不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量比较
制剂分析-简答

1简述中药制剂的检查包括的主要内容。
中药制剂的检查根据其目的意义主要包括制剂通则检查、一般杂质检查、特殊杂质检查和微生物限度检查。
2简述中药制剂杂质来源的多途径性。
中药制剂的杂质来源很多,可由生产过程中带入,也可由原药材中带入,如药材中非药用部位及未除净的泥沙;药材中所含的重金属及残留农药;包装、保管不当发生霉变、走油、泛糖、虫蛀等产生的杂质;洗涤原料的水质二次污染等途径均可引入杂质。
3中药制剂分析的检验程序包括哪些步骤?中药制剂分析的对象包括制剂中原料、半成品、成品及新药开发研究中的试验样品,其检验程序一般可分为取样、制备供试品、鉴别、检查、含量测定、书写检测报告等。
4中药分析的原始记录应记载哪些内容?中药制剂的原始记录记载所试药品的名称、来源、批号、数量、规格、取样方法、外观性状、包装情况、检验目的、检验方法及依据、收到日期、报告日期、检验中观察到的现象、检验数据、检验结果、结论等内容。
5简述中药制剂显微鉴别的含义。
利用显微镜来观察中药制剂中原药材的组织碎片、细胞或内含物等特征,从而鉴别制剂的处方组成。
6中药制剂杂质来源的主要途径是什么?主要有三种途径:一是由中药材原料中带入;二是在生产制备过程中引入;三是贮存过程中受外界条件的影响而使中药制剂的理化性质改变而产生。
7干燥失重测定和水分测定有何区别?常用水分测定方法有哪些?干燥失重测定法除测定水分外尚包括挥发性成分,而水分测定仅仅是测定供试品中的水分。
水分测定方法主要有烘干法、甲苯法、减压干燥法、气相色谱法、费休氏水分测定法等。
8简述总灰分和酸不溶性灰分的概念。
为何有时要进行酸不溶性灰分检查?中药经粉碎后加热,高温炽灼至灰化,则其细胞组织及其内含物成为灰烬而残留,由此所得灰分为总灰分。
总灰分加盐酸处理,得到不溶于盐酸的灰分,即为酸不溶性灰分。
规定总灰分限度对保证重要的品质和洁净度有一定意义。
对那些生理灰分本身差异大,特别是在组织里面含有草酸钙比较多的中药,测定酸不溶性灰分更能准确表明其中泥土沙石是有含有外来无机杂志存在。
移山参、园参各部位中皂苷组成和比例的研究

移山参、园参各部位中皂苷组成和比例的研究孙芳;吴迪;付绍平;鱼红闪;金凤燮【摘要】研究了移山参、园参不同部位中的皂苷成分及比例关系.结果表明,移山参、园参中须根总皂苷含量最高,芦头其次,主根最低.移山参芦头、主根、须根总皂苷含量分别为9.30%、3.38%、16.63%;园参分别为7.50%、2.06%、8.64%.高效液相色谱测定结果显示,移山参各部位中人参皂苷Re含量最高,并检测出含有C-K、Rh1和Rh2等人参稀有皂苷;园参中Rb类皂苷含量最高.【期刊名称】《大连工业大学学报》【年(卷),期】2007(026)002【总页数】4页(P97-100)【关键词】人参;人参皂苷;皂苷组成【作者】孙芳;吴迪;付绍平;鱼红闪;金凤燮【作者单位】大连工业大学生物与食品工程学院,辽宁大连,116034;大连工业大学生物与食品工程学院,辽宁大连,116034;大连工业大学生物与食品工程学院,辽宁大连,116034;大连工业大学生物与食品工程学院,辽宁大连,116034;大连工业大学生物与食品工程学院,辽宁大连,116034【正文语种】中文【中图分类】Q946.83;S567.510 引言人参(Panax ginseng C.A.Meryer)是驰名中外的中药,属五加科多年生植物。
研究表明,人参中主要有效成分是人参皂苷。
迄今,人们从人参植物中至少分离提取出40多种人参皂苷单体,根据其在薄层层析板上展开的位置及发现的先后次序依次命名为人参皂苷(ginsenoside)-Ro、-Ra、-Rb、-Rc、-Rd、-Re、-Rf、Rg及Rh[1-4].我国人参的种类按生长方式可分为野山参、移山参和园参三大类.野山参极为珍贵稀少、药用价值高,移山参又称林下参,仅次于野山参 [5],园参药用价值不如前两种.目前纯正野山参数量已极为稀少,市面上见到的人参大都为移山参和园参,对于两者之间的鉴别大多从外形上区分,关于其内部有效成分差别的研究还很少.本文主要研究移山参、园参不同部位中皂苷含量及比例关系,为辨别市面上的移山参和园参提供了科学依据.1 材料与方法1.1 材料及设备原料与试剂:园参(6年生),由吉林省长白县提供;移山参(15年以上),产自吉林省敦化市山区.人参皂苷对照品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rf、Rg1、Rg2、Rg3、F2、C-K、Rh1、Rh2由大连生生绿谷生物工程公司、大连生物食品技术研究所提供;甲醇、乙腈(HPLC级试剂), 由德国Merck公司生产,其余试剂均为分析纯.实验设备:超声波发声器,中船七院七二六所;高效液相色谱分析仪,Waters 2996;检测器,二极管阵列(Potodiode Array Detector);分离系统,Waters 2695 Separations Module;色谱柱,碳18柱[Hypersil ODS2(φ4.6 mm×250 mm, 5 μm)].1.2 方法1.2.1 供试品溶液的制备取移山参、园参各一支,按照芦头、主根、须根,分别将其切成3部分,精密称定,加乙醚于索式提取器中提取1 h,弃去乙醚液、杂质,挥干溶剂,加水1 mL搅拌湿润后,用水饱和正丁醇20 mL,超声处理30 min,离心吸取上清液,共4次.合并4次上清液,加2倍蒸馏水,摇匀,分层,取上层液蒸干,加甲醇溶解后,转移至容量瓶中,用甲醇稀释至刻度,摇匀,待用.1.2.2 皂苷含量的测定1.2.2.1 香草醛比色法[6]人参总皂苷含量的测定采用国家标准GB/ T 15517.1-1995.对照品溶液的制备:精密称取人参皂苷Re对照品20 mg,置10 mL容量瓶中,加甲醇适量使溶解并稀释至刻度,摇匀,待用.准确吸取上述对照品溶液与供试品溶液各50 μL,分别置于具塞刻度试管中,蒸干后,加入8%香草醛乙醇试液0.5 mL[8%香草醛乙醇试液:取香草醛0.8 g,加无水乙醇使溶解成10 mL,溶解,摇匀,即得(临用现配)],体积分数72%硫酸试液5 mL,充分振摇,混匀后置60 ℃恒温水浴上加热10 min,立即用冷水冷却10 min,摇匀.以试剂作空白,于544 nm波长下测定OD值.1.2.2.2 薄层层析法(TLC)薄层层析板是德国Merck公司产品,显色剂:体积分数为10%H2SO4溶液,显色时间为5 min.展开剂:V(氯仿)∶V(甲醇)∶V(水)=7∶3∶0.5 (均相).1.2.2.3 高效液相色谱法(HPLC)色谱柱:Hypersil ODS2 (250 mm×4.6 mm, 5 μm);检测波长为203 nm;进样量为10 μL;柱温:35 ℃.标准曲线的绘制:取对照品溶液10 μL进行HPLC分析,用峰面积对浓度作标准回归曲线.样品测定:取10 μL对照品溶液及供试品溶液注入色谱仪,以绝对保留时间定性,以峰面积与标准曲线比较定量.流动相由乙腈和水组成(试验用水为超滤水).流速1 mL/min;梯度洗脱程序为0~20 min,乙腈的体积分数为20%;20~31 min,乙腈的体积分数由20%增至32%;31~40 min,乙腈的体积分数由32%增至43%;40~70 min,乙腈的体积分数由43%增至100%.2 结果与讨论2.1 参总皂苷含量的测定结果取移山参、园参各1支,头根须俱全,按照芦头、主根、须根,分别将其切成3部分,称重.在此过程中,同时将各部位的质量关系进行了比较,其中移山参的芦头部分质量为0.22 g,主根为1.04 g,须根为0.21 g,各部位的质量比为,芦头∶主根∶须根=1∶5∶1.园参芦头部分0.99 g,主根为22.68 g,须根为10.15 g,各部位的质量比为,芦头∶主根∶须根=1∶23∶10(本实验所取人参均为生晒参,水分含量为12%).在总皂苷的提取中,本文采用1.2.1乙醚脱脂,水饱和正丁醇超声萃取4次的方法,提取的人参皂苷较为完全而且纯度高.采用香草醛比色法进行总皂苷含量的测定,以质量百分数表示的人参总皂苷含量(X)按下面公式计算,各部位总皂苷含量计算结果见表1.式中: m1为称取对照品的质量(mg);m2为称取供试品的质量(mg);A1为对照品溶液的吸收度;A2为供试品溶液的吸收度.表1 移山参、园参不同部位中人参总皂苷质量分数Tab.1 The total ginsenosides content of different parts of wildness ginseng and ginseng人参种类移山参园参芦头主根须根芦头主根须根w(总皂苷)/%9.303.3816.637.502.068.64结果表明,对同一种人参而言,其各部位的皂苷含量相差较大.本实验测得移山参各部位的总皂苷含量的比例关系约为芦头∶主根∶须根=3∶1∶5.园参各部位的总皂苷含量的比例关系约为芦头∶主根∶须根=4∶1∶4.相同点为,2种人参的须根部分皂苷含量较高,芦头部分次之,主根最低.不同的是移山参各部位中总皂苷含量均较园参高出1~2倍.取1.2.1中供试样品1 mL于小试管内,用微量点样器取样.鉴于前面的测定结果,移山参各部位中皂苷含量较园参高出1~2倍,本文将移山参各部位皂苷提取液点样量定为20 μL,园参为40 μL.为更准确的检测人参中皂苷的组成成分,采用了将层析板在展开剂中展开两次的方法.展开剂为V(氯仿)∶V(甲醇)∶V(水)=7∶3∶0.5 (均相).TLC检测结果如图1所示.虽然园参的点样量是移山参的两倍,但2种参的皂苷斑点显色程度几乎一样,可知移山参中皂苷含量要比普通园参高.由图1可见,在这两种人参中须根的皂苷含量最高,芦头部分其次,主根最低,与2.1的测定结果一致.TLC图谱上斑点情况表明,各样品中均含有人参二醇类皂苷Rb组、Rc、Rd等,人参三醇类皂苷有Re、Rg1等,还有少许皂苷元和未知成分.根据人参皂苷在TLC上的斑点大小和浓淡程度推断认为:在园参中Rb类皂苷组成较高,并且富含Re;移山参中Re含量较高,Rb类皂苷含量相对较高.对照品依次为Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1、Rg2、Rg3、Rh2、C-K;样品依次为1,园参芦头;2,园参须根;3,园参主根;4,移山参芦头;5,移山参须根;6,移山参主根图1 移山参、园参不同部位的皂苷成分TLC图Fig.1 Saponin component of different parts of wildness ginseng and ginseng by TLC2.3 高效液相色谱法对皂苷成分的分析首先将对照品溶液进行HPLC分析,本实验共取13种人参皂苷对照品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rf、Rg1、Rg2、Rg3、F2、C-K、Rh1、Rh2.经过色谱条件的优化,获得较多的可分离色谱峰,各对照品在HPLC上的平均保留时间见表2.表2 人参皂苷标准品HPLC测定结果Tab.2 The result of ginsenosides standard by HPLC人参皂苷t/min人参皂苷t/minRg126.714Rh140.958Re27.340Rd41.977Rf36.325F247.246Rb138.343Rg349.450Rg238.593C-K54.656Rc39.173Rh256.231Rb239.993其中除Rb1和Rg2分离效果稍差外,其他11个成分分离效果较好.从而实现了采用一种流动相对这13种人参皂苷的分离,为人参中皂苷成分的研究打下了基础.其中Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rf、Rg1、Rh1这8种皂苷可代表人参中的主要皂苷类成分.在制备样品溶液时,比较了药典和文献的方法,采用乙醚溶解,再用20 mL水饱和正丁醇分4次萃取的方法,这样既可以使大部分色素及脂类等杂质在提取皂苷前就预先除去,既减少杂质对测定的影响,又较完全地提取了纯度较高的皂苷类成分,为人参皂苷的分析奠定了基础.取供试溶液注入色谱仪,以绝对保留时间定性,以峰面积与标准曲线比较定量.色谱图见图2、3.图2 移山参芦头、主根、须根色谱图Fig.2 The rhizome, root and fiber of wildness ginseng by HPLC图3 园参芦头、主根、须根色谱图Fig.3 The rhizome, root and fiber of ginseng by HPLC将供试品的谱图与人参皂苷对照品谱图对照,根据保留时间的比较可知,供试品溶液中含有Rg1、Re、Rf、Rb1、Rc、Rb2、Rh1、Rd等多种人参皂苷.按色谱峰面积进行各种皂苷含量的计算,结果见表3.通过计算可以看出,移山参和园参的皂苷组成区别很大,移山参中Re含量最高,须根部分Re含量为3.80%,芦头1.40%,主根0.43%,Rb类其次,Rg1、Rc相对较高,Rf、Rd含量较少,并且检测出C-K 、Rh1和Rh2等人参稀有皂苷.园参中Rb类皂苷含量最高,其中须根部分Rb1含量为0.38%,芦头0.18%,主根0.06%,Re 、Rc类其次,Rg1、Rf、Rd含量较低,不含有稀有皂苷.可借此辨别市面上移山参和园参的种类.表3 移山参、园参不同部位中人参皂苷含量Tab.3 The total ginsenosidescontent of different parts of wildness ginseng and ginseng人参皂苷移山参园参w(皂苷)/%w(皂苷)/%芦头主根须根芦头主根须根Rg10.340.110.890.040.010.08Re1.400.433.800.120.0120.34Rf0.060.020.190. 020.0060.04Rb10.710.202.500.180.060.38Rc0.260.081.110.140.020.26Rb20. 300.101.340.080.0140.18Rh10.020.0030.04———Rd0.080.020.420.040.0020.08C-K0.030.0040.06———Rh20.020.0030.04———3 结论(1)在移山参、园参不同部位总皂苷含量的测定中,两种人参的须根部分皂苷含量最高,移山参为16.63%、园参为8.64%,芦头部分次之,主根最低.移山参各部位总皂苷含量的比例关系约为芦头∶主根∶须根=3∶1∶5.园参为芦头∶主根∶须根=4∶1∶4.移山参各部位总皂苷含量为园参各部位的1~2倍.(2)在薄层层析和高效液相色谱测定中,检测出各样品中均含有人参二醇类皂苷Rb 组、Rc、Rd等,人参三醇类皂苷有Re、Rg1、Rf等,还有少许皂苷元和未知成分.高效液相色谱测定中,除Rb1和Rg2分离效果稍差外,其他11种成分分离效果均较好,实现了采用一种流动相对13种人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rf、Rg1、Rg2、Rg3、F2、C-K、Rh1、Rh2的鉴别与测定,为人参皂苷的分析奠定了基础.(3)移山参和园参在皂苷组成上区别很大,移山参各部位中Re含量最高,其中须根部分Re含量可达3.80%,而且含有C-K、Rh1和Rh2等人参稀有皂苷.园参中Rb类皂苷含量最高,须根部分Rb1含量可达0.18%.这为市面上的移山参和园参的辨别提供科学依据.参考文献:[1] QIAN Siri, YU Hongshan, ZHANG Chunzhi, et al.Purification andcharacterization of dioscin-alpha-L-rhamnosidase from pig liver[J]. Chem Pharm Bull,2005,53(8):934-937.[2] YU Hongshan, ZHANG Chunzhi,LU Mingchun,et al.Purification and characterization of gypenoside-α-L-rhamnosidase hydrolyzing gypenoside-5 into gisenoside Rd[J]. Process Biochem,2004,39:861-867.[3] ZHANG Chunzhi, YU Hongshan, BAO Yongming, et al. Purification and characterization of gisenoside-arabiofuranase hygrolyzing ginseoside Rc into Rd from the fresh rood of Panax ginseng[J]. ProcessBiochem,2002,37:793-798.[4] YU Hongshan, ZHANG Chunzhi, LU Mingchun, et al. Purifacation and characterization of new special ginsenosidase hydrolyzing multi-glycisides of protopanaxadiol ginsenosides, Ginsenosidase TypeⅠ[J]. Chem Pharm Bull,2007,55(2):231-235.[5] 刘永喜,刘峰,张绪成,等.移山参栽培技术[J].吉林林业科技,2002,31(2):50-51.[6] 鱼红闪,陈琪,金凤燮.不同种类人参及各部中皂苷组成和比例的研究[J].食品与发酵工业,2002,28(2):24-28.。
林下山参片人参总皂苷及19种单体人参皂苷(元)的含量测定

林下山参片人参总皂苷及19种单体人参皂苷(元)的含量测定陈金鸾;孟繁玉;王振洲;张浩;朱海林;赵炳林;刘金平;李平亚【摘要】目的测定林下山参片中人参总皂苷及19种单体人参皂苷(元)的含量. 方法采用以水为溶剂的加热回流法提取林下山参片中的总皂苷,经大孔吸附树脂纯化,采用香草醛-浓硫酸比色法测定人参总皂苷含量,检测波长540nm. 采用二极管阵列检测器高效液相法(HPLC-PDA)测定林下山参片中人参皂苷Rg1、Re、Rf、Rh1、Rg2、Rb1、Rc、Ro、F1、Rb2、Rb3、Rd、20 (S)-Rg3、20 (R)-Rg3、PPT、F2、Rh2、齐墩果酸和PPD共19种单体皂苷(元)的含量,用Unitary C18色谱柱( 4.6mm×250 mm,5μm) ,以乙腈-0.05%磷酸水溶液梯度洗脱,流速为1.3mL·min-1,柱温为30℃,检测波长203nm.结果:比色法测定人参总皂苷,在42.8~171.2μg(r=0.999)范围内线性关系良好.测得样品中人参总皂苷含量为2.78%. 林下山参片中人参皂苷Rg1、Re、Rf、Rh1+Rg2、Rb1、Rc、Ro、Rb2、Rb3、Rd、20(S)-Rg3、20 (R)-Rg3、F2、PPD的含量分别为0.32%、0.12%、0.09%、0.06%、0.62%、0.15%、0.15%、0.13%、0.02%、0.20%、0.10%、0.11%、0.01%、0.40%、2.48%;未检出人参皂苷F1、PPT、Rh2、齐墩果酸.结论:首次对林下山参片中的人参总皂苷及19种单体人参皂苷进行含量测定, 为林下山参片新产品的开发提供了科学依据.%OBJECTIVE:To determine the contentsof total ginsenosides and 19 monomer ginsenosides or aglycones in tablets of Panax ginseng C.A.Meyer cv. Silvatica. METHODS: The total ginsenosides were extracted through thermal reflux method by water and purified by macroreticular resin. The content of total ginsenosides was determined by vanillin - sulfuric acid colorimetry method under 540 nm. HPLC-PDA was chose to separate and detect monomer ginsenosides oraglycones Rg1, Re, Rf, Rh1, Rg2, Rb1, Rc, Ro, F1, Rb2, Rb3, Rd, 20 (S)-Rg3, 20 (R)-Rg3, PPT, F2, Rh2, oleanolic acid and PPD . They were separated by Unitary C18 chromatographic column ( 4.6mm × 250 mm,5 μm), acetonitrile-0.05%phosphoric acid aqueous was chose as moving phase, flow velocity was 1.3 mL·min-1, column temperature was 30℃. The ginsenosides were detected by PDA under 203nm. RESULTS: The linear range of the colorimetric method for determination was 42.8~192.6μg(r=0.999), the content of total ginsenosides was 2.783%. The contents of ginsenosides or aglycones Rg1, Re, Rf, Rh1+Rg2, Rb1, Rc, Ro, Rb2, Rb3, Rd, 20 (S)-Rg3, 20 (R)-Rg3, F2, PPD were0.3179%,0.1243%,0.0890%,0.0576%,0.6221%,0.1518%,0.1529%,0.1285%,0.0 174%,0.2047% ,0.1020% ,0.1057% ,0.0110% ,0.3981% and 2.4830% respectively. Ginsenosides or aglycones F1, PPT, Rh2, oleanolic acid had not been detected from the sample. CONCLUSION: It is the first time to determine the contents of total ginsenosides and to determine the contents of ginsenosides or aglycones Rg1, Re, Rf, Rh1, Rg2, Rb1, Rc, Ro, F1, Rb2, Rb3, Rd, 20 (S)-Rg3, 20 (R)-Rg3, PPT, F2, Rh2, oleanolic acid, PPD through HPLC-PDA, and provides scientific basis for development of new products of Panax ginseng C.A.Meyer cv. Silvatica.【期刊名称】《人参研究》【年(卷),期】2015(000)004【总页数】4页(P2-5)【关键词】林下山参片;人参总皂苷;单体人参皂苷;含量测定;HPLC-PDA法【作者】陈金鸾;孟繁玉;王振洲;张浩;朱海林;赵炳林;刘金平;李平亚【作者单位】吉林大学药学院,长春 130021;吉林敖东延边药业股份有限公司,敦化133700;吉林大学药学院,长春 130021;吉林大学药学院,长春 130021;吉林大学药学院,长春 130021;吉林省抚松县关东绿色生态参茸有限公司,抚松 134500;吉林大学药学院,长春 130021;吉林大学药学院,长春 130021【正文语种】中文林下山参是模拟山参的生态环境,把园参籽撒到或者参苗栽到原始森林里,不进行任何人工管理,自然生长,具有和野山参相似的生长环境,无农药、化肥等残留,其质量和价值均可与野山参媲美。
红参中总皂苷及人参皂苷Rg_(1)、Re、Rb_(1)含量的测定

红参中总皂苷及人参皂苷Rg1.Re.Rb1含量的测定刘春霖,谢强胜,李启艳,高天阳,刘慧香,蒋慧(山东省食品药品检验研究院,山东省食品药品安全检测工程技术研究中心,山东济南250101)摘要:目的测定不同产地的26批红参药材中总皂苷及人参皂苷Rg1,Re,Rb1的含量。
方法采用紫外可见分光光度法测定红参中总皂苷的含量,高效液相色谱法测定红参中人参皂苷Rg1、Re、Rh的含量。
结果26批红参药材中总皂苷含量为1.2%〜3.0%,人参皂苷Rg1、Re含量之和为0.17%〜0.61%,人参皂苷Rb〔含量为0.21%〜0.81%o结论不同产地的红参药材总皂苷及人参皂苷Rg1,Re.Rb1的含量存在差异,提示应进一步规范红参药材的种植、加工炮制及标准的建立。
关键词:红参;总皂苷;人参皂苷Rg〔、Re、Rb〔;含量测定中图分类号:R927.2文献标识码:A文章编号:2095-5375(2021)02-0087-004doi:10.13506/ki.jpr.2021.02.005Determination of total ginsenosides,ginsenosides Rg i,Re and Rb i in red ginsengLIU Chunlin,XIE Qiangsheng,LI Qiyan,GAO Tianyang,LIU Huixiang,JIANG Hui(Shandong Research Center of Engineering and Technology for Safety Inspection of Food and Drug, Shandong Institute for Food and Drug Control, Jinan250101,China)Abstract:Objective The contents of total ginsenosides,ginsenosides Rg〔,Re and Rb〔in26batches of red ginseng from different habitats were determined.Methods The contents of total ginsenosides in red ginseng were determined by uv-visible spectrophotometry and ginsenosides Rg〔,Re and Rb〔in red ginseng were determined by high performance liquid chromatography.Results The contents of total ginsenosides in26batches of red ginseng were1.2%~3.0%,the sum of ginsenosides Rg[and Re were0.17%~0.61%,and ginsenosides Rb〔were0.21%~0.81%.Conclusion The contents of total ginsenosides,ginsenosides Rg〔,Re and Rb〔of red ginseng from different habitats were different.It is suggested that the planting, processing and establishment of standard should be further regulated.Key words:Red ginseng;Total ginsenosides;Ginsenosides Rg〔,Re,Rb〔;Determination红参为五加科植物人参(Panax ginseng C.A. Mey.)的栽培品经蒸制后的干燥根和根茎。
不同加热时间对8种人参单体皂苷含量的影响

不同加热时间对8种人参单体皂苷含量的影响高越;于洋;牛淑静;陈海兰;刘同帅;邱智东;位鸿【摘要】目的:研究不同加热时间对8种人参皂苷Rg1、Re、Rf、Rh1、Rb1、Ro、Rb2及Rd含量的影响.方法:采用高效液相色谱法测定不同加热时间的人参药材中,上述8种人参皂苷的含量.结果:人参皂苷Rg1、Re、Rb1、Ro、Rb2、Rf加热后含量降低;Rd、Rh1在121℃加热60、90 min时含量升高,120 min时含量降低.结论:不同加热时间对8种人参单体皂苷的含量有影响.【期刊名称】《中国现代中药》【年(卷),期】2015(017)004【总页数】3页(P335-337)【关键词】人参皂苷;高效液相色谱法;含量测定【作者】高越;于洋;牛淑静;陈海兰;刘同帅;邱智东;位鸿【作者单位】长春中医药大学药学院,吉林长春130117;长春中医药大学药学院,吉林长春130117;吉林省食品药品审批中心,吉林长春130062;长春中医药大学药学院,吉林长春130117;长春中医药大学药学院,吉林长春130117;长春中医药大学药学院,吉林长春130117;长春中医药大学附属医院,吉林长春130021【正文语种】中文人参为五加科植物人参Panax ginseng C.A.Mey.的干燥根和根茎。
国内外均证明,人参皂苷(Ginsenoside)是人参多种化学成分中最重要的一类活性成分[1-3],具有大补元气、补脾益肺、生津止渴、安神益智等功能[4-5]。
因此人参皂苷含量的多少是评价人参内在质量的重要指标[6]。
本试验采用高效液相色谱法同时测定不同加热时间对人参药材中8种主要皂苷类成分含量的影响,为人参药材生物转化研究的质量控制提供参考。
立式压力蒸汽灭菌器YXQ-LS-50A(上海博迅实业有限公司);安捷伦-1260高效液相色谱仪(美国安捷伦公司);DIF-6090型真空干燥箱(上海一恒实验仪器总厂);万分之一电子天平(梅特勒-托利多仪器有限公司);十万分之一电子天平(德国Sartorius公司);KQz3200E型超声波清洗机(天鹏电子新技术有限公司);SZ-97型自动纯水蒸馏器(上海亚荣仪器厂);HH-4型数显恒温水浴锅(金坛市江南仪器厂)。
不同方法测定不同产地西洋参中人参皂苷含量

不同方法测定不同产地西洋参中人参皂苷含量高晖富;姜丽萍;姜志辉;丛众正;鞠晓东;张瑞瑞;林一飞;张崇禧【摘要】目的比较研究不同产地西洋参中人参皂苷含量.方法采用HPLC和比色法.结果不同产地西洋参中人参皂苷含量相近.结论该方法分离效果好、准确、快速、样品制备简单.【期刊名称】《人参研究》【年(卷),期】2017(029)004【总页数】3页(P6-8)【关键词】人参皂苷-Rg1;人参皂苷-Re;人参皂苷-Rb1;人参总皂苷;不同测定方法【作者】高晖富;姜丽萍;姜志辉;丛众正;鞠晓东;张瑞瑞;林一飞;张崇禧【作者单位】环翠楼红参生物科技股份有限公司,威海264211;环翠楼红参生物科技股份有限公司,威海264211;环翠楼红参生物科技股份有限公司,威海264211;环翠楼红参生物科技股份有限公司,威海264211;环翠楼红参生物科技股份有限公司,威海264211;环翠楼红参生物科技股份有限公司,威海264211;环翠楼红参生物科技股份有限公司,威海264211;山东大学(威海)海洋学院,威海 264209【正文语种】中文西洋参(Panax quinquefolius L.),又称花旗参、洋参、美国人参等,美国旧称为花旗国,花旗参由此得名。
西洋参,顾名思义就是从西方国家飘洋过海来的参。
西洋参作为药用时间并不长,而它的药用开发还得益于我国人参的“提醒”。
18世纪初,加拿大传教士根据中国人参的有关资料及其标本,在当地印地安人的参与下,于加拿大南部森林中发现了与中国人参极为近似的同属植物西洋参。
之后这种植物在美国东部与南部也相继发现。
西洋参原产于美国北部和加拿大南部一带,通常照产地分成花旗参与加拿大参;加拿大是目前北美洲最大的西洋参生产国,约90%的加拿大西洋参出产于安大略省的西姆康(Simcoe)地区。
加拿大西洋参品质出众,口味和气味无与伦比。
自18世纪开始,安大略省出产的西洋参就主要出口到中国,他的卓越品质和甘甜口味深受赞誉。
人参全面讲解

Renshen Ginseng Radix et Rhizoma
大补元气、复脉固托、 补脾益气、生津安神
生晒参、红参、边条参 糖参、野山参
来源
五加科植物
人参 Panax ginseng C. A. Mey. 的干燥根
栽培品称园参,野山参无国家标准。 播种于山林野生状态下自然生长的人参称为“林 下参”,习称“籽海”。
质量要求
1、性状评价 生晒参 以支大、质硬、皮细纹深、表面黄白、气香、味苦微甜者为佳
红参 以身长、芦长、腿长、色棕红、皮细光泽、半透明、无黄皮者为佳 2、含量测定 生晒参 用高效液相色谱法测定。
人参皂苷Re、Rg1的总含量不得少于0.30%;
人参皂苷Rb1不得少于0.20%。
红 参 人参皂苷Rg1、Re的总含量不得少于0.25%; 人参皂苷Rb1的总含量不得少于0.20%。
长”的特点,形体较美。
糖参
取鲜人参加工,包括顺针、浸糖等步骤,药典早已不收载此种。
晒干或烘干
全须生晒参 生晒参
除
晒干或烘干
园 参
小 支 根 后 扎孔浸糖,晒干烘干 蒸后晒干或烘干
红
参
白糖参
蒸晒烘 支根须根 晒烘
红参须 白参须
商品种类(二)
红参片 取红参去芦头,蒸软、烘软或润透,切斜
片、横片或段,干燥。
属于能够满足需求的品种。 具有大补元气、补脾、益气生津、宁神益智等功效,临床配方、保健
品、化妆品、中成药原料,药食两用,开发前景广阔。
大宗传统出口名贵中药商品。 叶、花、花蕾、茎、果实等含有皂苷、多糖类,可以开发利用。
近几年国内个人消费的人参用量较前几年增加了18%左右。人参正逐
HPLC法测定红参浸膏中人参皂苷Rg1、Re、Rb1和Rg3的含量

实验中选取外标法对红参浸膏中的人参皂苷Rg1、的含量进行定量分析。
配制0.2 mg·mL-1
再用甲醇稀释成不同浓度的标样,吸取10μL进行色谱分析,测得相应的响应值并绘制标准工作曲线(图3~6),
线方程和相关系数的平方值。
图1 人参皂苷Rg
1、Re、Rb
1
、Rg
3
标准溶液色谱图
图2 红参浸膏色谱图
表2 人参皂苷Rg
1
定量分析表
0.054480.087160.10900.1743
192.88318.12383.14642.97
图3 人参皂苷Rg
1
标准曲线图
XIANDAISHIPIN
图4 人参皂苷Re标准曲线图
表4 人参皂苷Rb
定量分析表
1
0.050080.080120.10020
128.13208.29253.61428
标准曲线图
图5 人参皂苷Rb
1
表5 人参皂苷Rg
定量分析表
3
0.050480.080760.10100
197.86321.31392.54658
图6 人参皂苷Rg
标准曲线图
3
XIANDAISHIPIN
节俭朴素,人之美德。
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不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量比较【摘要】目的测定不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量。
方法利用紫外分光光度法、高效液相色谱法比较不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量。
结果不同产地的红参总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量相差相对较大。
结论应该重视红参的种植、采收、加工炮制等的进一步规范化研究。
【Abstract】Objective To compareginsenosides and ginsenosideRg1、Re、Rb1 contents of Red ginsengof different origins.Methods The content of ginsenosides was determined by UV and ginsenosideRg1,Re,Rb1by HPLC.Results The content of ginsenosides and ginsenosideRg1,Re,Rb1of different origins were relatively diffenent.Conclusion We should pay more attention to the standard research of agricultural and processing of red ginseng.【Key words】Red Ginseng;Ginsenosides;Ginsenoside Rg1、Re、Rb1红参(Radix et Rhizoma Ginseng Rubra)为五加科植物人参Panax ginseng C.A.Mey.的栽培品经蒸制后的干燥根及根茎,具有大补元气,复脉固脱,益气摄血之效,临床上用于体虚欲脱,肢冷脉微,气不摄血,崩漏下血;心力衰竭,心源性休克。
红参中主要含有:皂苷类、挥发性成分、脂溶性成分、多糖等,其中皂苷类为主要活性物质基础之一,但市场上的红参中皂苷类成分含量差异相对较大,本实验采用紫外分光光度法、高效液相色谱法比较不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量。
1 仪器与试药仪器:Agilent 1100型液相色谱仪(美国惠普公司);UV-2401型紫外分光光度计(日本岛津公司);电子天平(Mettler Toledo AG285);KQ-500E型医用超声清洗器(昆山超声仪器有限公司);数显恒温水浴锅HH-4(常州国华电器有限公司)。
试剂:乙腈、甲醇为HPLC级,其余试剂均为AR级。
对照品:人参皂苷Rg1(11857-200203)、人参皂苷Re(0764-200107)、人参皂苷Rb1(110765-200205)由中国药品生物制品检定所提供。
红参药材:分别购自辽宁抚顺、吉林靖宇、吉林集安。
2 方法与结果2.1 不同产地红参中总皂苷的含量测定[1]采用比色法测定红参总皂苷的含量,方法:精密吸取人参皂苷Re对照品、红参提取样品适量,置10 ml具塞试管中,水浴挥干,精密加入5%香草醛-冰醋酸溶液0.2 ml,再精密加入高氯酸溶液0.8 ml,混匀,置60℃水浴中15 min,取出,立即放入冰浴中2 min,精密加入冰醋酸5 ml,混匀,置UV-2401紫外扫描仪器上,结果:人参皂苷Re对照品和红参样品在547 nm处有最大吸收,确定547 nm为红参总皂苷的检测波长。
2.1.1 对照品溶液及标准曲线的制备称取人参皂苷Re对照品适量,精密称定,加甲醇溶解制成浓度为1.012 mg/ml的对照品溶液,精密吸取对照品溶液50、75、100、125、150 μl按测定项下操作,于547 nm处测定吸收度,以吸收度(A)为纵坐标,对照品的量(mg)为横坐标,绘制标准曲线,回归方程为:Y=4.318 2X-0.001 9,r=0.999 8。
实验结果表明人参皂苷Re在0.050 6~0.151 8 mg范围内呈现良好的线性关系。
2.1.2 精密度试验取人参皂苷Re对照品液100 μl,按样品测定项下操作,连续测定6次,求得平均吸收度0.435,RSD为0.59%。
2.1.3 样品稳定性试验取红参供试品溶液分别在0、0.5、1、1.5、2、2.5、3 h进行测定,计算平均吸收度0.521,RSD为0.94%,结果表明样品在3 h内稳定。
2.1.4 重复性试验称取6份红参各0.5 g,精密称定,按供试品项下操作,制得供试品溶液,进行测定。
计算求得平均含量为2.45%,RSD为1.33%。
2.1.5 红参总皂苷加样回收率试验称取红参样品粉末(过四号筛)约0.25 g各6份,精密称定,分别加入1.012 mg/ml人参皂苷Re标准品液6 ml,按供试品项下操作并按含量测定方法进行测定,计算加样回收率为99.42%,RSD 为0.78%。
见表1。
2.1.6 供试品溶液的制备及样品中总皂苷的含量测定取样品粉末(过四号筛)约0.5 g,精密称定,置离心管中,加甲醇约20 ml,超声(功率250 W,频率20 kHz)提取3次,20 min/次,离心,分离甲醇并蒸干,残渣加10 ml水超声溶解,转移至分液漏斗中,加水饱和正丁醇振摇提取3次,20 ml/次,合并正丁醇液,移至分液漏斗中,加入氨试液洗涤2次,每次20 ml,弃去氨试液,分取正丁醇提取液,水浴蒸干,残渣加甲醇溶解并转移至10 ml量瓶内,摇匀,滤过,作为供试品溶液。
精密吸取供试品液、对照品液、甲醇各100 μl,分别置3支具塞试管中,挥去甲醇,精密加入5%香草醛-冰醋酸溶液0.2 ml,再精密加入高氯酸溶液0.8 ml,混匀,置60℃水浴中15 min,取出,立即放入冰浴中2 min,精密加入冰醋酸5 ml,混匀,以上述甲醇管为空白,按照分光光度法,分别在547 nm波长处测定吸收度,计算,即得。
见表2。
2.2 不同产地红参中人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量测定[2]2.2.1 色谱条件色谱柱:KromasilC18(4.6 mm×250 mm,5 μm);流动相:以乙腈为流动相A,以水为流动相B,按下表3进行梯度洗脱;检测波长为203 nm;流速为1.0 ml/min;柱温为30℃;进样量为10 μl。
2.2.2 对照品溶液的制备取人参皂苷Rg1、Re、Rb1标准品适量,精密称定,分别配成人参皂苷Rg1为0.804mg/ml、人参皂苷Re为0.628 mg/ml、人参皂苷Rb1为0.976 mg/ml的混合标准品溶液,摇匀,即得。
2.2.3 供试品溶液的制备取红参粉末(过四号筛)约1 g,精密称定,置索氏提取器中,加三氯甲烷加热回流3 h,弃去三氯甲烷液,药渣挥干溶剂,连同滤纸筒移入具塞锥形瓶中,精密加入水饱和的正丁醇50 ml,密塞,放置过夜,超声处理(功率250 W,频率50 kHz)30 min,滤过,精密吸取续滤液25 ml,置蒸发皿中蒸干,残渣加甲醇溶解并转移至5 ml量瓶中,加甲醇至刻度,摇匀,即得。
2.2.4 线性关系的考察精密吸取对照品混合溶液,加甲醇制成人参皂苷Rg1为0.080 4、0.160 8、0.241 2、0.321 6、0.482 4 mg/ml,人参皂苷Re为0.062 8、0.125 6、0.188 4、0.251 2、0.376 8 mg/ml,人参皂苷Rb1为0.097 6、0.195 2、0.292 8、0.390 4、0.585 6 mg/ml的混合对照品溶液,在上述色谱条件下,精密吸取10 μl注入液相色谱仪,以峰面积积分值为纵坐标,对照品浓度为横坐标,绘制标准曲线,见图1,回归方程为:人参皂苷Rg1为Y=3502.96X-11.481 1,r=0.999 9;人参皂苷Re为Y=2794.198 7 X-1.662 2,r=0.999 9;人参皂苷Rb1为Y=3690.379 9X+0.340 5,r=0.999 9。
实验结果表明人参皂苷Rg1在0.804~4.824 μg、人参皂苷Re在0.628~5.024 μg、人参皂苷Rb1在0.976~5.856 μg范围内呈现良好的线性关系。
2.2.5 精密度试验精密吸取人参皂苷Rg1、Re、Rb1混合对照品溶液10 μl,连续进样6次,以峰面积计算精密度,分别为:人参皂苷Rg1为831.63,RSD为0.48%;人参皂苷Re为525.42,RSD为0.14%;人参皂苷Rb1为1082.18,RSD为0.08%。
结果表明仪器稳定。
2.2.6 稳定性试验精密吸取红参供试品10 μl,分别于0、4、8、12、16、20 h注入液相色谱仪。
见图2。
求得平均峰面积,分别为:人参皂苷Rg1为718.82,RSD为0.27%;人参皂苷Re为298.08,RSD为0.49%;人参皂苷Rb1为736.87,RSD为0.16%。
结果表明样品在20 h内稳定。
2.2.7 重复性试验平行称取6份红参样品1 g,精密称定,按供试品项下操作,制得供试品溶液,精密吸取10 μl,注入液相。
计算求得平均含量,分别为:人参皂苷Rg1为0.212 3%,RSD为0.97%;人参皂苷Re为0.106 9%,RSD为0.42%;人参皂苷Rb1为0.215 2%,RSD为0.95%。
2.2.8 加样回收率试验称取已知含量的红参样品0.5 g,精密称定,精密加入混合对照品溶液1 ml,按供试品项下操作并按含量测定方法进行测定,计算平均加样回收率,分别为:人参皂苷Rg1为99.31%,RSD为0.27%;人参皂苷Re为99.11%,RSD为0.54%;人参皂苷Rb1为98.42%,RSD为0.55%。
2.2.9 不同产地红参样品中人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量测定分别称取不同产地红参样品1 g,精密称定,按供试品液项下处理,按上述色谱条件分离,进样10 μl,测定峰面积,计算含量。
见表4。
3 讨论3.1 研究表明红参的主要成分是皂苷类及多糖类成分,现版药典也是以其所含人参皂苷Rg1、Re、Rb1作为药材的质量控制标准。
本研究表明不同产地的红参均能达到2005版《中国药典》红参项下含量的要求,但含量的差异比较大,笔者认为与其种植、采收、加工炮制等有关。
应该重视红参的种植、采收、加工炮制等的进一步规范化研究。
3.2 本文还建立了红参中总皂苷的含量测定方法,对不同产地红参中的总皂苷进行了测定,结果含量均在2.30%以上,2005版《中国药典》红参项下规定人参皂苷Rg1和人参皂苷Re的总量不得少于0.25%,人参皂苷Rb1不得少于0.20%。
说明药典规定的这三种单体皂苷在红参中只是一小部分,若要客观全面的控制红参的质量,建义是否可以对人参总皂苷加以控制。