动物生理学实验指导实验报告
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告实验目的：本实验旨在探究动物生理学的相关知识，通过对动物进行实验研究，了解和分析不同生理过程对动物的影响。
实验材料和方法：1. 动物：本实验选择小白鼠作为实验对象。
2. 实验组和对照组：将小白鼠分为实验组和对照组，每组各10只。
3. 实验条件：保持实验环境的恒定，包括温度、湿度和光照等。
4. 实验操作：实验组小白鼠接受特定生理刺激，对照组小鼠则不接受任何刺激。
实验结果：经过实验观察和数据分析，得出以下结论：1. 实验组小白鼠在特定生理刺激下表现出明显的生理反应，如心率增加、呼吸加速等。
2. 对照组小鼠未受到刺激，其生理指标保持在正常范围内。
讨论和分析：基于以上实验结果，我们可以得出以下结论和分析：1. 动物在面对不同生理刺激时会产生特定的生理反应，这些反应有助于适应环境变化和维持生命活动的平衡。
2. 生理反应的强度和持续时间可能与刺激的性质和强度有关，不同动物种类也可能表现出不同的生理反应。
3. 在实验中选择小白鼠作为实验对象，是因为其生理特征和基因组与人类较为接近，可以更好地模拟人体的生理反应。
结论：通过本次实验，我们深入了解了动物生理学的相关知识，对动物在不同生理刺激下的生理反应有了更全面的认识。
动物生理学的研究对人类健康和医学领域具有重要意义，未来可以进一步探索和深入研究动物生理过程中的机制和影响因素。
参考文献：[1] Smith A, et al. Animal Physiology, 2nd ed. New York: Springer, 2015.[2] Wang B, et al. The physiological responses of animals to environmental changes. J Anim Sci. 2018;96(1):26-35.[3] Chen L, et al. Comparative physiology of animal models in biomedical research. Lab Anim. 2018;52(3):225-231.。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告动物生理学实验报告一、引言动物生理学是研究动物体内生理功能的科学，通过实验方法可以深入了解动物的生理特征和机制。
本实验旨在探究动物在不同环境条件下的生理反应，以及这些反应对其生存和适应能力的影响。
二、实验设计本实验采用小鼠作为实验对象，将其分为两组，分别置于不同环境条件下进行观察和记录。
第一组小鼠置于低温环境中，第二组小鼠置于高温环境中。
通过观察小鼠的体温变化、行为活动和食欲等指标，以及采集其血液样本进行生化指标分析，来研究不同环境条件对小鼠生理功能的影响。
三、实验结果与讨论1. 体温变化在低温环境中，第一组小鼠的体温明显下降，表现出寒冷的生理反应。
而在高温环境中，第二组小鼠的体温明显上升，表现出热应激的生理反应。
这说明小鼠能够通过调节体温来适应不同的环境条件。
2. 行为活动在低温环境中，第一组小鼠的活动减少，呈现出较为迟缓的行动。
而在高温环境中，第二组小鼠的活动增加，表现出较为活跃的行为。
这说明小鼠的行为活动受到环境温度的影响，其活动水平会随环境条件的改变而发生变化。
3. 食欲在低温环境中，第一组小鼠的食欲减退，摄食量明显下降。
而在高温环境中，第二组小鼠的食欲增加，摄食量明显增加。
这说明小鼠的食欲受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。
4. 生化指标分析通过对小鼠血液样本的生化指标分析，发现在低温环境中，第一组小鼠的代谢率明显下降，体内的能量消耗减少。
而在高温环境中，第二组小鼠的代谢率明显增加，体内的能量消耗增加。
这说明小鼠的代谢活性受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。
四、结论通过本实验的观察和分析，我们可以得出以下结论：1. 动物能够通过调节体温来适应不同的环境条件。
2. 动物的行为活动水平会随环境温度的改变而发生变化。
3. 动物的食欲会受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。
4. 动物的代谢活性会受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告《动物生理学实验报告》嘿！同学们，今天我要给你们讲讲我做的超级有趣的动物生理学实验！那天，我们走进实验室，就像走进了一个神秘的动物世界。
老师早就准备好了实验器材和可爱的小动物们。
我心里既兴奋又有点小紧张，这会是怎样的一次探索之旅呢？我们做的第一个实验是观察小白鼠的心跳。
老师把一只活蹦乱跳的小白鼠放在了实验台上，它那小小的眼睛滴溜溜地转，好像在说：“这是哪儿呀？”我忍不住问旁边的同学：“你说它知道自己要成为我们的实验对象吗？”同学摇摇头说：“估计不知道，不然它不得吓得撒腿就跑！”哈哈，可不是嘛！老师小心翼翼地把一个小小的传感器放在小白鼠的胸口，然后通过仪器，我们就能看到它心跳的图像啦。
那心跳的曲线就像起伏的小山丘，时高时低。
我惊讶地瞪大了眼睛，心想：“这小小的身体里居然藏着这么神奇的节奏！”接着，我们又做了青蛙的反射实验。
老师把一只青蛙放在板子上，用小锤子轻轻敲了一下它的腿，青蛙的腿一下子就缩了回去。
这可太有意思啦！就好像有人轻轻挠了你一下，你会忍不住躲开一样。
我不禁笑了起来：“这青蛙反应还挺快呀！”旁边的同学也跟着笑：“那当然，要是反应慢，早就被天敌抓住啦！”还有一个实验是观察鱼的呼吸。
我们把一条小鱼放在透明的水缸里，仔细地看着它的鳃一张一合。
那鳃就像一扇扇小小的门，不停地开合，让水流进流出，吸取氧气。
我跟小伙伴说：“你看，这小鱼的鳃多勤劳啊，一刻也不停歇！”小伙伴点点头：“是啊，要是它偷懒不呼吸，那不就完蛋啦！”做完这些实验，我心里满满的都是感慨。
动物们的身体就像是一个个精巧的小机器，每个部分都有着独特的功能，配合得那么完美。
它们虽然不会说话，但是它们的身体却在默默地诉说着生命的奥秘。
这不就像我们的班级吗？每个同学都有自己的特长和优点，大家一起合作，才能让我们的班级变得更好。
动物们为了生存不断进化，我们为了梦想也要不断努力呀！我觉得这次动物生理学实验真是太棒啦，让我对动物的世界有了更深的了解，也让我更加珍惜和敬畏每一个生命。
动物生理设计实验报告
一、实验题目动物心肌细胞动作电位与兴奋传导的观察二、实验目的1. 观察动物心肌细胞动作电位的变化。
2. 分析心肌细胞兴奋传导的规律。
3. 掌握观察心肌细胞动作电位和兴奋传导的实验方法。
三、实验原理心肌细胞是心脏的基本功能单元，其兴奋和收缩是心脏搏动的基础。
心肌细胞动作电位是心肌细胞兴奋和收缩的前提，兴奋在心肌细胞之间的传导则是心脏协调搏动的基础。
本实验通过观察动物心肌细胞动作电位的变化和兴奋传导的规律，进一步了解心肌细胞的功能和心脏的生理机制。
四、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：显微镜、心肌细胞培养箱、心肌细胞培养液、电极、信号采集系统、计算机3. 实验试剂：胎牛血清、青霉素、链霉素、培养皿、吸管、手术刀、缝合针等五、实验方法1. 动物心肌细胞的培养：（1）取家兔心脏，用无菌手术刀切取心肌组织，放入含有胎牛血清的培养液中，用吸管吹打使其分散成单个细胞。
（2）将分散的细胞放入培养皿中，加入培养液，放入心肌细胞培养箱中培养。
（3）待细胞生长至一定密度后，进行实验。
2. 观察心肌细胞动作电位：（1）将培养好的心肌细胞涂在载玻片上，用显微镜观察。
（2）用电极刺激心肌细胞，观察动作电位的变化。
3. 观察心肌细胞兴奋传导：（1）将心肌细胞分为两组，一组为实验组，另一组为对照组。
（2）在实验组心肌细胞的一端施加刺激，观察兴奋传导的情况。
（3）对照组不施加刺激，观察心肌细胞的正常状态。
六、实验结果与分析1. 动物心肌细胞动作电位的变化：（1）实验组心肌细胞动作电位表现为快速上升和下降，峰电位明显。
（2）对照组心肌细胞动作电位表现为缓慢上升和下降，峰电位不明显。
2. 心肌细胞兴奋传导的规律：（1）实验组心肌细胞兴奋传导速度较快，且呈对称性。
（2）对照组心肌细胞兴奋传导速度较慢，且呈不对称性。
七、结论1. 动物心肌细胞动作电位的变化与兴奋传导的规律密切相关。
2. 心肌细胞动作电位的变化和兴奋传导的规律是心脏搏动的基础。
动物生理基础实验报告
动物生理基础实验报告一、引言动物生理学是研究动物生命活动的基本原理和规律的科学。
生理实验是生理学研究的重要手段之一，通过实验可以观察和测量动物在不同条件下的生理变化，从而揭示动物的生理机制。
本实验报告旨在介绍动物生理基础实验的实施方法和结果分析。
二、实验目的1. 了解动物生理学实验的基本步骤和方法；2. 掌握实验仪器的使用和操作技巧；3. 分析实验结果，探究动物生理机制。
三、实验材料和方法1. 实验材料：实验动物（如小鼠、大鼠等）、实验仪器（如生理记录仪、注射器等）；2. 实验方法：(1) 准备实验动物，并根据实验设计将其分为不同组别；(2) 使用实验仪器测量动物的生理参数，如心率、呼吸频率等；(3) 对实验组动物进行特定处理，如注射药物、暴露于特定环境等；(4) 记录实验数据，并进行统计分析。
四、实验结果与分析1. 实验组动物与对照组动物在生理参数上的差异：实验结果显示，实验组动物的心率显著增加，呼吸频率明显减少，与对照组动物相比存在明显差异。
这表明实验组动物受到了特定处理的影响，可能是由于注射药物导致心率加快，或者环境因素导致呼吸频率下降。
2. 实验数据的统计分析：通过对实验数据进行统计分析，我们可以得出以下结论：(1) 实验组动物的心率平均值为X，对照组动物的心率平均值为Y，两者之间存在显著差异（p<0.05）；(2) 实验组动物的呼吸频率平均值为X，对照组动物的呼吸频率平均值为Y，两者之间存在显著差异（p<0.05）。
五、讨论与总结1. 实验结果的解释：实验结果显示，实验组动物在心率和呼吸频率上与对照组动物存在明显差异。
这表明实验组动物受到了特定处理的影响，可能是由于注射药物导致心率加快，或者环境因素导致呼吸频率下降。
2. 结果可能存在的误差：在实验过程中，可能存在一些误差导致实验结果的偏差，如操作不准确、测量仪器的误差等。
为减小误差，我们在实验过程中尽量保持操作的准确性，并使用精确的测量仪器。
生理牛蛙的实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解牛蛙的生理特点，包括呼吸、循环和神经系统等。
2. 掌握生理实验的基本操作方法，提高实验技能。
3. 分析实验数据，加深对生理学知识的理解。
二、实验原理牛蛙作为一种两栖动物，其生理结构与人类有许多相似之处。
通过观察牛蛙的生理现象，可以了解动物生理学的基本原理和规律。
三、实验材料1. 实验动物：牛蛙一只2. 实验器材：蛙类手术器械一套、解剖盘、解剖剪、眼科剪、镊子、探针、玻璃分针、蛙钉、培养皿、蛙板、滴管、棉线、任氏液、显微镜、生物信号采集处理系统、微机、肌槽、刺激电极、铁架台等。
四、实验步骤1. 观察牛蛙外观：观察牛蛙的整体形态、皮肤、四肢、眼睛等特征。
2. 解剖牛蛙：将牛蛙置于解剖盘中，用解剖剪剪开皮肤，暴露肌肉、骨骼、内脏等器官。
3. 观察呼吸系统：观察牛蛙的鳃、口腔、咽、食道等部位，了解其呼吸过程。
4. 观察循环系统：观察牛蛙的心脏、血管等部位，了解其血液循环过程。
5. 观察神经系统：观察牛蛙的大脑、脊髓、神经等部位，了解其神经传导和调节功能。
6. 进行生理实验：包括坐骨神经腓肠肌标本制备、不同强度和频率的刺激对肌肉收缩的影响等实验。
7. 观察肌肉收缩：观察肌肉在刺激下的收缩现象，记录收缩幅度、频率等数据。
8. 分析实验数据，得出结论。
五、实验结果与分析1. 观察牛蛙外观：牛蛙呈灰绿色，皮肤光滑，四肢发达，眼睛突出。
2. 解剖牛蛙：牛蛙内脏器官包括心脏、肺、胃、肠、肝脏、肾脏等。
3. 观察呼吸系统：牛蛙的呼吸通过鳃和肺进行。
鳃位于头部两侧，肺位于胸腔内。
4. 观察循环系统：牛蛙的心脏为两心房一心室，血液循环为单循环。
5. 观察神经系统：牛蛙的大脑位于头部，脊髓位于脊柱内，神经遍布全身。
6. 进行生理实验：制备坐骨神经腓肠肌标本，观察不同强度和频率的刺激对肌肉收缩的影响。
7. 观察肌肉收缩：肌肉在刺激下产生收缩，收缩幅度和频率与刺激强度和频率有关。
六、实验结论1. 牛蛙的生理结构与人类有许多相似之处，可以用于生理学实验研究。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告动物生理学实验报告引言动物生理学是研究动物体内各种生理过程的科学。
通过实验，可以深入了解动物的生理功能和适应机制。
本实验旨在探究动物的呼吸系统对不同环境条件的适应能力，并分析实验结果。
材料与方法本实验选取了十只小白鼠作为实验对象，将它们分为两组，每组五只。
第一组置于常温环境，第二组则置于低温环境。
实验过程中，记录每只小白鼠的呼吸频率、呼吸深度和体温。
结果与讨论在常温环境下，小白鼠的呼吸频率平均为60次/分钟，呼吸深度平均为20毫升/次，体温平均为37摄氏度。
而在低温环境下，小白鼠的呼吸频率明显增加至80次/分钟，呼吸深度也增加至30毫升/次，体温则下降至35摄氏度。
这一结果表明，小白鼠在低温环境下呼吸系统呈现出明显的适应性变化。
增加的呼吸频率和呼吸深度可以帮助小白鼠更有效地摄取氧气，并提供足够的能量维持正常生理功能。
体温的下降则可能是为了降低能量消耗，以应对低温环境。
进一步分析，这种适应性变化可能与小白鼠的生理机制有关。
在低温环境下，动物体内代谢率会增加，以产生更多的热量来维持体温。
呼吸系统的适应性变化可以提供更多的氧气供应，以满足代谢需求。
此外，体温的下降可能与体内热量的调节有关，通过降低体温来减少热量损失。
然而，需要注意的是，这个实验结果只是对小白鼠的观察，不能直接推广到其他动物或人类身上。
不同物种之间的生理适应机制可能存在差异，因此需要进一步的研究来验证这些结果。
结论通过本实验，我们发现小白鼠在低温环境下呼吸系统呈现出适应性变化，包括增加呼吸频率和呼吸深度，并降低体温。
这些变化可能是为了更好地适应低温环境并维持正常生理功能。
然而，需要进一步的研究来验证这些结果，并深入探究动物的生理适应机制。
结尾动物生理学实验为我们提供了深入了解动物生理功能的机会。
通过实验观察和分析，我们可以揭示动物在不同环境条件下的适应能力和生理机制。
希望本实验的结果能为动物生理学领域的研究提供一定的参考，并推动更多的科学探索。
生理学_小鼠实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解小鼠的生理结构及功能；2. 掌握生理学实验的基本操作；3. 熟悉生理学实验数据的记录和分析方法。
二、实验原理生理学实验是通过观察、测量和分析生物体的生理现象来研究生物体结构和功能的一种方法。
本实验以小鼠为实验对象，通过观察小鼠的生理指标，了解小鼠的生理结构和功能。
三、实验材料1. 实验动物：成年雄性小鼠；2. 实验仪器：生理信号采集系统、生理实验台、手术器械、生理盐水、注射器、记录纸等；3. 实验试剂：生理盐水、肝素钠等。
四、实验方法1. 实验动物准备：选择健康成年雄性小鼠，进行适应性饲养，使其适应实验环境。
2. 生理指标测量：（1）心率测量：采用生理信号采集系统，测量小鼠的心率；（2）呼吸频率测量：观察小鼠的呼吸动作，记录呼吸频率；（3）体温测量：使用体温计测量小鼠的体温；（4）血压测量：采用生理信号采集系统，测量小鼠的血压。
3. 数据记录与分析：将实验数据记录在实验记录纸上，并对数据进行统计分析。
五、实验结果1. 心率：实验中小鼠的心率为（x±y）次/分钟，与正常值（约300-500次/分钟）相符；2. 呼吸频率：实验中小鼠的呼吸频率为（a±b）次/分钟，与正常值（约60-100次/分钟）相符；3. 体温：实验中小鼠的体温为（c±d）℃，与正常值（约36-37℃）相符；4. 血压：实验中小鼠的收缩压为（e±f）mmHg，舒张压为（g±h）mmHg，与正常值（收缩压约80-120mmHg，舒张压约60-90mmHg）相符。
六、实验讨论1. 通过本次实验，我们掌握了生理学实验的基本操作，了解了小鼠的生理结构和功能；2. 实验结果显示，小鼠的心率、呼吸频率、体温和血压等生理指标均在正常范围内，说明实验动物处于健康状态；3. 在实验过程中，需要注意实验操作的规范性，避免对实验动物造成伤害。
七、实验总结本次实验成功地完成了小鼠生理学实验，通过对小鼠的生理指标进行测量和分析，我们了解了小鼠的生理结构和功能。
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动物生理学实验指导教案动物生理学研究性实验的程序与基本要求《动物生理学》不仅是一门理论性很强的基础性学科，而且是实验性很强的学科，它的许多理论都来自科学实验结果。
因此，在学生经过了一段时间的《动物生理学》理论的学习和一定的实验基本技术操作训练及经典性实验实践之后，进一步进行有关的《动物生理学》研究性实验的基本训练是非常必要的。
通过实验设计、探索性实验过程，能使学生充分认识实验在科学理论产生和发展中的作用；培养学生的创新精神及观察和发现问题的能力；解决实际问题和分析、综合实验结果的能力；通过撰写研究性论文使学生学会用逻辑性语言表达研究结果的能力；为今后独立进行科学研究打下良好的基础。
实验一实验技术与实验仪器一、动物生理学实验课程的教学目的本课程旨在通过实验教学训练学生基本操作技能，培养其动手能力，并使学生通过该课程的学习与理论知识融会贯通；培养学生实事、严谨的科学作风和严密的科学逻辑思维方法，以及观察、分析、解决问题的综合能力。
同时，通过学习实验课程中的新技术、新方法，使学生了解和掌握机能学科实验方法的更新和发展方向，启发学生在机能学科实验研究中的创新性思维。
为培养学生的科学研究思维和科学研究能力奠定良好基础。
二、学习动物生理学实验课程的要求1．做好实验前理论与操作准备(1)熟悉相关理论知识，以明确相关实验的设计目的、实验原理以及正确的实验结果。
(2)预习实验教材中拟进行的实验容，掌握实验目的与原理，了解实验步骤及操作要点、注意事项等。
2．以严谨的科学态度进行实验(1)实验中严格按操作程序进行。
实验小组各成员合理分工并密切合作，注意培养自己的动手能力与独立解决实验过程中的问题的能力。
(2)仔细、耐心观察实验现象，认真做好记录。
主动联系理论思考、分析实验结果和各种实验现象。
认真总结实验成败原因。
培养实事的科学作风。
(3)所进行的实验结果均应完整记录。
整理分析其结果后书写出实验报告。
三、实验结果的记录方法与实验报告的书写要求1．实验结果表示方法(1)图形表示法：实验结果如以图形记录在实验仪器上的，可通过输出设备打印，再附在实验报告上。
如神经肌肉的电活动记录，心肌、肠肌收缩曲线，血压曲线等。
某些数据亦可经统计学处理后做成图形表示。
如不同血药浓度与相应时间的对应关系，此时血药浓度为纵坐标、时间为横坐标，描记出药时曲线图形。
(2)数据表示法：实验结果以测定数据记录的，也可以统计数据表格形式表示，如：各组动物不同情况下的血液、体液电解质浓度，PC02、P02等数据。
2．实验报告的书写要求在实验报告封页上应写上、学号、年级、班次和实验组别。
字迹清楚，工整。
按格式要求逐一书写（1）实验题目：一般将实验题目放在实验报告纸的第一行或第一行正中。
（2）实验目的：字数不宜繁多。
一般用1～2句话阐明实验所要证实的论点或要研究的容即可。
（3）实验方法：应注明实验动物名称，麻醉方法。
其余实验操作如实验仪器、实验药物或试剂、实验步骤与过程等，可用“按XX章XX实验项下的实验方法进行”等字样表示。
（4）实验结果：根据实验结果真实、完整地以图形、表格或文字方式表示出来。
如因操作失误或实验动物发生意外未能完成所需观察的实验结果，应在实验报告中如实说明。
（5）讨论和结论：讨论应结合实验结果进行，宜简明扼要。
主要是分析解释所观察到的实验结果和现象，如为预期结果，应结合理论知识进行其作用、作用机制的阐述。
如未达预期结果，应找出原因，总结其经验教训。
结论放在实验讨论后，作为结尾完成。
结论应以实验结果为依据，在讨论的基础上概括、总结具有代表性的实验结果的论点或推论。
四、实验室规则和操作规程1．按时进入实验室，不得迟到早退或随意缺席。
2．养成良好的学习和工作作风，保持实验室安静。
严禁在实验室里高声喧哗、打闹。
3．爱护实验室设施。
实验中严格按实验步骤和方法进行。
未经教师同意不得随意动用实验室仪器或器械。
切忌违规操作或粗暴使用精密仪器。
如微机操作应掌握如何正确开机、如何进入实验程序、如何启动记录、如何存储与输出、如何打印实验结果及关机等。
严禁在微机上玩游戏、作个人文件、随意启动其他程序，甚至损坏实验程序等与实验无关甚至非法的活动。
4．实验前认真按教材清点实验桌上的实验器材，如有实验器械缺少或损坏应及时向教师报告。
实验完毕后应将器械清洗干净，摆放整齐。
如在实验过程中意外损坏实验器械，应向教师报告说明，以及时检修或更换。
故意损坏实验仪器或器械者，除照价赔偿外，学校将给予行政处罚。
5．养成节约用物的良好习惯，不得随意浪费动物标本、器材、药品和试剂。
能重复利用的器材如纱布、缝合针、试管、插管、针头等，应洗净再用。
实验中不得图个人方便而随意移走公用物品。
实验废物不得乱倒、乱扔，尤其是强酸、强碱试剂或具放射性的液体或污物，动物皮毛，组织器官，纸屑等不得倒入水槽，应统一放置在指定地点。
6．实验完成后，应及时关闭微机。
离开实验室以前应安排值日小组打扫实验室清洁，整理桌面物品，关闭总电源及稳压器开关、水开关、门窗等。
最后请实验室管理人员检查验收后方能离开。
五、动物生理实验常用手术器械1 常用手术器械动物生理学实验常用手术器械与医学外科手术器械大致相同,但也有一些专用器械.现仅介绍常规的手术器械。
(1)手术刀手术刀主要用来切开皮肤和脏器。
手术刀片有圆刃、尖刃和弯刃三种。
刀柄也分多种，最常用的是4号刀柄和7号刀柄（图3.1-1）。
可根据手术部位、性质的需要自由拆装和更换变钝或损坏的手术刀片（图3.1-2）。
持刀的方式有4种(图3.1-3)，其中“执弓式”是一种常用的的持刀方式。
其动作围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
(2)手术剪和粗剪刀手术剪分钝头剪、尖头剪。
其尖端有直、弯之分。
主要用于剪皮肤、肌肉等软组织。
也可用来分离组织，即利用剪刀尖插入组织间隙，分离无大血管的结缔组织。
另外，还有一种小型的眼科剪，主要用于剪血管和神经等软组织。
一般说来，深部操作宜用弯剪，不致误伤。
剪线大多为钝头直剪，剪毛用钝头、尖端上翘的。
正确执剪姿势是用拇指与无名指持剪，食指置于手术剪的上方（图3.1-4）。
粗剪刀，为普通的剪刀。
在蛙类的实验中，常用来剪蛙的脊柱、骨和皮肤等粗硬组织。
(3)手术镊手术镊种类很多，名称也不统一，常用的有无齿镊和有齿镊两种,用于夹住或提起组织，以便剥离、剪断或缝合。
有齿镊用于提起皮肤、皮下组织、筋膜、肌腱等较坚韧的组织，使其不易滑脱。
但有齿镊不能用以夹持重要器官，以免造成损伤。
无齿镊用于夹持神经、血管、肠壁或其他脏器,较脆弱组织，而不致使之受损伤。
正确执镊方法如图3.1-5，用力适当地把持着。
(4)血管钳血管钳又称止血钳，有直、弯、带齿和蚊式钳等数种。
主要用于夹血管或止血点，以达止血的目的。
也用于分离组织、牵引缝线，把持或拔缝针等。
正确持钳和持剪方法相同（图3.1-6）。
开放血管钳的方法是利用右手已套入血管钳的拇指与无名指相对挤压，继而两指向相反的方向旋开，放开血管钳(图3.1-7)。
(5) 骨钳在打开颅腔和骨髓腔时，用于咬切骨质。
(6)颅骨钻用于开颅时钻孔。
(7)气管插管急性动物实验时，插入气管，以保证呼吸通畅，或做人工呼吸。
将一端接气鼓或换能器，可记录呼吸运动。
(8)血管插管有动脉插管和静脉插管。
一些小型动物的动脉插管可用16号输血针头磨平来替代。
在急性实验时插入动脉，另一端接压力换能器或水银检压计，以记录血压。
静脉插管插入静脉后固定，以便在实验过程中随时用注射器向静脉血管中注入药物和溶液。
(9)金属探针专门用来毁坏蛙类脑和脊髓。
(10)玻璃分针专用于分离神经与血管等组织。
(11)蛙心夹使用时将夹的前端在蛙心室舒时夹住心室尖，尾端用线系在换能器（或扛杆）上。
(12)动脉夹用于阻断动脉血流。
(13)蛙板一块20 cm×15 cm的木板，用于固定蛙类。
各种手术器械使用后，都应及时清洗，齿间、轴间的血迹也应用小刷刷洗干净。
洗净后用干布擦拭干，忌用火烤烘干或重击。
久置不用的金属器械应檫油保护。
2. 实验动物六、计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中的应用生物信号采集、处理系统是应用大规模集成电路、计算机硬件和软件技术开发的一种集生物信号的放大、采集、显示、处理、存储和分析的电机一体化仪器。
该系统可替代传统的刺激器、放大器、示波器、记录仪，一机多用，功能强大。
广泛地被应用于生理学、病理学、药理学实验。
1 计算机生物信号采、集处理系统的基本组成和工作原理目前我国的生物信号采集处理系统多达十余种,因各制造商开发的年代和使用风格不同,相互之间存在着一定的差异。
早期的产品基于DOS操作系统，而近期产品多以Windows操作系统，虽然产品有不同的特点，但基本的结构和工作原理具有一定的共性,现做一简要的介绍。
该系统由硬件和软件两大部分组成。
硬件主要完成对各种生物电信号(如：心电、肌电、脑电)与非电生物信号(如：血压、力、呼吸)的采集。
并对采集到的信号进行调理、放大，进而对信号进行模／数(A／D)转换，使之进入计算机。
软件主要用来对已经数字化了的生物信号进行显示、记录、存储、处理及打印输出，同时对系统各部分进行控制，与操作者进行人机对话(图2.5-1)。
（1）传感器和放大器生物所产生的信息，其形式多种多样，除生物电信号可直接检取外，其它形式的生物信号必须先转换成电信号，对微弱的电信号还需经过放大，才能作进一步的处理。
生物信号采集处理系统中的刺激器和放大器都是由计算机程控的,其工作原理和一般的刺激器、放大器完全一样。
主要的区别在于一般仪器是机械触点式切换，而生物信号采集系统是电子模拟开关，由电压高低的变化控制，是程序化管理，提高了仪器的可靠性，延长了仪器的寿命。
（2）生物信号的采集计算机在采集生物信号时，通常按照一定的时间间隔对生物信号取样，并将其转换成数字信号后放入存。
这个过程称为采样。
(1)A/D转换器生物信号通常是一种连续的时间函数，必需转换为离散函数，再将这离散的函数按照计算机的“标准尺度”数字化，以二进制表达，才能被计算机所接受。
A/D转换设备能提供多路模/数转化和数/模转换化。
A/D转换需要一定时间，这个时间的长短决定着系统的最高采样速度。
A/D转换的结果是以一定精度的数字量表示，精度愈高，（曲线的）幅度的连续性愈好。
对一般的生物信号采样精度不应低于12位数字。
转换速度和转换精度是衡量A/D转换器性能的重要指标。
(2)采样与采样有关的参数包括：通道选择、采样间隔、触发方式和采样长度等方面。
①通道选择：一个实验往往要记录多路信号，如心电、心音、血压等。
计算机对多路信号进行同步采样，是通过一个“多选一”的模拟开关完成的。
在一个很短暂的时间，计算机通过模拟开关对各路信号分别选通、采样。
这样，尽管对各路信号的采样有先有后，但由于这个“时间差”极短暂，因此，仍可以认为对各路信号的采样是“同步”的。