｓ品种(品系)类型感温性选育单位㊀㊀㊀ｇａｕ￣２４甘蓝型冬油菜强冬性甘肃农业大学ｇａｕ￣３０甘蓝型冬油菜强冬性甘肃农业大学天油２２６６甘蓝型冬油菜半冬性天水市农业科学研究所天油２２８８甘蓝型冬油菜弱冬性天水市农业科学研究所㊀㊀内源激素含量测定使用四元梯度超快速液相色谱仪(型号:ＡＣＱＵＩＴＹＡｒｃ)ꎮ５种植物内源激素标准品玉米素(ＺｅａｔｉｎꎬＺＴ)㊁赤霉素(ＧｉｂｂｅｒｅｌｌｉｎＡ３ꎬＧＡ３)㊁水杨酸(ＳａｌｉｃｙｌｉｃａｃｉｄꎬＳＡ)㊁生长素(Ｉｎｄｏｌｅ￣３￣ａｃｅｔｉｃａｃｉｄꎬＩＡＡ)和脱落酸(ＡｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄꎬＡＢＡ)ꎬ均采购于上海源叶生物科技有限公司ꎮ流动相溶液乙腈(色谱专用)㊁甲醇(色谱专用)㊁磷酸(分析纯)ꎬ均采购于上海西格玛奥德里奇贸易有限公司ꎮ１.２㊀试验设计试验材料以盆栽方式进行种植ꎮ各品种种子在２０２１年８月２１日于培养皿中进行萌发ꎬ并于２０２１年８月２５日统一移栽ꎮ移栽选用直径为２５ｃｍ㊁高度为１２ｃｍ的树脂花盆ꎮ每盆装入已加水搅拌均匀的育苗基质４ｋｇꎬ每盆设置３穴ꎬ每穴２株苗ꎬ株距１０ｃｍꎬ放置于自然条件下生长ꎬ地点位于甘肃农业大学ꎮ两叶一心期进行间苗ꎬ每穴定苗一株ꎬ待长至六叶期进行下一步试验ꎮ种植期间的栽培管理措施按常规方法进行ꎮ试验共设置５个处理ꎬ分别为２４ħ处理１２ｈ㊁０ħ处理１ｈ㊁０ħ处理１２ｈ㊁４ħ处理１ｈ和４ħ处理１２ｈ(全部盆栽均先置于２４ħ培养１２ｈ)ꎮ处理过程中尽量保证光照及水分条件的一致ꎮ处理结束后快速取出盆栽并采样ꎬ每株展开的第２张叶用于内源激素含量的测定ꎬ第３张叶用于低温半致死温度的测定ꎮ１.３㊀测定项目及方法１.３.１㊀半致死温度(ＬＴ５０)的测定㊀试验材料于２４ħ培养１２ｈ后ꎬ用打孔器在展开的第３张叶上打３个直径为５ｍｍ的叶圆片(避开叶脉)ꎮ将打好的３个叶圆片装入１０ｍｌ离心管中并加入０ ２ｍｌ去离子水ꎬ对照只加入去离子水ꎬ分别置于０ħ㊁－４ħ㊁－８ħ㊁－１２ħ㊁－１６ħ条件下处理３０ｍｉｎꎬ每个温度下设置３个重复ꎮ取出后再加入１０ｍｌ去离子水ꎬ室温振荡１ｈ后使用电导仪测出电导率(Ｃ１)ꎬ测得对照电导率为Ｃ０ꎮ最后置于１２０ħ烘箱中煮沸２０ｍｉｎꎬ取出冷却至室温后定容至１０ ２ｍｌꎬ测出电导率(Ｃ２)ꎬ按公式计算相对电导率ꎬ相对电导率(ＲＥＣ)＝(Ｃ１－Ｃ０)/(Ｃ２－Ｃ０)ˑ１００％ꎮ１.３.２㊀高效液相色谱(ＨＰＬＣ)法测定内源激素１.３.２.１㊀激素的提取㊀称取０ ５ｇ新鲜叶片ꎬ加入液氮快速充分研磨成粉末ꎮ加入４ħ预冷后的８０％(体积分数)甲醇(色谱专用)５ｍｌꎬ使用超声波清洗仪于２２ħ处理２ｍｉｎꎬ振荡混匀ꎬ置于４ħ浸提１２ｈꎮ浸提结束后于４ħ㊁１００００ｒ/ｍｉｎ离心１０ｍｉｎꎬ吸取上清液３ｍｌ转移至新离心管ꎬ使用真空离心浓缩仪完全浓缩至无液体残留ꎮ加入１ｍｌ８０％(体积分数)甲醇(色谱专用)ꎬ振荡混匀(保证提取物完全溶解于甲醇溶液)ꎬ过０ ２２μｍ有机滤膜ꎬ样品制备完成ꎮ６１江苏农业学报㊀２０２３年第３９卷第１期１.３.２.２㊀标准品的配制㊀准确称取５种激素的标准品ꎬ配制成１０μｇ/ｍｌ的高质量浓度单个标准品ꎬ用于出峰时间的确定及混合标准品的配制ꎮ将配制好的高质量浓度单个标准品混合稀释为１μｇ/Ｌ㊁９５μｇ/Ｌ㊁１００μｇ/Ｌ㊁２００μｇ/Ｌ㊁３００μｇ/Ｌ㊁４００μｇ/Ｌ㊁６００μｇ/Ｌ㊁８００μｇ/Ｌ㊁１０００μｇ/Ｌ的梯度混合标准品ꎬ用于绘制各激素的标准曲线ꎮ１.３.２.３㊀内源激素的测定方法㊀色谱柱Ｃ１８Ｗ柱ꎬ流动相由甲醇与０ １％磷酸按１ʒ９的体积比例混合配制而成(超声波处理１５ｍｉｎ脱气)ꎬ检测波长２８０ｎｍꎬ流速１ｍｌ/ｍｉｎꎬ柱温３０ħꎬ进样量１０μｌꎬ单个样品检测时间３０ｍｉｎꎮ１.４㊀数据处理及分析方法１.４.１㊀Ｌｏｇｉｓｔｉｃ回归方程分析㊀对测定的相对电导率进行Ｌｏｇｉｓｔｉｃ回归分析ꎬ回归模型为:Ｙ＝ｋ１＋ａｅｂｔ其中ꎬＹ为相对电导率ꎬｔ为处理温度ꎬｋ为细胞伤害率的饱和容量ꎬａ㊁ｂ为方程参数ꎮ因本试验中细胞伤害率消除了干扰ꎬ故ｋ＝１００ꎮ为确定ａ㊁ｂ值ꎬ将Ｌｏｇｉｓｔｉｃ方程转化为:ｌｎｋ－ｙｙæèçöø÷＝ｌｎａ－ｂｔꎬ令Ｙᶄ＝ｌｎｋ－ｙｙæèçöø÷则方程转化为Ｙᶄ与ｔ之间的线性方程ꎬ即:Ｙᶄ＝ｌｎａ－ｂｔ半致死温度计算公式为:ＬＴ５０＝ｌｎａｂ１.４.２㊀激素水平的计算方法㊀标准曲线的绘制:使用１０μｇ/ｍｌ的高质量浓度单个标准品确定每种激素的出峰时间ꎬ使用梯度质量浓度的混合标准品确定５种激素峰面积与质量浓度的线性关系ꎬ并绘制标准曲线ꎮ依据标准曲线得到样品质量浓度ꎬ通过公式计算叶片激素含量:Ｍ＝ＣˑＶ/ＭＳꎬ其中Ｖ是定容体积ꎬＭＳ是样品质量ꎬＣ为依据标准曲线得到的激素浓度ꎬＭ为最终叶片激素含量ꎮ单项指标耐寒系数(Ｋ)＝低温测定值/常温测定值ꎮ２㊀结果与分析２.１㊀甘蓝型冬油菜叶片半致死温度相对电导率可表示细胞膜透性ꎬ离体叶片在一定温度范围内的渗透情况具有反映细胞膜受伤程度的作用ꎮ当处理温度低于半致死温度时ꎬ植物将受到不可逆的伤害ꎬ相对电导率快速升高ꎮ低温半致死温度的高低是反映植物抗寒性强弱的重要指标ꎮ根据ＬＴ５０测定结果(表２)鉴定４个油菜品种(品系)的抗寒性强弱为ｇａｕ￣２４>ｇａｕ￣３０>天油２２８８>天油２２６６ꎬ决定系数为０ ８６~０ ９３ꎬ可用于进一步分析ꎮ表２㊀不同低温下甘蓝型冬油菜叶片相对电导率及Ｌｏｇｉｓｔｉｃ拟合方程Ｔａｂｌｅ２㊀ＲｅｌａｔｉｖｅｅｌｅｃｔｒｏｌｙｔｉｃｃｏｎｄｕｃｔｉｖｉｔｙａｎｄＬｏｇｉｓｔｉｃｅｑｕａｔｉｏｎｏｆｌｅａｖｅｓｏｆＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ｕｎｄｅｒｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ品种(品系)相对电导率(％)０ħ－４ħ－８ħ－１２ħ－１６ħ回归方程决定系数(Ｒ２)半致死温度(ħ)抗寒性排序天油２２６６１５.６２２８.５２８４.２２８６.４９８９.９３Ｙ＝１００/(１＋２.９９２０ｅ０.２３９１ｘ)０.８７－４.５８４天油２２８８１５.１４２８.５２８５.８６８６.９７９１.２７Ｙ＝１００/(１＋４.５３６０ｅ０.２７４１ｘ)０.８７－５.５２３ｇａｕ￣２４１３.２２１５.７２３４.８４８３.４４９１.５７Ｙ＝１００/(１＋１１.０５１０ｅ０.２９５７ｘ)０.９３－８.１２１ｇａｕ￣３０１７.１２２２.７２２６.４３８５.８３９２.４２Ｙ＝１００/(１＋８.５０６０ｅ０.２７９５ｘ)０.８６－７.６６２ｘ为峰面积ꎬＹ为激素浓度ꎮ２.２㊀标准曲线的绘制及回归方程的建立对单个标准品进行色谱分析ꎬＺＴ出峰时间为５ ０８４ｍｉｎꎬＧＡ３出峰时间为６ ５４０ｍｉｎꎬＳＡ出峰时间为７ ３０６ｍｉｎꎬＩＡＡ出峰时间为８ ０３９ｍｉｎꎬＡＢＡ出峰时间为８ ９８５ｍｉｎꎮ对照出峰时间获得各激素梯度浓度的峰面积ꎬ求得各激素浓度与峰面积的线性关系(表３)ꎮ２.３㊀不同抗寒性甘蓝型冬油菜激素含量０ħ㊁４ħ测得的激素含量分别列于表４㊁表５ꎮ表３㊀５种植物激素浓度与峰面积的线性关系Ｔａｂｌｅ３㊀Ｌｉｎｅａｒｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｂｅｔｗｅｅｎｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｏｆｆｉｖｅｐｌａｎｔｈｏｒｍｏｎｅｓａｎｄｐｅａｋａｒｅａ植物激素标准曲线㊀㊀㊀㊀㊀㊀决定系数(Ｒ２)ＺＴＹ＝０.０１４７ｘ＋１２.０４２００.９９５４ＧＡ３Ｙ＝０.０２００ｘ＋３０.８０１００.９９３８ＳＡＹ＝０.０１３４ｘ＋１８.５３７００.９９３７ＩＡＡＹ＝０.０２１４ｘ＋３２.６８５００.９９０６ＡＢＡＹ＝０.０２７４ｘ＋３３.４８１００.９９４９ｘ为峰面积ꎬＹ为激素浓度ꎮＺＴ为玉米素ꎻＧＡ３为赤霉素ꎻＳＡ为水杨酸ꎻＩＡＡ为生长素ꎻＡＢＡ为脱落酸ꎮ７１范军强等:低温胁迫下甘蓝型冬油菜抗寒性与叶片激素含量的关联性分析发现部分激素含量在不同处理间差异显著(Ｐ<０ ０５)ꎮ随低温(０ħ及４ħ)处理时间的增加ꎬＡＢＡ/ＩＡＡ值㊁ＡＢＡ/ＺＴ值㊁ＡＢＡ/ＧＡ３值㊁ＩＡＡ/ＧＡ３值表现出增大趋势ꎬ各激素间协同作用明显ꎮ表４㊀０ħ甘蓝型冬油菜叶片中内源激素含量及比值Ｔａｂｌｅ４㊀ＣｏｎｔｅｎｔａｎｄｒａｔｉｏｏｆｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｓｉｎｌｅａｖｅｓｏｆＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ａｔ０ħ处理品种(品系)内源激素含量(μｇ/ｇ)ＺＴＧＡ３ＳＡＩＡＡＡＢＡ内源激素含量比值ＡＢＡ/ＩＡＡＡＢＡ/ＺＴＡＢＡ/ＧＡ３ＩＡＡ/ＧＡ３２４ħ１２ｈ天油２２６６１７.０２ʃ４.３７ａ１５５.３６ʃ４.６１ａ３６.８３ʃ１５.０４ａ３７.７２ʃ１５.６５ａ６.５５ʃ２.６２ａ０.１７０.３８０.０４０.２４天油２２８８１６.１２ʃ０.５３ａ１５１.９３ʃ０.９７ａ３０.７６ʃ４０.０９ａ５０.２８ʃ１７.４８ａ６.１６ʃ２.８７ａ０.１２０.３８０.０４０.３３ｇａｕ￣２４１９.２２ʃ０.９１ａ１４１.１８ʃ２２.７６ａ４３.０３ʃ１１.５４ａ３７.９０ʃ６.８０ａ６.７３ʃ５.３３ａ０.１８０.３５０.０５０.２７ｇａｕ￣３０２０.０４ʃ３.９６ａ１６０.５４ʃ１９.５４ａ３１.２６ʃ１３.３９ａ４０.５８ʃ９.０７ａ６.４９ʃ４.４６ａ０.１６０.３２０.０４０.２５０ħ１ｈ天油２２６６１２.３５ʃ４.９４ａ６９.５７ʃ２.３５ｂ６０.７０ʃ１９.０３ａ１３.２４ʃ９.１８ａ１７.３３ʃ３.６１ａ１.３１１.４００.２５０.１９天油２２８８１２.５８ʃ４.３１ａ７０.３０ʃ６.０１ｂ４２.８０ʃ２１.９０ａ１５.２５ʃ６.４０ａ１５.０５ʃ４.５６ａ０.９９１.２００.２１０.２２ｇａｕ￣２４１５.５６ʃ３.９４ａ８７.２０ʃ３.４６ａ７４.８９ʃ４４.５６ａ２９.８２ʃ４.４１ａ９.９６ʃ１.７８ａ０.３３０.６４０.１１０.３４ｇａｕ￣３０１７.２５ʃ３.５１ａ５６.７３ʃ９.５６ｂ６８.８９ʃ８９.２３ａ１８.８１ʃ７.１８ａ１０.３７ʃ４.９３ａ０.５５０.６００.１８０.３３０ħ１２ｈ天油２２６６９.３０ʃ２.１０ａ１３.６４ʃ６.６０ａ１００.６０ʃ２９.１９ｂｃ６.０２ʃ２.９０ａ２２.８８ʃ２.２０ａ３.８０２.４６１.６８０.４４天油２２８８１１.７８ʃ１.１７ａ１８.０８ʃ５.７９ａ６０.２０ʃ１７.１７ｃ８.３１ʃ１.３６ａ２０.５９ʃ３.６９ａ２.４８１.７５１.１４０.４６ｇａｕ￣２４１１.０４ʃ９.９７ａ３０.５５ʃ７.５５ａ１４１.６５ʃ１８.３６ａｂ１５.５１ʃ４.３２ａ２９.７１ʃ２.７５ａ１.９２２.６９０.９７０.５１ｇａｕ￣３０１４.３２ʃ２.５４ａ２８.９８ʃ９.２１ａ１７５.３０ʃ８.８３ａ１８.７０ʃ９.６０ａ２６.３１ʃ５.１９ａ１.４１１.８４０.９１０.６５不同小写字母表示同一处理不同品种间在０.０５水平下差异显著ꎮＺＴ为玉米素ꎻＧＡ３为赤霉素ꎻＳＡ为水杨酸ꎻＩＡＡ为生长素ꎻＡＢＡ为脱落酸ꎮ表５㊀４ħ甘蓝型冬油菜叶片中内源激素含量及比值Ｔａｂｌｅ５㊀ＣｏｎｔｅｎｔａｎｄｒａｔｉｏｏｆｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｓｉｎｌｅａｖｅｓｏｆＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ａｔ４ħ处理品种(品系)内源激素含量(μｇ/ｇ)ＺＴＧＡ３ＳＡＩＡＡＡＢＡ内源激素含量比值ＡＢＡ/ＩＡＡＡＢＡ/ＺＴＡＢＡ/ＧＡ３ＩＡＡ/ＧＡ３２４ħ１２ｈ天油２２６６１５.８４ʃ５.９５ａ２０７.８６ʃ８.７２ａ４９.６３ʃ２１.２４ａ４６.２１ʃ５.９６ａ６.８５ʃ４.６０ａ０.１５０.４３０.０３０.２２天油２２８８１８.７８ʃ６.５５ａ１６２.９２ʃ４１.４４ａ３９.３７ʃ３７.２２ａ３８.０６ʃ１２.０６ａ７.６０ʃ６.０８ａ０.２００.４００.０５０.２３ｇａｕ￣２４１９.００ʃ８.３５ａ１９８.９６ʃ２.８５ａ３６.８６ʃ１７.３０ａ５２.０８ʃ２０.３１ａ５.６２ʃ２.３１ａ０.１１０.３００.０３０.２６ｇａｕ￣３０２１.２５ʃ６.３６ａ２００.４４ʃ３１.２１ａ３９.８７ʃ８.５８ａ５０.３５ʃ３０.８９ａ６.６４ʃ２.２８ａ０.１３０.３１０.０３０.２５４ħ１ｈ天油２２６６１２.０３ʃ３.１６ａ１２６.２５ʃ３９.１２ａ５２.５２ʃ６.１３ａ３２.２１ʃ１５.５３ａ１４.８２ʃ３.５５ａ０.４６１.２３０.１２０.２６天油２２８８１６.１３ʃ１.９９ａ７７.２３ʃ２５.４４ａ５２.４０ʃ４４.３１ａ１９.８６ʃ１５.２３ａ６.１５ʃ１.７７ｂ０.３１０.３８０.０８０.２６ｇａｕ￣２４１５.６６ʃ７.０４ａ９９.３５ʃ３.６４ａ３７.３３ʃ２１.１４ａ３９.５８ʃ１７.４８ａ８.９１ʃ１.２３ａｂ０.２３０.５７０.０９０.４０ｇａｕ￣３０１８.４１ʃ４.６６ａ１０９.００ʃ２３.１５ａ３５.２６ʃ１２.７３ａ２５.５７ʃ６.９８ａ９.６５ʃ２.８４ａｂ０.３８０.５２０.０９０.２３４ħ１２ｈ天油２２６６１１.７９ʃ５.２０ａ４２.８７ʃ１２.９２ｂ５７.７７ʃ１７.８３ａ２５.９７ʃ１２.３８ａ１８.７８ʃ３.８７ａ０.７２１.５９０.４４０.６１天油２２８８９.３４ʃ１.３７ａ３９.２０ʃ８.７３ｂ５２.３２ʃ２５.６７ａ２０.３６ʃ３.２５ａ１４.６９ʃ４.１１ａ０.７２１.５７０.３７０.５２ｇａｕ￣２４１４.８２ʃ７.７６ａ６４.１１ʃ４.９６ａ７５.２８ʃ７.５０ａ３６.８７ʃ１０.２５ａ２２.０７ʃ４.５３ａ０.６０１.４９０.３４０.５８ｇａｕ￣３０１７.５８ʃ７.２５ａ５７.６７ʃ３.７１ａｂ６７.３８ʃ１０.０１ａ３０.７６ʃ１３.４８ａ２３.９９ʃ２.９１ａ０.７８１.３６０.４２０.５３不同小写字母表示同一处理不同品种间在０.０５水平下差异显著ꎮＺＴ为玉米素ꎻＧＡ３为赤霉素ꎻＳＡ为水杨酸ꎻＩＡＡ为生长素ꎻＡＢＡ为脱落酸ꎮ２.４㊀不同水平低温对甘蓝型冬油菜内源激素含量的影响㊀㊀４个甘蓝型冬油菜品种(品系)内源激素对低温胁迫的响应如图１所示ꎮ与对照(２４ħ)相比ꎬ０ħ处理１２ｈ后ＺＴ含量平均降幅为３５ ８４％ꎬ高于４ħ处理的平均降幅(２８ ７９％)ꎮＧＡ３含量随低温处理时间延长呈下降趋势ꎬｇａｕ￣２４在０ħ处理１２ｈ后降至３０ ５５μｇ/ｇꎬ高于天油２２８８(１８ ０８μｇ/ｇ)ꎮｇａｕ￣３０在０ħ处理１２ｈ后ＳＡ含量与对照相比增加４６０ ８２％ꎬ天油２２８８增幅仅为９５ ７１％ꎮ在０ħ处８１江苏农业学报㊀２０２３年第３９卷第１期理１２ｈ后平均ＩＡＡ含量为１２ １３μｇ/ｇꎬ低于４ħ处理１２ｈ后的平均含量(２８ ４９μｇ/ｇ)ꎮ在４ħ及０ħ处理后ＡＢＡ含量明显上升ꎬｇａｕ￣２４的ＡＢＡ含量在０ħ处理１２ｈ后自ＣＫ的６ ７３μｇ/ｇ上升至２９ ７１μｇ/ｇꎬ增加了３４１ ４６％ꎬ高于天油２２６６及天油２２８８在０ħ处理１２ｈ后的增幅ꎮ０ħ处理１２ｈ后ＡＢＡ含量平均增幅为２８２ ６３％ꎬ４ħ处理１２ｈ后ＡＢＡ含量平均增幅为２０５ ３１％ꎬ０ħ上升幅度较４ħ大ꎮ总体上看ꎬ５种内源激素含量随低温处理强度变化而变化ꎬ低温处理后ＺＴ㊁ＧＡ３㊁ＩＡＡ含量下降ꎬＳＡ及ＡＢＡ含量升高ꎬ且４ħ处理的增加或下降幅度小于０ħꎮ图１㊀低温连续处理后甘蓝型冬油菜叶片内源激素含量的变化Ｆｉｇ.１㊀ＣｈａｎｇｅｓｏｆｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔｉｎｌｅａｖｅｓｏｆＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ａｆｔｅｒｃｏｎｔｉｎｕｏｕｓｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｔｒｅａｔｍｅｎｔ９１范军强等:低温胁迫下甘蓝型冬油菜抗寒性与叶片激素含量的关联性２.５㊀低温胁迫后不同抗寒性甘蓝型冬油菜叶片激素含量与抗寒性的关系㊀㊀０ħ及４ħ处理１２ｈ后甘蓝型冬油菜叶片５种内源激素含量及比值的耐寒系数分别列于表６㊁表７ꎮＺＴ㊁ＧＡ３㊁ＩＡＡ的Ｋ值均小于１ ０００ꎬＳＡ㊁ＡＢＡ的Ｋ值均大于１ ０００ꎮ表６㊀０ħ甘蓝型冬油菜叶片中内源激素含量及比值的耐寒系数Ｔａｂｌｅ６㊀ＣｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔｏｆｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔａｎｄｒａｔｉｏｉｎＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ｌｅａｖｅｓａｔ０ħ品种(品系)ＺＴＧＡ３ＳＡＩＡＡＡＢＡＡＢＡ/ＩＡＡ值ＡＢＡ/ＺＴ值ＡＢＡ/ＧＡ３值ＩＡＡ/ＧＡ３值天油２２６６０.５４７０.０８８１.１６４０.１６０３.４９６２１.９０３６.３９６３９.８０３１.８１７天油２２８８０.７３１０.１１９１.３２９０.１６５３.３４０２０.２１６４.５７１２８.０７３１.３８９ｇａｕ￣２４０.５７５０.２１６２.０４３０.４０９４.４１５１０.７８５７.６８３２０.４０３１.８９２ｇａｕ￣３００.７１５０.１８１１.６９００.４６１４.０５５８.８００５.６７３２２.４５９２.５５２ＺＴ为玉米素ꎻＧＡ３为赤霉素ꎻＳＡ为水杨酸ꎻＩＡＡ为生长素ꎻＡＢＡ为脱落酸ꎮ表７㊀４ħ甘蓝型冬油菜叶片中内源激素含量及比值的耐寒系数Ｔａｂｌｅ７㊀ＣｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔｏｆｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｃｏｎｔｅｎｔａｎｄｒａｔｉｏｉｎＢｒａｓｓｉｃａｎａｐｕｓＬ.ｌｅａｖｅｓａｔ４ħ品种(品系)ＺＴＧＡ３ＳＡＩＡＡＡＢＡＡＢＡ/ＩＡＡ值ＡＢＡ/ＺＴ值ＡＢＡ/ＧＡ３值ＩＡＡ/ＧＡ３值天油２２６６０.７４４０.２０６２.７３１０.５６２２.７４０４.８７４３.６８１１３.２８３２.７２５天油２２８８０.４９７０.２４１１.９５７０.５３５１.９３２３.６１１３.８８５８.０３０２.２２４ｇａｕ￣２４０.７８００.３２２３.２９２０.７０８３.９２６５.５４６５.０３４１２.１８５２.１９７ｇａｕ￣３００.８２７０.２８８５.６０８０.６１１３.６１４５.９１７４.３７０１２.５６２２.１２３ＺＴ为玉米素ꎻＧＡ３为赤霉素ꎻＳＡ为水杨酸ꎻＩＡＡ为生长素ꎻＡＢＡ为脱落酸ꎮ㊀㊀利用半致死温度与９个内源激素相关指标的耐寒系数之间的相关性确定甘蓝型冬油菜抗寒性与叶片激素含量的关联性ꎮ０ħ处理１２ｈ后ꎬ与半致死温度相关性显著或极显著的指标有ＧＡ３含量㊁ＳＡ含量㊁ＩＡＡ含量㊁ＡＢＡ含量㊁ＡＢＡ/ＩＡＡ值㊁ＡＢＡ/ＧＡ３值的耐寒系数ꎬ４ħ处理１２ｈ后ꎬ与半致死温度显著或极显著相关的指标仅有ＧＡ３含量和ＡＢＡ/ＺＴ值的耐寒系数ꎬＧＡ３在０ħ及４ħ处理后１２ｈ后均与半致死温度极显著相关(表８)ꎮ表８㊀５种内源激素含量耐寒系数与半致死温度(ＬＴ５０)的相关性Ｔａｂｌｅ８㊀Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎｂｅｔｗｅｅｎｃｏｌｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔｏｆｆｉｖｅｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓｈｏｒｍｏｎｅｓａｎｄｓｅｍｉ￣ｌｅｔｈａｌｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ(ＬＴ５０)处理ＺＴＧＡ３ＳＡＩＡＡＡＢＡＡＢＡ/ＩＡＡ值ＡＢＡ/ＺＴ值ＡＢＡ/ＧＡ３值ＩＡＡ/ＧＡ３值０ħ１２ｈ－０.１４９－０.９９１∗∗－０.９６４∗－０.９４７∗－０.９２０∗０.９６５∗－０.４５２０.９３８∗－０.５７５４ħ１２ｈ－０.５２５－０.９８５∗∗－０.６３６－０.８３９－０.８２３－０.６８９－０.９３５∗－０.１９３０.７９５采用Ｐｅａｒｓｏｎ相关系数计算ꎬ∗∗代表在０.０１水平下极显著相关ꎬ∗代表在０.０５水平下显著相关ꎮＺＴ为玉米素ꎻＧＡ３为赤霉素ꎻＳＡ为水杨酸ꎻＩＡＡ为生长素ꎻＡＢＡ为脱落酸ꎮ３㊀讨论与结论生长促进型激素和生长抑制型激素对于低温的响应趋势不同[８]ꎮ低温处理下云雾贡茶ＩＡＡ含量下降明显[９]ꎮＹａｍａｄａ等[１０]在５ħ低温处理的枳砧叶片中未检测出细胞分裂素ꎮ本试验在０ħ处理１２ｈ后的甘蓝型冬油菜叶片中虽能检测出玉米素(细胞分裂素的一种)ꎬ但含量降幅显著ꎮ严寒静等[１１]发现ꎬ栀子叶片中ＧＡ３含量在自然降温过程中下降明显ꎮ低温会促进植物体内脱落酸水平升高ꎬ环境温度降低后油菜叶片中脱落酸水平会不断升高[１２]ꎮ番茄在感受夜间低温后ꎬ脱落酸升高至白天的１.５倍[１３]ꎮ李亮等[１４]认为ꎬ低温胁迫后ＳＡ的积累影响黄瓜幼苗对低温的响应ꎮ本研究发现ꎬ０ħ处理１２ｈ后油菜叶片中ＡＢＡ含量较对照(２４ħ处理１２ｈ)上升２~３倍ꎬＳＡ含量也表现增长趋势ꎮ低温处理后抗寒性强的番茄品种ＡＢＡ含量高于抗寒性弱的品种[１５]ꎮ不同抗寒性油棕品种在１０ħ低温下叶片中的ＡＢＡ含量变化与番茄相同[１６]ꎮ王兴等[１７]认为ꎬ强抗寒性冬小麦品种能在低温下较０２江苏农业学报㊀２０２３年第３９卷第１期长时间维持高水平的ＩＡＡ含量ꎮ本试验证明ꎬ抗寒性越弱的品种叶片中ＡＢＡ含量在０ħ处理前后的相对上升幅度越小ꎬＩＡＡ含量在低温处理后降幅越小ꎬ抗寒性越强ꎮＡＢＡ/ＩＡＡ值的耐寒系数与抗寒性显著相关ꎬ证明ＡＢＡ与ＩＡＡ的协同作用与抗寒性也有关系ꎬ在葡萄中有相似结论ꎬ曲凌慧等[１８]认为ꎬ强抗寒性品种叶片中ＡＢＡ/ＩＡＡ值较高ꎮ植物会响应外界低温环境从而改变内源激素的含量[１９￣２３]ꎬ强抗寒性甘蓝型冬油菜品种叶片中生长促进型激素含量下降幅度小于弱抗寒性品种ꎬ生长抑制型激素含量上升幅度大于弱抗寒性品种ꎮ相关性分析结果表明ꎬ低温处理后ＧＡ３含量的相对变化可作为抗寒性评价的稳定指标ꎮ参考文献:[１]㊀董志强ꎬ舒文华ꎬ翟学军ꎬ等.棉株不同器官中几种内源激素的变化及相关关系[Ｊ].核农学报ꎬ２００５ꎬ１９(１):６２￣６７. 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4_种木兰科植物低温胁迫生理生化指标变化研究
2023年第20期现代园艺4种木兰科植物低温胁迫生理生化指标变化研究滕月通，任羽*（西华师范大学，四川南充637000）摘要:为了研究木兰科植物的抗寒机理，本研究以六瓣含笑、阔瓣含笑、峨眉含笑、红花深山含笑4种木兰科植物为例，采用对照试验法对其低温胁迫下的生理指标变化进行了研究。
结果表明，在低温胁迫环境下，随着温度不断下降，4种木兰科植物的电导率不断上升，而木兰科植物叶片中的可溶性蛋白、糖分、游离脯氨酸等都会随着温度的下降而发生相应的变化，表明在低温胁迫下，植物为了生存下去，会自动发生一些列的生理生化反应，以适应低温环境。
关键词:木兰科植物；低温胁迫；生理指标变化木兰科作为一种珍贵的原理绿化树种，其种类繁多，在我国分布范围广泛，且花色艳丽、花香袭人，具有较高的观赏价值。
从生长特性方面来看，木兰科植物喜温润，耐寒性较差，大多分布于我国南方地区，并呈现出了向北逐渐减少的生长趋势，其所表现出来的“抗寒不抗绿、常绿不抗寒”的特性在很大程度上限制了木兰科植物在北方地区的种植。
为了使木兰科植物在北方高寒地区能够健康生长，对其抗寒性进行筛选，并研究在低温条件下其耐寒生理特性以及分子机制具有十分重要的意义。
低温胁迫是指能够对植物生长和地理分布产生影响的一种生物胁迫，其能够影响植物的水分吸收、光合作用、新陈代谢以及质膜透性等。
有研究表明，生长于热带和亚热带的植物在受到低温胁迫时容易造成伤害甚至是死亡，因此，低温胁迫是限制植物生长的一个主要环境因素。
究其原因，植物在感受到低温信号之后，会做出对低温环境的适应性调整，植物体内保护煤活性增强，细胞膜透性增加，各种渗透调剂物质含量会逐渐累计起来，与新陈代谢相关的生化途径则会被抑制。
在针对植物的抗寒性研究过程中，其是在多种结构因素联合作用下所表现出来的结果，仅凭单一的生理指标很难全面反映出植物真实的抗寒性。
因此，只有选取多个具有代表性的生理生化指标来对其进行综合评价才具有参考意义。
低温胁迫对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响
低温胁迫对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响随着全球气候变暖的趋势，极端低温事件的发生频率不断增加，这对植物的生长和发育造成了严重影响。
低温胁迫会导致植物光合作用受到抑制，影响叶绿素荧光参数的表现，从而影响植物的生长和产量。
了解低温胁迫对植物光合作用和叶绿素荧光参数的影响，对于指导农业生产和保护植物生长具有重要意义。
低温胁迫会对植物的叶绿素含量产生影响。
研究发现，一些作物在低温条件下会出现叶绿素含量降低的现象。
低温胁迫会抑制叶绿素的合成，导致叶片颜色变浅，影响植物的光合作用效率。
低温胁迫还会引起植物叶片衰老，导致叶绿素分解加速，进一步减少叶绿素含量。
在低温胁迫条件下，植物叶绿素含量的减少是影响植物生长和产量的重要因素之一。
低温胁迫还会影响植物的光合作用参数。
光合作用是植物生长发育的基础，而光合速率是光合作用的一个重要参数。
研究表明，低温胁迫会显著降低植物的光合速率，从而影响植物的生长和发育。
低温胁迫会影响光合色素的活性，导致光合作用受到抑制。
低温胁迫还会影响植物的气孔导度和气孔密度，进而影响植物的CO2吸收和光合作用效率。
低温胁迫对植物光合作用参数的影响是造成植物生长受限的重要原因。
除了影响光合作用参数外，低温胁迫还会对植物的叶绿素荧光参数产生影响。
叶绿素是植物进行光合作用的关键色素，其荧光参数可以反映植物受到胁迫后的生理状态。
研究发现，在低温胁迫条件下，植物叶绿素荧光参数呈现出一系列变化。
低温胁迫会导致植物叶绿素荧光猝灭值上升，表明植物受到了光合作用的抑制。
低温胁迫还会引起植物光化学效率降低，表明植物受到了光合作用的限制。
低温胁迫还会影响植物非光化学猝灭，进一步影响植物的光合作用效率。
通过对叶绿素荧光参数的分析，可以更加全面地了解植物在低温胁迫条件下的生理状态。
低温胁迫对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响
低温胁迫对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响低温胁迫是指植物受到较低温度影响所产生的应激反应。
低温胁迫对植物的生长发育和生理活动有着不同程度的影响，其中包括对白及光合作用及叶绿素荧光参数的影响。
本文将探讨低温胁迫对植物光合作用及叶绿素荧光参数的影响，并对该领域的研究进展进行综述。
一、低温胁迫对植物光合作用的影响低温胁迫会导致植物叶片的生理活动受到影响，其中包括对植物光合作用的影响。
研究表明，低温胁迫会导致植物叶片中光合色素的合成和光合酶系统的活性受到影响，从而影响植物的光合作用效率。
研究还发现，低温胁迫会引起叶绿体超氧化物歧化酶和过氧化物酶的活性增加，导致氧化应激和氧化损伤的产生，进而影响植物的光合作用效率。
低温胁迫会影响植物叶片中光合色素的合成和光合酶系统的活性，进而影响植物的光合作用效率。
二、低温胁迫对植物叶绿素荧光参数的影响叶绿素荧光是反映植物叶绿体光合作用效率的重要参数，可以用来评估植物在应激条件下的生理状态。
研究表明，低温胁迫会导致植物叶绿素荧光参数发生变化，反映出植物受到低温胁迫时的生理响应。
在低温胁迫条件下，植物叶绿素荧光参数发生变化，具体表现为：叶绿素荧光参数Fv/Fm（最大光化学效率）下降，表明植物受到低温胁迫时叶绿体光合作用能力下降；叶绿素荧光参数Fv/F0（基本光化学效率）增加，表明植物受到低温胁迫时叶绿体光合作用能力减弱；叶绿素荧光参数φPSⅡ（光合效率）降低，表明植物受到低温胁迫时光合作用效率降低。
研究还发现，低温胁迫会导致植物叶绿素荧光快速诱导动力学曲线（Kautsky曲线）的变化，表明植物受到低温胁迫时叶绿体光合作用的快速响应发生变化。
低温胁迫会导致植物叶绿素荧光参数发生变化，反映出植物受到低温胁迫时的生理响应。
综合以上所述，低温胁迫对植物的光合作用及叶绿素荧光参数均会产生影响。
针对这一问题，研究者们对低温胁迫下植物的生理响应进行了深入研究，并尝试寻找相应的适应机制和调控措施，以提高植物对低温胁迫的抗性。
低温胁迫对校园植物的影响调查——以云南师范大学为例
低温胁迫对校园植物的影响调查——以云南师范大学为例窦 毅，叶祖梅（云南师范大学，云南昆明 650500）摘要：低温天气诱发的低温胁迫是威胁植物生存的因素之一，尤其对于有大量引种源于热带植物的校园。
2022年2月22日，云南省昆明市出现罕见的大范围降雪天气，由此引发的低温胁迫对云南师范大学不同来源、不同生活型的校园植物造成了不同的冻害。
建议在将来的校园植物引种种植中在考虑观赏、绿化价值的前提下应多种植本土植物，引种外来植物时应该多选择木本植物，并进行必要的引种试验以降低极端天气诱发的低温胁迫造成的经济损失。
关键词：云南师范大学；校园植物；冻害情况；调查分析0 引言植物在生长发育时期中温度是重要的影响因素。
冻害便是0℃以下的低温，使作物体内结冰，对作物造成伤害[1]。
发生程度轻的局部产生损伤，冻害程度重的可导致植株的死亡。
因此，研究植物冻害在一定程度上能够对植物的生长发育、资源合理配置、生物多样性起到重要作用。
校园植物的建设不仅美化了校园环境，更为师生提供舒适愉悦的生活学习体验，但由于校园景观的建设不可避免地会引入外来植物，当遭遇极端低温天气时，就会在一定程度上破坏原有的校园植物的资源配置，影响校园植物景观，以校园植物作为植物冻害的研究对象不仅可以总结各类植物越冬的预防措施，还可规避植物受冻带来的景观和经济方面的损失，更能为同类高校在校园植物引种和校园景观建设方面作出建议。
我们[2]在2013年对云南师范大学校园栽培植物的冻害调查，外来种尤其引种于热带的由于本身适应热带气候条件当被引入非热带环境中时更容易受到低温天气的胁迫。
而对于不同生活形态的植物，草本植物相对于木本植物可能更易受低温冻害[3]。
基于此借助此次的气候事件探究是否在云南师范大学呈贡校区的校园植物中不同来源的植物的受冻程度存在差异外来植物的受冻程度和比例更高？是否草本植物比木本植物更易受低温冻害的影响？本研究采用实地调查法以云南师范大学呈贡校区的50科，90种常见被子植物进行了冻害情况调查和等级划分。
植物低温胁迫响应及研究方法进展
植物低温胁迫响应及研究方法进展植物生长受到多种环境因素的影响，其中温度是影响植物生长发育的重要因素之一。
随着全球气候变化的加剧，植物在自然界中更容易受到低温胁迫的影响。
在低温胁迫条件下，植物会出现一系列生理和分子生物学上的变化，这些变化影响着植物的生长发育和生存。
对植物低温胁迫响应及研究方法的深入研究具有重要意义。
一、植物低温胁迫响应的生理变化1.1 低温胁迫对植物生长发育的影响低温胁迫会对植物的生长发育产生负面影响，包括影响植物的营养吸收、光合作用、呼吸作用、叶绿素合成等生理过程，进而影响植物的生长速率和产量。
在低温条件下，植物的生长速率减缓，叶片变黄、老化，甚至死亡。
植物在长期的低温胁迫条件下，会逐渐形成一定的抗寒性和耐冷性，从而使植物能够更好地适应低温环境。
植物在低温胁迫条件下会积累低温诱导蛋白和抗氧化酶，以对抗氧化应激和细胞膜的氧化损伤，提高植物对低温胁迫的适应能力。
低温胁迫会导致植物的代谢活性发生变化，包括糖代谢、脂质代谢、氮代谢等，进而影响植物的生长发育和产量。
在低温条件下，植物会积累大量的可溶性糖、脂类物质和脯氨酸等物质，以在一定程度上缓解低温胁迫对植物的负面影响。
2.1 低温胁迫下植物基因的表达调控在低温胁迫条件下，植物会激活或抑制一系列基因的表达，从而调控植物的生长发育和适应能力。
通过转录组学和蛋白质组学等技术手段，可以对低温胁迫下植物基因的表达进行全面而深入的研究，从而揭示植物在低温胁迫条件下的分子生物学机制。
植物在低温胁迫条件下会通过一系列信号转导通路来调节其生理和生化反应。
其中包括激活抗寒性基因的CBF信号通路、活化蛋白激酶的MAPK信号通路、激活蛋白酶C的Ca2+信号转导通路等。
研究这些信号通路对于深入了解植物低温胁迫响应机制具有重要意义。
除了蛋白质编码基因的表达调控外，近年来研究发现，非编码RNA在植物低温胁迫响应中也起着重要作用。
miRNA和lncRNA等非编码RNA通过调控植物的基因表达和信号转导，影响植物对低温胁迫的响应能力。
低温胁迫对4种耐阴植物的生理指标的影响
试 验 数 据 采 用 Excel2003 作 图 ， 隶 属 函 数 运 用 SPSS16.0 进行分析。
2 结果与分析
2.1 低温胁迫对相对电导率的影响 从图 1 可知， 随着低温胁迫不断加剧，4 种耐阴
植物相对电导率均呈不断增加趋势， 洒金桃叶珊瑚
的相对电导率最大， 红茴香的相对电导率最小， 阔 叶十大功劳和大叶黄杨的相对电导率相差不大， 在-15℃时， 相对电导率从大到小排序为洒金桃叶珊 瑚、 阔叶十大功劳、 大叶黄杨、 红茴香， 从相对电 导率来看， 红茴香的耐寒性最强， 洒金桃叶珊瑚的 耐寒性最弱。 2.2 低温胁迫对 MDA 含量的影响
耐阴植物是指在光照条件好的地方生长好，但 能耐受适当的阴蔽， 或者在生育期间需要较轻度遮 阴的植物。 随着城市的发展，立体绿化的快速发展， 充分发挥单位面积的绿化效果， 耐阴植物的发展越
来越受到绿化业的重视。 为筛选出适合本地发展的 耐阴植物，我们对 4 种耐阴植物进行低温胁迫试验， 研究不同低温对 4 种耐阴植物的生理响应， 并进行 耐寒性综合分析， 比较出 4 种耐阴植物的耐寒性强
的 4 年生红茴香（Lllicium henryi）、大叶黄杨（Euonymus japonicus）、 阔 叶 十 大 功 劳 （Mahonia fortunei Lindl.）和洒金桃叶珊瑚（Aucuba japonica Variegata.）。 1.2 试验方法 1.2.1 试 验 设 计 试 验 于 2009 年 11 月 下 旬 开 始 ， 在土壤条件与管理水平基本一致的试验地， 选择生 长健康植株，采摘叶片后分别用自来水冲洗，用吸水 纸吸干水分； 将每种叶片分为 6 份， 密封于塑料袋 中，每处理 3 个重复；将分装好的叶片置于超低温冰 箱中，试验设 6 个温度梯度，分别为：5℃、0℃、-5℃、10℃、-15℃、-20℃， 处理 24 h 后将材料取出放入冰 箱（4℃）解冻 24 h，备用。 1.2.2 测定方法 相对电导率测定采用电导 仪法[1]， 叶片可 溶性糖含量 、脯氨 酸 含 量 、SOD 活 性 、丙 二 醛 （MDA）、 可溶性蛋白质等各项生理指标参照路文静 方法[2]，重复 3 次，取其平均值。 1.3 数据分析
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巫 带粒纳辫 ２０（１ 熬 ０，２— １９：． ３ ）４
低 温胁 迫对建 兰 叶片 内源多胺含 量 的影 响
陈 淳 ，陈丽璇 ，柯合作 ，陈丽虹 ，刘黎卿
（ 福建省亚热带植物研究所 福建省亚热带植 物生理生化重点公共实验室 ，福建 厦门 ３ １０ ） ６０６ 摘 要 ：以素 心建兰为材料 ，研 究低 温胁 迫（ ５℃） 对建兰 内源 多胺含量 的影 响。结果表明 ，在低 温胁迫下建兰
ｓｓ ｕｉｇ ｌ ｔ ｅａ ｒ ｔ ｓ ｒ ｎ ｅｔ ａ ｄ ａ ｏ ｅ ｅａ ｒ （ ℃ ）ａ ｄ ｎ ｒ ｌ ｕ ｉ ｄ ｒ ｏ ｅ ｒｔ ｅ ｓ ｅｓ ｗｅｅ ｉｖ ｓ ｇｔ ｔｌｗ ｔｍｐ ｒｔ ｅ ５ ｎ ｎ ｗ ｍｐ ｕ ｒ ｉ ｅ ｕ ｎ ｏｍａ
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关 键 词 ：建 兰 ；低 温胁 迫 ； 多胺 Ｄｏ： ０３ ６ ￣ｉｓ． ０ ・７ １ ０ ００ ． １ ｉ １． ９ ． ｎ１ ９７ ９ ． １ ．２０ ９ ｓ ０ ２ ０ 中 图分 类 号 ：Ｑ９ ５ ８ ４． ７ 文 献 标 识 码 ：Ａ 文 章 编 号 ：１０ —７ １０
Ｃｈ ｎ ｅ ｆ ａ ｇ ｓ ｄ ｇ ｎ ｕ ｌ ａ ｉ ｅ ｎ ｅ ｔ ｆＬｅ ｖ ｓ ｎ Ｃ ｍｂ ｄ ｕ ｏ Ｅｎ ｏ ｅ ｏ ｓＰｏ ｙ ｍ ｎ ｓＣｏ ｔ ｎ ｓ ａ ｅ ｙ ｏ ｉ ｉ ｉ ｍ
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Ａ ｓ ｒ ｃ ：Ｃ ａ ｇ ｓｏ ｎ ｏ ｅ ｏ ｓｐ ｌａ ｎ ｓｃ ｎｅ ｔ ｏ ａ ｅ ｙ ｉｉｍ ｅ ｓ ｏｉｍ ｖ ｒ ｂ ｔ ａ ｔ ｈ ｎ ｅ ｆｅ ｄ ｇ ｎ ｕ ｏｙ ｍｉｅ ｏ ｔｎｓ ｆｌ ｖ ｓｉ Ｃ ｍｂｄｕ ｎ ｉ ｌ ａ． ｅ ｎ ｆ ｕ
生长期 的叶片多胺（Ａ ） Ｐ ｓ总量和亚精胺（ｐ ） ｓ ｄ、腐胺（ｕ） 量都表现 为先升后 降的变化 ，精胺 （ｐ 含 量则是下 Ｐｔ 含 ｓ ｍ）
降然后 上升最后 稳定在 比原 来含 量更高 的水平上 ， 明有 可能在低 温胁 迫下建 兰通过调 节内源 多胺 的总量和 说
不 同多胺种类的 比例来抵御低 温对生理的破坏作 用 ；开花期的建 兰叶片因受低 温胁迫的影响未能合成足 够的
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