酶的测定方法

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蛋白酶的测定及其原理

蛋白酶的测定及其原理

蛋白酶的测定及其原理
蛋白酶是一类能够催化蛋白质分解的酶。

它们广泛存在于生物体内,是许多代谢和消化过程中至关重要的催化剂。

蛋白酶的测定可以用于研究其功能和活性,以及诊断和治疗相关疾病。

蛋白酶的测定方法很多,其中一些常用的方法包括:
1. 酶活法:通过添加底物和检测产物量的变化来确定酶的活性。

比如,可以测定蛋白酶在一定条件下能够分解的特定蛋白质量,从而得出其活性。

2. 基质-胶体法:利用与酶具有亲和性的果胶等高分子基质,将其与染色剂混合形成胶体,然后加入酶并在一定时间内观察胶体溶解的程度来确定酶的活性。

3. 蛋白质凝胶法:利用酶能够水解凝胶,从而观察凝胶溶解的程度来测定酶的活性。

蛋白酶测定的原理主要是根据酶与底物之间的相互作用以及酶催化反应的特性来进行的。

一般来说,酶与底物之间会发生一系列化学反应,通过添加某些试剂或观察特定的指标来检测这些反应,从而确定酶的活性。

具体原理和方法可以根据不同的测定技术而有所差异。

生物化学检验中酶的测定综述

生物化学检验中酶的测定综述

定时法
通常是酶作用一段时间后,加入强酸、强碱、
蛋白沉淀剂等终止酶促反应,测定这段时间内 底物的减少量或产物的生成量,计算酶促反应 的平均速度。
定时法中酶促反应的过程
注意事项
用定时法测定酶活性浓度, 必须了解不同酶促反应速率和时间的关系, 应先做预试验找出酶促反应速率恒定的时期,
CK-MB
这些方法适用于临床自动化分析,具有测定时
间短(最快仅需7min)、灵敏性高(最低检测 限<µg/L)和准确性好的特点,明显优于其他 分析测定CK-MB的方法,1990年后逐渐被广泛 接受。 为使CK-MB质量分析标准化,AACC成立了专门 的标准化委员会,最近已研制成功采用重组基 因技术的CK-MB参考材料(Rck-2)。
由于同工酶(及其亚型同工型)一级结构的不
同,导致其在理化性质、催化性质、生物学等 方面有明显的性质差异,这些差异为同工酶的 分析和鉴定提供了理论基础。 临床同工酶的分析大致可分为两步,即首先精 确地分离出某酶的各同工酶组分,然后测定酶 的总活性和各同工酶组分的活性。
电泳法
在研究同工酶的所有方法中,电泳法的使用最
CK-MB
是诊断AMI、测定心肌梗塞面积的重要指标。 近年来,国外对AMI诊断效率评价时多采用测
定CK-MB质量,即测定CK-MB的酶蛋白质量浓度 (Mass)的方法。 CK-MB质量的测定通常是制备抗CK-M抗体和抗 CK-B抗体或采用CK-MB抗体,用CLIA、ELISA、 FEIA等方法测定。
同一种属中由不同基因或等位基因所编码的多
肽链单体、纯聚体或杂化体,具有相同的催化 作用,但其分子构成、空间构像、理化性质、 生物学性质以及器官分布或细胞内定位不同的 一组酶称为同工酶。 凡酶蛋白结构不同的同工酶称为原级同工酶, 而将经加工或修饰后的同工酶称为次级同工酶 或酶的多种形式。

消化酶的测定方法

消化酶的测定方法

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几种酶的测定方法

几种酶的测定方法

各种酶的测定方法:土壤脲酶测定方法(靛酚比色法)根据脉酶水解时生成的氨与苯酚钠及次氯酸钠反应,形成兰色靛酚这一原理。

试剂配制:1.甲苯(分析纯)2.10%尿素:尿素(分析纯)10克溶于100毫升蒸馏水中。

(当天做当天配)3.柠檬酸盐缓冲液:368克柠檬酸(分析纯)溶于600毫升蒸馏水中;295克氢氧化钾溶于水;将二种溶液合并,调pH至6.7,并用水稀释至2升。

4.苯酚钠溶液:A.62.5克苯酚溶于少量95%乙醇,加2毫升甲醇和18.5毫升丙酮,用乙醇稀释至100毫升。

B.27克氢氧化钠溶于100毫升水中。

将二溶液保存在冰箱里。

使用前,将溶液A、B各吸取20毫升混合,用蒸馏水稀释至100毫升。

5.次氯酸钠溶液:用蒸馏水稀释试剂,至活性氯浓度为0.9%。

(次氯酸钠活性氯浓度为5.2%)。

标准溶液:称0.4717克硫酸铵(105 °C烘干)溶于水,稀释至1升(1毫升含100微克氮)即100ppm。

将100ppm的标准溶液稀释为10ppm。

分别吸取0、0.5ml、1.5ml、2.5ml、3.5ml、4.5ml、5.5ml、6.5ml、7.5ml于50毫升容量瓶或刻度试管中,加入试剂,最后定容至50 毫升使溶液浓度为:0、0.1ppm、0.3ppm、0.5ppm、0.7ppm、0.9ppm、1.1ppm、1.3ppm、1.5ppm。

分析步骤:称2~5克过20目风十土于50毫升磨口三角瓶中,加5~10滴甲苯,盖好,15分钟后加10毫升10%尿素和20毫升pH6.7柠檬酸盐缓冲液,摇匀后,在30C 恒温箱中培养24小时,过滤。

取滤液1~3毫升(视样品浓度定)于50毫升刻度试管中,加入4毫升苯酚钠溶液和3毫升次氯酸钠溶液,边加边摇匀。

20分钟后定容,在分光光度计波长578nm处比色(1cm比色杯)。

反应生成的靛酚兰能在60分钟以内稳定。

每一土样设置用水代替基质(即尿素)的对照,以除掉土壤中氨态氮引起的误差。

酶的测定方法

酶的测定方法

酶的测定方法
酶是一种生物大分子,能够催化生物化学反应。

酶的测定方法有多种,如下:
1. 活性测定法
酶的活性是指每单位时间内酶所催化的反应物的转化量。

通过活性测定法可以测定酶的活性,常用的方法包括比色法、荧光法、放射性测定法等。

2. 蛋白含量测定法
酶是一种蛋白质,因此可以通过测定酶的蛋白含量来间接测定酶的含量。

常用的蛋白含量测定方法包括比色法、光度法等。

3. SDS-PAGE电泳法
该方法利用SDS-PAGE电泳将酶分离出来,然后通过染色等方法测定酶的含量。

4. 免疫学方法
该方法利用酶的抗原性质,通过抗体结合酶来测定酶的含量或活性。

常用的方法包括ELISA等。

总之,不同的酶测定方法适用于不同的酶以及不同的实验目的,选择合适的方法可以提高实验的准确性和可靠性。

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酶活性的检测方法

酶活性的检测方法

DNS 还原糖 显色反应
比色法
蔗糖转化酶的活性检测: 光谱学检测
蛋白酶活性的检测:
BBA - Proteins and Proteomics, 1864 (1), 2016, 130-142
酶活性的检测方法
(二) HPLC检测法
植酸酶的活性检测方法: (植酸酶催化的脱磷酸反应的探针)
Soil Biology & Biochemistry 41 (2009) 192-200
酶活性的检测方法
酶活性的检测方法
(五) 耦合反应法(可耦合脱氢酶反应) 脱氢酶以NADH/NADPH为辅酶
NADH/NADPH的转换可耦 合340nm吸光度变化:
酶活性的检测方法
葡萄糖激酶的活性检测:
3.反应条件应有利于指定反应方向的进行,可以移除生成 物,或接上耦合反应。
二、酶活性的检测方法
直接测定生成物
耦合反应法 (可耦合脱氢酶反应)
光谱学检测法 HPLC检测法 化学测定法 电极检测法
酶活性检测的具体方法
(一) 光谱学检测法
• 生成物有特定的紫外或荧光吸收
木聚糖酶、纤维素酶活性检测:
木聚糖 羧甲基纤维素
主要内容
酶催化反应原理 酵素产品部分酶活性的检测
一、酶催化反应原理
把催化反应转化成可测量的模式
Juang RH (2005) EPA
测量酶催化活性应注意的事项
酶活性的检测通常是指催化活性的检测,建立活性检测步 骤时,应注意:
1.测定生成物的产生量比测定反应物的消失量),回 馈抑制酶反应。
酶活性的检测方法
(三) 化学测定法
• 如果生成物不具有光谱学特性,可以通过化学反应使之转化成 具有特定光谱吸收的物质,进而进行测定。

淀粉酶的测定方法

淀粉酶的测定方法

淀粉酶的测定方法
淀粉酶的测定方法主要有以下几种:
1. 碘遇法:将待测样品与含有淀粉的试液反应,然后加入碘溶液,观察颜色变化。

淀粉酶能催化淀粉水解产生葡萄糖,当样品中有淀粉酶存在时,反应液中淀粉的含量减少,碘反应呈现淡黄色。

通过比较反应前后颜色的变化程度,可以间接测定淀粉酶的活性。

2. 滴定法:采用淀粉为底物,测定反应液中葡萄糖的含量。

首先将待测样品加入含有淀粉的试液中,然后根据反应的程度,利用滴定法以还原糖作为指示剂测定反应液中葡萄糖的含量,从而计算淀粉酶的活性。

3. 导电度法:利用淀粉酶对淀粉的水解反应产生的葡萄糖使反应液的导电度发生变化来测定淀粉酶的活性。

测定时先将反应液的导电度测定为A,然后加入淀粉酶,反应一段时间后导电度测定为B,根据B-A的差值可以计算淀粉酶的活性。

4. 比色法:利用淀粉酶对淀粉的水解反应产生的葡萄糖与某种试剂发生比色反应,通过测定反应液的吸光度来间接测定淀粉酶的活性。

常用的比色试剂包括间苯三酚、邻苯二酚等。

需要注意的是,不同测定方法的适用范围和操作步骤可能会有所不同,具体选择
哪种方法取决于实验目的和样品特点。

各种酶活性测定方法

各种酶活性测定方法

各种酶活性测定方法第一超氧化物歧化酶SOD测定一、原理超氧物歧化酶〔superoxidedismutase,SOD〕普遍存在于动、植物体内,是一种清除超氧阴离子自由基的酶.本实验依据超氧物歧化酶抑制氮蓝四唑〔NBT〕在光下的还原作用来确定酶活性大小.在有氧化物质存在下,核黄素可被光还原,被还原的核黄素在有氧条件下极易再氧化而产生O2,可将氮蓝四唑还原为蓝色的甲腙,后者在560nm处有最大吸收.而SOD可清除O2,从而抑制了甲腙的形成.于是光还原反应后,反应液蓝色愈深,说明酶活性愈低,反之酶活性愈高.据此可以计算出酶活性大小.二、材料、仪器设备与试剂〔一〕材料;水稻或小麦叶片〔二〕仪器设备:1.高速台式离心机;2.分光光度计;3.微量进样器;4.荧光灯〔反应试管处照度为4000Lx〕;5.试管或指形管数支.〔三〕试剂 1. 0.05mol/L 磷酸缓冲液〔pH7.8〕;2. 130mmol/L 甲硫氨酸〔Met〕溶液:称1.9399gMet用磷酸缓冲液定容至100ml;3.750μmol/L 氮蓝四唑溶液:称取0.06133gNBT用磷酸缓冲液定容至100ml,避光保存;4. 100μmo l/L EDTA-Na2溶液:称取0.03721gEDTA-Na2用磷酸缓冲液定容至1000ml;5. 20μmol/L 核黄素溶液:称取0.0753g核黄素用蒸馏水定容至1000ml避光保存.三、实验步骤1. 酶液提取取一定部位的植物叶片〔视需要定,去叶脉〕0.5g于预冷的研钵中,1ml预冷的磷酸缓冲液在冰浴上研磨成浆,加缓冲液使终体积为5ml.取 1.5~2ml于1000rpm下离心20min,上清液即为SOD粗提液.2. 显色反应取5ml指形管〔要求透明度好〕4支,2支为测定管,另2支为对照管,按下列加入各溶液:试剂〔酶〕用量〔ml〕终浓度〔比色时〕0.05mol/L 磷酸缓冲液1.5130mmol/L Met 溶液0.313mmol/L 750μmol/L NBT溶液0.375μmol/L 100μmol/L EDTA-Na2液0.310μmol/L 20μmol/L 核黄素0.320μmol/L 酶液0.052支对照管以缓冲液代替酶液蒸馏水0.25总体积3.0混匀后将1支对照管置暗处,其它各管于4000Lx日光下反应20min〔要求各管受光情况一致,温度高时间缩短,低时延长〕.3. SOD活性测定与计算至反应结束后,以不照光的对照管做空白,分别测定其它各管的吸光度.四、结果计算已知SOD活性单位以抑制NBT光化还原的50%为一个酶活性单位表示,按下式计算SOD活性.SOD总活性=<A ck-A E>×V/<A ck×0.5×W×V t>上式中,SOD比活力=SOD总活性蛋白质含量式中SOD总活性以每克鲜重酶单位表示;比活力单位以酶单位/mg蛋白表示Ack照光对照管的吸光度AE样品管的吸光度V样品液总体积〔ml〕Vt测定时样品用量〔ml〕W样鲜重〔g〕蛋白质含量单位为:mg蛋白/g鲜重. SOD、POD、CAT、MDA的测定方法-非试剂盒法缩写:SOD:超氧化物歧化酶; CAT:过氧化氢酶; POD:过氧化物酶; MDA:丙二醛;PVP:聚乙烯吡咯烷铜K-30;L-Met:甲硫氨酸;NBT:氮蓝四唑;TBA:硫代巴比妥酸;TCA:三氯乙酸;PBS: 磷酸缓冲液1. SOD的测定方法加样顺序:〔V=3ml〕磷酸缓冲液:1.5ml L-Met: 0.3mlNBT: 0.3mlEDTA-Na2: 0.3ml 核黄素:0.3ml 酶液:0.05ml 蒸馏水:0.25ml试剂配制:<1> 0.05mol/L PBS:pH7.8<2> 130mmol/L L-Met: 1.9399g Met用PBS定容至100ml<3> 750mmol/L NBT: 0.06133g用PBS定容至100ml<避光保存><4> 100umol/L EDTA-Na2: 0.03721g用PBS定容至1000ml<5> 20umol/L核黄素: 0.0753g用蒸馏水定容至1000ml<避光保存>注:〔1〕对照:以加缓冲液、不照光为空白;照光的为最大还原管<2> 照光后至显蓝色要立即避光放置、迅速测定A560值2.MDA的测定方法试剂配制:〔1〕5% TCA: 5g用蒸馏水定容至500ml〔2〕0.5% TBA:2.5g用TCA定容至500ml方法:酶液1ml—3ml0.5%TBA和5%TCA—混合后在100度水浴煮沸15min—迅速冷却,10000r/min 离心10min—用蒸馏水调零分别测定上清液在532nm、600nm处的吸收值3.POD的测定方法试剂配制:〔1〕0.1mol/L的醋酸缓冲液:8.8mlA+41.2mlB得到100mlph5.4的醋酸缓冲液A<0.2mmol/L的HAc溶液>—6ml冰醋酸溶到494ml蒸馏水中〔2〕0.25%愈创木酚溶液—125um愈创木酚溶于50ml 50%乙醇中〔临用前配制〕〔3〕0.75%H2O2溶液:1.25ml 30% H2O2定容至50ml〔临用前配制〕方法:比色杯中依次加入2ml 0.1mol/L的醋酸缓冲液—1ml 0.25%愈创木酚溶液—xml酶液〔5min值为500-800即可〕—0.1ml 0.75%H2O2溶液—迅速巅到混匀把A460调零并开始计时—1次/30s,连续读取3min4.CAT的测定方法试剂配制:<1> 50mmol/L的PBS〔pH7.0〕 <2> 0.3% H2O2—1ml H2O2定容至100ml方法:<1>以不加H2O2的50mmol/L的PBS〔pH7.0〕为空白把A240调零<2>50ul酶液—3ml 50mmol/L的PBS〔pH7.0〕—0.2ml 0.3% H2O2—迅速颠倒混匀,开始计时—1min后在240nm下比色,1次/1min<连续读取5min>.20XX06月22日星期二 19:331 叶绿素含量测定:80%的丙酮液的配制:4L丙酮+ 1L蒸馏水.称0.5g左右的叶片放在50ml的离心管〔做三个重复〕,加入25ml浓度为80%的丙酮液,放在黑暗处浸提大约36小时后取出,稀释4倍后分别在波长663nm、645nm、652nm和470nm 下测定光密度,以80%的丙酮液为空白.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》,P35~36〕也可用95%乙醇溶液,在665、649、470nm处有最大吸收峰649Cx.c=<1000D470-2.05Ca-114Cb>/2452 抗氧化酶活性的定:〔2.5g样〕0.05mol/L磷酸缓冲溶液<PBS>〔pH=7.8〕溶液的配制:65.5506g Na2HPO4·12H2O + 2.65285g NaH2PO4·2H2O, 定容到4L.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》,P134〕. 取低温保存的鲜样,称2g左右的叶片〔或根〕放在50ml的离心管,加入20ml浓度为0.05mol/L 磷酸缓冲溶液〔pH=7.8〕〔最好是较冷的磷酸缓冲溶液,防止研磨时温度过高使酶失活〕,研磨〔用磨碎机磨〕,8000r/min的冷冻离心机下离心20分钟,上清液为粗酶液.2.1丙二醛〔MDA〕的测定:20%三氯乙酸〔TCA〕溶液的配制:称200g三氯乙酸,用蒸馏水定容到1000ml.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》,P124〕;0.5% 硫代巴比妥酸〔TBA〕溶液的配制:称5g硫代巴比妥酸〔TBA〕,用20%三氯乙酸〔TCA〕溶液溶解并定容到1000ml.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》,P124〕〔先加少量的氢氧化钠1mol/L溶解〕;0.5ml酶液〔对照用0.5ml的0.05mol/L pH=7.8的磷酸缓冲液代替酶液〕〔做三个重复〕+ 3mlTBA――振荡――沸水浴上反应30min――冷却〔至少30min〕――比色〔OD600、OD532、OD450〕.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》,P124〕2.2超氧化物歧化酶〔SOD〕的测定:NBT<400ml>混合反应液:392mlPBS<Ph=7.8>,+0.0206g NBT+ 0.776g甲硫酸铵+8ml核黄素溶液+0.4ml EDTA-Na溶液〔100mlPBS缓冲溶液中含0.01204g核黄素〕.〔另配〕100ml PBS溶液加EDTA-Na 3.7224gEDTA-Na测试时:取3ml反应液+0.05ml<根>或0.02 ml<叶>粗酶液,于光照培养箱中6-10分钟,OD650下测定吸光度.2.3过氧化物酶〔POD〕的测定:0.05mol/L磷酸缓冲溶液<PBS>〔pH=7.0〕溶液的配制:10.9251g Na2HPO4·12H2O + 3.042975g NaH2PO4·2H2O,定容到1000ml.0.3%H2O2溶液的配制:吸2.5ml 30%H2O2,用0.05mol/L pH=7.0磷酸缓冲溶液<PBS>定容到250ml.0.2%愈创木酚溶液的配制:称0.5g愈创木酚,用0.05mol/L pH=7.0磷酸缓冲溶液<PBS>定容到250ml.2ml 0.3%H2O2溶液+ 0.95ml 0.2%愈创木酚溶液+ 1ml 0.05mol/L pH=7.0磷酸缓冲溶液<PBS> + 0.02ml??〔原来为0.01〕酶液〔根加0.05ml酶液〕〔对照用0.05mol/L磷酸缓冲溶液代替酶液〕〔做三个重复〕,记录470nm处OD降低速度.将每分钟OD增加0.01定义为1个活力单位.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》P121〕比色时加酶液,混合后即刻计时.2.4 脯氨酸的测定标准曲线的制作:编号1234567标准脯氨酸的量〔ml〕00.10.20.40.60.81.0H2O〔ml〕1.00.90.80.60.40.20冰乙酸〔ml〕2222222显色液〔ml〕3333333脯氨酸含量〔µl〕012468100.5ml酶液〔对照用0.5ml 80%乙醇代替〕〔做三个重复〕+ 1ml冰乙酸+ 1.5ml显色液―――混匀,沸水浴15min,冷却后测OD520.2.5可溶性蛋白的测定〔参考赵志杰,史国安,董新纯编的《植物生理学实验指导》〕牛血清白蛋白:配成100µg/ml和1000µg/ml.90%乙醇:90ml乙醇+ 10ml蒸馏水.???85%〔W/V〕磷酸:170ml磷酸+ 30ml蒸馏水.考马斯亮蓝G-250:称0.2g考马斯亮蓝G-250溶于100ml 90%乙醇中,加入85%〔W/V〕磷酸200ml,用蒸馏水定容到2L.常温下可保存一个月.标准曲线的制作:配制0~100µg/ml血清白蛋白血液管号123456100µg/ml牛血清白蛋白<ml>00.20.40.60.81.0蒸馏水量<ml>1.00.80.60.40.20蛋白质含量〔ml〕00.020.040.060.080.10配制0~1000µg/ml血清白蛋白血液管号789101112100µg/ml牛血清白蛋白<ml>00.20.40.60.81.0蒸馏水量<ml>1.00.80.60.40.20蛋白质含量〔ml〕00.20.40.60.81.00.1ml 酶液〔做三个重复〕+ 5ml考马斯亮蓝G-250―――混匀,放置2min后在595nm下比色.2.6过氧化氢酶〔CAT〕的测定:0.3%H2O2溶液的配制:吸5ml 30%H2O2,用0.05mol/L pH=7.0磷酸缓冲溶液<PBS>定容到500ml.1 ml 0.3%H2O2溶液+ 1.9ml H2O + 0.1 ml 酶液,测定240nm处OD降低速度.将每分钟OD 减少0.01定义为1个活力单位.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》P121〕2.7 抗坏血酸〔ASA〕的测定:〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》,P125〕5%三氯乙酸〔TCA〕溶液的配制:25g三氯乙酸,用蒸馏水定容到500ml.10%三氯乙酸〔TCA〕溶液的配制:25g三氯乙酸,用蒸馏水定容到250ml.150mmol/L NaH2PO4〔pH 7.4〕溶液的配制:100ml.44%H3PO4溶液的配制:250ml.4%2,2-二联吡啶溶液的配制:250ml.3%FeCl3溶液的配制:100ml.首先标制作准曲线.粗酶液的提取:取低温保存的鲜样,称0.5g左右的叶片〔或根〕放在50ml的离心管,加入15m 5%三氯乙酸〔TCA〕溶液〔最好是较冷的三氯乙酸〔TCA〕溶液,防止研磨时温度过高使酶失活〕,研磨〔用磨碎机磨〕,15000r/min的冷冻离心机下离心10分钟,上清液为粗酶液,用于抗坏血酸〔ASA〕含量的测定.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》P125~126〕测定:0.2ml 粗酶液+ 0.2ml 150mmol/L NaH2PO4〔pH 7.4〕溶液+ 0.2ml H2O,混匀〔振荡〕,至少30秒后,再依次分别加入:0.4 ml 10%三氯乙酸〔TCA〕溶液+ 0.4 ml 44%H3PO4溶液+ 0.4 ml 4%2,2-二联吡啶溶液+ 0.2ml 3%FeCl3溶液,混合后在37℃水浴中保温60min,测定OD525处的值.〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》P125~126〕2.8 谷胱甘肽的测定:4g新鲜材料+ 2ml 0.3mol/L醋酸汞+ 2ml 30%醋酸钠后研磨匀浆,转移到离心管中,以蒸馏水冲洗残渣,并以玻璃棒搅拌,净置10min,使之充分沉淀,离心后弃去上清液,沉淀以水〔每次10ml〕在摇动情况下冲洗2次.向沉淀中加入10ml 1mol/L盐酸以溶解其中的谷胱甘肽,以玻璃棒搅拌5min后加入1ml 20%的碘化钾溶液,混匀,离心.上清液转入供滴定用的100ml玻璃管中,沉淀在搅动情况下以10ml水冲洗.离心后溶液与第一次离心液合并.向得到的溶液中加入0.5ml淀粉液,用1mmol/L KIO3滴定,直至出现不消失的蓝色为止.1ml 1 mmol/L 的KIO3相当于0.307mg谷胱甘肽.〔参考《现代植物生理学实验指南》,中国科学院##植物生理研究所编〕.2.9天冬酰胺合成酶〔AS〕的测定:2.10 天冬酰胺转氨酶〔AspAT〕的测定:3 硝酸还原酶<NR>的测定采用离体法:〔1g样〕〔参考陈建勋,王晓峰主编的《植物生理学实验指导》,P27~29〕亚硝酸钠标准溶液〔1µg/ml〕:称NaNO2 0.9857g ,定容到1000ml,再吸5ml定容到1000ml.0.1 mol/L pH7.5的磷酸缓冲溶液:30.0905g Na2HPO4·12H2O + 2.4965g NaH2PO4·2H2O,加蒸馏水定容到1000ml.3mol/L HCl:125ml浓盐酸加蒸馏水定容到500ml.1%磺胺溶液:5.0g磺胺溶于500ml 3mol/L HCl中.0.2%a-萘胺溶液:1.0g a-萘胺溶于125ml冰醋酸后用蒸馏水定容到500ml,贮于棕色瓶中.0.1mol/L KNO3溶液:5.055g KNO3溶于500mln 0.1 mol/L pH7.5的磷酸缓冲溶液.0.025mol/L pH8.7的磷酸缓冲溶液:Na2HPO4·12H2O 8.8640g + NaH2PO4·2H2O 0.0570g,加蒸馏水定容到1L.提取缓冲液:1.211g半胱氨酸+ 0.372g EDTA,溶于1L 0.025 mol/L pH8.7的磷酸缓冲溶液. 2mg/ml NADH 溶液:0.5g NADH溶于250ml 0.1 mol/L pH7.5的磷酸缓冲溶液〔临用前配制〕. 首先标制作准曲线:取7支洁净烘干的15ml刻度试管加试剂,即配成0~2.0μg的系列标准亚硝态氮溶液.摇匀后在30℃保温箱或恒温水浴中保温30min,然后在540nm波长下比色.以亚硝态氮〔μg〕为横坐标〔x〕,光密度值为纵坐标〔y〕绘标准曲线或建立回归方程.各试剂加入顺序管号1234567亚硝酸钠标准液<ml>00.20.40.81.21.62.0蒸馏水<ml>2.01.81.61.20.80.401%磺胺溶液<ml>44444440.2%α-萘胺<ml>4444444每管含NO2- <μg>00.20.40.81.21.62.01g 材料+15ml提取缓冲液后研磨匀浆,转移到离心管中于4℃、4000r/min下离心15min,上清液即为粗酶提取液,用于硝酸还原酶<NR>的测定.0.4ml+1.2ml 0.1mol/L KNO3溶液+ 0.4mlNADH溶液后混匀〔对照不加NADH溶液,而以0.4ml 0.1mol/L pH 7.5磷酸缓冲液代替〕,在25℃水浴中保温30min.保温结束后立即加入1ml 磺胺溶液终止酶反应,再加1ml 0.2%a-萘胺溶液,显色反应15min后于4000r/min下离心5min,取上清液在540nm下比色测定吸光度.根据回归方程计算.。

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一、脲酶测定(比色法)1、试剂配制:(1)pH6.7柠檬酸盐溶液:取368g柠檬酸溶于600mL蒸馏水中,另取295g氢氧化钾溶于水,再将两种溶液合并,用1N氢氧化钠将pH调至6.7,并用水稀释至2L。

(2)苯酚钠溶液:称取62.5g苯酚溶于少量乙醇中,加2mL甲醇和18.5mL丙酮,后用乙醇稀释至100mL(A液),保存再冰箱中。

称取27g氢氧化钠溶于100mL水中(B液),保存于冰箱中。

使用前,取A、B两液各20mL混和,并用蒸馏水稀释至100mL备用。

(3)次氯酸钠溶液:用水稀释制剂至活性氯的浓度为0.9%,溶液稳定。

(4)10%尿素溶液:10g尿素溶于100mL水中。

(5)N的标准溶液:精确称取0.4717g硫酸铵溶于水稀释至1L,则得1mL含0.1mgN 的标液,再将此液稀释10倍制成氮工作液(0.01mg/mL)。

2、操作步骤称取5g土置于50mL容量瓶中,加1mL甲苯处理,加塞塞紧轻摇15min;往瓶中加入5mL10%尿素液和10mL的柠檬酸盐缓冲液(pH6.7),仔细混匀。

在37℃恒温箱中培养24h。

然后用热至38℃的蒸馏水稀释至刻度(甲苯应浮在刻度以上),摇荡,将悬液过滤。

取滤液1mL 置于50mL容量瓶中,用蒸馏水稀释至10mL,然后加入4mL苯酚钠溶液,并立即加入3mL次氯酸钠溶液,加入每一试剂后,立即将混合物摇匀,20min后,将混合物稀释至刻度,在波长578nm处测定吸光值。

脲酶活性以样品所得的吸光值减去对照样品吸光值之差,根据标准曲线求出氨态氮量。

标准曲线绘制:分别取0、1、3、5、7、9、11、13mL氮工作液置于50mL容量瓶中,加蒸馏水至20mL,再加4mL苯酚钠溶液和3mL次氯酸钠溶液,随加随摇匀,20min后显色,定容。

1h内再分光光度计上于578nm处比色。

3、结果计算以24小时后1g土壤中NH3-N的质量(mg)表示脲酶活性(Ure)Ure=a·V·n/m式中:a为由标准曲线求得的NH3-N浓度(mg/mL);V为显色液体积(50mL);n为分取倍数;m为烘干土重(g)。

土壤脲酶活性测定(NH 4+释放量法)脲酶是酰胺水解酶的一种,在自然界中分布广泛,植物、动物和微生物细胞中均含有此酶。

土壤中的脲酶主要来源于微生物和植物。

脲酶催化尿素的水解反应:22232H NCONH +H O 2NH +CO −−−→脲酶在反应过程中,氨基甲酸盐是中间产物。

脲酶还能够催化羟基脲、二羟基脲、半卡巴脲等化合物的水解。

脲酶含有镍,分子量在151,000 Da ~480,00 Da 之间。

能够抑制脲酶活性的化合物有含硼化合物、尿素衍生物、甲醛、原子量大于50的重金属的盐、含氟化合物、醌和多元酚、抗代谢剂、杂环硫醇等。

1. 试验原理通过对新鲜土壤与尿素溶液在37℃培养2h 后测定氨释放量,估计脲酶的活性 (Tabatabai, 1994)。

2. 试验仪器50mL 容量瓶;培养箱或恒温水浴;蒸馏定氮仪。

3. 试验试剂(所用试剂均为分析纯)a. 甲苯(C 6H 5CH 3);b. 缓冲液:三(羟甲基)氨基甲烷[c (C 2H 8O 3N 3)=0.05mol ·L -1, pH9.0]:称取6.1g 三(羟甲基)氨基甲烷(Tris (hydroxymethyl) aminomethane )溶入700mL 蒸馏水中,用c (H 2SO 4)=0.2mol ·L -1的硫酸溶液调pH 至9.0,再用蒸馏水定容至1000mL;c. 尿素溶液{c [CO(NH 2)2]=0.2 mol ·L -1}:称取1.2g 尿素溶入约80mL 缓冲液中,后用该缓冲液定容至100mL 。

尿素溶液要当天配制,并在4℃下保存备用;d. 氯化钾硫酸银混合溶液[c (KCl )=2.5mol·L -1]-[ρ(Ag 2SO 4)=100mg·L -1]:先将100mg Ag 2SO 4溶于700mL 蒸馏水中,再加入188g 的KCl (分析纯)使之溶解,在定容至1000mL ;e. 氧化镁(MgO ):于高温电炉中,将氧化镁在600℃-700℃温度下灼烧2h ,再放置于干燥器中冷却,贮于瓶中;f. 混合指示剂:溶解0.099g 的溴甲酚绿和0.066g 甲基红于100mL 的乙醇(95%纯度)中;g. 硼酸指示剂溶液[ρ(H 3BO 3)=20g·L -1]:溶解20g 硼酸于950mL 的热蒸馏水中,冷却,加入20mL 的混合指示剂,充分混匀后,小心滴加氢氧化钠溶液[c (NaOH)=0.1mol·L -1],直至溶液呈红紫色(pH 约4.5),稀释成1L ;h. 硫酸标准溶液[c (1/2H 2SO 4)=0.005mol ·L -1]。

4. 试验步骤将5.00g 新鲜土样(<2mm )放置于50mL 容量瓶中,加入0.2mL 甲苯(试剂a )和9mL 缓冲溶液(试剂b ),轻摇混匀后加入1.0mL 尿素溶液(试剂c ),再次轻摇混匀并塞上瓶塞。

在37℃下培养2h 。

然后加入约35mL 的KCl-Ag 2SO 4溶液(试剂d ),轻摇容量瓶几秒钟后,放置至室温(约5min ),用KCl-Ag 2SO 4溶液定容,摇匀。

同时要仪同样步骤做空白,只是培养2h 后先加35mL 的KCl-Ag 2SO 4溶液,然后加入1.0mL 尿素溶液。

蒸馏法测氨:取土壤悬浮液20mL 至蒸馏瓶中,加入0.2g 的MgO ,用硼酸指示溶液吸收,蒸馏液的体积约为30mL 。

用c (1/2H 2SO 4)=0.005 mol ·L -1的H 2SO 4标准溶液滴定。

5. 结果计算c ts N 1000m k 2ω⨯⨯⨯⨯⨯⨯V 14()= 式中:ω(N )-单位时间内氨态氮的释放量,mg ·kg -1h -1;c -1/2H 2SO 4标准溶液的浓度,mol ·L -1;V -H 2SO 4标准溶液的体积,mL ;ts -分取系数,2.5;14-氮的摩尔质量,mg ·mmol -1;2-培养时间,2h ;m -样品质量,g ;k -水分系数。

6. 注意:a. 与其他缓冲液(如磷酸盐缓冲液)相比,三(羟甲基)氨基甲烷缓冲液优点在于它能够有效地防止铵的固定。

在配制该缓冲液时必须用硫酸而不是盐酸来调pH ,因为后者能够促进脲酶的活性;b. 在配制KCl-Ag 2SO 4溶液时,应将KCl 溶于溶解后的Ag 2SO 4溶液中,因为Ag 2SO 4在KCl 溶液中不溶。

加入KCl-Ag 2SO 4混合溶液后脲酶的活性停止,因此该悬浮液在测定氨之前可以放置2h 。

方法来源:鲁如坤. 土壤农业化学分析方法. 北京: 中国农业科技出版社, 2000.二.过氧化氢酶测定(容量法)1. 分析意义过氧化氢酶广泛存在于土壤中和生物体内。

土壤过氧化氢酶促过氧化氢的分解有利于防止它对生物体的毒害作用。

过氧化氢酶活性与土壤有机质含量有关,与微生物数量也有关。

一般认为,土壤中催化过氧化氢分解的活性,有30%或40%以上是耐热的,即非生物活性,常由锰、铁引起催化作用。

土壤肥力因子与不耐热的即过氧化氢酶活性成正比例。

2. 试验原理Kappen(1913)首先介绍硫酸存在下用高锰酸钾滴定剩余的过氧化氢测定酶活性。

此法根据过氧化氢与土壤相互作用时,未分解的过氧化氢的数量用容量法(常用高锰酸钾滴定未分解的过氧化氢)测定过氧化氢酶活性。

反应方程式如下:2KMnO+5H O+3H SO→2MnSO+K SO+8H O+5O42224424223. 试剂配制a. 0.3%过氧化氢溶液:按1:100将30%H2O2用水稀释b. 3N 硫酸;c. 0.1N 高锰酸钾(1/5KMnO4)溶液:称取化学纯高锰酸钾3.161g,溶于1升无CO2蒸馏水中,贮于综色瓶中,备用。

4. 操作步骤(1)取2g风干土,置于100mL三角瓶中,并注入40mL蒸馏水和5mL 0.3%过氧化氢溶液。

(2)同时设置对照,即三角瓶中注入40mL蒸馏水和5mL 0.3%过氧化氢溶液,而不加土样。

(3)将三角瓶放在振荡机上振荡20min。

而后加入5mL 3N硫酸,以稳定未分解的过氧化氢。

再将瓶中悬液用慢速滤纸过滤。

然后,吸取25mL 滤液,用0.1N高锰酸钾滴定至淡粉红色终点。

5. 结果计算用于滴定土壤滤液所消耗的高锰酸钾量(毫升数)为B,用于滴定25mL原始的过氧化氢混合液所消耗的高锰酸钾量(毫升数)为A。

(A-B)×T即为过氧化氢酶活性。

以20min后1g土壤的0.1N高锰酸钾的毫升数表示。

式中T为高锰酸钾滴定度的校正值。

方法来源:关松荫. 土壤酶及其研究法. 北京: 农业出版社, 1986.高锰酸钾溶液的配制与标定1、配制称取3.3g高锰酸钾,溶于1050ml水中,缓缓煮沸15min,冷却后置于暗处保存2周。

以4号玻璃滤埚过滤于干燥的棕色瓶中。

过滤高锰酸钾溶液所用的玻璃滤埚预先应以同样的高锰酸钾溶液缓缓煮沸5min。

收集瓶也应用此高锰酸钾溶液洗涤2~3次。

2、标定称取0.2g于105~110℃烘至恒重的基准草酸钠,称准至0.0001g。

溶于100ml(8+92)硫酸溶液中,用配制好的高锰酸钾溶液[c(KMnO4)=0.1mol/l]滴定,近终点时加热至6 5℃,继续滴定至溶液呈粉红色保持30s,同时作空白试验。

3、计算高锰酸钾溶液标准浓度按下式计算c(1/5KMnO4)=m/(V1-V2)*0.06700式中c(1/5KMnO4)=——高锰酸钾标准液之物质的量浓度,mol/l;m——草酸钠之质量,g;V1——高锰酸钾溶液之用量,ml;V2——空白试验用高锰酸钾溶液之用量,ml;0.06700——与1.00ml高锰酸钾溶液c(1/5KMnO4)=1.000mol/l相当的以克表示的草酸钠的质量。

KMnO4标准溶液的标定准确称取0.15~0.2g预先干燥过的Na2C2O4,加80mL水,20mL 3mol·L-1的H2SO4使其溶解,用水浴慢慢加热至有蒸汽冒出(约343~358K),趁热用待标定的KMnO4溶液进行滴定。

开始宜慢,在第一滴KMnO4溶液滴入后,不要搅动溶液,当紫红色褪去后再滴入第二滴。

待溶液中有Mn2+产生后,反应速度加快,滴定速度可适当加快,但不能使KMnO4溶液呈线状流下。

近终点时,紫红色褪去很慢,应减慢滴定速度并充分搅拌,以防超过终点。

最后滴加半滴KMnO4溶液,搅匀后,微红色半分钟不褪,表明已到终点,计算KMnO4的浓度三、蔗糖酶测定(比色法):1、试剂配制(1)3,5-二硝基水杨酸溶液:称0.5g二硝基水杨酸,溶于20mL2N氢氧化钠和50mL水中,再加30g酒石酸钾钠,用水稀释至100mL(不超过7天)。

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