芦荟组培实验报告
组培学实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和方法。
2. 掌握植物组织培养实验操作技能。
3. 通过实验，学习植物组织培养技术在植物繁殖、育种和基因工程等领域的应用。
二、实验原理植物组织培养是利用植物体细胞的全能性，通过无菌操作，将植物组织、器官或细胞在适宜的培养基上进行培养，使其生长发育成为完整的植株。
实验过程中，培养基的营养成分、激素配比、光照、温度等条件对植物组织培养的成功至关重要。
三、实验材料与仪器材料：1. 植物外植体：叶片、茎段等。
2. MS培养基：含有植物生长激素、维生素、微量元素等。
3. 营养液：用于补充培养基中的营养成分。
4. 灭菌剂：如氯化汞、酒精等。
5. 灭菌器械：高压灭菌锅、无菌操作台、剪刀、镊子等。
仪器：1. 高压灭菌锅2. 灭菌操作台3. 镜头4. 移液器5. 培养箱6. 热水浴锅四、实验步骤1. 外植体消毒：将外植体用70%酒精消毒30秒，再用氯化汞消毒10分钟，最后用无菌水冲洗3-5次。
2. 切割外植体：用无菌剪刀将消毒后的外植体切割成适宜大小的片段。
3. 制备培养基：将MS培养基和营养液按比例混合，加入适量的植物生长激素，搅拌均匀。
4. 接种：将切割好的外植体接种到制备好的培养基上。
5. 培养：将接种好的培养基放入培养箱中，控制适宜的温度、光照等条件进行培养。
6. 观察与记录：定期观察外植体的生长状况，记录其生长过程。
五、实验结果与分析1. 外植体生长情况：在适宜的培养基和培养条件下，外植体能够生长出愈伤组织、芽和根。
2. 愈伤组织形成：愈伤组织是植物组织培养过程中的重要阶段，它为芽和根的形成提供了物质基础。
3. 芽和根的形成：在适宜的培养基和培养条件下，愈伤组织能够分化出芽和根，形成完整的植株。
4. 实验结果分析：通过本实验，我们掌握了植物组织培养的基本原理和操作技能，了解了植物组织培养技术在植物繁殖、育种和基因工程等领域的应用。
六、实验总结1. 本实验成功地进行了植物组织培养，掌握了植物组织培养的基本原理和操作技能。
金丽勇开题报告
植物细胞工程-开题报告学校：海南大学学院：农学院专业：08生物技术（2）班姓名：金丽勇学号：2008 0104B 075指导老师：莫廷辉2010年12月10日芦荟组织培养的研究一、项目研究的目的意义芦荟属（学名：Aloe）通称芦荟，原产于地中海、非洲，为独尾草科多年生草本植物，据考证的野生芦荟品种300多种，主要分布于非洲等地。
这种植物颇受大众喜爱，主要因其易于栽种，为花叶兼备的观赏植物。
可食用的品种只有六种，而当中具有药有价值的芦荟品种主要有：洋芦荟(又名巴巴多斯芦荟或翠叶芦荟Aloe Barbadensis/Aloe Vera)库拉索芦荟(分布于非洲北部、西印度群岛)，好望角芦荟(分布于非洲南部)，元江芦荟等。
芦荟是百合科芦荟属多年生常绿多肉质草本植物。
近年来，由于芦荟化学及药理学研究的深入，巳形成了一股世界性的芦荟保健热。
据科学研究，发现芦荟中有不少成分对人体皮肤有良好的营养滋润作用，且刺激性少，用后舒适，对皮肤粗糙、面部皱纹、疤痕、雀斑、痤疮等均有一定疗效[1]。
因此，其提取物可作为化妆品添加剂，配制成防晒霜、沐浴液等。
至于轻度的撞伤、挫伤、香港脚、冻伤、皮肤龟裂、疣子等，都可以使用芦荟来治疗，效果不错。
现代研究显示，其叶含芦荟大黄素、异芦荟大黄素及芦荟苦味素等，药理实验有泻下、抗癌作用。
芦荟花性寒，味苦涩，有清热、止咳、止血功效，可治疗咳嗽、吐血[2]。
芦荟的栽培产业也已开始在我国兴起，但由于芦荟不能自花授粉结实，因此，用种子繁殖非常困难。
目前的繁殖方法主要是分株和分蘖，但难以快速、大量地繁殖种苗，这也是当前芦荟种苗昂贵的重要原因之一[3]。
本文介绍一种对芦荟茎尖进行组织培养快速繁殖试管苗的技术，利用这项技术可在短期内繁殖上百万株的种苗，具有成本低，效益高的特点。
二、国内外技术发展概况及趋势（附主要参考文献及出处）很多学者对芦荟不同外植体进行比较试验，苏海等[4]认为，二年生的库拉索芦荟(A. barbadensis)茎尖比茎段更容易诱导出不定芽，而且芦荟快速繁殖宜通过茎尖诱导出不定芽而获得无菌苗，这样省去了诱导愈伤组织步骤，缩短了诱导时间，而且可以减少种苗变异率。
中华芦荟组培快繁试验研究
中华芦荟组培快繁试验研究摘要以中华芦荟茎段为材料，筛选出了MS为较适宜于中华芦荟试管苗生长的培养基，结果表明：初代培养基中，6-BA浓度以2.0～3.0 mg/L、蔗糖浓度以3%为宜；继代培养基以MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L为最佳，芽增殖系数为4.50；生根培养中，不同浓度NAA激素对试管苗生根率和生根数都有极显著的影响，生根培养基以MS+NAA 0.3 mg/L 为最佳，生根率达100%，平均生根数6.3条；试管苗炼苗7～10 d后移栽到蘑菇土∶沙土=3∶1的基质上，移栽成活率可达97%以上。
关键词中华芦荟；茎段；组培快繁芦荟为百合科多年生肉质草本植物，中华芦荟（Aloe vera L.var.chinensi）是库拉索芦荟的优良变种。
近年来，芦荟产业发展迅速，芦荟产品深受人们的喜爱，其应用前景广泛。
但因芦荟雌雄花开不同步，种子育苗困难[1] ，而目前的繁殖方法以芽分生为主，不能大规模快速繁殖，影响了芦荟产业的发展。
因此，笔者在前人研究的基础上，以中华芦荟茎段为材料，探索促进茎段丛生芽分化及瓶苗壮苗生根的方法，为大规模快速生产芦荟组培苗提供理论和实践依据[2-6]。
1 材料与方法1.1 试验材料供试中华芦荟幼苗材料，由厦门远太景观规划设计工程有限公司苗圃基地提供。
供试试剂为75%酒精、0.1%升汞、激素（6-BA）、生长素（NAA）、蔗糖、琼脂等。
1.2 试验方法1.2.1 外植体的选取及消毒。
取株高为15～20 cm的中华芦荟，剥去其外层叶片及根系，先用自来水将茎段冲洗干净，然后将其放置在超净工作台上用75%酒精浸泡30 s，再用0.1%升汞灭菌10 min，最后用无菌水将其冲洗4～5次。
消毒完毕，应将芦荟茎段接种于不同的诱导培养基上。
1.2.2 培养基及培养条件。
以MS为基本培养基，附加不同浓度的激素（6-BA）、生长素（NAA），添加蔗糖3%、琼脂0.65%，pH值5.8，培养温度为26～28 ℃，光照强度2 000～2 500 lx，光照时间10～12 h/d。
NAA浓度对中华芦荟叶片组织培养影响的研究
不同浓度NAA诱导芦荟叶片愈伤效果的研究王玉梅广东第二师范学院生物系09园艺技术广州510303摘要：采用浓度差的方法，考察了0mg/L、0.5mg/L、1mg/L、1.5mg/L四种浓度的NAA对中华芦荟叶片愈伤组织的诱导效果的影响。
结果表明：在MS+0.2mg/L6-NA基本培养基中，1mg/L的NAA对愈伤的诱导效果最好。
关键词：芦荟（Aloe）叶片愈伤组织诱导芦荟（Aloe）为百合科芦荟属植物，含有七十多种对人体有益物质，在医学、食用、美容等多方面都具有广泛的实用价值【1】。
芦荟的繁殖一般采用扦插和分株繁殖，然而这些方法受繁殖基数的限制，初期繁殖速度较慢，而且容易是病毒积累，影响植株生长，甚至退化【2】。
采用叶片经愈伤组织诱导再促进长芽、生根的培养方法，不仅可以为生产提供一条在短期内繁殖出大量种苗的途径，以加速新品种的推广，而且还可以解决大规模快速繁殖中材料不足的问题。
该试验以中华芦荟为材料，采用浓度差的方法，探究不同浓度NAA在MS+0.2mg/L6-BA基本培养基中对中华芦荟叶片愈伤组织诱导效果，以期获得最佳浓度。
1 材料与方法1.1 实验材料中华芦荟的幼嫩叶片采自广东第二师范学院生物楼6楼顶1.2 实验方法1.2.1 培养基的配置以MS为基本培养基，其中添加0.2mg/L的6-BA和4个不同浓度的NAA组合（见表1），蔗糖3%，琼脂1%，PH5.8,培养基经高温杀毒30min备用。
表1 培养基与激素组合组名瓶数培养基 6-BA(mg/L) NAA(mg/L)A 10 MS 0.2 0B 10 MS 0.2 0.5C 10 MS 0.2 1D 10 MS 0.2 1.51.2.2 材料灭菌处理取芦荟幼嫩叶片，用自来水洗干净再在流水下冲刷3h, 再用75%的酒精进行表面消毒30s，然后用0．1％的升汞液消毒9min，最后用无菌水冲洗7～8次，洗去植物表面的升汞残液，放人无菌培养皿中，用无菌滤纸吸干水分备用。
芦荟的组织培养和快速繁殖
切块 培 养获 得 了植 株 。 内张 英 、 贵美 、 磊 兴 、 国 林 莫
邹瑜、 小 泉等 以美国库拉 索芦荟 、 李 日本 木 剑 芦
荟 、 山 芦荟 、 芦 荟和 班 纹 芦荟 茎 尖 为材 料进 行 龙 华
ｇ１ ／＋琼脂 ７ｇ ｌ 自来 水 。 ／＋
生根 培 养 基 ：
＋６ＤＡ ２ ５ｒｇ １ Ｂ ． ｇ １ 白糖 ３ ／ － ． ／十Ｉ Ａ ０ ５ｒ ／＋ ａ ａ ０ｇ １
炎 、 菌 、 肿 瘤 等 约 理 作 用 ， 胃疡 病 、 病 、 抗 抗 对 肝 糖
尿 病 、 脏 病 、 血 压 等 都 有 不 同 程 度 的 疗效 ， 心 高 尤 其 对 各 种灼 伤 、 伤 、 伤 及 皮 肤 病 有 明显 疗 效 ， 烫 晒 并 具 有 较 高 的 观 赏 价 值 ， 集 药 用 、 用 、 容 及 是 食 美
６Ｄ ２ ５ｒｇ １ Ｂ ０ ５ｒｇ １ 白糖 ３ １
蜡 ， 国 的 云 南 、 Ｊ 、 西 、 东 、 建等 地 都 有 我 四 Ｉ广 Ｉ 广 福 栽 培 ， 含 有 许 多 对 人 体 有 益 的物 质 ， 芦荟 索 、 它 如
芦荟、紫苏组织培养实验报告
芦荟、紫苏组织培养实验报告一、实验目的与实验要求1、学习MS培养基母液的配制方法。
2、学习用母液法配制培养基以及掌握培养基灭菌的方法。
3、初步掌握外植体芦荟、紫苏等植物材料消毒、接种的无菌操作技术以及外植体初代培养的方法。
4、认识植物组织培养技术在生产实践中起的作用，尤其在于保存珍贵物种和生产研究方面的应用。
5、体验开放式实验教学，培养生物实验意识，提高学习的主动性、获取实验知识的能力和撰写实验报告水平。
二、实验方案1、实验仪器冰箱，分析天平，烧杯（50mL，100mL，500mL，1000mL），量筒(1000mL，100mL，25mL)，容量瓶(1000mL，500mL，100mL)，磨口试剂瓶(500mL，1000mL)，药勺、称量纸、精密pH试纸，滴管、玻璃棒、电炉，微波炉、移液管（10mL，5mL，2mL，1mL，0.5mL），吸耳球，滴瓶，锥形瓶、纱布，耐热橡皮筋，线绳，高压灭菌锅，标签纸，记号笔、解剖工具、托盘、棉花、超净工作台2、实验药品NH4NO3, KNO3, CaCl2•2H2O, MgSO4•7H2O, KH2PO4, KI, H2BO3，MnSO4•4H2O,ZnSO4•7H2O, Na2•MoO4•2H2O, CuSO4•5H2O, CoCl2•6H2O, Na2•EDTA•2H2O，FeSO4•7H2O,烟酸,甘氨酸, 维生素B1,维生素B6 ,肌醇, 蒸馏水, 琼脂,蔗糖,NAA，6-BA，1mol/LHCl，1mol/LNaOH, 升汞,吐温-803、实验原理(1)母液法配制培养基原理在实验中常用的培养基，可将其中的各种成分配成10倍、100倍的母液，放入冰箱中保存，用时可按比例稀释。
配制母液有2点好处：一是可减少每次配制称量药品的麻烦，二是减少极微量药品在每次称量时造成的误差。
母液可以配单一化合物母液，但一般都配成以下四种不同混合母液。
应注意以下几个方面：A.药品称量应准确，尤其微量元素化合物应精确到0.0001克，大量元素可精确到0.01克。
芦荟组培实验报告
一、实验简介实验名称：芦荟组织培养实验实验目的：了解芦荟组织培养的基本原理和方法，掌握植物组织培养技术，探索芦荟快速繁殖和优良品种选育的新途径。
实验时间：2023年X月X日至2023年X月X日实验地点：XX大学植物组织培养实验室二、实验材料与仪器1. 实验材料：- 芦荟植株：新鲜、无病虫害的健康芦荟植株- 诱导培养基：MS培养基（改良Skoog和Lisense培养基）- 细胞分裂素：6-苄基腺嘌呤（BAP）- 脱分化培养基：1/2MS培养基- 生根培养基：1/2MS培养基+IAA（吲哚乙酸）- 营养液：1/2MS培养基+植物激素- 灭菌剂：70%酒精、0.1%氯化汞2. 实验仪器：- 恒温培养箱- 离心机- 超净工作台- 剪刀、解剖刀、镊子、剪刀等三、实验方法1. 材料处理- 将芦荟植株洗净，用70%酒精消毒后，用0.1%氯化汞浸泡5分钟，再用无菌水冲洗3次。
- 将消毒后的芦荟植株切成小块，每块含有1-2个腋芽。
2. 芦荟组织培养- 将芦荟小块接种于诱导培养基上，置于恒温培养箱中，培养温度为25℃，光照时间为12小时/天。
- 在诱导培养基中，细胞分裂素浓度为0.5mg/L，培养7天后，观察愈伤组织的形成情况。
3. 愈伤组织分化- 将愈伤组织接种于脱分化培养基上，继续培养，观察愈伤组织分化成丛生芽的情况。
- 在脱分化培养基中，细胞分裂素浓度为0.1mg/L，生长素浓度为0.1mg/L，培养14天后，观察丛生芽的形成情况。
4. 丛生芽生根- 将丛生芽接种于生根培养基上，置于恒温培养箱中，培养温度为25℃，光照时间为12小时/天。
- 在生根培养基中，生长素浓度为0.5mg/L，培养10天后，观察生根情况。
5. 炼苗与移栽- 将生根后的芦荟幼苗移栽到土壤中，进行炼苗。
- 注意保持土壤湿润，适当遮荫，促进幼苗生长。
四、实验结果与分析1. 芦荟愈伤组织形成- 在诱导培养基中，芦荟愈伤组织形成较为良好，愈伤组织呈白色，质地柔软。
皂质芦荟的组织培养研究
切 成数 个 ， 入 不 同浓 度 ６Ｂ Ｎ Ａ 的 Ｍ 转 －Ａ、Ａ Ｓ培养 基上 ， 每个
组合设 ３ 次重复 ， 每次重复接种 ９ ， 瓶 接种后每重复随机抽 取３ 瓶进行观测 ， 测量结果取平均值。 生根阶段 ， 将在继代培养基中生长健壮 的小苗（ 苗高 ３
维普资讯
安徽农 业科 学 ｏｒａ ｏ Ａ ｈｉ ｇ ．ｃ． ０７３ （４ ：１５４ １ Ｊｕｎｌ ｆ ｎｕ ｎ ｒ Ｓｉ２ ０ ，５ １）４ １－ １６ ｉ
责任 编辑 王丽莉 责 任校对 王 淼
皂质芦荟 的组织培养研究
张进， 云 信 农 高 专 学 ，南 阳４０ ） 滕 （阳 业 等 科 校河 信 ６０ ４０
ｍｅ ｉｍ ／ ＋ＮＡＡ ５ｍｇＬ． ｅｃ ｌｕ ｅｍｅ ｉｍｓａ ｖ ｏ ｔｉｅ ． ％ ｓ ｃｏ ｅａ ｄ０８％ ａ ａ ｔ Ｈ ａＨ ． ｄｕ １２ＭＳ ０． ／ Ｔｈ ｕ ｔｒ ｄｕ ｂｏ ｅｃ ｎａｎ ｄ２５ ｕ ｒ ｓ ｎ ． ｇ ｒｗｉｈｐ ｖ ｅ６０． ｌ
Ａｂｓｒ ｃ Ｂｌｄ ｉ． ｅ ｄｉ ｇａ ｄ ａ ｉ ａｙｂ ｄ ｏ Ａ ／ｅｓ ｐ ｎ ｒａａ ｘ ｌｎｓｗｅｅｓｕ ｉｄ ｂ ｎｖｔｏｃ ｌｕ ｅ Ｒｅ ｕ ｔ ｈ ｗｅ ｔｃ ｌｕ ｏ ｌ ｅ ｔａ ｔ ａ ｅｔｐ ｓ ｅ ｌｎ ｎ ｘｌ ｒ ｕ ｆ ｏ ａ ｏ ａ ｉ ｓｅ ｐａ ｔ ｒ ｔ ｄｅ ｙｉ ｉｒ ｕｔ ｒ ． ｓ ｌ ｏ ｄｔ ａｌｓｃ ｕｄ ｂ ｌ ｓ ｈａ ｇ ｎｅａｅ ｎ ｔ ｅｃ ｔ ｆｂ ａ ｅ ｔ ｔａ ｏ ｔ２５ ｄ ｅ ｒ ｔｄ ｏ ｈ ｕｓｏ ｌｄ ｉ ａ ｂ ｕ ．Ａｎ ｆｅ ５ ｄ，ｒｇ ｎ ｒ ｔ ｎ ｂ ｓｇ ｒ ｎａｅ Ｓ ｅ ｌｎ ｓ ｏ ｌ ｉｅ ｔｙ ｄｆｅｅ ｔａｅｉ ｔ ｐ ｄ ａｔｒ１ ｅ ｅ ｅａｉ ｕｄ ｅｍｉ ｔｄ． ｅ ｄｉ ｇｂａｅ ｃ ｕ ｄ ｄｒ ｃｌ ｉ ｒ ｎｉｔ ｎｏ ｏ ｆ
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
1.2 培养基
愈伤组织诱导培养基（一）MS + ( 2. 5mg / 1) 6- BA+ ( 0. 15mg / 1) NAA, PH6. 2;
目前,芦荟广泛用于化妆品、食品、饮料、医药行业中。芦荟目前主要的繁殖方法是分株和扦插,繁殖速度较慢,因而限制了芦荟业的发展。分株和扦插的方法已经不能适应生产发展的要求,因此用组织培养快速繁殖的技术，可以提高产量，成本低，效益高。
二、实验方案
(一) 技术路线
(二) 材料、方法与手段
1 材料
1.1 样品来源
2.2愈伤组织
在无菌条件下,将灭菌好的芦荟的茎尖接种到愈伤组织诱导培养基上,培养条件:温度( 27±1)℃,每天光照10hr—12hr后,光强2001x ,约15天后,试管中的外植体就可膨大形成愈伤组织周后,可将愈伤组织转管进行继代培养或分化培养。两种各培养基接15瓶，每瓶接3块组织。
2.3分化培养
培养基（二）：M S + BA 4.5mg/L + NAA 0.2mg/L +0.25%活性炭上
2.方法与手段
2.1外植体获得
将准备好的芦荟幼苗,用自来水冲洗好后,洗净外表泥土,切除根部大部分叶片,取茎尖部分,先用75%乙醇浸泡60S,然后再用0. 1%升汞消毒15min,最后用无菌水洗4次—5次。
3天
6天
9天
12天
15天
2.分化培养
分化培养基1
分化培养基2
接种数
分化数
分化百分比
小苗情况
原因分析
3.增值生根培养
生根培养基1
生根培养基2
有根小苗数
生根率
根系情况
分析原因
[参考文献]
[ 1]松男等.芦荟组织培养快繁技术研究[ J ] .中国野生植物资源, 1994, 5( 1) : 45～46.
[ 2]桂耀林等.芦荟组织培养及器官分化的研究[ J] .植物学报, 1990, 32( 8) : 606～610.
芦荟的组织培养
生物09本
一、立题依据及背景
芦荟,拉丁名Alo e,是百合科多年生物肉质常绿植物,叶子大,长披针形.芦荟是一种古老而神秘的植物,远在3000多年前人类就用它治疗疾病,我国从唐代就对芦荟的药用有记载。近年来,随着科学技术的发展,人们对芦荟的认识越来越深刻。经检测表明,芦荟的鲜叶中含有芦荟西酊、芦荟碱、芦荟乌辛、治愈激素、蒽类、有机酸、多糖类、氨基酸、维生素及钙、磷、钾、铁等多种矿物质和微量元素。由于芦荟的叶中含有丰富的有效物质,因而具有医疗、保健和美容等多种功能。经功能实验证实,芦荟具有较强的抗感染、杀菌能力,并能促进血液循环和新陈代谢,排除毒素及提高人体抗癌能力,以外,它还具有使皮肤收敛、柔化、保湿、消炎、增白、防皱纹、治疗粉刺的功效。因此,芦荟被人们誉为“万应良药”、“人类最伟大的医生”,形成世界性的芦荟保健热,成为开发者的开发热点。
培养基（二）M S + BA 4.5mg/L+ IBA 0.2mg/L上
分化培养基（一）: MS+ ( 2. 0mg/ 1) 6- BA+ ( 0. 10mg / 1) NAA , PH7. 0;
培养基（二）;M S +BA 4mg/L + NAA 0.5mg/L
生根培养基（一）: MS+ ( 0. 3- 0. 5mg/ 1) 6- BA+ ( 0.2mg / 1) IBA
四、研究条件
植物组织培养实验室
五、研究进度安排
2011.10.31----2011.11.14 愈伤组织的获得
2011.11.14----2011.12.14 得到芽以及小叶
2011.12.14----2012.01.01 得到有根的小苗
六、预期结果
1.愈伤组织不定芽诱导
愈伤组织培养基1
愈伤组织培养基2
在无菌条件下,将愈伤组织取出,用无菌水冲净,切成小块,接种到分化培养基中,培养条件同愈伤组织培养,约30天后,愈伤组织可分化为小芽,并继续长出小叶片。两种培养基各接15瓶，每瓶接3块组织
2.4增殖生根培养
待叶片长至2cm—3cm左右时,将幼苗取出,在无菌条件下,接种到生根培养基中,约15天后,即可生根。两种培养基各接15瓶，每瓶接3株。