浮游植物的采集、计数与定量方法
每种藻类至少随机测量20个以上，求出 这种藻类个体种的平均值，一般都制成 附表供查找。此平均值乘上一升水种该 种藻类的数量，即得到一升水中这种藻 类的生物量（mg/L）。
由于同一种类的细胞大小可能有较大的 差别，同一属内的差别就更大了，因此 必须实测每次水样中主要种类（即优势 种）的细胞大小并计算平均重量，其他 种类可以参考附表计算。
浮游植物的现存量： 定义：指的是某一瞬间单位水体中所存在的浮游植物 的量。 两种表示方法： •
用数目单位表示的密度，一般用个／升为单位，五、六十
年代用之； • 用重量单位（mg/L）表示的现存量称为生物量（Biomass ）。70年代以来被广泛使用。
不同水体，不同种类的藻类在个体上有很大差异，
仅仅用数量就很难评价。这就要求，浮游植物的定
浮游植物的 采集、计数与定量方法
浮游植物（Phytoplankon）又称浮游藻类， 是水中悬浮生活的若干种藻类的总称。浮 游植物及其生产力的作用：
水生态系统的重要成员与重要功能之一： 是鱼类天然饵料的重要组成部分； 由于浮游植物对环境的变化十分敏感，故 在环境监测中，也有重要作用。
种类和数量
凡水深不超过2米者，可于采样点水下0.5m处采水，
水深2～10米以内，应距底0.5米处另采一个样， 水深超过10米时。应于中层增采一个水样。
⑴池塘：样点可设在距岸边1m处。水深小于2m时采一中 层水样。若水深大于2m时，最好采上、中、下层水样。 亚表层：水下20cm左右。 中 层：水体中间部分。 下 层：离底20cm左右。
藻类的生物量可直接作为初级生产力的 一种指标，根据几次定期测算的现存量 之差亦可估计出生产量。
定量结果应列出: 总生物量 各门生物量 优势种属的生物量。
在条件许可时还可以用较简单的测定叶 绿素法，来对照或代替生物量。但叶绿 素法不能反映种类组成情况。
每瓶标本计数数量：计数两片取其平均值 ，每片大约计算50～100个视野，但视野 数可按浮游植物的多少而酌情增减。 如平均每个视野不超过1～2个时，要数200 个视野以上，如果平均每个视野有 5 ～ 6 个时要数100个视野，如果平均每个视野 有十几个时数50个视野就可以了。
同一样品的两片计算结果和平均数之差 如不大于其均数的±15％，其均数视为 有效结果，否则还必须测第三篇。
⑵水库及河流：样点可设在上、中、下游。 上游：设十个点（亚表层或中层） 中游：水在2－3米深时设一个点，采2个样（上中层和中 下层） 下游：设2－3个样点。中心点3个样（上、中、下层）， 两测点各一个样（中层） ⑶湖泊：中心区设一点。进水口和出水口也应设点。
3．采样量及采样次数
每一个采样点应采水1000ml。
下列体积公式，可供计算生物量时参考： 圆锥体：V=1/3л R2h 圆柱体：V=л R2h 球 体：V=4/3л R3 椭圆体：V＝4/3ab2л （a为长轴半径，b为短轴半径）
圆台体：V＝1/3л H（ + 长方体与正方体ab×h或a3 不规则性藻类可分可为几个部分计算。
）
硅藻细胞的计算通式：V＝壳面面积×带 面平均高度
沉淀浓缩：
上述水样，摇匀后倒入1000ml瓶子中沉 淀24小时，用虹吸管小心抽出上面不含 藻类的“清液”。剩下30－50ml沉淀物 转入50ml的定量瓶中；再用上述虹吸出 来的“清液”少许冲洗三次沉淀器，冲 洗液转入定量瓶中。 浓缩时切不可搅动底部，万一动了应重 新静止沉淀。
凡以碘液固定的水样固定的水样，瓶塞 要拧紧。还要加入2－4％的甲醛固定液 （福尔马存。
采水时，每瓶样品必须贴上标签，标签上 药剂在采集的时间、地点、采水体积等 ，其他详细内容应另行做好记录，以备 查对，避免错误。
三、计数方法
工具：将浓缩沉淀后水样充分摇匀后，立 即用0.1ml吸量管吸出0.1ml样品，注入 0.1ml计数框内（计数框的表面积最好是 20×20㎜），小心盖上盖玻片（22×22 ㎜2），在盖盖玻片时，要求计数框内没 有气泡，样品不溢出计数框。然后在 ×10或×40倍显微镜下计数。
量工作，必须以测算生物量为目标。
在早期不同水体饵料生物的丰欠调查中， 人们往往只注重浮游植物的种类或数量， 其原因在于： 浮游植物生物量测算繁琐。
一、采样： 1、工具
25 目
2．采样点的选择及采样层次的确定
选择采样点的原则是，采样点在平面上的分布要有代表 性。根据调查的目的而定。 一般要求湖心、库心、江心必须采样，有条件时采样点 可适当多设一些，如大的湖湾、库湾、河流的上、中、 下游水体的沿岸带、浅水区等也要设点采集。
Pn代表某种藻类的个数，计算结果N只 表示一升水中这种藻类的数量； Pn若代表各种藻类的总数，计算结果N 则表示一升水中浮游植物的总数。 前者若求浮游植物数量将各计算结果相 加即可。
2．生物量一般按体积来换算
这是因为浮游植物个体积小，直接称重 较困难，且其细胞比重多接近于1。可用 形态相近似的几何体积公式计算细胞体 积。细胞体积的毫升数相当于细胞重量 的克数。
若系一般性调查，可将各层采的水等量混合，取 1000ml混合水样固定；
或者分层采水，分别计数后取平均值。 （分层采水可以了解每一采样点各层水中浮游植物的数量和种类）
采样次数可多可少。有条件时还可逐月采样一次， 一般情况可采样一次，最低限度应在春季、夏季 末、秋初各采样一次。
二、固定保存
鲁哥氏液即将6克碘化钾溶于20ml水中， 待其完全溶解后，加入4克碘充分摇动， 待碘全部溶解后定容到100ml即配成鲁哥 氏液。
1．一升水中的浮游植物的数量（N）可用 下列公式计算：
Cs V N Pn Fs Fn U
式中：Cs — 计数框面积（㎜2），一般为400㎜2。 Fs — 每个视野的面积（㎜2），лR2，视野半径r可用台微尺测 出（一定倍数下）。 Fn — 计数过的视野数。 V — 一升水样经沉淀浓缩后的体积（ml） U — 计数框的体积（ml）为0.1ml。 Pn — 计数出的浮游植物个数。 此常数用K表示，则上述公式可简化为：N=K×Pn。
在计数过程中，常碰到某些个体一部分 在视野中，另一部分在视野外，这时可 规定出在视野上半圈者计数，出现在下 半圈者不计数。 数量最好用细胞表示，对不宜用细胞数 表示的群体或丝状体，可求出其平均细 胞数?。
计算时优势种类尽可能鉴别到种或属， 注意不要把浮游植物当作杂质而漏计。
四、数量与生物量的计算：
浮游植物定量
• 球形、园盘形、园锥形、带形等可按求体 积公式计算。 • 纤维形、多角形、新月形以及其他种种形 状可分割为几个部分计算。
• 由于在不同环境中生长的同一种藻类的细 胞体积差异很大，套用所谓的《标准生物 量表》提供的数值计算某一具体水体的生 物量有时会产生很大的误差。所以条件允 许应对优势种和亚优势种进行直接量算， 非优势种群查阅表格。
• 计数时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。
• 计数中的浮游植物的数量, 最好用细胞数表 示。对不易用细胞数表示的种类可计算其 群体或丝状体数。
计数具体要求
• A、校正计数框容积， • B、定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前可 浸于70％酒精中，用时取出以细绢拭干。 • C、滴取样品以后最好用液体石腊封好计数框四周，以防 计数过程中干燥。 • D、以目微尺测所用显微镜一定倍数下的视野直经。 • E、选好与计数框同样容积的吸管备用。 • F、定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴。 • G、加上盖玻片后不应有气泡出现。 • H、计数后的定量样品应保存下来。
• （2）采水量及采样次数
卡盖式采水器
不锈钢采水器
有机玻璃采水器
• • • • •
采样次数可多可少， 有条件时可逐月采样一次， 一般情况可每季采样一次， 最低限度应在春季和夏末秋初各采样一次。 养殖池可随时进行采样。
• 每一采样点应采水1000毫升， • （1）系一般性调查，可将各层采水等量混 合，取1000毫升混合水样固定； • （2）分层采水，分别计数后取平均值。分 层采水可以了解每一采样点各层水中浮游 植物的数量和种类。 • 水样应立即加入15毫升碘液（即鲁哥氏液） 固定。
• 用内径为30毫米的橡皮乳胶管，接上 橡皮球，利用虹吸法将沉淀上层清液 缓慢吸出（切不可搅动底部，万一动 了应重新静置沉淀）。
7.实验七__浮游动物采集和定量
实验目的
掌握浮游动物采集、浓缩、定量的常用 方法。
实验仪器、用品
广口瓶、浮游生物网、量杯、甲醛、刻 度吸管。
实验内容
1.采样：采样点、采样层次 同浮游植物在野外 采集时，必须遵循先采定量样品，后捞定性标本 的原则。
2.浓缩：用广口采水器采10~30 L（30L）水， 用浮游生物Ⅲ型网（25#，200目， 0.064mm孔径）过滤。用5%甲醛固定。
5.生物量的换算：
测出每升水中浮游动物的数量后，再求得各种 浮游动物的平均重量后，生物量就能换算。
① 体积法：把生物体当做一个近似几何图形，按求 体积公式求得生物体积，并假定比重为1，由此得 到体重。
② 沉淀体积法：把浮游动物样品放在有刻度的滴定 管中，经一段时间沉淀后读出沉淀体积。
③ 直接称重法：就是要把称重的生物体，直接放在 微量天平中称其体重。
3.计数：如果数量少（＜1000），可以直接 全部计数。如果数量多，可在相应的计数框内 计数。
4.个体数的计算：
N=(n·V′)/(V·V″)
式中， N为每升的个体数（个/L）； n为取样计数的个体数（个）； V′为水样浓缩的体积（ml）； V″为取样计算的体积（ml）； V为采水量或滤水量（L）。
动物
中型浮游动物定 量：取1 ml浓缩 水样于浮游动物 计数框内全片计
数
大型浮游动物 定量：在解剖 镜下体中浮游动物的密度和生物量
图1 浮游动物采样 、定量流程
作业：1.列表表示各种类浮游 动物的数量。
表1 浮游动物数量计数记录表
标本编号
站号
层次（m）
采水量（L）
浓缩体积（ml） 计数体积（ml）
调查时间： 年 月 日
浮游动植物采样方法
浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶，直接在采样点装满水，加10-15ml的鲁哥试剂，摇匀。
鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中，待其完全溶解后，将4g碘充分摇动，待其完全溶解后，定容至100ml，即配成鲁哥氏液。
二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
三、浮游动物定量
表层取水样10L（中层和底层取20L水样）过25号浮游生物网，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，4%添加的福尔马林溶液。
福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1：9的比例混合配制而成。
四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
浮游生物调查方法
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移 0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2 动台的显微镜。 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后 轻拭或用水冲净。
虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一端 放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经 用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移 开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些 微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于 水面。虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 应使清淮一滴一滴地流下。吸出的清液要用一洁 净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可 重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
数横条，最少不少于5 数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
浮游动物定量：
水质 浮游植物的测定
水质浮游植物的测定 0.1 ml计数框-显微镜计数法1 适用范围本标准规定了测定水中浮游植物的0.1 ml计数框-显微镜计数法。
本标准适用于地表水中浮游植物的密度测定。
样品浓缩50倍时，对角线方式计数方法检出限为9.2×103cells/L；行格方式计数方法检出限为3.0×103 cells/L；全片方式计数方法检出限为9.2×102 cells/L；随机视野方式计数的方法检出限与观察的视野数、显微镜视野面积有关，按附录A计算。
2 规范性引用文件本标准引用了下列文件或其中的条款。
凡是注明日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本标准。
凡是未注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。
GB/T 14581水质湖泊和水库采样技术指导HJ/T 91地表水和污水监测技术规范HJ 494水质采样技术指导3 术语和定义下列术语和定义适用于本标准。
3.1浮游植物 phytoplankton在水中营浮游生活的微小藻类植物，通常浮游植物就是浮游藻类，包括原核的蓝藻和其它各类真核藻类。
3.2显微镜计数视野 microscope counting field显微镜视野中限定一定面积的区域，用于定量计数浮游植物。
3.3检出限 detection limit单次计数过程中，发现的概率不低于99%时最低的浮游植物密度。
4 方法原理在显微镜下，利用0.1 ml计数框对样品中的浮游植物进行人工分类和计数，计算单位体积样品中各种类浮游植物的细胞数量。
5 试剂和材料除非另有说明，分析时均使用符合国家标准的分析纯试剂，实验用水为新制备的去离子水或蒸馏水。
5.1 碘（I2）。
5.2 碘化钾（KI）。
5.3 甲醛溶液：w(HCHO)＝37%～40%。
5.4 丙三醇（HOCH2CHOHCH2OH）。
5.5 鲁哥氏碘液：称取60 g碘化钾（5.2），溶于100 ml水中，再加入40 g碘（5.1），充分搅拌使其完全溶解，加水定容至1000 ml，转移至棕色磨口玻璃瓶，室温避光保存。
研究浮游植物常用的方法
研究浮游植物常用的方法浮游植物是水中的微型植物群体，主要包括藻类和悬浮植物等。
它们在水生生态系统中起着非常重要的作用，不仅是水中有机物的重要来源，还能够维持水质平衡，并为其他生物提供生活所需的氧气。
因此，研究浮游植物的分布、生态特征及其与环境因素之间的关系，对于理解水生生态系统的结构和功能具有重要意义。
以下是研究浮游植物常用的方法：1. 采样分析法：这是最常见的研究浮游植物的方法之一。
在湖泊、河流或海洋中采集水样，然后通过显微镜观察和计数水中的浮游植物。
这种方法可以获得浮游植物的种类组成和数量分布等信息。
2. 长时间监测法：利用自动水质监测仪器，连续监测水体中的浮游植物。
这种方法可以获得时间序列的数据，揭示浮游植物的季节变化规律，并与环境因素进行关联分析。
3. 光合作用测定法：通过测定浮游植物的光合作用速率和光合色素含量等参数，评估其生长和活性状态。
这种方法可以评估浮游植物对光照强度和营养物质的响应能力，揭示浮游植物的生态适应性。
4. 分子生物学方法：利用分子生物学技术，如PCR和DNA测序，对浮游植物的种类和亲缘关系进行分析。
通过提取和分析浮游植物的DNA，可以鉴定浮游植物的种类，甚至对未知种进行分类鉴定。
5. 滨浅法：该方法是在滨浅区域布置采样设备，如固定附着式采枝器、正接触落水手法、藻类拉网法等。
通过长时间的滨浅观察和采样，可以评估浮游植物的垂直分布和生态特征。
6. 光合与呼吸测定法：该方法基于浮游植物在光合和呼吸过程中产生的氧气和二氧化碳的浓度变化。
通过测量水样中氧气和二氧化碳的浓度变化，可以推导浮游植物的光合速率和呼吸速率，进而评估其生态功能。
总结起来，研究浮游植物的常见方法包括采样分析法、长时间监测法、光合作用测定法、分子生物学方法、滨浅法和光合与呼吸测定法等。
这些方法可以从不同角度了解浮游植物的分布、生态特征和生理过程，为水生生态系统的保护和管理提供科学依据。
浮游植物的定量分析
4、注意事项： ①计算过程中常可碰到某些个体的一部分在 视野中，而另一部分在视野外，可规定出 在视野上半圈者计数，下半圈者不计数。 此外，数量最好用细胞数表示，对不易用 细胞数表示的群体或丝状体，可求出其平 均细胞数。 ②计算时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。注意不要把微可用下列公式计算： N = (Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U ) × Pn 式中：Cs——计数框的面积（mm2）； Fs——显微镜的视野面积（mm2） Fn——计数的视野数 V——1升水样浓缩后的体积（ml） U——计数框的体积（ml） Pn——计数出的浮游植物个数 如果计数框、显微镜固定不变，Fs、V、U也固定 不变，公式(Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U )用 常数K代替，上述公式可简化为：N = K × Pn。
2、生物量的换算
★生物量较数量更能反应水体中浮游植物的现 存量，不同水体的数据也更具可比性，所以 计算出的数值应按湿重换算成生物量。 ★湿重通常按体积计算，由于不同水体的个体 差异较大，所以最好每个样品都能实测其优 势种的体积，但此项工作量相当大。
3、计数具体要求；
①校正计数框容积。 ②定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前 可浸于70﹪酒精中，用时取出拭干。 ③滴取样品以后最好用液体石蜡封好计数框四周，以 防计数过程中干燥。 ④用台微尺测显微镜一定倍数下的视野直径。 ⑤选好与计数框同样容积的定量吸管。 ⑥定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴 。 ⑦加上盖玻片后不应有气泡出现 。 ⑧计数后的定量样品应保存下来。
浮游植物的定量分析
1、计数：
★ 将浓缩沉淀后的水样充分摇匀，吸出 0.1 mL置计数框内 （表面积最好 20 ×20 mm），在400—600倍显微镜下观 察计数。 ★每瓶标本计数2片取其平均值，每片大约计算50个视野， 如果平均每个视野有5—6个时浮游植物就要数100个视野， 如平均每个视野不超过1—2个时，要数200个视野以上， ★ 同一样品的2片计算结果和平均数之差如不大于其均数的 ±15％，其均数可视为有效结果，否则还必须测第 3片， 直至 3片平均数与相近两数之差不超过均数的15％为止， 这两相近值的均数，即可视为计算结果。
浮游植物的采集 计数与定量方法
。如下面的不浓浓缩缩体积稀与释 水透明度（体现水的肥瘦）之间关系大致如下， 仅供参考。
瘦中 肥
透明度 >1m 老水 特老水
>50cm
>30cm
<30cm <20cm 浓2缩020/的3/27标准是以每个视野里有十几个藻类为宜。
三、计数方法
将浓缩沉淀后水样充分摇匀后，立即用0.1ml吸量管吸出0.1ml样品，注入
体积公式计算细胞体积。细胞体积的毫升数相当于细胞重量的克数。
这样体积值（μm-3）可直接换算为重量值（109μm-3）可直接换算
为重量值（109μm-3≈1毫克鲜藻重）。
下列体积公式，可供计算生物量时参考：
圆锥体：V=1/3лR2h
圆柱体：V=лR2h
球 体：V=4/3лR3
椭圆体：V＝4/3ab2л（a为长轴半径，b为短轴半径）
0 . 1 ml 计 数 框 内 （ 计 数 框 的 表 面 积 最 好 是 2 0 × 2 0 ㎜ 2 ） ， 小 心 盖 上 盖 玻 片 （
22×22㎜2），在盖盖玻片时，要求计数框内没有气泡，样品不溢出计数框。
然后在14×40或16×40倍显微镜下计数。即在400－600倍显微镜下计数。每
瓶标本计数两片取其平均值，每片大约计算50～100个视野，但视野数可按浮
入虹吸管内，管口应始终低于水面，虹吸时流速流量不可过大，吸至澄 清液1／3时，应控制流速，使其成滴缓慢留下为宜。
采水时，每瓶样品必须贴上标签，标签上药剂在采集的时间、地点、 采水体积等，其他详细内容应另行做好记录，以备查对，避免错误。
1000m浓l 缩30的ml 体5积0 m视l 浮100游ml 植物的多少而定。也可根据水的肥瘦确定浓缩体积
浮游植物取样测定规范
水体浮游植物分析规范参考淡水生物资源调查技术规范DB43/T 432-2009水层设置水深小于3m时，只在中层采样，混合均匀水体，可以只采表层（0.5m）水样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下除特殊需要外一般不采样，对于深水湖泊，取样的水层可以将取样间隔加大，如0m,10m,20m,50m, 100m。
采样定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。
泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。
分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。
大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。
固定浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。
如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
现行的一些规律性的方法为：取水样，500ml,加入5ml鲁格，虹吸到30-50ml,加入1ml甲醛。
水样的沉淀和浓缩固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。
充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。
虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。
吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。
用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。
如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。
浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。
浮游植物计数框使用
浮游植物计数框使用1 浮游植物计数框介绍浮游植物计数框是浮游生物学中常用的一种工具，用于对海洋、湖泊等水体中的浮游植物进行定量调查。
其结构为透明的方形框，内部划分为若干个小格，每个小格大小相等。
在采样时，使用网口将水流通过计数框，然后使用显微镜观察和计数浮游植物，最后根据计数框内浮游植物数量和采样量计算浮游植物密度。
2 浮游植物计数框的使用在使用浮游植物计数框前需要进行一些准备工作：首先选择一个适合的采样地点，并注意避开砂石等污染源；然后使用采样瓶在采样点采集水样，并注意尽量避免混入底泥等杂质。
采集完水样后，需要立即使用计数框进行浮游植物的计数。
将采样瓶的水倒入计数框中，并将其后续流入的水拦截，保证荧光染料或染色剂的充分混合和统一染色。
然后使用显微镜观察计数框内的浮游植物，并逐个计数。
在计数时，要避免遗漏或重复计数，对于明显的水动物或残体应当排除在外。
在计数结束后，将计算出的标准体积内的浮游植物数除以标准体积，即可得到单位体积的浮游植物密度。
3 浮游植物计数框的注意事项在使用浮游植物计数框时，需要注意以下几点：1. 采集、染色和计数过程应当尽量迅速进行，减少浮游植物数量和形态的改变。
2. 计数前应当根据样品是否染色，选用不同的镜片调节显微镜亮度和聚焦。
3. 计数框顶部和底部的高度误差不能大于框内每一小格的高度，否则会影响密度计算的准确性。
4. 计数前计算出采样时的水体体积，用于计算密度时保证准确。
5. 无法计算某些微观浮游植物密度时，应当通过加大采样次数或增加计数框的数量等方式提高统计学显著性。
4 结论浮游植物计数框是一种浮游植物密度快速、准确测量的工具，广泛应用于海洋、湖泊等水体中的浮游植物定量研究。
使用计数框时需要注意一些细节，以保证测量结果的准确性。